常见层析法

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免疫层析法检测原理分类介绍

免疫层析法检测原理分类介绍

免疫层析法检测原理分类介绍免疫层析法是一种常用的免疫学测定手段,通过血清免疫反应和生物化学技术的结合,可以快速、敏感地检测特定物质的存在与水平。

免疫层析法根据不同的检测原理可以分为多种类型,下面将对常见的几种免疫层析法原理进行分类介绍。

1.竞争型免疫层析法竞争型免疫层析法是一种常用的免疫层析法,其原理基于抗体对抗原的结合竞争关系。

在竞争型免疫层析法中,通常将抗原标记在固定相上,待测样品中的特定抗原与固定相上标记的抗原竞争结合抗体。

这样,样品中的抗原与标记物竞争结合抗体,通过可视化或者仪器测定标记物的存在与水平来判断样品中的目标物质。

2.夹心型免疫层析法夹心型免疫层析法是一种常用的免疫层析法,其原理基于抗原与抗体的特异结合。

在夹心型免疫层析法中,通常将特定抗原固定在固定相上,待测样品与标记的抗体在该抗原上竞争结合。

样品中的抗原与标记的抗体的竞争结合通过可视化或者仪器测定标记物的存在与水平来判断样品中的目标物质。

3.单抗免疫层析法单抗免疫层析法是一种通过单克隆抗体进行检测的免疫层析法。

单抗免疫层析法拥有高度特异性和敏感性,通常可以用于检测非常低浓度的目标物质。

其原理和基本步骤类似于竞争型或夹心型免疫层析法,主要区别在于用于检测的抗体是经过单克隆化处理的。

4.荧光免疫层析法荧光免疫层析法是一种通过荧光标记物进行检测的免疫层析法。

其原理和基本步骤类似于竞争型或夹心型免疫层析法,主要区别在于标记物不同。

荧光标记物具有较高的敏感性,并且可以通过仪器进行定量测定。

因此,荧光免疫层析法通常用于对目标物质进行定量检测。

5.滴定型免疫层析法滴定型免疫层析法是一种通过滴定反应进行检测的免疫层析法。

滴定型免疫层析法能够通过滴定法测定目标物质的含量,常用于检测待测样品中目标物的浓度。

滴定型免疫层析法的原理是待测样品中的目标物质与滴定试剂反应生成可滴定物种,通过滴定法判断目标物质的存在与水平。

以上是常见的几种免疫层析法的原理分类介绍。

3 层析法

3 层析法
择合适溶剂溶解为液体再加样。加样时,要沿管
壁慢慢加入至柱顶部,勿使样品搅动吸附剂表面。
三、实 验 内 容
3.洗 脱
在柱顶不断加入洗脱剂,使
洗脱剂永远保持有适当的量,不 要让洗脱剂表面流干,使流动相 流速适当。
四、聚酰胺色谱

聚酰胺(Polyamide)是通过酰胺基聚合而成的一类高分子化 合物,层析分离中常用的聚酰胺是由己内酰胺聚合而成的 尼龙6和由己二酸和己二胺聚合而成的尼龙66。
为Sephadex G-25经羟丙基化后的产物,应用较广。

具有分子筛特性,可按分子量大小分离物质;
在由极性与非极性溶剂组成的混合溶剂中常常起到反
相分配色谱的作用,适合于不同类型有机物的分离。

Sephadex LH-20即能在水中,也能在有机溶剂中或者 含水的混合溶剂中应用。

聚酰胺不溶于水、甲醇、乙醇、乙醚、氯仿及丙酮等有机
溶剂,对碱较稳定,对酸尤其是无机酸稳定性较差,可溶
于浓盐酸、冰醋酸及甲酸。

吸附机理---形成分子间氢键

聚酰胺通过分子中的酰胺羰基与酚类、黄酮类化合物
的酚羟基,或酰胺键上的游离胺基与醌类、脂肪酸上
的羰基形成氢键缔合而产生吸附。
CH2 N H O C CH2 CH2 O C
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2 点样
用微量注射器 或玻璃毛细管吸取 一定量试样点在原 点上。试样点的直 径一般应小于5mm。
层析纸按需要剪裁成长条形(或筒型)
可并排点多个试样
同时展开。
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3 展开
将滤纸浸于层析缸中的展开剂中,使展开 剂通过滤纸的毛细作用上升(或下降), 实现试样的分离
展开时必须在密闭的容器中进行。 展开剂不得浸泡到起始线 上行展开法/下行展开法 双向展开法 连续展开法 径向展开法(圆形展开法)

