ELISA的概念、原理、操作步骤.

ELISA的概念、原理、操作步骤
ELISA是酶联接免疫吸附剂测定( Enzyme-Linked Immunosorbnent Assay )的简称。

它是继免疫荧光和放射免疫技术之后发展起来的一种免疫酶技术。

此项技术自70年代初问世以来,发展十分迅速,目前已被广泛用于生物学和医学科学的许多领域。

(一)原理
ELISA是以免疫学反应为基础,将抗原、牽9体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。

由于抗原、抗体的反应在一种固相载体──聚苯乙烯微量滴定板的孔中进行,每加入一种试剂孵育后,可通过洗涤除去多余的游离反应物,从而保证试验结果的特异性与稳定性。

在实际应用中,通过不同的设计,具体的方法步骤可有多种。

即:用于检测抗体的间接法(图a)、用于检测抗原的双抗体夹心法(图b)以及用于检测小分子抗原或半抗原的抗原竞争法等等。

比较常用的是ELISA双抗体夹心法及ELISA间接法。

(二)操作步骤
方法一用于检测未知抗原的双抗体夹心法:
1.包被:用0.05M PH9.牰碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。

在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。

次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。

(简称洗涤,下同)。

2.加样:加一定稀释的待检样品0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时。

然后洗涤。

(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。

3.加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标抗体(经滴定后的稀释度)0.1ml。

37℃孵育0.5~1小时,洗涤。

4.加底物液显色:于各反应孔中加入临时配制的TMB底物溶液0.1ml,37℃10~30分钟。

5.终止反应:于各反应孔中加入2M硫酸0.05ml。

6.结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。

也可测O·D值:在ELISA检测仪上,于450nm(若以ABTS显色,则410nm)处,以空白对照孔调零后测各孔O·D值,若大于规定的阴性对照O D值的2.1倍,即为阳性。

方法二用于检测未知抗体的间接法:
用包被缓冲液将已知抗原稀释至1~10μg/ml,每孔加0.1ml,4℃过夜。

次日洗涤3次。

加一定稀释
的待检样品(未知抗体)0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时,洗涤。

(同时做空白、阴性及阳性孔对照)于反应孔中,加入新鲜稀释的酶标第二抗体(抗抗体)0.1ml,37℃孵育30-60分钟,洗涤,最后一遍用DDW洗涤。

其余步骤同“双抗体夹心法”的4、5、6。

(三)试剂器材
1.试剂
(1)包被缓冲液(PH9.6 0.05M碳酸盐缓冲液):
NaCO 3 1.59克NaHCO3 2.93克加蒸馏水至1000ml
(2)洗涤缓冲液(PH7.4 PBS):0.15M KH2PO40.2克Na2HPO4·12H2O 2.9克NaCl 8.0克KCl 0. 2克Tween-20 0.05%0.5ml 加蒸馏水至1000ml
(3)稀释液:牛血清白蛋白(BSA) 0.1克加洗涤缓冲液至100ml或以羊血清、兔血清等血清与洗涤液配成5~10%使用。

(4)终止液(2M H2SO4):蒸馏水178.3ml,逐滴加入浓硫酸(98%)21.7ml。

(5)底物缓冲液(PH5.0磷酸棗柠檬酸):0.2M Na2HPO4(28.4克/L) 25.7ml0.1M 柠檬酸(19.2克/L) 24.3ml加蒸馏水50ml。

(6)TMB(四甲基联苯胺)使用液:TMB(10mg/5ml无水乙醇) 0.5ml底物缓冲液(PH5.5) 10ml0.75%H2 O232μl
(7)ABTS使用液:ABTS0.5mg底物缓冲液(PH5.5) 1ml3%H2O22μl
(8)抗原、抗体和酶标记抗体。

(9)正常人血清和阳性对照血清。

2.器材:
(1)聚苯乙烯塑料板(简称酶标板)40孔或96孔,ELISA检测仪,50μl及100μl加样器,塑料滴头,小毛巾,洗涤瓶。

(2)小烧杯、玻璃棒、试管、吸管和量筒等。

(3)4℃冰箱,37℃孵育箱。

(四)注意事项
1.正式试验时,应分别以阳性对照与阴性对照控制试验条件,待检样品应作一式二份,以保证实验结果的准确性。

有时本底较高,说明有非特异性反应,可采用羊血清、兔血清或BSA等封闭。

2.在ELISA中,进行各项实验条件的选择是很重要的,其中包括:
(1)固相载体的选择:许多物质可作为固相载体,如聚氯乙烯、聚苯乙烯、聚丙酰胺和纤维素等。

其形式可以是凹孔平板、试管、珠粒等。

目前常用的是40孔聚苯乙烯凹孔板。

不管何种载体,在使用前均可进行筛选:用等量抗原包被,在同一实验条件下进行反应,观察其显色反应是否均一性,据此判明其吸附性能是否良好。

(2) 包被抗体(或抗原)的选择:将抗体(或抗原)吸附在固相载体表面时,要求纯度要好,吸附时一般要求PH在9.0~9.6之间。

吸附温度,时间及其蛋白量也有一定影响,一般多采用4℃18~24小时。

蛋白质包被的最适浓度需进行滴定:即用不同的蛋白质浓度(0.1、1.0和10μg/ml等)进行包被后,在其它试验条件相同时,观察阳性标本的OD值。

选择OD值最大而蛋白量最少的浓度。

对于多数蛋白质来说通常为1~1 0μg/ml。

(3)酶标记抗体工作浓度的选择:首先用直接ELISA法进行初步效价的滴定(见酶标记抗体部份)。

然后再固定其它条件或采取“方阵法”(包被物、待检样品的参考品及酶标记抗体分别为不同的稀释度)在正式实验系统里准确地滴定其工作浓度。

(4)酶的底物及供氢体的选择:对供氢体的选择要求是价廉、安全、有明显地显色反应,而本身无色。

有些供氢体(如OPD等)有潜在的致癌作用,应注意防护。

有条件者应使用不致癌、灵敏度高的供氢体,如TMB和ABTS是目前较为满意的供氢体。

底物作用一段时间后,应加入强酸或强碱以终止反应。

通常底物作用时间,以10-30分钟为宜。

底物使用液必须新鲜配制,尤其是H2O2在临用前加入。

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ELISA完整详解

ELISA完整详解

ELISA完整详解(一)原理ELISA是以免疫学反应为基础,将抗原、牽9体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。

