小鼠缺血再灌注

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小鼠肝脏缺血再灌注损伤模型

小鼠肝脏缺血再灌注损伤模型

小鼠肝脏缺血再灌注损伤模型缺血再灌注损伤,即缺血器官、组织重新获得血液供应,不仅不能使组织、器官功能恢复,反而加重了功能代谢障碍及结构破坏。

对麻醉动物的肝中叶和肝左叶的门静脉和肝动脉进行阻断和再通,由于肝脏中叶和左叶血流的阻断和再通,引起肝脏中叶和左叶明显的再灌注损伤。

肝脏缺血过程中由于肝细胞内ATP 迅速耗尽,导致乳酸酮体等的堆积,及线粒体氧化磷酸化功能低下,引发代谢性酸中毒,缺血过程中细胞缺氧使ATP含量下降,导致肝细胞内外Ca2 +重新分布,即Ca2 +内流,引起线粒体的损伤。

再灌注过程中由于氧自由基的爆发性增多,中性粒细胞的聚集,kupffer细胞的激活,细胞凋亡及其他多种细胞因子的作用,使得肝细胞膜损伤,内皮细胞损伤及肝脏微循环障碍等导致肝脏功能代谢障碍及结构破坏。

1.实验动物SPF级Balb/C小鼠,雄性,周龄为4w~6w,体重为20g~22g。

2.实验分组:实验分六组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组,每组15只动物。

3.实验周期0h、3h、6h、12h、24h、72h4.建模方法1 小鼠术前12 h禁食,自由饮水。

2 3%戊巴比妥钠80mg/kg腹腔注射麻醉,麻醉成功后将小鼠平躺在手术台上胶带固定四肢,将小鼠腹部术去毛,用碘酒和75%乙醇术区消毒。

3 取腹正中切口1cm,打开腹腔,小心分离出肝脏左、中叶之肝蒂(左、中叶肝脏供血的门静脉和肝动脉)。

4 用无创血管夹夹闭中叶和左叶的门静脉和肝动脉,使约70%的肝脏缺血,以防止发生严重肠系膜静脉淤血。

0.5min后,与非阻断的右叶相比,肉眼可见阻断叶明显变白,说明阻断成功,用止血钳夹闭皮肤切口临时关闭腹腔,同时将小鼠放在37℃恒温加热垫上保温。

5 完成持续缺血60min后,重新打开腹腔,迅速取出血管夹,恢复缺血肝血流,0.5min左右可见缺血区肝脏由白色逐渐恢复为鲜红色表明再灌注成功,逐层缝合腹腔肌肉和皮肤关闭腹腔,完成手术。

小鼠缺血再灌注

小鼠缺血再灌注

小鼠缺血再灌注(实用版)目录1.小鼠缺血再灌注的背景和意义2.小鼠缺血再灌注的实验方法和操作步骤3.小鼠缺血再灌注的实验结果和分析4.小鼠缺血再灌注的结论和展望正文一、小鼠缺血再灌注的背景和意义小鼠缺血再灌注是指在小鼠体内某一部位发生缺血后,再通过灌注使其恢复血流。

