膜片钳技术资料汇编

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膜片钳实验与技术

膜片钳实验与技术
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单击输入目录标题 膜片钳实验原理 膜片钳实验操作流程 膜片钳实验数据分析 膜片钳实验的应用实例
膜片钳实验的未来发展与挑战
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膜片钳实验原理
膜片钳技术的基本原理
膜片钳实验原理:通过玻璃微电极接触细胞膜,记录单一离子通道活动的 电位变化,从而研究细胞膜离子通道的特性。
膜片钳实验操作步骤
准备实验器材:包括膜片钳 放大器、微操纵器、微电极、
细胞夹持器等
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细胞贴片稳定:等待细胞贴 片稳定后,进行下一步操作
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开启膜片钳放大器:开启放 大器,调节放大器参数,确 保记录到有效的膜电流信号
数据记录:记录膜电流信号, 进行分析和处理
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新型膜片钳技术的研发,提高实验效率和准确性 应用人工智能技术,实现自动化数据分析与处理 结合其他技术手段,拓展膜片钳技术的应用领域 持续优化膜片钳设备,降低实验成本,提高普及率
膜片钳实验在多学科交叉中的应用前景
神经科学领域:研究神经元电活动与行为之间的联系 生理学领域:研究生物体的生理功能和机制 药理学领域:研究药物对细胞膜通道的影响和作用机制 生物医学工程领域:开发新型膜片钳技术,提高实验的灵敏度和特异性
膜片钳技术的特点:高灵敏度、高分辨率和高时间分辨率,能够记录单个 离子通道的活动。
膜片钳技术的应用范围:研究细胞膜离子通道的生理功能、药理作用和药 物作用机制等。
膜片钳实验的影响因素:电极内液的成分、温度、细胞内外的离子浓度和 pH值等。
膜片钳实验的应用范围
神经科学:研究神经细胞的电生理特性 药理学:药物对膜通道的影响 生理学:研究生物膜的离子通道功能 病理学:研究疾病状态下膜通道的异常变化

丁香园膜片钳技术讨论区资料汇编

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丁香园膜片钳技术讨论区资料汇编整理人:xiaoxuanzi发起人:tianx7752006年6月目录第一节膜片钳技术介绍 (1)应用 (1)基本概念 (2)第二节仪器操作和维护 (3)仪器的使用 (3)噪声 (4)玻璃微电极的制备 (5)第三节实验操作 (7)1.细胞的分离、培养 (7)(1)心肌细胞 (7)(2)平滑肌细胞 (17)(3)其他细胞 (19)2.电极的拉制与电镀 (23)3.电极内外液与渗透压 (25)4.串联、封接、电极电阻 (28)5.补偿 (37)6.刺激方案 (40)7.动作电位记录 (42)8.电流记录 (42)(1)钙电流 (42)(2)钾电流 (45)(3)钠电流 (47)(4)其他电流 (48)9.穿孔 (50)10.单通道记录 (51)11.脑片 (54)12.数据分析与处理 (55)第四节 相关电子文献及书籍 (61)第一节 膜片钳技术介绍一、应用1.全细胞记录技术的应用[Cactuswzw](1)离子通道宏观性质的分析,例如,离子通道的性质和分类(电压门控通道、膜受体激活通道、配体门控通道、胞内第二信使激活通道等)(2)离子通道微观性质分析,例如单一离子通道活动的测定的测定,离子通道的构造,分布和机能的分析等。

(3)膜电容的测量及其对细胞分泌活动的研究。

(4)胞内钙离子浓度和钙通道电流的同时定量检测。

(5)组织切片的全细胞记录。

(6)植物细胞的电生理研究。

二、基本概念1.刚刚接触patch,有些概念都很模糊holding potential与command potential?Axon200B的放大器控制面板上有ext. command,又是什么东东?都分别什么时候给予?在我理解,pipette capacity compesation就是快电容补偿,而Cm补偿为慢电容补偿,那为何Axon200B的面板上在pipette capacitance compensation下面列了FAST和SLOW的magnitude以及时间常数的调节扭?[baxiansheng]Holding potential 是钳制电压,这是实验中从头至尾通过电极用于钳制细胞的一个电压,和膜电位的关系取决于采用的实验模式。