由于抗原、抗体的反应在一种固相载体──聚苯乙烯微量滴定板的孔中进行,每加入一种试剂孵育后,可通过洗涤除去多余的游离反应物,从而保证试验结果的特异性与稳定性。

在实际应用中,通过不同的设计,具体的方法步骤可有多种。

即:用于检测抗体的间接法(图a)、用于检测抗原的双抗体夹心法(图b)以及用于检测小分子抗原或半抗原的抗原竞争法等等。

比较常用的是ELISA双抗体夹心法及ELISA间接法。

(二)操作步骤方法一用于检测未知抗原的双抗体夹心法:1.包被:用0.05M PH9.牰碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。

在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。

次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。

(简称洗涤,下同)。

2.加样:加一定稀释的待检样品0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时。

然后洗涤。

(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。

3.加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标抗体(经滴定后的稀释度)0.1ml。

37℃孵育0.5~1小时,洗涤。

4.加底物液显色:于各反应孔中加入临时配制的TMB底物溶液0.1ml,37℃10~30分钟。

5.终止反应:于各反应孔中加入2M硫酸0.05ml。

6.结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。

也可测O·D值:在ELISA检测仪上,于4 50nm(若以ABTS显色,则410nm)处,以空白对照孔调零后测各孔O·D 值,若大于规定的阴性对照OD值的2.1倍,即为阳性。