这一过程在生物医学研究中具有重要意义,因为它可以模拟人类某些疾病的发生过程,如心肌梗死、脑卒中等。

通过研究小鼠缺血再灌注,可以深入了解缺血后再灌注对组织和器官的影响,为临床治疗提供理论依据。

二、小鼠缺血再灌注的实验方法和操作步骤1.实验动物选择:选用健康成年小鼠,分为实验组和对照组。

2.制备缺血模型:将实验组小鼠放入灌注装置中,通过调整灌注流量和时间,使小鼠某一部位(如心肌、脑组织等)发生缺血。

3.观察缺血程度:通过检测相关生理指标(如心率、血压、血氧饱和度等),评估小鼠缺血程度。

4.再灌注操作:在观察到缺血程度达到预设值后,恢复灌注流量,使缺血部位重新获得血流。

5.观察再灌注效果:通过检测生理指标,评估再灌注对小鼠的影响。

三、小鼠缺血再灌注的实验结果和分析实验结果显示,在缺血发生后,小鼠的心率、血压、血氧饱和度等指标会发生明显变化。

再灌注后,这些指标会逐渐恢复到正常水平。

但不同缺血时间和程度的小鼠,再灌注后的恢复情况有所不同。

通过对实验结果的分析,可以得出以下结论:1.缺血再灌注对小鼠的组织和器官具有一定的保护作用,能够减轻缺血带来的损伤。

2.缺血时间和程度的不同,再灌注的效果有所差异,提示再灌注治疗需要个体化。

四、小鼠缺血再灌注的结论和展望总之,小鼠缺血再灌注实验为研究缺血后再灌注的生物学效应提供了一个有效模型。

通过对这一模型的深入研究,可以为临床治疗缺血性疾病提供理论依据和技术支持。

全脑缺血再灌注动物模型建立方法

全脑缺血再灌注动物模型建立方法

全脑缺血再灌注动物模型建立方法引言全脑缺血再灌注是一种临床上常见的危重症,常见于心脏骤停、溺水等情况下,出现全脑缺血缺氧,随后通过复苏措施进行再灌注。

建立全脑缺血再灌注动物模型对于深入研究相关疾病的发病机制,评估治疗方法具有重要意义。

本文将介绍一种常用的全脑缺血再灌注动物模型的建立方法。

动物模型选择建立全脑缺血再灌注模型时,主要选择小鼠或大鼠作为实验动物。

一般情况下,小鼠更为常用,因其易于操作、成本较低,且其脑血管结构与人类相似,因此具有较高的可比性。

对于大鼠,其相对较大的体积能够更好地模拟人体情况,但操作相对较为复杂。

手术操作准备在进行全脑缺血再灌注动物模型的建立前,需要进行手术操作的准备工作。

首先需要进行动物的麻醉和固定,确保手术操作的安全性。

其次需要准备全脑缺血再灌注模型所需的仪器和设备,包括导管、监测仪器等。

在手术操作前,还需要对实验动物进行术前处理,包括禁食、定时给予抗生素等。

手术操作步骤1. 麻醉和固定:将实验动物置于麻醉箱内,使用合适的麻醉药物使其达到麻醉状态。

随后将其固定在手术台上,以确保手术操作的稳定性。

2. 手术部位暴露:在麻醉状态下,对实验动物进行皮肤消毒,随后进行手术部位的切开,暴露出颅骨表面。

3. 血管结扎:通过显微外科手术操作,对实验动物的颅骨表面的动脉和静脉进行结扎,以模拟全脑缺血的状态。

4. 缺血时间控制:根据实验设计的需要,控制全脑缺血的时间,一般为15至20分钟。

5. 再灌注:在全脑缺血一定时间后,通过解开血管结扎,使血液重新灌注至大脑。

6. 术后处理:对实验动物进行术后处理,包括给予液体、保暖、饲养等。

检测指标和评价方法建立全脑缺血再灌注模型后,需要对实验动物进行一系列的检测和评价,以评估其神经功能恢复情况。

常用的评价指标包括神经行为学评分、脑组织病理学检测、神经元凋亡检测、脑组织炎症因子检测等。

通过对这些指标的检测和评价,可以全面地评估全脑缺血再灌注模型的建立效果,为后续的实验研究提供可靠的依据。

小鼠肝脏部分缺血再灌注损伤模型的建立

小鼠肝脏部分缺血再灌注损伤模型的建立