免疫层析各种方法法原理

免疫层析各种方法法原理

免疫层析各种方法法原理免疫层析(immunoassay)是一种通过对生物分子(一般是蛋白质)与抗体之间的特异性相互作用进行检测和定量分析的方法。

免疫层析常被用于生物医学研究、临床诊断和药物研发等领域。

根据原理和方法的不同,免疫层析可以分为几种类型:夹心免疫层析、双抗体免疫层析、竞争免疫层析和流动免疫层析等。

夹心免疫层析(sandwich immunoassay)是一种常见的免疫层析方法,也被称为“间接法”。

其基本原理是,在待测物(通常是蛋白质)的测定物质表面上固定一定的抗体(特异性抗体),然后再添加待测物和另外一种特异性抗体来夹持待测物。

通过特异性抗体和待测物的结合,形成“夹心复合物”,从而实现对待测物的检测和定量分析。

双抗体免疫层析(double antibody immunoassay)是另一种常见的免疫层析方法。

其原理是采用两种不同的抗体:一种抗体被固定在固相(如试纸、载体等)上,另一种抗体与待测物结合后与固相上的抗体形成“桥梁”,最终形成可视化的标记物。

这种方法广泛用于快速疾病诊断和生物分子检测。

流动免疫层析(flow immunoassay)是一种在毛细管或纸张状固支持介质上进行的免疫层析技术。

流动免疫层析常用于家庭自检、迅速检测和快速诊断等场景。

其原理是通过特异性抗体与待测物结合,形成可视化的标记物,该标记物会沿着固支持物的方向进行迁移。

根据标记物的颜色或信号强度来判定待测物的存在与浓度。

以上所述的免疫层析方法仅为常用的几种,还有其他的变种方法和技术。

免疫层析作为一种广泛使用的分析技术,具有快速、准确和灵敏度高的特点,被广泛应用于医疗诊断、临床检验、食品安全、环境污染、农业生产等领域。

随着技术的进步和创新,免疫层析在未来可能会有更多的应用发展和改进。

实验柱层析和薄层层析

实验柱层析和薄层层析

实验柱层析和薄层层析层析法是通过分离混合物组分的一种方法,主要有柱层析和薄层层析两种。

本文将介绍它们的原理、步骤和应用。

实验柱层析原理实验柱层析是一种液相色谱分离技术,基于混合物组分在固定相和流动相之间相互分配的差异进行分离。

实验柱层析一般采用正交试验法,即通过改变柱填料、流动相、流速和溶质质量浓度等参数,以缩小响应面,得到最佳分离条件。

步骤1.选择合适的柱径和柱高,并选用合适的柱填料。

2.准备流动相,并过滤除杂质。

将柱填料与流动相充分浸泡,使柱填料达到平衡状态。

3.将混合物加到柱顶,并开始淋洗。

此时各组分在流动相和固定相之间交替分配,被固定相吸附或溶解,同时前进,终于分离。

4.根据检测结果,确定样品组分并计算出分离效果和纯度。

应用实验柱层析作为一种分离技术,广泛应用于医药、化学、生物学等领域。

常见的应用包括:1.分离蛋白质、核苷酸等生物大分子。

2.对化合物进行分离、纯化和定量分析。

3.分离和提取天然产物和药物。

薄层层析原理薄层层析是一种比较简单、快速的分离方法,其原理与柱层析类似,只是采用了薄层硅胶或氧化铝等作为固定相,可直接对液态和固态样品进行分离。

步骤1.准备薄层柱。

2.准备固定相毛细管与混合样品。

3.在薄层柱上涂上一层液态固定相,然后将其晾干。

4.将样品分别点于薄层柱的一端,放入发展槽中,加入足量发展剂。

5.等到液面距离薄层柱顶端约0.5cm时取出,划线,停发展,晾干。

6.在笼罩于发展剂蒸汽中的小钵中烘干至静止。

应用薄层层析作为快速分离、纯化和检测生物和化学样品的一种常用手段,其应用包括:1.对合成的物质进行纯化和分离。

2.植物药的含量测定。

3.对复杂化学物质进行溶剂系统选择和定性分析。

实验柱层析和薄层层析都是常见的层析法,虽然原理类似但有各自的优缺点和应用场景。

在实际应用中,需要根据具体的分离任务选择合适的方法。

4层析法

4层析法

颗粒粒径:几十~几百µ m
间隙:几~几十µ m 孔隙的孔径:nm级
固定相(凝胶)
三维空间网状结构
分子筛效应: 按分子大小不同,在凝胶受到的 阻滞作用有差异,从而造成各组分在 凝胶柱中的迁移速度不同得到分离。