膜片钳技术参数

膜片钳技术参数

膜片钳技术参数一、膜片钳放大器系统(1)膜片钳放大器*1. 双电极膜片钳放大器用于细胞内和细胞外记录、膜片钳记录(全细胞、巨膜片、游离膜片)、电流测定法/伏安法、离子选择电极的测量、人工脂双层记录2. 电压钳模式下提供4种反馈电阻(50 MΩ、500 MΩ、5 GΩ、50 GΩ),可以测定0.2 pA~200 nA范围的电流。

电流钳模式下提供3种反馈电阻(50 MΩ、500 MΩ、5 GΩ),可以测定2 nA~200 nA 范围的电流。

3. 膜片钳放大器具有两个相同且独立的探头,为计算机控制,多数功能可通过点击鼠标而自动完成。

4. 全细胞膜电容补偿范围:Rf=500M时,Cm 1-100pF/Rs 400k-1000M串联电阻补偿范围:带宽:0.32-16kHz;校正值:0.4-1000M(500M时)5. 输出增益范围:主输出:1,2,5,10,20,50,100,200, 500, 1000, 2000;主输出滤波频率范围:4-极Bessel低通滤波(Hz):2Hz-30kHz (2)数模转换器1转换器为即插即用型设备,能被Windows系统自动识别。

*2 为一台单独的仪器,不跟膜片钳放大器组合为一台仪器。

具有丰富数量的模拟/数字输入/输出端口,方便在软件中进行额外的附加控制。

3 16位高分辨率、低噪声转换器。

模拟信号输入通道数:8;模拟信号输出通道数:8;数字输出通道数:8。

4 采样速率:1 Hz - 500 kHz。

5 输入电阻: 1 MΩ;输入型号;TTL兼容制系统,方便外接其他刺激器,隔离器等。

输出电阻:< 0.5Ω6 输出电流:±4mA;数字化噪音< 1 mV7 系统自带消除噪音功能。

最大输入信号±10 V;消除最大噪音幅度20 V;噪音消除:线频率50Hz和谐波至10 kHz;取消相应时间< 1 s(3)记录和分析软件*1. 分析程序可对数据脱机处理,不需要使用密码锁2. 既包含采样程序又包含分析程序3. 膜测试功能在记录每条扫描线时可计算串联电阻Ra和膜电容4. 如果施加了漏减功能,则可同时自动记录下漏减前后的电流5. 在对每条扫描线进行记录时,可采用两个不同的采样频率进行6. 可以设置灵活的基础刺激和条件刺激方式用来不间断记录长时程增强效应和长时程抑制效应(LTP/LTD)。

膜片钳技术讲座幻灯

膜片钳技术讲座幻灯

1. 膜片钳技术简介


1976 年 德 国 马 普 生 物 物 理 化 学 研 究 所 Neher 和 Sakmann首次在青蛙肌细胞上用双电极钳制膜电 位的同时,记录到乙酰胆碱(Acetylcholine, ACh) 激活的单通道离子电流,从而产生了膜片钳技术 (patch clamp techniques)。 1980 年 Sigworth 等 获 得 10-100GΩ 的 高 阻 封 接 (Giga-seal),1981年Hamill和Neher等对该技术 进行了改进,引进了全细胞记录技术,从而使该 技 术 更 趋 完 善 , 1983 年 10 月 , 《Single-Channel Recording》一书的问世,奠定了膜片钳技术的里 程碑。

内向电流(Inward current) 从细胞外进入细胞内的正离子(如Na+ )电流或从
细胞内流向细胞外的负离子(如Cl-)电流。

外向电流(Outward current)
从细胞内流向细胞外的正离子(如K+)电流或从细
胞外流向细胞内的负离子(如Cl-)电流。
3. 膜片钳系统中的电阻
膜电阻(Membrane resistance, Rm) 指脂质双分子层的跨膜电阻,反映离子是否容易 穿透细胞膜。在细胞膜离子通道关闭时, Rm很大, 可达几百MΩ。不同于膜电容, 各种细胞的Rm 变异 较大。 膜输入阻抗(Membrane input resistance, Rin) 对 Rm 的测量是通过对膜输入阻抗的测量间接得到 的。给细胞膜施加一系列刺激方波,测定跨膜电流, 根据欧姆定律即可求出Rin 。注意要在形成全细胞记 录时测定,在形成高阻封接时, Rin =Rseal。

