血清蛋白(serumprotein)琼脂糖凝胶电泳
血清蛋白电泳检查电泳法-检验科生化室作业书
血清蛋白电泳检查电泳法1.实验原理血清电泳检查是临床实验室中一种常用的蛋白质分析技术。
它可以对血清或其他体液中的异常蛋白质进行筛选。
它是以区带电泳为基础在一种合适的支持介质—琼脂糖上进行的电泳。
血清蛋白质在给定的PH条件下主要根据其所在带电荷数将其分离成各种片段，根据其支持介质不同，电泳技术已有很大发展。
选用琼脂糖作介质，其使用十分方便。
血清蛋白质由五个不同迁移区带组成：ALB,α1，α2，β和γ球蛋白。
每一区带含有一种或多种血清蛋白质。
2.标本采集2.1标本采集前病人准备：受检者应空腹。
2.2标本种类：静脉血3.标本储存：静脉血分离出血清，储存于2-8℃冰箱中，5天。
4.标本运输：储存于2-8℃状态下的冰壶或泡沫箱密封运输。
5.标本拒收标准：细菌污染、溶血或脂血标本不能作测定。
6.试剂试剂名称：血清蛋白电泳检查试剂6.2试剂生产厂家：法国Sebia公司6.3包装规格：150tests6.4试剂盒组成琼脂糖凝胶10块缓冲液条带10包×2条氨基黑（浓缩液）1瓶×100ml点样模具滤纸10条×1盒6.5试剂储存条件及有效期：贮存于室温（15～30℃）或冰箱（2～8℃），不能冷冻。
有效期两年。
7.仪器设备7.1仪器名称：SEBIA电泳仪7.2仪器厂家：法国Sebia公司7.3仪器型号：HYDRASYS8.操作步骤8.1启动电泳仪8.2将加样器放在一平板上，有数字的一端向上。
各加样孔加入10ul 溶血的样品，2分钟内加样完毕。
将加样器放入保湿盒内，齿端向上（转运时用塑料齿保护架）。
等待5分钟，使样品扩散至齿端。
打开电泳仪盖，抬起电极和加样器支架。
8.3使用HYDRAGEL15HEMOGLOBINCE时选择仪器的“PROTEIN”程序（位于链盘左侧）。
8.4从包装袋内取出缓冲条，拿出末端的塑料片，将缓冲条两端塑料片固定在电极支架背侧的钉上，塑料片应紧贴支架。
8.5取出凝胶板。
血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳原理和操作
血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳原理和操作血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳是一种常用的生化分离和分析技术，主要用于血清中脂蛋白的分析。
其原理是利用琼脂糖凝胶电泳的分离特性，将血清中的脂蛋白按照分子大小进行分离，从而获得脂蛋白的电泳图谱。
琼脂糖凝胶是由琼脂糖溶液制备而成的凝胶。
琼脂糖分子之间通过氢键结合，在溶液中形成网状结构，能够阻碍大分子的迁移，使分子在凝胶中按照分子大小逐渐分离。
根据琼脂糖凝胶的浓度和凝胶体积，可以调整分离脂蛋白的范围和分辨率。
血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳的操作步骤如下：1. 样品制备：将要分析的血清样品进行离心，将清除过量脂蛋白颗粒。
取适量样品于离心管中，加入适量凝胶缓冲液，混匀。
2. 制备凝胶：根据所需的凝胶浓度，称取相应质量的琼脂糖溶解于电泳缓冲液中，并加热至溶解。
待溶液温度降至室温后，加入凝胶稳定剂并混匀。
3. 填充凝胶孔：将凝胶溶液倒入电泳池，待凝胶凝固后，用专用的样品载体或者微量移液器将样品填充到凝胶孔中。
注意不要将样品液面超过凝胶表面。
4. 电泳分离：将电泳池连接电源，设定合适的电泳条件，如电压和电流。