蛋白质混合物上柱;

开始洗脱,小分子进入凝胶 颗粒内,大分子被排阻在颗 粒外; 小分子被滞留而移动慢,大 分子移动快,大小不同的分 子开始分开; 大小不同的分子完全分开;
分配系数(Kd)
样品中各组分的流出顺序,可用分配系数 Kd来量度: 凝胶内部溶质的浓度 Kd = 凝胶外部溶质的浓度
0≤Kd≤l
每个溶质分子在流动相和固定相之间有一个特定的分配系数
Ve=Vo+KdVi (1) Kd=0,Ve=Vo 分子完全被排阻于凝胶颗粒之外 全部分布于流动相中 最先流出 (2)Kd=1,Ve=Vo+Vi 分子完全不被排阻 完全向凝胶颗粒内部扩散 在两相分配的比值为1,最后流出 特点:与被分离物质分 子的大小和凝胶颗粒孔 隙的大小有关
溶液中长期使用。
聚丙烯酰胺凝胶的性质

琼脂糖凝胶: Bio-Gel-A(美国,Bio-Rad)
商品名称:Sepharose(瑞典,pharmacia)
型号:2B,4B,6B;
Bio-G 0.5M,1.5M,5M,15M,50M,150M。
型号含义:琼脂糖浓度为2%,4%,6%; 阿拉伯数字乘以106表示排阻限度。
或与配体的亲和特性,而将待分离物质从亲和吸附剂
上洗脱下来。
a. 选择与配体有亲和力的物质进行洗脱;
b. 选择与待分离物质有亲和力的物质进行洗脱。
特异性洗脱
优点:
特异性强,可以进一步消除非特异性吸附的影响,从而

蛋白质层析法

蛋白质层析法

蛋白质层析法是一种用于分离和纯化蛋白质的技术,它基于蛋白质在不同条件下在固定相和流动相中的分配系数不同来实现分离。

层析技术的基本原理是将混合物中的各组分根据其物理或化学性质(如分子大小、电荷、亲和性等)在不同相中的不同分布和迁移速率来实现分离。

以下是一些常见的蛋白质层析技术:
1. **凝胶过滤层析(Gel Filtration Chromatography)**:
- 也称为分子筛层析,利用凝胶的多孔结构将分子按大小分离。

小分子可以进入凝胶内部的孔隙,而大分子则被排阻在外部,因此迁移速度不同。

2. **离子交换层析(Ion Exchange Chromatography)**:
- 根据蛋白质的电荷性质(如阴离子或阳离子交换树脂)来分离蛋白质。

带正电的蛋白质可以与阴离子交换树脂结合,而带负电的蛋白质则与阳离子交换树脂结合。

3. **亲和层析(Affinity Chromatography)**:
- 利用蛋白质与特定配体(如金属离子、生物大分子等)的特定相互作用来分离蛋白质。

4. **反相层析(Reverse Phase Chromatography)**:
- 基于蛋白质在不同极性溶剂中的不同保留行为来实现分离。

通常使用非极性固定相(如C-18柱)和极性流动相。

5. **尺寸排阻层析(Size Exclusion Chromatography,SEC)**:
- 也称为凝胶渗透层析,分离蛋白质混合物中的不同分子量蛋白质。

6. **疏水作用层析(Hydrophobic Interaction Chromatography,HIC)**:
- 利用蛋白质与固定相之间的疏水作用来分离蛋白质。

五种层析方法和原理

五种层析方法和原理

五种层析方法和原理五种层析方法和原理1. 列点 1•新华字典定义:层析方法是一种通过分析物质内部不同成分在不同条件下的分布情况,从而推断物质组成、性质和结构的方法。

