小鼠免疫方案 - 360文档中心

小鼠免疫

小鼠免疫免疫是单抗制备过程中的重要环节之一。

即用目的抗原免疫小鼠，抗原通过血液循环或淋巴循环进入外周免疫器官，刺激相应B淋巴细胞克隆，使其活化、增殖，并分化成为致敏B 淋巴细胞。

一、血清效价的影响因素小鼠免疫效价的高低直接影响单抗的制备。

单抗免疫程序不同，包括免疫用的动物，抗原的性质、抗原量、免疫途径、免疫间隔时间、是否应用佐剂均会影响免疫效果。

二、免疫材料1．免疫用的动物抗原与免疫动物种属差异越远越好，小鼠、大鼠、亚美尼亚仓鼠和兔中分离的淋巴细胞的杂交瘤技术已经很成熟。

小鼠是极好的免疫接种对象，原因是：1）小鼠易操作；2）多个纯系株易得到且价格合理；3）有很多试剂可用以检测鼠源免疫球蛋白；4）小鼠对外来蛋白质能产生良好的免疫应答；5）小鼠淋巴细胞能够和多种鼠源骨髓瘤细胞系发生有效融合。

2．免疫原（抗原）颗粒性抗原：颗粒性抗原免疫原性强，如肿瘤细胞、淋巴细胞、•细菌等可作为抗原，不加佐剂直接进行免疫，就可获得较好的免疫效果。

可溶性抗原：因其免疫原性较弱，一般要加佐剂，如系半抗原，•应先制备成人工免疫原，再加佐剂。

免疫原的形式会影响宿主体液免疫产生的抗体谱，因此选择免疫原制备抗体时应该考虑到所制备抗体的最终用途，并应该根据其用途决定何种方法筛选抗体更合适。

一般认为，影响免疫血清中lg亚类谱的因素主要包括免疫原、接种途径、佐剂和动物遗传背景等。

且主要由初次基础免疫所决定，加强免疫的作用主要是提高特异性抗体的滴度。

3．佐剂目的：1）增强抗原对机体的免疫原性；2）增强抗体的产生能力；3）为制备出高效价的免疫血清；4）增强可溶性抗原的免疫原性；5）在某种情况下，改变Ag免疫应答类型；6）延长抗原在免疫动物的时间；7）改变抗原的分布；8）增强共刺激信号和激活免疫系统而刺激淋巴细胞增殖。

种类：氢氧化铝佐剂、明矾佐剂（常用于肌肉、皮下注射）、弗氏佐剂。

弗氏佐剂是最主要的免疫佐剂，热处理杀死的分歧杆菌可以引起炎症反应，募集淋巴细胞到抗原沉积部位，但若重复刺激可导致肉芽肿的形成，故不能重复使用。

单抗制备小鼠免疫SOP

单抗制备免疫一、材料准备：弗式完全佐剂（complete Freunds adjuvant，CFA）弗氏不完全佐剂（incomplete Freunds adjuvant，IFA）实验动物：小鼠（Balb/c）雌性，8周以上,体重20g以上每种抗原蛋白免疫小鼠4只靶抗原：具有免疫原性的抗原或蛋白质、多肽，生理盐水抗原要求：抗原要尽量在无毒无刺激溶液中（PBS或生理盐水），纯度大于80%，浓度1mg/ml以上，总量大于2mg。

抗原尽量是可溶性抗原，溶液为PBS，如必需加入刺激物质，SDS浓度在0.5%以下，尿素在2M以下，不含咪唑，丙烯酰胺等变性剂，要求溶液澄清，无沉淀。

二、实验步骤1.抗原准备：每只小鼠按照100ug/100ul蛋白质或多肽置于生理盐水中制备成抗原。

2.抗原-佐剂的准备：将抗原液与佐剂混合制成乳状液，抗原与佐剂混合按照1：1比例进行，加入搅拌子后于4度搅拌过夜。

注射量为200ul 每只小鼠，抗原量为100ug。

第一次免疫使用弗氏完全佐剂，以后加强使用弗氏不完全佐剂，最后一次加强不加佐剂，免疫前采集阴性血做为对照，乳化因考虑损失，多计算两只小鼠的量。

乳化完全判断标准：挤出一滴乳状液滴于冷水表面以检测乳状液是否稳定，如果液滴散开则继续混合操作直至稳定的乳状液形成。

将乳状液移入1ml注射器。

3.小鼠免疫：将小鼠放在鼠笼上，拉住小鼠尾尖部，背部75%酒精消毒，针头15度角刺入小鼠皮下，挑起注射。

皮下注射共200ul，分5个点（背部皮下任意点）4.冲击免疫：如计划在免疫3d后进行细胞融合实验，则使用水相溶解的游离抗原进行直接脾脏免疫。

过程：将小鼠在固定架上固定，脾脏位置毛剪掉并消毒，快速分别剪开外皮和内皮，将脾脏拉出，吸取100ul/100ug抗原注入脾脏内，并快速用手术线分别缝合内皮和外皮。