方法二用于检测未知抗体的间接法:用包被缓冲液将已知抗原稀释至1~10μg/ml,每孔加0.1ml,4℃过夜。

ELISA方法的基本原理和操作步骤

ELISA方法的基本原理和操作步骤

ELISA方法的基本原理和操作步骤基本原理:1.直接ELISA:直接将酶标记的抗体与待测样品中的抗原结合。

该方法简单,适用于检测高浓度抗原,但不适用于低浓度抗原检测。

2.间接ELISA:先将待测样品中的抗原与特异性抗体结合,随后再加入酶标记的二抗与该特异性抗体结合。

该方法适用于特异性抗体较多的情况,能够提高检测灵敏度。

3.夹心ELISA:利用两种抗体分别与待测样品中的抗原结合,形成夹心复合物。

酶标记抗体与第二个抗体结合的复合物逐渐积累,从而实现对目标分子的定量检测。

4.竞争ELISA:利用酶标记抗体与待测样品中的抗原竞争结合,根据酶标记物对底物的催化反应产生的信号强度来反映待测样品中抗原的浓度。

操作步骤:1.酶标板涂布:取出96孔的酶标板,在每孔中加入特异性抗体,通常用于检测的是抗原,也可以是抗体。

将酶标板在4°C下孵育数小时或过夜,使抗体吸附在孔壁上。

2.冲洗:倒掉孔内液,用PBS-T洗涤缓冲液冲洗3-4次,去除未结合的抗体。

3.阻断:加入阻断缓冲液如5%的牛血清白蛋白(BSA)或非脂乳粉,防止非特异性结合。

4.样品加入:加入待测样品、标准品或对照样品,使待测物质与固相抗体结合。

5.洗涤:冲洗孔内液,去除未结合的样品。

6.酶标记抗体:加入酶标记的二级抗体,即酶联检测剂。

7.洗涤:冲洗孔内液,去除未结合的酶标记抗体。

8.底物加入:加入底物,底物受到酶标记的物质的催化,会产生信号。

9.反应停止:加入反应停止液,终止底物的反应。

10.读取结果:通过酶催化底物反应的产物颜色的变化,利用酶标仪读取OD值,反映抗原或抗体的浓度。

ELISA方法的基本原理和操作步骤

ELISA方法的基本原理和操作步骤

ELISA方法的基本原理和操作步骤自己收藏的觉得很有用故上传到百度与大家一起分享!ELISA方法的基本原理和操作步骤基本原理1971年Engvall和Perlmann发表了酶联免疫吸附剂测定(enzyme linked immunosorbent assayELISA)用于IgG定量测定的文章使得1966年开始用于抗原定位的酶标抗体技术发展成液体标本中微量物质的测定方法这一方法的基本原理是:①使抗原或抗体结合到某种固相载体表面并保持其免疫活性②使抗原或抗体与某种酶连接成酶标抗原或抗体这种酶标抗原或抗体既保留其免疫活性又保留酶的活性在测定时把受检标本(测定其中的抗体或抗原)和酶标抗原或抗体按不同的步骤与固相载体表面的抗原或抗体起反应用洗涤的方法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与其他物质分开最后结合在固相载体上的酶量与标本中受检物质的量成一定的比例加入酶反应的底物后底物被酶催化变为有色产物产物的量与标本中受检物质的量直接相关故可根据颜色反应的深浅刊物定性或定量分析由于酶的催化频率很高故可极大地地放大反应效果从而使测定方法达到很高的敏感度方法类型和操作步骤ELISA可用于测定抗原也可用于测定抗体在这种测定方法中有3种必要的试剂:①固相的抗原或抗体②酶标记的抗原或抗体③酶作用的底物根据试剂的来源和标本的性状以及检测的具备条件可设计出各种不同类型的检测方法(一)双抗体夹心法双抗体夹心法是检测抗原最常用的方法操作步骤如下:(1)将特异性抗体与固相载体连接形成固相抗体:洗涤除去未结合的抗体及杂质(2)加受检标本:使之与固相抗体接触反应一段时间让标本中的抗原与固相载体上的抗体结合形成固相抗原复合物洗涤除去其他未结合的物质(3)加酶标抗体:使固相免疫复合物上的抗原与酶标抗体结合彻底洗涤未结合的酶标抗体此时固相载体上带有的酶量与标本中受检物质的量正相关(4)加底物:夹心式复合物中的酶催化底物成为有色产物根据颜色反应的程度进行该抗原的定性或定量根据同样原理将大分子抗原分别制备固相抗原和酶标抗原结合物即可用双抗原夹心法测定标本中的抗体(二)双位点一步法在双抗体夹心法测定抗原时如应用针对抗原分子上两个不同抗原决定簇的单克隆抗体分别作为固相抗体和酶标抗体则在测定时可使标本的加入和酶标抗体的加入两步并作一步(图15-5)这种双位点一步不但简化了操作缩短了反应时间如应用高亲和力的单克隆抗体测定的敏感性和特异性也显著提高单克隆抗体的应用使测定抗原的ELIS在一步法测定中应注意钩状效应(hookeffect)类同于沉淀反应中抗原过剩的后带现象当标本中待测抗原浓度相当高时过量抗原分别和固相抗体及酶标抗体结合而不再形成夹心复合物所得结果将低于实际含量钩状效应严重时甚至可出现假阴性结果(三)间接法测抗体间接法是检测抗体最常用的方法其原理为利用酶标记的抗抗体以检测已与固相结合的受检抗体故称为间接法操作步骤如下:(1)将特异性抗原与固相载体连接形成固相抗原:洗涤除去未结合的抗原及杂质(2)加稀释的受检血清:其中的特异抗体与抗原结合形成固相抗原抗体复合物经洗涤后固相载体上只留下特异性抗体其他免疫球蛋白及血清中的杂质由于不能与固相抗原结合在洗涤过程中被洗去(3)加酶标抗抗体:与固相复合物中的抗体结合从而使该抗体间接地标记上酶洗涤后固相载体上的酶量就代表特异性抗体的量例如欲测人对某种疾病的抗体可用酶标羊抗人IgG抗体(4)加底物显色:颜色深度代表标本中受检抗体的量本法只要更换不同的固相抗原可以用一种酶标抗抗体检测各种与抗原相应的抗体(四)竞争法竞争法可用于测定抗原也可用于测定抗体以测定抗原为例受检抗原和酶标抗原竞争与固相抗体结合因此结合于固相的酶标抗原量与受检抗原的量呈反比操作步骤如下:(1)将特异抗体与固相载体连接形成固相抗体洗涤(2)待测管中加受检标本和一定量酶标抗原的混合溶液使之与固相抗体反应如受检标本中无抗原则酶标抗原能顺利地与固相抗体结合如受检标本中含有抗原则与酶标抗原以同样的机会与固相抗体结合竞争性地占去了酶标抗原与固相载体结合的机会使酶标抗原与固相载体的结合量减少参考管中只加酶标抗原保温后酶标抗原与固相抗体的结合可达最充分的量洗涤(3)加底物显色:参考管中由于结合的酶标抗原最多故颜色最深参考管颜色深度与待测管颜色深度之差代表受检标本抗原的量待测管颜色越淡表示标本中抗原含量越多(五)捕获法测IgM抗体血清中针对某些抗原的特异性IgM常和特异性IgG同时存在后者会干扰IgM抗体的测定因此测定IgM抗本多用捕获法先将所有血清IgM(包括异性IgM和非特异性IgM)固定在固相上在去除IgG后再测定特异性IgM操作步骤如下:(1)将抗人IgM抗体连接在固相载体上形成固相抗人IgM洗涤(2)加入稀释的血清标本:保温反应后血清中的IgM抗体被固相抗体捕获洗涤除去其他免疫球蛋白和血清中的杂质成分(3)加入特异性抗原试剂:它只与固相上的特异性IgM结合洗涤(4)加入针对特异性的酶标抗体:使之与结合在固相上的抗原反应结合洗涤(5)加底物显色:如有颜