巨噬细胞炎性蛋白2小鼠肝脏部分缺血60min组再灌注后细胞因子含量的变化趋势小鼠肝脏部分缺血60min组再灌注后组织学评分的变化趋势小鼠肝脏部分缺血60min组再灌注后凋亡指数的变化趋势肝脏缺血再灌注损伤是外科实践中常见的组织器官损伤之一多见于失血性休克肝脏严重创伤手术肝脏肿瘤切除肝移植等情况缺血再灌注损伤导致肝代谢解毒功能降低微循环阻力升高严重者还可出现肝衰竭直接影响到疾病的预后手术成功率和患者生存率如何保护缺血的肝细胞减少缺血再灌注损伤的发生以及更好地保护供肝都是亟待解决的临床课题因此近年来肝脏缺血再灌注损伤的研究越来越受到重视作为其基础实验研究重要保障的动物模型研究也愈显重要
中华消化外科杂志 2013年 9月第 12卷第 9期 ChinNo.9
·703·
·论著·
小鼠肝脏部分缺血再灌注损伤模型的建立
麻勇 汪大伟 刘连新 王建奇 王继洲 潘华洋 潘尚哈 姜洪池
【摘要】 目的 建立小鼠肝脏部分缺血再灌注损伤模型并分析损伤评估指标的变化趋势。方法 采 用 96只 7~8周龄的纯系 C57BL/6雄性小鼠作为研究对象,建立 70%肝脏缺血再灌注损伤模型。按照缺 血时间将小鼠分为假手术组和缺血 30、60、90min组,每组 24只。各组小鼠分别于再灌注后 6、12、24和 48h处死。通过检测血清 ALT、AST、TNFα、IL6和巨噬细胞炎性蛋白2(MIP2)水平以及病理组织学评 分、细胞凋亡指数等方法评估各组小鼠肝组织的损伤情况。两独立样本比较采用 t检验。结果 术后 88只小鼠存活,8只死亡,造模成功率为 91.7%(88/96)。假手术组、缺血 30、60、90min组 ALT水平分别 为(35±24)U/L、(1703±442)U/L、(5133±681)U/L和(8233±808)U/L,缺血 30、60、90min组 ALT水平 显著高于假手术组(t=6.54,12.97,17.56,P<0.05);AST水 平 分 别 为 (87±28)U/L、(2667±451)U/L、 (6333±778)U/L和(9967±1168)U/L,缺血 30、60、90min组 AST水平显著高于假手术组(t=9.89,13.89, 14.65,P<0.05);TNFα水平分别 为 (14±5)μg/L、(83±14)μg/L、(133±17)μg/L和 (202±21)μg/L, 缺血 30、60、90min组 TNFα水平显著高于假手术组(t=7.78,11.82,15.34,P<0.05);IL6水平分别为 (32±9)μg/L、(493±168)μg/L、(844±166)μg/L和(1345±198)μg/L,缺血 30、60、90min组 IL6水平 显著高于假手术组(t=4.74,8.46,11.48,P<0.05);MIP2水 平 分 别 为 (37±11)μg/L、(102±35)μg/L、 (177±32)μg/L和(279±50)μg/L,缺血 30、60、90min组 MIP2水平显著高于假手术组(t=3.05,7.28, 8.19,P<0.05);细胞凋亡指数分别为 1.7%±2.1%、22.7%±8.6%、54.3%±11.2%和 76.3%±14.8%,缺 血 30、60、90min组细胞凋亡指数显著高于假手术组(t=4.10,8.04,8.63,P<0.05)。在缺血时间相同的 情况下,随着再灌注时间的延长,各监测指标呈“抛物线”样变化趋势。结论 小鼠肝脏部分缺血再灌注损 伤模型能较好地反映小鼠肝组织的损伤情况。随着缺血时间的延长,小鼠肝脏的缺血再灌注损伤程度逐 渐加重;随着再灌注时间的延长,ALT、AST、TNFα、IL6、MIP2以及病理组织学评分和细胞凋亡指数均呈 现“抛物线”样变化趋势。 【关键词】 肝脏; 缺血再灌注损伤; 小鼠; 模型