膜片钳技术及其应用

膜片钳技术及其应用
细胞信号转导的研究
膜片钳技术可以用于研究细胞信号转导过程中离子通道和受体的变 化,了解信号转导的机制。
细胞功能调控的研究
膜片钳技术可以用于研究细胞功能调控的机制,例如细胞兴奋性的 调节和细胞内离子浓度的变化。
04 膜片钳技术的优势与局限 性
膜片钳技术的优势
高灵敏度
细胞无损
膜片钳技术具有高灵敏度,能够检测单 个离子通道的活动,从而提供关于细胞 膜电位和离子通道功能的重要信息。
膜片钳技术可以在保持细胞完整性的 情况下进行实验,不会对细胞造成严 重损伤或干扰细胞的正常功能。
实时监测
膜片钳技术可以对细胞膜电位进行实时 监测,从而了解离子通道的动态变化, 有助于深入理解细胞生理和病理过程。
膜片钳技术的局限性
1 2 3
实验条件要求高
膜片钳技术需要高精度的实验设备和条件,包括 低温、低噪声和低阻抗等,这增加了实验的难度 和成本。
03
04
05
膜片钳放大器
微操纵器
细胞培养皿或显 微镜载玻片
电极溶液
细胞内和细胞外 灌流液
用于放大细胞膜电信号, 提高信号的检测灵敏度。
用于精确控制电极的移动 ,以便在细胞膜上定位和 进行膜片钳实验。
用于培养和固定细胞,以 便进行膜片钳实验。
用于填充电极,以保持电 极的湿润和导电性。
用于维持细胞内外环境的 稳定,并排除干扰实验的 物质。
03
在单细胞水平上研究细胞信号转导和离子通道功能,深入了 解细胞生理和病理过程。
膜片钳技术与其他技术的联合应用
结合光学成像技术,利用膜片钳技术对神经元电生理特性进行同时监测和成像,实现多参数的同时测 量。
与基因编辑技术结合,利用膜片钳技术对特定基因表达的离子通道进行功能研究,深入了解基因与离子 通道的关系。

第十五膜片钳技术简介

第十五膜片钳技术简介
Singlechannel recording
Singlechannel recording
Macrocurrent recording
Macrocurrent recording
Advantages
Major Disadvantage
Physiological conditions
Easy to obtain
Extracellular superfusion No washout
Missing essential internal substance
Disrupt cytoplasmic contents
Not easy to obtain
OUTLINE
1、电生理学简介
2、膜片钳技术概述 3、膜片钳技术应用
Unknown membrane potential; No superfusion
Cytosolic superfusion Extracellular control Not easy to obtain
Extracellular superfusion Cytosolic control
Extracellular superfusion Cytosolic control
DAD-VC system
MicroManipulators
CCD Camera
Electrophysiology-Apparatus
Electrophysiology-Apparatus
Patch clamp
Patch clamp-application
取材形式 脑片(slices)
单细胞
Patch clamp
Erwin Neher

膜片钳原理技 术

膜片钳原理技 术

膜片钳全细胞记录
双向离子条件 高Na+电极内液
Na+
Na+ Ca2+
Na/Ca
3Na+
Cell model to record outward current of Na+-Ca2+exchanger
双向/生电性
Ca2+
Ca2+
ATP
NCX
Na+
SARCOLEMMA
Ca2+ ATP Ca2+
Sarcoplasmic reticulum
8 Amiloride Ni 6
2+
—○— —●— —□— —■—
Amiloride 10 M Amiloride 30 M Amiloride 100 M Before drug
4
2
0 1 -2 2 3 4 5 6 7 8 9 10
11 (min)
-4
Amiloride
KB-R7943对豚鼠心室肌细胞Na+-Ca2+交换电流的作用
Cell membrane Cell
Inside-out recording
Patch-pipette
The internal face of the lipid bi-layer faces the bath solution
Outside-out recording
Patch-pipette
channel
Ca2+
正 向 转 运
Ca2+
NCX NCX
3 Na+
ATP
SARCOLEMMA
3 Na+
2