色显示则表示血清标本中的特异性IgM抗体存在是为阳性反应(六)应用亲和素和生物素的ELISA亲和素是一种糖蛋白可由蛋清中提取分子量60kD每个分子由4个亚基组成可以和4个生物素分子亲密结合现在使用更多的是从链霉菌中提取的链霉和素(strepavidin)生物素(biotin)又称维生素H分子量244.31存在于蛋黄中用化学方法制成的衍生物生物素-羟基琥珀亚胺酯(biotin-hydroxysuccinimideBNHS)可与蛋白质、糖类和酶等多种类型的大小分子形成生物素化的产物亲和素与生物素的结合虽不属免疫反应但特异性强亲和力大两者一经结合就极为稳定由于1个亲和素分子有4个生物素分子的结合位置可以连接更多的生物素化的分子形成一种类似晶格的复合体因此把亲和素和生物素与ELIS偶联起来就可大提高ELISA的敏感度亲和素-生物素系统在ELISA中的应用有多种形式可用于间接包被亦可用于终反应放大可以在固相上先预包被亲和素原用吸附法包被固相的抗体或抗原与生物素结合通过亲和素-生物素反应而使生物素化的抗体或抗在相化这种包被法不仅可增加吸附的抗体或抗原量而且使其结合点充分暴露另外在常规ELISA中的酶标抗体也可用生物素化的抗体替代然后连接亲和素-酶结合物以放大反应信号ELISA 普遍用作非放射性同位素的成键化验. 在这种方法中, 通常标准配体是固定的, 通过加入溶液相受体或蛋白质来使之成键. 通过加入与受体特异性反应的抗体来定量成键的受体, 而且最初抗体的量以加入第二种能显色的抗体测量. 第二种抗体能识别抗体的末端, 在其末端的碱性磷酸酯或过氧化物酶等与酶发生反应, 从而使溶液显色一、ELISA的原理ELISA的基础是抗原或抗体的固相化及抗原或抗体的酶标记结合在固相载体表面的抗原或抗体仍保持其免疫学活性酶标记的抗原或抗体既保留其免疫学活性又保留酶的活性在测定时受检标本(测定其中的抗体或抗原)与固相载体表面的抗原或抗体起反应用洗涤的方法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与液体中的其他物质分开再加入酶标记的抗原或抗体也通过反应而结合在固相载体上此时固相上的酶量与标本中受检物质的量呈一定的比例加入酶反应的底物后底物被酶催化成为有色产物产物的量与标本中受检物质的量直接相关故可根据呈色的深浅进行定性或定量分析由于酶的催化效率很高间接地放大了免疫反应的结果使测定方法达到很高的敏感度二、ELISA的类型ELISA可用于测定抗原也可用于测定抗体在这种测定方法中有三个必要的试剂:(1)固相的抗原或抗体即"免疫吸附剂"(immunosorbent);(2)酶标记的抗原或抗体称为"酶联物"、"结合物"(conjugate);(3)酶反应的底物根据试剂的来源和标本的情况以及检测的具体条件可设计出各种不同类型的检测方法用于临床检验的ELISA主要有以下几种类型:(一)双抗体夹心法测抗原双抗体夹心法是检测抗原最常用的方法操作步骤如下:(1)将特异性抗体与固相载体联结形成固相抗体洗涤除去未结合的抗体及杂质(2)加受检标本保温反应标本中的抗原与固相抗体结合形成固相抗原抗体复合物洗涤除去其他未结合物质(3)加酶标抗体保温反应固相免疫复合物上的抗原与酶标抗体结合彻底洗涤未结合的酶标抗体此时固相载体上带有的酶量与标本中受检抗原的量相关(4)加底物显色固相上的酶催化底物成为有色产物通过比色测知标本中抗原的量在临床检验中此法适用于检验各种蛋白质等大分子抗原例如HBsAg、HBeAg、AFP、hCG等只要获得针对受检抗原的异性抗体就可用于包被固相载体和制备酶结合物而建立此法如抗体的来源为抗血清包被和酶标用的抗体最好分别取自不同种属的动物如应用单克隆抗体一般选择两个针对抗原上不同决定簇的单抗分别用于包被固相载体和制备酶结合物这种双位点夹心法具有很高的特异性而且可以将受检标本和酶标抗体一起保温反应作一步法检测在一步法测定中当标本中受检抗原的含量很高时过量抗原分别和固相抗体及酶标抗体结合而不再形成"夹心复合物"类同于沉淀反应中抗原过剩的后带现象此时反应后显色的吸光值(位于抗原过剩带上)与标准曲线(位于抗体过剩带上)某一抗原浓度的吸光值相同如按常法测读所得结果将低于实际的含量这种现象被称为钩状效应(hook effect)因为标准曲线到达高峰后呈钩状弯落钩状效应严重时反应甚至可不显色而出现假阴性结果因此在使用一步法试剂测定标本中含量可异常增高的物质(例如血清中HBsAg、AFP和尿液hCG等)时应注意可测范围的最高值用高亲和力的单克隆抗体制备此类试剂可削弱钩状效应假使在被测分子的不同位点上含有多个相同的决定簇例如HBsAg的a决定簇也可用针对此决定的同一单抗分别包被固相和制备酶结合物但在HBsAg的检测中应注意亚型问题HBsAg有adr、adw、ayr、ayw4个亚型显然每种亚型均有相同的a决定簇的反应性这也是用单抗作夹心法应注意的问题双抗体夹心法测抗原的另一注意点是类风湿因子(RF)的干扰RF是一种自身抗体多为IgM型能和多种动物IgG的Fc段结合用作双抗体夹心法检测的血清标本中如含有RF它可充当抗原成份同时与固相抗体和酶标抗体结合表现出假阳性反应采用F(ab')或Fab片段作酶结合物的试剂由于去除了Fc段从而可消除RF的干扰双抗体夹心法ELISA试剂是否受RF的影响已被列为这类试剂的一项考核指标(参见6.2)双抗体夹心法适用于测定二价或二价以上的大分子抗原但不适用于测定半抗原及小分子单价抗原因其不能形成两位点夹心(二)双抗原夹心法测抗体反应模式与双抗体夹心法类似用特异性抗原进行包被和制备酶结合物以检测相应的抗体与间接法测抗体的不同之处为以酶标抗原代替酶标抗抗体此法中受检标本不需稀释可直接用于测定因此其敏感度相对高于间接法乙肝标志物中抗HBs的检测常采用本法本法关键在于酶标抗原的制备应根据抗原结构的不同寻找合适的标记方法(三)间接法测抗体(我公司分装TORCH及传染病试剂盒大多采用本法)间接法是检测抗体常用的方法其原理为利用酶标记的抗抗体(抗人免疫球蛋白抗体)以检测与固相抗原结合的受检抗体故称为间接法(见图2-3)操作步骤如下:(1)将特异性抗原与固相载体联结形成固相抗原洗涤除去未结合的抗原及杂质(2)加稀释的受检血清保温反应血清中的特异抗体与固相抗原结合形成固相抗原抗体复合物经洗涤后固相载体上只留下特异性抗体血清中的其他成份在洗涤过程中被洗去(3)加酶标抗抗体可用酶标抗人Ig以检测总抗体但一般多用酶标抗人IgG检测IgG抗体固相免疫复合物中的抗体与酶标抗体抗体结合从而间接地标记上酶洗涤后固相载体上的酶量与标本中受检抗体的量正相关(4)加底物显色本法主要用于对病原体抗体的检测而进行传染病的诊断间接法的优点是只要变换包被抗原就可利用同一酶标抗抗体建立检测相应抗体的方法间接法成功的关键在于抗原的纯度虽然有时用粗提抗原包被也能取得实际有效的结果但应尽可能予以纯化以提高试验的特异性特别应注意除去能与一般健康人血清发生反应的杂质例如以E.Coli为工程酶的重组抗原如其中含有E.Coli成份很可能与受过E.Coli感染者血清中的抗E.Coli抗体发生反应抗原中也不能含有与酶标抗人Ig反应的物质例如来自人血浆或人体组织的抗原如不将其中的Ig去除试验中也发生假阳性反应另外如抗原中含有无关蛋白也会因竟争吸附而影响包被效果间接法中另一种干扰因素为正常血清中所含的高浓度的非特异性抗体病人血清中受检的特异性IgG只占总IgG中的一小部分IgG的吸附性很强非特异IgG可直接吸附到固相载体上有时也可吸附到包被抗原的表面因此在间接法中抗原包被后一般用无关蛋白质(例如牛血清蛋白)再包被一次以封闭(blocking)固相上的空余间隙另外在检测过程中标本须先行稀释(1:40~1:200)以避免过高的阴性本底影响结果的判断(四)竞争法测抗体当抗原材料中的干扰物质不易除去或不易得到足够的纯化抗原时可用此法检测特异性抗体其原理为标本中的抗体和一定量的酶标抗体竞争与固相抗原结合标本中抗体量越多结合在固相上的酶标抗体愈少因此阳性反应呈色浅于阴性反应如抗原为高纯度的可直接包被固相如抗原中会有干扰物质直接包被不易成功可采用捕获包被法即先包被与固相抗原相应的抗体然后加入抗原形成固相抗原洗涤除去抗原中的杂质然后再加标本和酶标抗体进行竞争结合反应竞争法测抗体有多种模式可将标本和酶标抗体与固相抗原竞争结合抗HBc ELISA一般采用此法另一种模式为将标本与抗原一起加入到固相抗体中进行竞争结合洗涤后再加入酶标抗体与结合在固相上的抗原反应抗HBe的检测一般采用此法(五)竞争法测抗原小分子抗原或半抗原因缺乏可作夹心法的两个以上的位点因此不能用双抗体夹心法进行测定可以采用竞争法模式其原理是标本中的抗原和一定量的酶标抗原竞争与固相抗体结合标本中抗原量含量愈多结合在固相上的酶标抗原愈少最后的显色也愈浅小分子激素、药物等ELISA测定多用此法(六)捕获包被法测抗体(经典方法)IgM抗体的检测用于传染病的早期诊断中间接法ELISA一般仅适用于检测总抗体或IgG抗体如用抗原包被的间接法直接测定IgM抗体因标本中一般同时存在较高浓度的IgG抗体后者将竞争结合固相抗原而使一部份IgM抗体不能结合到固相上因此如用抗人IgM作为二抗间接测定IgM抗体必须先将标本用A蛋白或抗IgG抗体处理以除去IgG的干扰在临床检验中测定抗体IgM时多采用捕获包被法先用抗人IgM抗体包被固相以捕获血清标本中的IgM(其中包括针对抗原的特异性IgM抗体和非特异性的IgM)然后加入抗原此抗原仅与特异性IgM相结合继而加酶标记针对抗原的特异性抗体再与底物作用呈色即与标本中的IgM成正相关此法常用于病毒性感染的早期诊断甲型肝炎病毒(HAV)抗体的检测模式见图2-7.类风湿因子(RF)同样能干扰捕获包被法测定IgM抗体导致假阳性反应因此中和IgG的间接法近来颇受青睐用这类试剂检测抗CMV IgGM和抗弓形虫IgM抗体已获成功(七)ABS-ELISA法ABS为亲和素(avidin)生物素(biotin)系统(system)的略语亲和素是一种糖蛋白分子量60000每个分子由4个能和生物素结合的亚基组成生物素为小分子化合物分子量244.用化学方法制成的衍生物素-羟基琥珀酰亚胺酯可与蛋白质和糖等多种类型的大小分子形成生物素标记产物标记方法颇为简便生物素与亲和素的结合具有很强的特异性其亲和力较抗原抗体反应大得多两者一经结合就极为稳定由于一个亲和素可与4个生物素分子结合因此如把ABS与ELISA法可分为酶标记亲和素-生物素(LAB)法和桥联亲和素-生物素(ABC)法两种类型两者均以生物素标记的抗体(或抗原)代替原ELISA系统中的酶标抗体(抗原)在LAB中固相生物素先与不标记的亲和素反应然后再加酶标记的生物素以进一步提高敏感度在早期亲和素从蛋清中提取这种卵亲和素为碱性糖蛋白与聚苯乙烯载体的吸附性很强用于ELISA中可使本底增高从链霉菌中提取的链霉亲和素则无此缺点在ELISA应用中有替代前者的趋势由于ABS-ELISA较普通ELISA多用了两种试剂增加了操作步骤在临床检验中ABS-ELISA应用不多科研项目中检测微量的成分如细胞因子常采用本法ELISA试剂的临床质量评价点击次数:48 发表于:2008-08-04 13:25 转载请注明来自丁香园来源:丁香园ELISA试剂的评价(evaluation)分两个方面:一是试剂本身的质量评价符合一定要求后才能生产供应;一是在临床应用中效果的评价以肝炎ELISA诊断试剂为例首先必须通过中国药品生物制品检定以得到生产的许可检定内容除包装、标签、说明书等外对试剂的性能如特异性、灵敏度、精密度和线性等均需逐项检定通过对一系列参比品的检测结果符合要求者才为合格ELISA试剂的临床质量评价是用该试剂对临床样本进行检测以观察其实际应用价值部临检中心对乙肝ELISA诊断试剂在这方面进行了工作通过质量评价促进了试剂质量的提高一、诊断试剂临床质量评价要点从临床应用角度考核检验试剂的可靠性是以其能否区分健康与疾病的能力作为依据的目前还很难找到100%可靠的试验任何试验都会出现假阳性或假阴性判断试验的可靠性常以其灵敏度及特异性作为考核标准临床应用的灵敏度用疾病患者试验阳性的百分率表示特异性以无病者试验阴性的百分率表示进行这种评价首先需要收集有关的病人血清然后用公认的检测该项标志物最可靠的试剂进行测定以确定其为阳性或阴性这一组表明测定物为阳性或阴性的血清组成"血清盘"(panel)被评价的试剂测定此血清所得结果与血清盘标明的结果的关系如下表:血清盘结果合计+-受检试剂结果+ a b a+b - c d c+d 合计a+c b+d A+b+c+d 表中a为真阳性b为假阳性c为假阴性d为真阴性被评价试剂的各项性能指标按以下分式计算:灵敏度(%)=a/(a+c)×100%特异性(%)=b/(b+d)×100%符合率(%)=(a+d)/(a+b+c+d) ×100%一般认为灵敏度或特异性>90%为良好符合率是综合灵敏度和特异性的指标二、临床考核血清盘的制备要求1、采用人的原血清;2、血清盘应具有相应的稳定性;3、血清盘中样本不含防腐剂或只含极微量的、不影响检验结果的防腐剂;4、血清盘所包含的阴性样本和阳性样本约各占一半;5、阳性样本中应有一定数量的强阳性和弱阳性样本;6、血清盘中应有一定数量的临界值上、下含量的样品以检验试剂的灵敏度7、血清盘中应包含与该项检验相关的病种样本和已积知具有干扰物质(RF因子)的样本以检验试剂的特异性三、临床考核血清盘的建议以抗-HBc-IgM为例部临检中心收集近百例临床肝炎病人的样本经美国abbott公司抗-HBc-IgM试剂反复检验筛选选出血清70份其中阳性29份阴性41份组成抗-HBc-IgM临床考核血清盘在70份样本中除7份为无病历的质控血清外抗-HBc-IgM阳性的22份样本中含临床诊断急性肝炎16例、慢性活动性肝炎5例、重症肝炎1例;抗-HBc-IgM阴性的40份样本中含临床诊断慢性迁延性肝炎24例、急性肝炎例(均为恢复期采的血样)、慢性活动性肝炎8例(其中5例为恢复血样)因此这套抗血清盘用于商品试剂的临床考核可以将临床上乙肝急性期、慢性活动期病人区分开具有临床诊断意义。