缺血后适应对再灌注小鼠心肌梗死面积、心肌酶以及血流动力学的影响

缺血后适应对再灌注小鼠心肌梗死面积、心肌酶以及血流动力学的影响

缺血后适应对再灌注小鼠心肌梗死面积、心肌酶以及血流动力学的影响张健发;马依彤;杨毅宁;高晓明;刘芬;向阳【摘要】目的:探讨缺血后适应对小鼠心肌缺血再灌注(I/R)损伤的影响,为临床急性心肌缺血事件发生后的心肌保护措施提供可靠的实验依据.方法:成年60只雄性KM小鼠随机分为缺血后适应、I/R、假手术3组,每组20只.后适应组采用开胸手术结扎左冠状动脉缺血45 min,建立急性心肌梗死模型,在完全再灌注早期给予反复短暂再通/闭塞的后适应;I/R组为同期开胸完成I/R,在结扎冠状动脉前后不做任何特殊处理;假手术组开胸不结扎冠状动脉.采用伊文思蓝(Evans blue)和三苯基氯化四氮唑(TTC)染色的方法确定缺血心肌范围[缺血心肌重量(AI)/左室重量(LV)]以及梗死心肌范围[梗死心肌重量(AN)/AI],并测定血清磷酸肌酸激酶(CK)、乳酸脱氢酶(LDH)、天冬氨酸转氨酶(AST) 水平以及血流动力学指标主动脉平均动脉压(MAP)、左心室收缩压(LVSP)、左心室舒张末压(LVEDP)及左心室压力变化最大、最小速率(dp/dtmax、dp/dtmin).结果:缺血后适应组与I/R组小鼠AI/LV、AN/AI均大于假手术组(P<0.05),缺血后适应组AN/AI明显小于I/ R 组(P<0.05);缺血后适应组血清CK、LDH、AST水平均明显低于I/R组(P<0.05);与I/R组比较,缺血后适应组MAP、LVSP、dp/dtmax、dp/dtmin明显升高而LVEDP明显降低(P<0.05).结论:在恢复冠脉血流的早期施行缺血后适应可以有效地减少小鼠再灌注心肌梗死面积,降低血清心肌酶的水平,并改善心功能的恶化.【期刊名称】《新疆医科大学学报》【年(卷),期】2007(030)002【总页数】4页(P108-111)【关键词】心肌再灌注损伤;缺血后适应;小鼠【作者】张健发;马依彤;杨毅宁;高晓明;刘芬;向阳【作者单位】新疆医科大学第一附属医院心脏中心,新疆,乌鲁木齐,830054;新疆医科大学第一附属医院心脏中心,新疆,乌鲁木齐,830054;新疆医科大学第一附属医院心脏中心,新疆,乌鲁木齐,830054;新疆医科大学第一附属医院心脏中心,新疆,乌鲁木齐,830054;新疆医科大学第一附属医院心脏中心,新疆,乌鲁木齐,830054;新疆医科大学第一附属医院心脏中心,新疆,乌鲁木齐,830054【正文语种】中文【中图分类】R-332;R540.47尽管目前急性心肌梗死的预后有了很大的改善,但其仍然是导致人类死亡和心力衰竭的主要疾病之一[1]。