膜片钳技术

膜片钳技术

测试题:
1. 膜片钳的主要记录方式有哪几种,各
有何优缺点? 2. 什么叫整流,产生整流的原因是什么?
膜的被动反应
离子通道开放 膜的主动反应

外向整流
随膜电位的去极化,I-V曲线明显向Y轴(电流轴)靠 近。如IK电流。

内向整流
随膜电位的去极化,I-V曲线明显向X轴(电压轴)靠 近。如烟碱电流。
去极化方向
去极化方向
IK电流的外向整流
烟碱电流的内向整流

尾电流(Tail current)
指通道在激活因素结束时的关闭过程中,所记录
6. 基本概念及参数设置

输入漏电流(Input leakage current)
理论上讲,不施加外部命令时,通过放大 器探头的电流应该为0,如果由于放大器本 身的原因产生了电流,这就是漏电流。由于 放大器控制电流漂移的质量很高,一般漏电 流都很小。

封接电流(Seal current)
由于封接质量不高(没有形成良好的高 阻封接),从封接处产生的电流。成为噪 声。
第三部分
全细胞记录结果举例
+80mV
+40mV
0mV
-40mV
-80mV 200ms
Iso Hypo
Current Density (pA/pF)
-40
60
30
0 -80 0 -30 40 80
Voltage (mV)
-60
Iso 4 Iso 2 Hypo Hypo
Current (nA)
0
倒 置 相 差 显 微 镜
EPC-7膜片钳放大器(德国)
4. 膜片钳的记录方式及基本操作
细胞吸附式(Cell-attached
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丁香园膜片钳技术讨论区资料汇编整理人:xiaoxuanzi发起人:tianx7752006年6月目录第一节膜片钳技术介绍 (1)应用 (1)基本概念 (2)第二节仪器操作和维护 (3)仪器的使用 (3)噪声 (4)玻璃微电极的制备 (5)第三节 实验操作 (7)1.细胞的分离、培养 (7)(1)心肌细胞 (7)(2)平滑肌细胞 (17)(3)其他细胞 (19)2.电极的拉制与电镀 (23)3.电极内外液与渗透压 (25)4.串联、封接、电极电阻 (28)5.补偿 (37)6.刺激方案 (40)7.动作电位记录 (42)8.电流记录 (42)(1)钙电流 (42)(2)钾电流 (45)(3)钠电流 (47)(4)其他电流 (48)9.穿孔 (50)10.单通道记录 (51)11.脑片 (54)12.数据分析与处理 (55)第四节 相关电子文献及书籍 (61)第一节 膜片钳技术介绍一、应用1.全细胞记录技术的应用[Cactuswzw](1)离子通道宏观性质的分析,例如,离子通道的性质和分类(电压门控通道、膜受体激活通道、配体门控通道、胞内第二信使激活通道等)(2)离子通道微观性质分析,例如单一离子通道活动的测定的测定,离子通道的构造,分布和机能的分析等。

(3)膜电容的测量及其对细胞分泌活动的研究。

(4)胞内钙离子浓度和钙通道电流的同时定量检测。

(5)组织切片的全细胞记录。

(6)植物细胞的电生理研究。

二、基本概念1.刚刚接触patch,有些概念都很模糊holding potential与command potential?Axon200B的放大器控制面板上有ext. command,又是什么东东?都分别什么时候给予?在我理解,pipette capacity compesation就是快电容补偿,而Cm补偿为慢电容补偿,那为何Axon200B的面板上在pipette capacitance compensation下面列了FAST和SLOW的magnitude以及时间常数的调节扭?[baxiansheng]Holding potential 是钳制电压,这是实验中从头至尾通过电极用于钳制细胞的一个电压,和膜电位的关系取决于采用的实验模式。

而command voltage是在holding potential基础上施加的刺激方案,比如全细胞实验中可以设置Holding potential在-80mV,然后去极化至+10mV 400ms,那么这个去极化至+10mV的方波就是commandvoltage,当然command voltage的设置可以根据实验设置得更复杂。