在电泳过程中，离子在电场作用下沿着琼脂糖凝胶的移动方向迁移，分离出不同迁移速度的脂蛋白组分。
5. 染色和观察：电泳结束后，取出凝胶，进行染色和观察。
目前常用的染色方法有银染、共伴染色和乳化状胶体金染色等。
在染色后，可以使用分子影像仪或者专用的凝胶分析系统进行图像捕捉和分析。
血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳可以用于分析血清中各种脂蛋白的分布和比例，如低密度脂蛋白（LDL）、高密度脂蛋白（HDL）、极低密度脂蛋白（VLDL）等。
通过分析脂蛋白的电泳图谱，可以得到脂蛋白的相对含量和分子大小的分布情况，进一步了解脂质代谢的状态以及与某些疾病的关联。
总之，血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳是一种常用的生化分离和分析技术，主要用于血清脂蛋白的分离和分析。
通过其原理和操作步骤的了解，我们可以更好地利用该技术进行实验和数据解读，为脂质相关疾病的研究提供有力的支持。
【名称】血清蛋白电泳
【名称】血清蛋白电泳【英文名】serum protein electrophoresis【别名】【概述】蛋白质等生物分子在缓冲液中带负电荷或正电荷，在电场中向阳极或阴极运动，称为电泳(electmphomsis)。
由于其等电点不同，分子大小、形状和荷质比的不同，使不同蛋白质分子具有不同的电泳迁移率，在一定的支持介质中可借以分离各种蛋白质。
常用的电泳技术有：醋酸纤维素薄膜电泳、琼脂糖凝胶电泳、聚丙烯酰胺凝胶电泳、免疫电泳等。
血清蛋白电泳以醋酸纤维素薄膜应用最为普遍。
【原理】血清中各种蛋白质都有其特有的等电点，各种蛋白质在各自的等电点时呈电中性状态，它的分子所带正电荷与所带负电荷量相等。
将蛋白质置于pH比值等电点较高的缓冲液中，它们将形成带负电荷的质点，在电场中均向正极泳动。
由于血清蛋白质的等电点不同，带电荷的量多少差异，蛋白质分子量大小也不同，所以在同一电场中泳动速度也不同。
蛋白质分子越小带电越多，移动速度越快；分子越大而带电越少，移动速度越慢。
按其泳动速度可以分出以下的主要区带，从正极端起，依次为白蛋白、α球蛋白和α球蛋白，β球蛋白和γ球蛋白5条区带。
【试剂】(1)巴比妥-巴比妥钠缓冲液(pH8.6±0.1、μ＝0.06)：以巴比妥2.21g、巴比妥钠12.36g于500ml蒸馏水中，加热溶解，待冷却至室温后加蒸馏水至1000ml。
(2)染色液：①丽春红S染色液：丽春红9.04g、三氯醋酸6g，用蒸馏水溶解，并稀释至100ml。
②氨基黑10B染色液：氨基黑10B 0.1g，溶于无水乙醇20ml中，加冰醋酸5ml甘油0.5ml使溶解。
然后将磺柳酸2.5 g，溶于少量蒸馏水中，加入前液，再以蒸馏水补足至100ml。
(3)漂洗液：①30ml/L醋酸溶液：用于丽春红染色的漂洗。
②甲醇45ml，冰醋酸5ml和蒸馏水50ml混匀。
用于氨基黑10B染色的漂洗。
(4)透明液：柠檬酸(C H Na O·2H O)21g和N-甲基-吡咯烷酮150g，用蒸馏水溶解，并稀释到500ml。
实验七血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳分析
血清中脂类物质均与载脂蛋白结合成水溶性脂蛋白形式存在。各种脂 蛋白所含载脂蛋白的种类及数量不同，因而不同脂蛋白颗粒大小相差 很大。因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电场中可使各种脂蛋白颗粒 分开。