ELISA原理和几种方法

ELISA原理和几种方法
(六)应用亲和素和生物素的ELISA
亲和素是一种糖蛋白,可由蛋清中提取。分子量60kD,每个分子由4个亚基组成,可以和4个生物素分子亲密结合。现在使用更多的是从链霉菌中提取的链霉和素(strepavidin)。生物素(biotin)又称维生素H,分子量244.31,存在于蛋黄中。用化学方法制成的衍生物,生物素-羟基琥珀亚胺酯(biotin-hydroxysuccinimide,BNHS)可与蛋白质、糖类和酶等多种类型的大小分子形成生物素化的产物。亲和素与生物素的结合,虽不属免疫反应,但特异性强,亲和力大,两者一经结合就极为稳定。由于1个亲和素分子有4个生物素分子的结合位置,可以连接更多的生物素化的分子,形成一种类似晶格的复合体。因此把亲和素和生物素与ELIS偶联起来,就可大提高ELISA的敏感度。
(1)将特异性抗体与固相载体连接,形成固相抗体:洗涤除去未结合的抗体及杂质。
(2)加受检标本:使之与固相抗体接触反应一段时间,让标本中的抗原与固相载体上的抗体结合,形成固相抗原复合物。洗涤除去其他未结合的物质。
(3)加酶标抗体:使固相免疫复合物上的抗原与酶标抗体结合。彻底洗涤未结合的酶标抗体。此时固相载体上带有的酶量与标本中受检物质的量正相关。
基本原理
1971年Engvall和Perlmann发表了酶联免疫吸附剂测定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)用于IgG定量测定的文章,使得1966年开始用于抗原定位的酶标抗体技术发展成液体标本中微量物质的测定方法。这一方法的基本原理是:①使抗原或抗体结合到某种固相载体表面,并保持其免疫活性。②使抗原或抗体与某种酶连接成酶标抗原或抗体,这种酶标抗原或抗体既保留其免疫活性,又保留酶的活性。在测定时,把受检标本(测定其中的抗体或抗原)和酶标抗原或抗体按不同的步骤与固相载体表面的抗原或抗体起反应。用洗涤的方法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与其他物质分开,最后结合在固相载体上的酶量与标本中受检物质的量成一定的比例。加入酶反应的底物后,底物被酶催化变为有色产物,产物的量与标本中受检物质的量直接相关,故可根据颜色反应的深浅刊物定性或定量分析。由于酶的催化频率很高,故可极大地地放大反应效果,从而使测定方法达到很高的敏感度。