Axon200B放大器控制面板的ext. command是用于接外接刺激器的,通过外接刺激器来施加command voltage,当然现在完全由计算机代替了。

pipette capacity是电极电容,因为时间常数小,所以称快电容,而Cm是膜电容,因为时间常数大,所以称为慢电容。

Axon200B的面板上在pipette capacitance compensation下面列了FAST和SLOW的magnitude以及时间常数的调节扭,那是对电极电容的补偿方式。

实际上电极电容中也有一些时间常数较大的成分,单纯补偿FAST效果并不完美,需要再稍稍调节一下SLOW。

2.我的课题是关于心血管系统中离子通道方面的研究。

离子通道一般有备用关闭状态(close),激活状态(active)和失活状态(inavtive)。

但最近我看文献有去激活状态,英文为deactivation,我想跟失活肯定不是一个概念,但又找不到确切的含义,有谁能帮我解释一下这几种通道状态个代表什么含义?[coolworm]C<----->O<------->I这里,C: 关闭O:开放I:失活激活(activation:从C到O的过程。

失活(inavtivation):从O到I的过程。

去激活(deactivation):I 回到C的过程。

3.请问,有没有人知道,电压钳和电流钳的区别,电流钳的英文是不是current-clamp?多谢![xuji007] 电压钳应该就是钳制住电压来测电流,电流钳就是钳制住电流来测电压。

电流钳就是current-clamp。

4.请教整流的定义,以及内向整流、外向整流的区别,我只知整流是一种电学特性,并且成为诸如钾通道分类的标准,但对上述确切含义还很模糊,请高手赐教![xuji007]我不是高手,只是谈谈自己的理解。

如果膜只是一个单纯的电阻的话,那么通过它的电流就应该和电压是线性的关系。

但由于通道的存在,这种线性关系就会被改变。

比如Ik1,它的电流随电压增大的趋势会随着电压的增大而逐渐减弱,也就是内向整流了。

还请高手之指正。

[dingyinyuan]所谓整流一般是相对离子通道电流的电压依赖性的线性关系而言,内向整流指离子通道电流随电压的升高而降低,I-V曲线位于相对偏向下。

如心肌细胞IK1 。

外向整流指离子通道电流随电压的升高而更高超过电压依赖性的线性关系电流值,I-V曲线位于相对偏向上。

[心潮澎湃]依据欧姆定律:R=U/I,若U增大,但是I不是按比例增大,即为整流。

若U增大,I增大的幅度减小,I-V曲线向下弯曲,则为内向整流,如IK1的部分外向电流,反之,如U增大,I增大的幅度增加,I-V曲线向上弯曲,则为外向整流,如ITO电流,整流与除极和复极有一定联系。

[baxiansheng]rectifying “整流”,是借用物理电子学的一个概念,大家都知道“整流二极管”,在一个方向电阻非常小,反向电阻非常大。

在通道电流中,是指这种通道的电流在一个方向上的电导(电阻的倒数)大,而反方向的电导小。

比如内向整流钾电流,是指电流内流时电导较小,外流时电导较大,在I-V曲线上不呈直线,而是零电流以上的部分斜率下降,呈抛物线状,亦及电导G=I/V变小(在通道电生理中,一般外向电流为正)。

在钾通道中,很多电流具有整流特性,比如乙酰胆碱敏感钾电流,ATP敏感电流等等。

delayed rectifying k+ channel 延迟整流钾通道,是特指的一种钾电流通道,在豚鼠上有表达,而在大鼠上几乎没有。

它具有整流的特性。

而且这个通道只具有激活们而没有失活门,当去极化激活后,电流不会象钠电流、钙电流、瞬时外向钾电流等随时间延长又自动失活,这大概就是它delayed的含义。

这个电流含有快成分和慢成分两种。

不知这样解释是否明白。

第二节 仪器操作和维护一、仪器的使用1.各位高手,本实验室刚买的一套设备, 膜片钳放大器是Axopatch 200B,采集卡是 digitizer 1200 ,软件是Axon公司的Pclamp 8.0,请问各位有没有使用相似设备的,能把你们放大器和采集卡interface的线路连接告诉我吗?还有,我们的微操纵器是***的液压的,那个架子是怎么安装到显微镜上面去的?[chianhuu]其实那么多接口,用到的并不多。