•原理:层析方法基于物质成分在固定相和流动相之间的分配行为。

固定相通常是固体或涂覆在固体上的物质,而流动相则是向上或向下流动的溶剂。

2. 列点 2•薄层层析法:–原理:薄层层析法是一种将样品溶解在溶剂中后涂覆在薄层板的表面上,然后通过毛细作用将溶剂上升至薄层表面,样品成分分离的方法。

根据样品成分的亲疏水性质和与固定相的相互作用,不同成分会以不同的速度在薄层板上移动,从而实现分离。

–应用:薄层层析法常用于化学品分析、食品检测和药物分析等领域。

3. 列点 3•气相层析法:–原理:气相层析法是利用气体(流动相)和涂覆在固体或涂覆在固体上的涂层(固定相)之间的分配作用,使样品成分在涂层上分离的方法。

样品经过蒸发后进入气化室,在高温和惰性气体的作用下,样品成分分解为气体状态,然后进入色谱柱,通过不同成分与固定相的相互作用,实现分离。

–应用:气相层析法广泛应用于环境监测、食品安全检测和生物医药领域。

4. 列点 4•液相层析法:–原理:液相层析法是通过溶液中样品成分与固定相之间的相互作用,实现样品分离的方法。

当溶液通过柱子时,样品成分会根据其与固定相的相互作用力的强度和性质不同,在固定相上停留的时间也不同,从而实现分离。

–应用:液相层析法广泛应用于药物分析、食品检测和环境监测等领域。

5. 列点 5•离子交换层析法:–原理:离子交换层析法利用带电粒子(离子)之间的静电相互作用,在一定条件下,使样品中的离子与固定相中的带电粒子发生相互作用,从而实现分离。

不同离子会在不同条件下被吸附或释放,从而实现分离。

–应用:离子交换层析法常用于水质分析、药物分析和环境监测等领域。

通过以上列点方式,我们对五种层析方法的原理和应用作了简要的介绍。

这些层析方法在不同领域的分析和检测中扮演重要角色,为我们获取准确的数据和信息提供了有效手段。

9种层析分离纯化方法详解

9种层析分离纯化方法详解

9种层析分离纯化方法详解层析法是利用不同物质理化性质的差异而建立起来的技术。

所有的层析系统都由两个相组成:一是固定相,它或者是固体物质或者是固定于固体物质上的成分;另一是流动相,即可以流动的物质,如水和各种溶媒。

当待分离的混合物随溶媒(流动相)通过固定相时,由于各组份的理化性质存在差异,与两相发生相互作用(吸附、溶解、结合等)的能力不同,在两相中的分配(含量对比)不同,而且随溶媒向前移动,各组份不断地在两相中进行再分配。

与固定相相互作用力越弱的组份,随流动相移动时受到的阻滞作用小,向前移动的速度快。

反之,与固定相相互作用越强的组份,向前移动速度越慢。

分部收集流出液,可得到样品中所含的各单一组份,从而达到将各组份分离的目的。

按层析原理可将层析分为以下9种:1、亲和层析利用待分离物质和它的特异性配体间具有特异的亲和力,从而达到分离的目的。

将可亲和的一对分子中的一方以共价键形式与不溶性载体相连作为固定相吸附剂,当含混合组分的样品通过此固定相时,只有和固定相分子有特异亲和力的物质,才能被固定相吸附结合,性无关组分随流动相流出。

改变流动相组分,可将结合的亲和物洗脱下来。

亲和层析中所用的载体称为基质,与基质共价连接的化合物称配基。

具有专一亲和力的生物分子对主要有:抗原与抗体,DNA与互补DNA或RNA,酶与底物、激素与受体、维生素与特异结合蛋白、糖蛋白与植物凝集素等。

亲和层析可用于纯化生物大分子、稀释液的浓缩、不稳定蛋白质的贮藏、分离核酸等。

亲和层析纯化的分离原理特点:亲和层析具有高选择性、高纯度、快速、浓缩等特点,在重组蛋白的分离中多作为第一步的粗纯,实现对绝大部分杂质蛋白的去除。

2、离子交换层析采用具有离子交换性能的物质作固定相,利用它与流动相中的离子能进行可逆交换的性质来分离离子型化合物的方法。

主要用于分离氨基酸、多肽及蛋白质,也可用于分离核酸、核苷酸及其他带电荷的生物分子。

不同蛋白质的等电点(pI,isoelectric point)特性,使在不同pH缓冲液条件下所带正/负净电荷不同,选择不同的离子交换柱实现分离。

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层析技术的应用一、层析技术的原理和分类(一)层析技术的原理层析法是目前广泛应用的一种分离技术。