ELISA方法的基本原理和操作步骤

ELISA方法的基本原理和操作步骤
(三)间接法测抗体 间接法是检测抗体最常用的方法 其原理为利用酶标记的抗抗体以检测已与固相结合的受检抗体 故称为间接法 操作步骤如下: (1)将特异性抗原与固相载体连接 形成固相抗原:洗涤除去未结合的抗原及杂质
(2)加稀释的受检血清:其中的特异抗体与抗原结合 形成固相抗原抗体复合物 经洗涤后 固相载体上只留下特异性抗体 其他免疫球蛋白及血清中的杂质由于不能与固相抗原结合 在洗涤过程中被洗去
类试剂可削弱钩状效应
假使在被测分子的不同位点上含有多个相同的决定簇 例如 HBsAg 的 a 决定簇 也可用针对此决定的同一单抗分别包被固相和制备酶结合物 但在 HBsAg 的检测中应注意亚型问题 HBsAg 有 adr、adw、ayr、ayw4 个亚型 显然每种亚型均有相同的 a 决定簇的反应性 这也是用单抗作夹心法应注意的问题
ELISA 普遍用作非放射性同位素的成键化验. 在这种方法中, 通常 标准配体是固定的, 通过加入溶液相受体或蛋白质来使之成键. 通过 加入与受体特异性反应的抗体来定量成键的受体, 而且最初抗体的
量以加入第二种能显色的抗体测量. 第二种抗体能识别抗体的末端, 在其末端的碱性磷酸酯或过氧化物酶等与酶发生反应, 从而使溶液 显色
竞争法可用于测定抗原 也可用于测定抗体 以测定抗原为例 受检抗原和酶标抗原竞争与固相抗体结合 因此结合于固相的酶标抗原量与受检抗原的量呈反比 操作步骤如下:
(1)将特异抗体与固相载体连接 形成固相抗体 洗涤
(2)待测管中加受检标本和一定量酶标抗原的混合溶液 使之与固相抗体反应 如受检标本中无抗原 则酶标抗原能顺利地与固相抗体结合 如受检标本中含有抗原
中受检物质的量呈一定的比例 加入酶反应的底物后
底物被酶催化成为有色产物 产物的量与标本中受检物质的量直接相关 故可根据呈色的深浅进行定性或定量分析 由于酶的催化效率很高 间接地放大了免疫反应的结果 使测定方法达到很高的敏感度

elisa 原理

elisa 原理

elisa 原理
Elisa 是一种广泛应用于生物科学研究和临床诊断的实验技术,全称为酶联免疫吸附测定法(enzyme-linked immunosorbent assay)。

其原理基于免疫学的概念,通过特定抗原与抗体的
结合来检测样本中的目标分子。

Elisa 的操作具体分为以下几个步骤:
1. 准备实验板:在96孔板中涂覆特定的抗原或抗体,通常使
用多点法或直接涂布法进行涂覆。

2. 样本处理:将待测样本加入实验孔中,样本中的目标分子与涂覆的抗原(或抗体)结合。

3. 清洗:将孔中的非特异性结合物质洗净,以去除未结合的成分。

4. 添加检测抗体:将与目标分子不同位点的抗体添加到样本中,这些抗体通常会与未结合的分子结合。

5. 添加辅助酶标记物:将标记有辅助酶的抗体(通常是酶的抗体或其他能够与辅助酶结合的分子)加入到样本中。

6. 反应底物:加入特定底物,使辅助酶催化产生可测量的信号物质,如发光或吸光度变化。

7. 读取结果:使用酶标仪或光度计测量信号物质的强度,以确定样本中目标分子的含量。

Elisa 的原理基于抗原与抗体之间的高度特异性结合性,在样
本中检测并测量目标分子的存在量。

通过适当选择抗原和抗体,Elisa 可用于检测各种生物学物质,例如蛋白质、抗体、荷尔蒙、病原体等。

这使得 Elisa 在医学诊断、生命科学研究和制
药行业中具有广泛的应用前景。

ELISA方法详细过程及步骤

ELISA‎方法详细过‎程及步骤ELISA‎是酶联接免‎疫吸附剂测‎定( Enzym‎e-Linke‎d Immun‎o sorb‎n ent Assay‎)的简称。

它是继免疫‎荧光和放射‎免疫技术之‎后发展起来‎的一种免疫‎酶技术。

此项技术自‎70年代初‎问世以来,发展十分迅‎速,目前已被广‎泛用于生物‎学和医学科‎学的许多领‎域。

(一) 原理ELISA‎是以免疫学‎反应为基础‎,将抗原、抗体的特异‎性反应与酶‎对底物的高‎效催化作用‎相结合起来‎的一种敏感‎性很高的试‎验技术。

由于抗原、抗体的反应‎在一种固相‎载体──聚苯乙烯微‎量滴定板的‎孔中进行,每加入一种‎试剂孵育后‎,可通过洗涤‎除去多余的‎游离反应物‎,从而保证试‎验结果的特‎异性与稳定‎性。

在实际应用‎中,通过不同的‎设计,具体的方法‎步骤可有多‎种。

即:用于检测抗‎体的间接法‎(图a)、用于检测抗‎原的双抗体‎夹心法(图b)以及用于检‎测小分子抗‎原或半抗原‎的抗原竞争‎法等等。

比较常用的‎是ELIS‎A双抗体夹‎心法及EL‎I SA间接‎法。

(二) 操作步骤方法一用于检测未‎知抗原的双‎抗体夹心法‎:1. 包被:用0.05M PH9.6碳酸盐包‎被缓冲液将‎抗体稀释至‎蛋白质含量‎为1~10μg/ml。

在每个聚苯‎乙烯板的反‎应孔中加0‎.1ml,4℃过夜。

次日,弃去孔内溶‎液,用洗涤缓冲‎液洗3次,每次3分钟‎。

(简称洗涤,下同)。

2. 加样:加一定稀释‎的待检样品‎0.1ml于上‎述已包被之‎反应孔中,置37℃孵育1小时‎。

然后洗涤。

(同时做空白‎孔,阴性对照孔‎及阳性对照‎孔)。

3. 加酶标抗体‎:于各反应孔‎中,加入新鲜稀‎释的酶标抗‎体(经滴定后的‎稀释度)0.1ml。

37℃孵育0.5~1小时,洗涤。

4. 加底物液显‎色:于各反应孔‎中加入临时‎配制的TM‎B底物溶液‎0.1ml,37℃10~30分钟。

5. 终止反应:于各反应孔‎中加入2M‎硫酸0.05ml。

ELISA知识

ELISA的概念、原理、操作步骤ELISA是酶联接免疫吸附剂测定( Enzyme-Linked Immunosorbnent Assay )的简称。

它是继免疫荧光和放射免疫技术之后发展起来的一种免疫酶技术。

此项技术自70年代初问世以来,发展十分迅速,目前已被广泛用于生物学和医学科学的许多领域。

(一)原理ELISA是以免疫学反应为基础,将抗原、牽9体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。