信号线是使用BNC线将放大器的scaled output连接信号器的 ANALOG IN 任意接口,这是采集信号。

将 放大器的 COMMAND INPUT(任意,分别对应于面板上两个旋钮,根据需要连接)连接信号器的 ANALOG OUT 1或2 。

HEADSTAGE 接电极HEAD。

最好能将放大器上的SIGNAL GROUND 和整台机器的公共接地端连接,抗干扰。

放大器连接电脑的接口用DIGITAL BOARD 。

其他的就不用了。

2.我看了几个单位的PATCH ,他们都没有要外加的刺激器和示波器.仅有PATCH CLAMP(AXONPATCH200和A/D(1322A)转换卡.我们想PATCH CLAMP 里有方波刺激,电脑显示屏能代替示波器.于是我们也参照他们的线路联接.结果就是不能正常地测电阻.谁能告诉我们AXONPATCH200B和A/D1322转换器正确的连接线路吗?1, 由PATCH CLAMP 和A/D组成的如何连接2. 由PATCH CLAMP 和A/D以及示波器组成的连线.[yangk2002](1),要不要刺激器,取决于实验设计。

如果只需要通过电极细胞内刺激,当然不需要刺激器。

而如果需要在细胞外产生刺激(例如刺激突触前递质分泌),则非用不可;(2)示波器显示变化比电脑快,有的实验室还用。

这是各人习惯问题,有人说用示波器“太土”,是一种不了解情况的说法;(3)接线方法有二:彻底搞清法(费时,但对今后有好处):仔细对照软件使用指南,上面有详细说明;囫囵吞枣法(省事,立即可用):照猫画虎,看别人的连接方法,然后拷贝别人的程序,保证可以运行。

是为抛砖引玉。

3.膜片钳采集软件Clampex的Acquisition Mode中Fixed-Length Events Mode和Variable-Length Events Mode是如何采样的?他们有何区别?主要用于那种实验?[刘振伟]Fixed-Length Events Mode用于诱发突触活动、动作电位等时间长度固定的信号采集。

在设定阈值的情况下,对阈上事件进行采样,对每个阈上事件的记录时间长度是固定的,但总的采集时间被记录下来。

记录也可受控于外部触发命令。

Variable-Length Events Mode用于通道关闭时间较长(静止期较长)的单通道记录。

在设定阈值的情况下,只对阈上事件进行采样,而对没有阈上事件发生的“静止期”则不采样,从而减小了所记录数据文件的容量。

4.请问,各位,我们用的200B的放大器,为什么总是超载呢?是软件设置的问题,还是硬件的问题(急)谢谢[upboom]我用的也是200B,以前我也碰到过overload的情况,提供几个方面的原因供你参考:(1)保证电极拉制质量,没有断头、过粗现象。

(2)holder和参比电极的银丝要镀得均匀,时间过久则需要重新镀银。

(3)接地良好。

(4)细胞外液、电极内液配制合理,渗透压、PH保证在正常范围内,并用滤膜过滤去除杂质细菌。

(5)入水后适当调节液接电位(我的offset值就调在4~5之间),如果是这方面原因,那么肯定会恢复正常的。

二、噪声1.我们用的是CEZ-2400型膜片钳放大器(NIHON KOHDENO,Japen)放大,是血细胞做的,接地还可以,以前他们一直是这么做的,可是我放大以后才发现干扰电流幅度在2~6pA左右,基本把我作出的电流淹没了。

[sbboy1973]你要首先确定你的G欧封接是否成功?依我个人经验电极电阻一般在7-10较合适,等你G欧封接成功后噪声会大大降低;2,滤波要打在1KHz,不要太高;3,放大一般在20-50倍即可,但还要根据你测定的通道电流大小决定;4,要大大降低噪声,还是要很好的接地、很好的屏蔽(最要注意的是显微镜)、最好在晚上做,其中屏蔽尤其要注意那些电线、插头,可以用排除法慢慢试,要有耐心。

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