本世纪初俄国植物学家M.Tswett发现并使用这一技术证明了植物的叶子中不仅有叶绿素还含有其它色素。

现在层析法已成为生物化学、分子生物学及其它学科领域有效的分离分析工具之一。

层析法是利用不同物质理化性质的差异而建立起来的技术。

所有的层析系统都由两个相组成:一是固定相,它或者是固体物质或者是固定于固体物质上的成分;另一是流动相,即可以流动的物质,如水和各种溶媒。

当待分离的混合物随溶媒(流动相)通过固定相时,由于各组份的理化性质存在差异,与两相发生相互作用(吸附、溶解、结合等)的能力不同,在两相中的分配(含量对比)不同,而且随溶媒向前移动,各组份不断地在两相中进行再分配。

与固定相相互作用力越弱的组份,随流动相移动时受到的阻滞作用小,向前移动的速度快。

反之,与固定相相互作用越强的组份,向前移动速度越慢。

分部收集流出液,可得到样品中所含的各单一组份,从而达到将各组份分离的目的。

(二)层析法分类见表16-5~7(三)层析法的特点与应用表16-5 按两相所处状态分类层析法是根据物质的理化性质不同而建立的分离分析方法。

根据层析峰的位置及峰高或峰面积,可以定性及定量。

层析法与光学、电学或电化学仪器连用,可检测出层析后各组份的浓度或质量,同时绘出层析图。

层析仪与电子计算机联用,可使操作及数据处理自动化,大大缩短分析时间。

由于层析法具有分辨率高、灵敏度高、选择性好、速度快等特点,因此适用于杂质多、含量少的复杂样品分析,尤其适用于生物样品的分离分析。

近年来,已成为生物化学及分子生物学常用的分析方法。

在医药卫生、环境化学、高分子材料、石油化工等方面也得到了广泛的应用。

表16-6 按层析原理分类名称分离原理吸附层析法组份在吸附剂表面吸附固定相是固体吸附剂,各能力不同分配层析法各组份在流动相和静止液相(固相)中的分配系数不同离子交换层析法固定相是离子交换剂,各组份与离子交换剂亲和力不同凝胶层析法固定相是多孔凝胶,各组份的分子大小不同,因而在凝胶上受阻滞的程度不同亲和层析法固定相只能与一种待分离组份专一结合,以此和无亲和力的其它组份分离表16-7 按操作形式不同分类名称操作形式柱层析法固定相装于柱内,使样品沿着一个方向前移而达分离薄层层析法将适当粘度的固定相均匀涂铺在薄板上,点样后用流动相展开,使各组份分离纸层析法用滤纸作液体的载体,点样后用流动相展开,使各组份分离薄膜层析法将适当的高分子有机吸附剂制成薄膜,以类似纸层析方法进行物质的分离二、层析法实验技术(一)凝胶层析法凝胶层析又称分子筛过滤、排阻层析等。

它的突出优点是层析所用的凝胶属于惰性载体,不带电荷,吸附力弱,操作条件比较温和,可在相当广的温度范围下进行,不需要有机溶剂,并且对分离成分理化性质的保持有独到之处。

对于高分子物质有很好的分离效果。

⒈凝胶的选择根据实验目的不同选择不同型号的凝胶。

如果实验目的是将样品中的大分子物质和小分子物质分开,由于它们在分配系数上有显著差异,这种分离又称组别分离,一般可选用Sephadex G-25和G-50,对于小肽和低分子量的物质(1000-5000)的脱盐可使用Sephadex G-10,G-15及Bio-Gel-p-2或4。

如果实验目的是将样品中一些分子量比较近似的物质进行分离,这种分离又叫分级分离。

一般选用排阻限度略大于样品中最高分子量物质的凝胶,层析过程中这些物质都能不同程度地深入到凝胶内部,由于Kd不同,最后得到分离。

⒉柱的直径与长度根据经验,组别分离时,大多采用2-30cm长的层析柱,分级分离时,一般需要100cm左右长的层析柱,其直径在1-5cm范围内,小于1cm产生管壁效应,大于5cm则稀释现象严重。