小鼠肾脏缺血再灌注损伤模型

小鼠肾脏缺血再灌注损伤模型

小鼠肾脏缺血再灌注损伤模型缺血再灌注损伤(IRI)是器官移植、休克、动脉搭桥术后等普遍存在的问题。

肾脏是发生IRI极为常见的器官之一,尤其肾移植,不可避免的要经历一定程度的IRI,肾脏缺血再灌损伤是急性肾衰的常见原因。

对麻醉动物的肾动脉进行阻断和再通后,可引起肾脏缺血再灌注损伤。

在缺血再灌注过程中,钙超载、线粒体能量合成障碍、氧自由基的增多等因素导致肾小管内皮细胞脱落,肾脏组织结构的破坏进而使肾脏功能发生障碍。

1.实验动物SPF级Balb/C小鼠,雄性,周龄为4w~6w,体重为20g~22g。

2.实验分组:实验分组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组,每组15只动物。

3.模型周期24h、72h4.建模方法1. 选取20-22g左右小鼠,术前禁食12h,自由饮水。

2. 3%戊巴比妥钠(80mg/kg)腹腔注射麻醉,小鼠背部去毛,消毒备皮。

3. 在背部脊椎旁0.5cm、肋骨下缘0.5cm处剪开皮肤及肌肉,可见到肾脏,小心分离出两侧肾脏的肾动脉,迅速用动脉夹夹闭两侧肾动脉。

4. 缺血45min后松开动脉夹,恢复血流,观察肾脏恢复情况。

5. 分两层缝合开口,待小鼠清醒后,将其放回洁净笼具后放回饲养室饲养,定期观察小鼠状态及死亡情况并做好记录。

6. 对照组不做缺血处理,其他操作相同。

7. 分别取再灌注0h、3h、6h、12h、24h、72h六个时间点取材。

麻醉小鼠,摘眼球取血,室温静置2h后于4℃3000r离心10分钟提取血清,放入-80冰箱冻存。

同时取左肾组织留作病理标本,右肾组织分生标本。

5.模型的评价1 血清生化指标检测:取各时间点(0h、1h、3h、6h、12h、24h、72h)血清,检测血清BUN(尿素氮)和Scr(血肌酐)水平,评估肾功能。