由于抗原、抗体的反应在一种固相载体──聚苯乙烯微量滴定板的孔中进行,每加入一种试剂孵育后,可通过洗涤除去多余的游离反应物,从而保证试验结果的特异性与稳定性。

在实际应用中,通过不同的设计,具体的方法步骤可有多种。

即:用于检测抗体的间接法(图a)、用于检测抗原的双抗体夹心法(图b)以及用于检测小分子抗原或半抗原的抗原竞争法等等。

比较常用的是ELISA双抗体夹心法及ELISA间接法。

(二)操作步骤方法一用于检测未知抗原的双抗体夹心法:1.包被:用0.05M PH9.0的碳酸盐包被缓冲液,将抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。

在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。

次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。

(简称洗涤,下同)。

2.加样:加一定稀释的待检样品0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时。

然后洗涤。

(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。

3.加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标抗体(经滴定后的稀释度)0.1ml。

37℃孵育0.5~1小时,洗涤。

4.加底物液显色:于各反应孔中加入临时配制的TMB底物溶液0.1ml,37℃10~30分钟。

5.终止反应:于各反应孔中加入2M硫酸0.05ml。

6.结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。

也可测O·D值:在ELISA检测仪上,于450nm(若以ABTS显色,则410nm)处,以空白对照孔调零后测各孔O·D值,若大于规定的阴性对照OD值的2.1倍,即为阳性。

ELISA的基本原理与应用


37℃温育60min,而后洗涤
加入酶标二抗(HRP-FI)
37℃温育60min,而后洗涤
加底物(TMB)显色
室温反应30min
加终止液(10%H2SO4)终止反应
用鼠疫菌免疫兔血清(1:2000)包被酶标板
4℃,静置过夜;次日,洗涤
用5%的牛血清白蛋白(BSA)封闭各孔
4℃静置过夜,次日,洗涤
加入待检标本(如血清、脑脊液、淋巴穿刺液等)。 初筛试验:每份标本的首孔加180µl稀释液,而后各孔加100µl。 首孔加入标本20µl,混匀后吸出100µl加入下一孔中,依次倍比 稀释,最后100µl弃掉。还需设空白对照、阴性对照和阳性对照。 复判试验:第一列为抑制列,首孔加90µl稀释液,而后每孔加稀 释液50µl,第二列为血凝列,首孔加190µl稀释液,而后每孔加 100µl稀释液。在每列首孔中各加入标本10µl,抑制列50µl倍比 稀释,最后50µl弃掉。血凝列100µl倍比稀释,最后100µl弃掉。 抑制列每孔中加入1:20稀释的鼠疫菌免疫兔血清50µl。还需设 空白对照、阴性对照和阳性对照。
流水冲洗式: 流水冲洗最初用于小珠载体的洗涤,洗涤液为蒸馏水。已 有实验表明,流水冲洗式同样适用于微量滴定板的洗涤,让 水流冲击板孔表面,洗涤效果也很好。
(6)显色 显色是酶催化无色的底物生成有色产物的温育反 应。反应的温度和时间仍是影响显色的因素。在定 量测定中,加入底物后的反应温度和时间应按规定 力求准确。 TMB受光照的影响不大,可在室温中置于操作台上, 边反应边观察结果。但为保证实验结果的稳定性, 宜在规定的适当时间阅读结果。TMB经HRP作用后, 约40分钟显色达顶峰,随即逐渐减弱,至2小时后 即可完全消退至无色。
性对照(N)的A值后,计算S/N值。 在鼠疫F1抗原和F1抗体

elisa技术的基本原理

elisa技术的基本原理Elisa技术的基本原理引言:Elisa技术(Enzyme-Linked Immunosorbent Assay)是一种常用的生物化学分析方法,用于检测特定物质(如蛋白质、抗体等)在样本中的存在与否。

它的基本原理是利用酶作为标记物,通过特异性抗体与目标物相互作用,最终通过酶催化的反应产生可测量的信号。

本文将对Elisa技术的基本原理进行详细介绍。

一、Elisa技术的分类根据不同的目的和操作步骤,Elisa技术可分为直接Elisa、间接Elisa、竞争Elisa和间接竞争Elisa等几种类型。

其中,直接Elisa 适用于检测已知抗原的存在,间接Elisa适用于检测已知抗体的存在,竞争Elisa适用于检测未知抗原的存在,而间接竞争Elisa则结合了前两种方法的优点。

二、Elisa技术的步骤一般而言,Elisa技术包括以下几个基本步骤:涂覆、阻断、孵育、洗涤、标记、洗涤、显色和停止反应。

下面将对每个步骤进行详细说明。

1. 涂覆:在微孔板上涂覆目标物,可以是抗原或抗体。

涂覆的目的是将目标物固定在微孔板上,形成固相。

2. 阻断:为了避免非特异性吸附,需要在涂覆后加入一种阻断剂,如牛血清蛋白(BSA)或酪蛋白。

阻断剂可以与未被固定的表面结合,减少非特异性吸附的可能性。

3. 孵育:将待测样本加入微孔板中,与固相上的目标物发生特异性结合。

孵育的时间和温度根据具体实验要求进行控制。

4. 洗涤:为了去除未结合的物质,需要进行多次洗涤步骤。

洗涤的目的是减少非特异性吸附和杂质的干扰。

5. 标记:添加与待测物质特异性结合的酶标记抗体或酶标记物质。

酶标记物质可以是酶、荧光物质或放射性同位素等。

该步骤使得标记物与目标物结合。

6. 再次洗涤:为了去除未结合的标记物质,需要进行多次洗涤步骤。

洗涤的目的是减少非特异性吸附和杂质的干扰。

7. 显色:向微孔板中加入显色底物,使酶作用产生可测量的信号。

常用的显色底物有TMB(3,3',5,5'-四甲基联苯胺)和ABTS(2,2'-联氨基二乙基三甲基四氢苯并噻唑啉)。

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