2021/6/12
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【思考题】
1.琼脂糖凝胶电泳有哪些操作要点？ 2. 在不同的实验方法（超速离心、琼脂糖凝
胶电泳、PAGE）中，正常人血清脂蛋白如何 分类，电泳后的相对位置及其与超速离心法 的对应关系？ 3.各种脂蛋白的功能？为什么正常人血清脂 蛋白电泳时见不到乳糜微粒区带？
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4
【注意事项】
1.预染血清与温度有关，低温着色慢，高温着色快， 37℃较为适宜。
2.浇注琼脂糖凝胶板要尽量使厚薄均一，否则会影 响脂蛋白的分离效果。
3.将凝胶板放入电泳槽中，应切记与电力线平行、 样品端置负极、搭桥滤纸不能搭在样品上。
4.制备干胶时，要严控制脱水的温度和速度，避免 脱水时温度过高、速度太快引起凝胶收缩龟裂。
2
【实验器材】
1.电泳仪、电泳槽 2.载玻片 3.台式离心机
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3
【实验操作】
1.预染血清 血清0.2ml中加苏丹黑色液0.02ml，混合置37℃水浴中染色 30分钟，离心（2，000转/分）5分钟。
2.制备琼脂糖凝胶板 将已配制好的0.50%琼脂糖凝胶于水浴中加热融化， 用吸管吸取约3ml凝胶溶液浇注在载玻片上，立即放上“桥”，静置待 其凝固后，小心取下“桥”。
实验六：血清脂蛋白的琼脂糖凝胶电泳
实验六：血清脂蛋白的琼脂糖凝胶电泳血清脂蛋白的琼脂糖凝胶电泳是一种常用的分离和鉴定血清脂蛋白的方法。
血清脂蛋白是由蛋白质和脂质组成的颗粒物质，其中包括低密度脂蛋白（LDL）、高密度脂蛋白（HDL）、极低密度脂蛋白（VLDL）和乳糜微粒等。
琼脂糖凝胶电泳可以根据脂蛋白的电泳迁移率和染色性质将脂蛋白分离出不同的带，从而达到分离和鉴定的目的。
实验仪器和试剂：1.琼脂糖凝胶电泳仪2.琼脂糖凝胶板（gel plate）3.20%甘油4.3%琼脂糖5.样品（血清）6.样品缓冲液：Tris-HCl pH 8.97.标准品实验步骤：1.制备琼脂糖凝胶板：取100ml 3%琼脂糖加入十倍浓度的Tris-HCl pH 8.9缓冲液中，搅拌均匀后加入20%甘油，将混合液倒入冷却好的凝胶板中，把已冷却的仪器旋转至仪器倾斜角度20度左右，使混合液均匀地分布在凝胶板的倾斜表面上。
等待凝固即可使用。
2.标记标准品：将标准品加入混合样品缓冲液，在84摄氏度下进行10分钟的煮沸，再进行冷却。
将手套清洗干净并干燥，然后将标准品注入样品单元格中，约10分钟后转动仪器延长电泳时间（通常电泳时间为1个小时左右），直到标准品移动到合适的位置、大小和颜色为止。
标准品的分子量从低分子量到高分子量分别为白色脂蛋白（pre-beta脂蛋白）、β-脂蛋白（LDL）、α-脂蛋白（HDL3）、HDL2和脂蛋白(a)。
3.样品电泳：将样品加入混合样品缓冲液，并煮沸10分钟以去除有机物，然后冷却。
将样品注入样品单元格中，待样品在电泳板上电泳1小时。
电泳结束后，先将凝胶板在120ml的异丙醇/冰醋酸/石油醚混合物中浸泡5-10秒钟，然后在以色列碘溶液中染色。
结果分析：在琼脂糖凝胶板上可以看到不同的带，这些带是由血清脂蛋白的不同组分组成的。
根据标准品的移动位置和样品的移动位置，可以将样品中的脂蛋白分为不同的带。