长度L与直径D的比值L/D一般宜在7-10之间,但对移动慢的物质宜在30-40之间。

⒊凝胶柱的制备凝胶型号选定后,将干胶颗粒悬浮于5-10倍量的蒸馏水或洗脱液中充分溶胀,溶胀之后将极细的小颗粒倾泻出去。

自然溶胀费时较长,加热可使溶胀加速,即在沸水浴中将湿凝胶浆逐渐升温至近沸,1-2小时即可达到凝胶的充分胀溶。

加热法既可节省时间又可消毒。

凝胶的装填:将层析柱与地面垂直固定在架子上,下端流出口用夹子夹紧,柱顶可安装一个带有搅拌装置的较大容器,柱内充满洗脱液,将凝胶调成较稀薄的浆头液盛于柱顶的容器中,然后在微微地搅拌下使凝胶下沉于柱内,这样凝胶粒水平上升,直到所需高度为止,拆除柱顶装置,用相应的滤纸片轻轻盖在凝胶床表面。

稍放置一段时间,再开始流动平衡,流速应低于层析时所需的流速。

在平衡过程中逐渐增加到层析的流速,千万不能超过最终流速。

平衡凝胶床过夜,使用前要检查层析床是否均匀,有无“纹路”或气泡,或加一些有色物质来观察色带的移动,如带狭窄、均匀平整说明层析柱的性能良好,色带出现歪曲、散乱、变宽时必须重新装柱。

⒋加样和洗脱凝胶床经过平衡后,在床顶部留下数亳升洗脱液使凝胶床饱和,再用滴管加入样品。

一般样品体积不大于凝胶总床体积的5%-10%。

样品浓度与分配系数无关,故样品浓度可以提高,但分子量较大的物质,溶液的粘度将随浓度增加而增大,使分子运动受限,故样品与洗脱液的相对粘度不得超过1.5-2。

样品加入后打开流出口,使样品渗入凝胶床内,当样品液面恰与凝胶床表面相平时,再加入数毫升洗脱液中洗管壁,使其全部进入凝胶床后,将层析床与洗脱液贮瓶及收集器相连,预先设计好流速,然后分部收集洗脱液,并对每一馏份做定性、定量测定。

⒌凝胶柱的重复使用、凝胶回收与保存一次装柱后可以反复使用,不必特殊处理,并不影响分离效果。

为了防止凝胶染菌,可在一次层析后加入0.02%的叠氮钠,在下次层析前应将抑菌剂除去,以免干扰洗脱液的测定。

如果不再使用可将其回收,一般方法是将凝胶用水冲洗干净滤干,依次用70%、90%、95%乙醇脱水平衡至乙醇浓度达90%以上,滤干,再用乙醚洗去乙醇、滤干、干燥保存。

湿态保存方法是凝胶浆中加入抑菌剂或水冲洗到中性,密封后高压灭菌保存。

⒍凝胶层析的应用⑴脱盐:高分子(如蛋白质、核酸、多糖等)溶液中的低分子量杂质,可以用凝胶层析法除去,这一操作称为脱盐。

本法脱盐操作简便、快速、蛋白质和酶类等在脱盐过程中不易变性。

适用的凝胶为SephadexG-10、15、25或Bio-Gel-p-2、4、6。

柱长与直径之比为5-15,样品体积可达柱床体积的25%-30%,为了防止蛋白质脱盐后溶解度降低会形成沉淀吸附于柱上,一般用醋酸铵等挥发性盐类缓冲液使层析柱平衡,然后加入样品,再用同样缓冲液洗脱,收集的洗脱液用冷冻干燥法除去挥发性盐类。

⑵用于分离提纯:凝胶层析法已广泛用于酶、蛋白质、氨基酸、多糖、激素、生物碱等物质的分离提纯。

凝胶对热原有较强的吸附力,可用来去除无离子水中的致热原制备注射用水。

⑶测定高分子物质的分子量:用一系列已知分子量的标准品放入同一凝胶柱内,在同一条件下层析,记录每一分钟成分的洗脱体积,并以洗脱体积对分子量的对数作图,在一定分子量范围内可得一直线,即分子量的标准曲线。