2 肾系数检测摘取双侧肾脏后,生理盐水冲洗,称重计算肾系数。

肾系数=双侧肾重(mg)/体重(g)3 病理组织学检测:4%多聚甲醛溶液固定48h。

常规组织脱水、透明、浸蜡、包埋。

小鼠实验报告分析

小鼠实验报告分析

一、实验目的本研究旨在建立小鼠脑缺血再灌注损伤模型,并探讨其干预方法,以期为临床治疗脑缺血再灌注损伤提供理论依据。

二、实验材料与方法1. 实验动物选取健康雄性C57BL/6小鼠,体重18-22g,由本实验室动物中心提供。

2. 药物低分子肝素钙(依诺肝素):购自深圳赛保尔生物科技有限公司。

3. 实验仪器小鼠脑缺血再灌注损伤模型制备仪:购自北京科瑞生物技术有限公司。

4. 实验方法(1)分组:将小鼠随机分为四组,每组10只,分别为正常组、模型组、低分子肝素钙干预组和高分子肝素钠干预组。

(2)模型制备:采用小鼠脑缺血再灌注损伤模型制备仪,按照操作规程进行实验。

(3)药物干预:低分子肝素钙干预组和高分子肝素钠干预组在模型制备后给予相应药物干预,正常组和模型组给予生理盐水。

(4)观察指标:在实验过程中,观察小鼠的行为学变化、脑组织病理学改变和脑组织神经功能评分。

三、实验结果1. 行为学观察正常组小鼠行为学表现正常,活动自如。

模型组小鼠表现为行动迟缓、反应迟钝、精神萎靡等。

低分子肝素钙干预组和高分子肝素钠干预组小鼠行为学改善明显,与模型组相比,活动能力、反应速度和兴奋度均有所提高。

2. 脑组织病理学观察正常组小鼠脑组织结构完整,神经元排列整齐,细胞核形态正常。

模型组小鼠脑组织出现明显病理改变,神经元变性、坏死,血管内皮细胞肿胀,血管周围出现大量炎症细胞浸润。

低分子肝素钙干预组和高分子肝素钠干预组小鼠脑组织病理学改善明显,与模型组相比,神经元变性、坏死程度减轻,血管内皮细胞肿胀减轻,炎症细胞浸润减少。

3. 脑组织神经功能评分正常组小鼠脑组织神经功能评分最高,模型组小鼠脑组织神经功能评分最低。

低分子肝素钙干预组和高分子肝素钠干预组小鼠脑组织神经功能评分明显提高,与模型组相比,神经功能改善明显。

四、讨论本研究成功建立了小鼠脑缺血再灌注损伤模型,并探讨了低分子肝素钙和高分子肝素钠对其干预作用。

结果表明,低分子肝素钙和高分子肝素钠能够改善小鼠脑缺血再灌注损伤后的行为学、脑组织病理学和神经功能评分。

肾功能不全小鼠心肌缺血再灌注损伤加重及机制:心肌脂联素信号通路受损

肾功能不全小鼠心肌缺血再灌注损伤加重及机制:心肌脂联素信号通路受损

肾功能不全小鼠心肌缺血/再灌注损伤加重及机制:心肌脂联素信号通路受损研究背景慢性肾脏疾病是世界性的大众健康问题,其与心血管疾病的发病率和死亡率升高密切相关。

慢性肾脏疾病并发心血管疾病的危害日趋严重。

慢性肾脏病患者心肌梗死的发生率是正常人的2倍。

所以,防治慢性肾脏疾病对心血管系统的损伤是必须解决的首要课题。

脂联素是一种脂肪来源的30kDa细胞因子,具有降低炎症反应、促进能量代谢、以及保护心血管的作用。

脂联素在血液中主要存在形式有:脂联素三聚体、全长脂联素、高分子量脂联素。

在常见疾病如:高血压、冠心病等中,血清脂联素水平较低。

以往研究证实:MI/R后脂联素水平下降,且脂联素通过减轻氧化/硝化应激保护I/R心肌。

然而,慢性肾功能不全患者血浆脂联素水平升高,肾功能不全伴发的心血管并发症的发病率和死亡率也明显升高。

到目前为止,脂联素对慢性肾脏疾病并发心血管疾病的作用及机制没有阐明。

研究目的⒈观察肾功能不全小鼠动物模型血、尿脂联素的动态变化及I/R对肾功能不全小鼠心肌的作用。

⒉阐明脂联素对肾功能不全小鼠I/R心肌的作用及机制。

研究方法⒈肾功能不全模型的建立:动物麻醉后,切除左侧2/3肾脏。

完整保留肾上腺,将剩余的肾脏组织送回腹腔。

动物恢复2周后再次麻醉,完整切除右侧肾脏。

⒉小鼠心肌缺血再灌注模型的建立:小鼠经2%异氟烷麻醉后,用活结丝线结扎小鼠冠状动脉的前降支血管。

30分钟后解开活结,心肌再灌注3小时(心肌凋亡检测)或24小时(心功能检测)。

小鼠心肌缺血再灌注后,用预先置入的丝线再次结扎前降支,然后将2%伊文氏蓝注入小鼠左心室。

⒊外源性补充脂联素方法:野生型小鼠和脂联素敲除鼠部分肾切除术后立即给予随机腹腔注射PBS或gAd(globular adiponectin,gAd)2μg/g,1次/天,连续7天。

⒋生化检验:ELISA法检测肾功能不全小鼠的血、尿脂联素。

第四军医大学西京医院检验科检验部分肾切除术后的血肌酐、尿肌酐、尿素氮、胱抑素、肌酐清除率和尿蛋白。

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小鼠缺血再灌注
小鼠缺血再灌注(I/R)是一种实验模型,用于研究组织缺血引起的损伤以及血液再灌注对损伤的影响。

这一模型通常用于心血管疾病、脑卒中、肝脏和肾脏等器官的研究。

操作步骤通常包括以下几个阶段:
1.缺血阶段:通过暂时封闭(结扎)或阻断(通过其他方法)血
管,以模拟组织缺血。

这可以在不同的器官中进行,比如通过
结扎冠状动脉来模拟心肌缺血,或者结扎肾动脉来模拟肾脏缺
血。

2.再灌注阶段:在一定时间后,重新开通或恢复血液供应,模拟
组织再灌注。

这一步骤旨在模拟血流的恢复,但在一些情况下,
再灌注本身也可能导致组织损伤。

3.取样和分析:小鼠通常在不同的时间点被处死,组织样本被取
出以进行各种生化、组织学和分子生物学分析,以评估缺血再
灌注对组织的影响。

小鼠缺血再灌注模型可以用于研究相关疾病的机制、开发治疗策略以及评估药物的疗效。

例如,这个模型可以用于研究心肌梗死、脑卒中、肾功能损伤等疾病。

在进行这种类型的实验时,需要确保符合伦理和动物福利的要求,并遵循实验室和国家的相关规定和指南。

研究人员应该采取适当的措施来减少动物的痛苦和苦恼。

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