每个带代表一个不同的脂蛋白类别，通常来说，可以将带分为以下5类：白色脂蛋白（pre-beta脂蛋白）、β-脂蛋白（LDL）、α-脂蛋白（HDL3）、HDL2和脂蛋白(a)。
21 生物化学实验--琼脂糖凝胶电泳法分离预染血清脂蛋白
琼脂糖凝胶电泳法分离预染血清脂蛋白【目的】1. 掌握琼脂糖凝胶电泳法分离预染血清脂蛋白的实验原理和操作方法。
2. 熟悉血清脂蛋白改变在临床上的重要意义。
【原理】电泳是指带电颗粒在电场的作用下，向着与其自身所带电荷相反的电极移动的现象。
根据电泳支持物的不同，血清脂蛋白电泳可分为滤纸电泳、醋酸纤维薄膜电泳、琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳四类。
由于各种脂蛋白所含载脂蛋白和脂类的种类及数量不同，分子量大小相差较大，并且在一定 pH 值溶液中所带电荷量不同，电泳移动的速度必然有差别，因此，通过电泳可以将不同种类的血清脂蛋白彼此分离。
血清脂蛋白经苏丹黑 B 预染后，以琼脂糖为载体，在 pH 8.6 巴比妥缓冲液中进行电泳，可将脂蛋白分成不同的区带（图 3-9 ）。
正常人空腹状态下，血清脂蛋白电泳后可出现三条区带，从阳极到阴极依次为α- 脂蛋白带、前β- 脂蛋白带及β- 脂蛋白带。
点样槽处不会出现乳糜微粒，有时前β- 脂蛋白也显示不出来。
区带的宽窄及颜色的深浅粗略地反应了各种脂蛋白的量。
另外，可以将已烘干的凝胶片直接放到吸光度扫描仪上，通过扫描得出各种脂蛋白的百分比含量。
或者，将电泳后凝胶板上各区带切下，比色定量分析出各种脂蛋白的百分比含量。
图 3-9 预染血清脂蛋白电泳图谱【器材】1 ．电泳仪2 ．恒温水浴箱3 ．离心机4 ．微量加样器5 ．烫槽器6 ．载玻片7 ．扫描仪8 ．分光光度计9 ．小号试管10 ．吸管11 ．纱布12 ．烘箱【试剂】1 ．电泳缓冲液（ pH8.6 ，离子强度 0.075 的巴比妥缓冲液）称取巴比妥钠 15.458g ，巴比妥 2.768g ，乙二胺四乙酸（ EDTA ） 0.29g ，加适量蒸馏水溶解后加至 1000ml 。
2 ．凝胶缓冲液（ pH8.6 三羟甲基氨基甲烷缓冲液）称取三羟甲基氨基甲烷 1.212g ， EDTA 0.29g ， NaCl 5.85g ，用适量蒸馏水溶解后加至 1000ml 。
血清脂蛋白电泳原理和操作方法
血清脂蛋白电泳原理和操作方法血清脂蛋白电泳是一种常用的临床检验方法，用于检测血液中脂蛋白的含量和分布情况。
其原理是利用电场将血清中的脂蛋白分子按照其电荷和大小进行分离，进而通过电泳染色或免疫印迹等方法进行分析。
血清脂蛋白电泳的操作方法如下：1. 样本制备：首先，将待测血清标本离心分离清澈的血浆。
避免搅拌或摇晃，以防止脂蛋白在离心过程中发生聚集。
然后，取清澈的血浆进行进一步的操作。
2. 准备凝胶：将脂蛋白电泳所需的琼脂糖凝胶制备好。
通常使用琼脂糖凝胶浸润缓冲液来充分浸润凝胶，并确保凝胶的均匀性。
3. 样本加载：将预处理的血浆样本加载到琼脂糖凝胶孔中。
为了获得更好的分离效果，通常将血浆样本稀释以调节其浓度。
4. 电泳操作：将装有样品的琼脂糖凝胶板放置在电泳槽中。
然后，连接电极，以产生稳定的电场。
根据实验的需要，可以选择不同的电场条件，如电压和电流密度。
5. 电泳结束：在预定时间内进行电泳。
根据脂蛋白的电泳迁移率和分离效果，可以调整电泳时间。
6. 固定凝胶：电泳结束后，将凝胶板取出，用酸性醇溶液进行固定。
这可以确保蛋白质在凝胶上的位置固定，并防止蛋白质的迁移。
7. 染色或免疫印迹：固定后的琼脂糖凝胶可以选择染色方法或者进行免疫印迹。