测定未知物质的分子量时,可将此样品加在测定了标准曲线的凝胶柱内洗肿后,根据物质的洗脱体积,在标准曲线上查出它的分子量。

⑷高分子溶液的浓缩:通常将SephadexG-25或50干胶投入到稀的高分子溶液中,这时水分和低分子量的物质就会进入凝胶粒子内部的孔隙中,而高分子物质则排阻在凝胶颗粒之外,再经离心或过滤,将溶胀的凝胶分离出去,就得到了浓缩的高分子溶液。

(二)离子交换层析法离子交换层析法是以具有离子交换性能的物质作固定相,利用它与流动相中的离子能进行可逆的交换性质来分离离子型化合物的一种方法。

⒈离子交换剂预处理和装柱对于离子交换纤维素要用流水洗去少量碎的不易沉淀的颗粒,以保证有较好的均匀度,对于已溶胀好的产品则不必经这一步骤。

溶胀的交换剂使用前要用稀酸或稀碱处理,使之成为带H+或OH-的交换剂型。

阴离子交换剂常用“碱-酸-碱”处理,使最终转为-OH-型或盐型交换剂;对于阳离子交换剂则用“酸-碱-酸”处理,使最终转为-H-型交换剂。

洗涤好的纤维素使用前必须平衡至所需的pH 和离子强度。

已平衡的交换剂在装柱前还要减压除气泡。

为了避免颗粒大小不等的交换剂在自然沉降时分层,要适当加压装柱,同时使柱床压紧,减少死体积,有利于分辨率的提高。

柱子装好后再用起始缓冲液淋洗,直至达到充分平衡方可使用。

⒉加样与洗脱加样:层析所用的样品应与起始缓冲液有相同的pH 和离子强度,所选定的pH 值应落在交换剂与被结合物有相反电荷的范围,同时要注意离子强度应低,可用透析、凝胶过滤或稀释法达此目的。

样品中的不溶物应在透析后或凝胶过滤前,以离心法除去。

为了达到满意的分离效果,上样量要适当,不要超过柱的负荷能力。

柱的负荷能力可用交换容量来推算,通常上样量为交换剂交换总量的1%-5%。

洗脱:已结合样品的离子交换前,可通过改变溶液的pH 或改变离子强度的方法将结合物洗脱,也可同时改变pH 与离子强度。

为了使复杂的组份分离完全,往往需要逐步改变pH 或离子强度,其中最简单的方法是阶段洗脱法,即分次将不同pH 与离子强度的溶液加入,使不同成分逐步洗脱。

由于这种洗脱pH 与离子强度的变化大,使许多洗脱体积相近的成分同时洗脱,纯度较差,不适宜精细的分离。

最好的洗脱方法是连续梯度洗脱,洗脱装置见图16-6。

两个容器放于同一水平上,第一个容器盛有一定pH 的缓冲液,第二个容器含有高盐浓度或不同pH 的缓冲液,两容器连通,第一个容器与柱相连,当溶液由第一容器流入柱时,第二容器中的溶液就会自动来补充,经搅拌与第一容器的溶液相混合,这样流入柱中的缓冲液的洗脱能力即成梯度变化。

第一容器中任何时间的浓度都可用下式进行计算:C =C 2-(C 2-C 1)(1-V )A2/A1式中A 1、A 2分别代表两容器的截面积:C 1、C 2分别表示容器中溶液的浓度;V 为流出体积对总体积之比。

当A 1=A 2时为线性梯度,当A 1>A 2时为凹形梯度,A 1>A 2时为凸形梯度。

洗脱时应满足以下要求:①洗脱液体积应足够大,一般要几十倍于床体积,从而使分离的各峰不致于太拥挤。

②梯度的上限要足够高,使紧密吸附的物质能被洗脱下来。

③梯度不要上升太快,要恰好使移动的区带在快到柱末端时达到解吸状态。

目的物的过早解吸,会引起区带扩散;而目的物的过晚解吸会使峰形过宽。

图16-6 梯度洗脱示意图⒊洗脱馏份的分析按一定体积(5-10ml/管)收集的洗脱液可逐管进行测定,得到层析图谱。

依实验目的的不同,可采用适宜的检测方法(生物活性测定、免疫学测定等)确定图谱中目的物的位置,并回收目的物。

⒋离子交换剂的再生与保存离子交换剂可在柱上再生。

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