5.小鼠阳性血清采集：尾部剪尾采血20ul，用生理盐水稀释10倍，离心收集上清。

6.效价检测：间接法检测小鼠多抗血清效价。

多克隆抗体制备免疫小鼠 (2)

多克隆抗体制备免疫小鼠简介多克隆抗体制备是一种常用的实验技术，用于获得特定蛋白质及其表位的抗体。

免疫小鼠是多克隆抗体制备的常见动物模型之一。

本文将介绍多克隆抗体制备免疫小鼠的一般流程和关键步骤。

流程多克隆抗体制备免疫小鼠的流程主要包括以下几个步骤：1.抗原制备：准备目标蛋白质作为免疫小鼠的抗原，可以是纯化的蛋白质、重组蛋白质或合成的多肽。

2.免疫小鼠：将抗原与适当的佐剂混合，注射到小鼠体内，观察免疫反应情况。

3.收集抗体：采集小鼠的血液样本，离心分离血清，获得抗体。

4.抗体筛选：使用各种筛选方法（如酶联免疫吸附试验、免疫组织化学染色等）筛选出特异性较好的抗体。

5.抗体纯化：通过亲和层析、离子交换层析等技术，对抗体进行纯化，得到高纯度的抗体。

关键步骤抗原制备抗原制备是多克隆抗体制备的关键步骤之一。

抗原质量的好坏直接影响免疫小鼠及最终制备的抗体的质量。

以下是一些常见的抗原制备方法：•纯化蛋白质：通过基于亲和层析、离子交换层析等技术，从含有目标蛋白质的来源中纯化目标蛋白质。

•重组蛋白质：利用基因工程技术在大肠杆菌或其他表达系统中表达目标蛋白质，然后通过亲和层析或其他纯化方法纯化目标蛋白质。

•合成多肽：合成目标蛋白质的特定片段或多肽，用于免疫小鼠。

适当的佐剂适当的佐剂对于免疫小鼠产生良好的免疫响应非常重要。

佐剂的作用是增强抗原的免疫原性和稳定性，促进免疫细胞的活化。

常用的佐剂包括完全佐剂（如完全弗氏佐剂）和不完全佐剂（如不完全弗氏佐剂）。

免疫小鼠免疫将抗原与适当的佐剂混合后，通过皮下注射、腹腔注射等方式将抗原注射到小鼠体内。

注射后，可以观察小鼠的免疫反应情况，如产生抗原特异性抗体。

血液采集和抗体收集一段时间后，如一般在免疫小鼠体内产生可检测到的抗体，可以采用静脉采血的方式采集小鼠的血液。

血液离心后，就可以获得含有抗体的血清。

抗体筛选和纯化获得含有抗体的血清后，可以使用各种筛选方法对抗体进行筛选，如酶联免疫吸附试验（ELISA），免疫组织化学染色等。

小鼠免疫功能检测建立小鼠免疫功能低下模型的研究

小鼠免疫功能检测建立小鼠免疫功能低下模型的研究小鼠免疫功能检测是评估小鼠免疫系统状态的重要手段之一、小鼠作为常用的动物模型，在研究免疫相关疾病、发展新药和疫苗等方面具有广泛应用。