染色方法可以直接显示脂蛋白的位置，免疫印迹可以使用抗体识别特定的脂蛋白。
总结起来，血清脂蛋白电泳是一种通过电场将血清中的脂蛋白分子分离的方法。
其操作步骤包括样本制备，凝胶制备，样本加载，电泳操作，电泳结束，凝胶固定，染色或免疫印迹等。
注意在操作过程中确保样本和凝胶的稳定性，以及调整电泳条件来获得最佳的分离效果。
实验七血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳
实验七血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳实验七血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳一、实验目的1、进一步掌握电泳的基本原理及凝胶电泳的原理。
2、熟悉琼脂糖凝胶电泳的特点和操作要点。
3、掌握正常人血浆脂蛋白的分类。
二、实验原理琼脂糖凝胶是由交替排列组成的直链多糖。
固体支持物的影响较少，故电泳速度快、区带整齐。
而且由于琼脂糖不含带电荷的基团，电渗影响很小，是一种良好的电泳材料，分离效果较好。
血清中脂类物质均与载脂蛋白结合成水溶性脂蛋白形式存在，各种脂蛋白所含载脂蛋白的种类及数量不同，相差很大。
因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电场中可使各种脂蛋白颗粒分开。
将血清脂蛋白用脂类染料苏丹黑（或油红）进行预染。
再将预染过的血清置于琼脂糖凝胶板上进行分离，分成三条区带，从负极到正极依次为（最浅）及α脂蛋白（比前此法应用于高脂蛋白血症的分型。
三、器材和试剂1、器材：电泳仪、电泳槽、离心机、水浴锅、染色盘、微量注射D-半乳糖和3,6电泳时，因为凝胶中含水量大β脂蛋白略深） L-半乳糖的残基通过氢键因而不同脂蛋白颗粒大小可以看到脂蛋白被98%-99%β脂蛋白脱水（），通电后，β脂蛋白（最深）、前，在原点处应无乳糜微粒。
器、滤纸、镊子剪刀、2cm*8cm玻璃片 2、试剂⑴巴比妥缓冲液（PH8.6）：称取巴比妥钠15.4g、巴比妥2.76g及 EDTA0.29g,加水溶解后，再加蒸馏水定容至1000ml（PH为8.6，离子强度0.075），作为电极缓冲液。
⑵苏丹黑染色液：将苏丹黑⑶凝胶缓冲液：称取三羟甲基甲烷（Nacl5.85g,用蒸馏水溶解后，稀释至⑷琼脂糖凝胶：称取琼脂糖50ml，在水浴中加热至沸，待琼脂糖完全溶解后，立即停止加热。
⑸新鲜血清（无溶血现象）四、操作步骤1、预染血清血清合后置于37℃水浴染色2、制备琼脂糖凝胶板波炉）中加热融化，用上，静置约半小时后凝固3、点加预染血清打孔器（在小玻璃片的两面固定两片小胶片）出，然后用胶片剥出长方小条凝胶。
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weixin"]}};with(document)0[(getElementsBy
TagName('head')[0]||body).appendChild(cre
ateElement('script清血清 0.2mL 中加苏丹黑染色液 0.2mL，混合置 37℃水浴中染色 30 分钟，离心约 5 分钟。以除去悬浮于血清中染料沉渣。
2、制备琼脂糖凝胶板将已配制好的 0.5%琼 脂糖凝胶于沸水浴中加热融化，用吸管吸取凝胶 溶液浇注在载玻片上，约 3mL。静置半小时后凝 固。
3、点样将剪好的滤纸条对折，以折边在距 凝胶一端 2cm 处切一点样口。将毛细管插入预染 好的血清中，待吸入部分血清后，取毛细管使其