建立小鼠免疫功能低下模型可以为进一步研究免疫功能的途径提供重要参考。

本文将介绍建立小鼠免疫功能低下模型的研究。

首先，建立小鼠免疫功能低下模型需要选择合适的免疫抑制方法。

常用的方法包括药物免疫抑制、单克隆抗体介导的免疫抑制和基因敲除等。

其中，药物免疫抑制是最常用的方法之一、糖皮质激素是目前最常用的免疫抑制药物之一，常用的剂量为每天20-40 mg/kg体重的甲泼尼龙。

免疫抑制剂如环孢素A和他克莫司也可以应用于建立免疫功能低下模型。

此外，通过单克隆抗体特异性抑制免疫应答也是另一种选择。

例如，通过注射CD4或CD8特异性单克隆抗体可抑制小鼠的T细胞功能。

此外，基因敲除技术也可以通过敲除免疫相关基因来建立小鼠免疫功能低下模型。

其次，建立免疫功能低下模型后需要对小鼠的免疫功能进行评估。

评估免疫功能的方法包括机体免疫指标的检测和特定病原体感染模型的建立。

机体免疫指标的检测可以通过检测外周血白细胞数目、淋巴细胞亚群的分布和功能等来评估小鼠的免疫功能。

此外，还可以通过ELISA、免疫荧光或流式细胞术等技术检测小鼠体内的免疫球蛋白水平和细胞因子水平等指标。

特定病原体感染模型的建立可以通过注射特定病原体来评估小鼠免疫功能。

例如，通过感染流感病毒来评估小鼠的免疫功能。

最后，通过研究免疫功能低下模型可以深入了解免疫功能的调节机制，并为疾病的治疗和药物设计提供重要参考。

通过建立小鼠免疫功能低下模型，可以在影响免疫功能的基因和通路上进行深入研究，从而揭示免疫功能低下的机制。

此外，还可以利用这些模型开展新药和疫苗的研发，评估其免疫功能调节作用。

总之，小鼠免疫功能检测和建立免疫功能低下模型对于研究免疫系统的功能和调节机制具有重要意义。

通过评估小鼠免疫功能和建立免疫功能低下模型，可以深入了解免疫功能的调节机制，并为疾病治疗和药物设计提供重要参考。

免疫学实验：多克隆抗体制备-免疫小鼠

分组情况
免疫程序
组别时间
Day 0 皮下注射
Day 10 皮下注射
Day 17 腹腔注射
有佐剂组
无佐剂对照组阴性对照组
40ugOVA 弗氏完全佐剂
40ugOVA 弗氏不完全佐剂
40ugOVA 弗氏不完全佐剂
40ugOVA 40ugOVA 40ugOVA
生理盐水生理盐水生理盐水
Day 24
取血
取血
取血
颈部皮下注射要点
❖ 拇指与食指捏起颈部皮肤 ❖ 水平进针，针头脱空感，缓慢注射，迅速拔出
腹腔注射要点
❖ 抓住颈部皮肤和鼠尾，将小鼠翻转，头部偏下 ❖ 45度进针，靠近腹部中线，❖ 戴手套操作 ❖ 注射器针头用后及时盖帽 ❖ 文字记录标记方法 ❖ 经常检查标记保存状况
JLU
JLU
多克隆抗体制备-免疫小鼠
实验材料
❖ 小鼠每组3只 ❖ 注射器每组3只 ❖ 乳胶手套每人1付 ❖ 线手套每组1付 ❖ 记号笔、手术剪刀公用 ❖ 弗氏注射液公用 200ug/ml OVA in 弗氏佐剂 ❖ 无佐剂注射液公用
200ug/ml OVA in 生理盐水 ❖ 生理盐水（对照）公用

绵羊红细胞免疫小鼠实验流程

绵羊红细胞免疫小鼠实验流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。

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单克隆抗体制备

单克隆抗体制备1. 免疫动物：三只Balb/c小鼠2. 佐剂：首先用完全弗氏佐剂（CFA），后用不完全弗氏佐剂（IFA）。

3. 免疫原：蛋白或KLH偶联多肽。

每次免疫使用50-100µg免疫原。

4. 免疫：用PBS稀释免疫原，然后与相应的佐剂1：1混合。

抗原和佐剂完全混合形成稳定的乳剂，将该乳剂在小鼠双肩周围的皮肤下进行皮下注射和后腿进行肌肉注射。

每个区域大约用1/8的免疫原。

接着将1/2的免疫原进行腹腔注射，这样免疫原可以持久存在从而提高免疫应答。

以后每个星期进行腹腔注射直到达到要求的效价。

5. 第0星期预采血完全弗氏佐剂（CFA）混合的100µg抗原免疫小鼠。

第2星期完全弗氏佐剂（CFA）混合的50µg抗原免疫小鼠。

第3星期不完全弗氏佐剂（IFA）混合的50µg抗原免疫小鼠。

第4星期溶解在PBS中的50µg抗原免疫小鼠。

第5星期取适当的细胞或组织进行ELISA和WB检测，溶解在PBS中的50µg抗原免疫小鼠。

第X星期取适当的细胞或组织进行ELISA和WB检测，溶解在PBS中的50µg抗原免疫小鼠。

6. 杂交瘤融合和筛选：用PEG方法将效价最好的小鼠脾细胞和骨髓瘤细胞F0进行融合。

用抗原对融合的杂交瘤克隆进行筛选，检测它们的特异性和敏感性。

ELI SA阳性的克隆可用WB检测，筛选出来的克隆至少还需要亚克隆两次。

7. 大规模抗体生产：筛选得到两个克隆最后进行大规模培养（每个克隆1L）或者取腹水（每个克隆5只小鼠）。

用蛋白A/G对培养液或腹水进行纯化，平均每个克隆可以得到3-5mg 抗体。

8. 注意：每个融合平均可以得到900多个克隆，对于多肽抗原可以得到100个左右的ELISA阳性克隆，重组蛋白抗原可以得到100-150个ELISA阳性克隆。

亚克隆实验做的越早，越容易保存克隆。

因此，为了保存和复苏阳性克隆，尽早进行筛选检测是必需的。