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【注意事项】
1、电泳样品应为新鲜的空腹血清。
2、加热溶化琼脂时，须防止水份蒸发过多。 琼脂糖凝胶最好随用随制，以免凝胶表面干燥， 影响分离效果。
3、制作凝胶板时琼脂糖浓度一般选用 0.5% 左右为宜，高于 1%以上α－脂蛋白部分较 紧密，β和前β－脂蛋白部分不够清 晰；低于 4.5%则凝固性较差，图谱不清。
级，这次她有了冠冕堂皇的理由，所以木子便没有那么害羞了。书很容易借到了
有样品的一端靠于点样口端部，停靠 3 秒左右。
4、电泳将凝胶板平放入电泳槽中，使加样 端接在阴极一侧，用四层滤纸或纱布做成引桥， 敷于胶板的两端，各搭住凝胶板约 1cm 左右，引 桥的另一端浸于电泳槽内的巴比妥缓冲液中。接 通电源，首先调节电流为 3-4mA/凝胶板，电泳 10－15 分钟；然后调节电流为 6-7mA/凝胶板， 电泳 30－40 分钟，即可观察到分离的区带。
示不出来。
琼脂糖主要通过氢键而形成凝胶。电泳时因 凝胶含水量大，近似自由电泳，因为固体支持物 的影响少，故电泳速度快，区带整齐。而且由于 琼脂糖不含带电荷的基团，电渗影响很少，是一 种较好的电泳材料，分离效果较好。
血清中脂类物质与血清载脂蛋白结合成水 溶性的脂蛋白形式存在。各种脂蛋白中所含载脂 蛋白的种类及数量不同，各种脂蛋白颗粒大小也 相差很大，因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电 场中可使各种脂蛋白颗粒分离开来。
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级，这次她有了冠冕堂皇的理由，所以木子便没有那么害羞了。书很容易借到了
5、如果需要保留电泳图谱，可将电泳后的 凝胶板放入清水中浸泡脱盐 2 小时，然后放烘箱
中烘干即可。
【试剂】
1、苏丹黑染色液将苏丹黑 B 加到无水乙醇 中至饱和，摇荡使乙酰化。用前过滤。
2、巴比妥缓冲液称取巴比妥钠 15.4g、巴比 妥 2.76g 及 EDTA0.29g，加水溶解后再加蒸馏水 至 1000mL，为电极缓冲液。
关键词：琼脂电泳血清 血清蛋白 serumprotein 琼 脂 糖 凝 胶 电 泳 agarosegelelectrophoresis【原理】
琼脂糖是经过挑选，以质地较纯的琼脂作为 原料而制成的。琼脂在化学上是由琼脂糖和琼脂 胶组成的复合物。琼脂胶是一含有硫酸根和羟基 的多糖，它具有离子交换性质，这种性质会给电 泳及凝胶过滤以不良的影响。琼脂糖是直链多 糖，它由 D－半乳糖和 3,6－脱水－L－半乳糖的 残基交替排列组成。
级，这次她有了冠冕堂皇的理由，所以木子便没有那么害羞了。书很容易借到了
琼脂糖凝胶电泳分离血清蛋白方法简单。将 血清脂蛋白用脂类染料苏丹黑进行预染。再将预 染过的血清加样于琼脂糖凝胶板加样槽中，通电 后可以看到脂蛋白向正极移动，并分离出几个区 带。
正常人血清脂蛋白可出现三条区带，从阴极 到阳极依次为β－脂蛋白，前β－脂蛋 白及α－脂蛋白，在原点处应无乳糜微粒。 有时前β－脂蛋白也显示不出来。
乳
糜
微
粒
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4、点样口要大小适宜，边缘整齐、光滑， 否则会影响电泳图谱。
5、在α－脂蛋白前若出现较浅区带， 可列为前α－脂蛋白。
【正常参考范围】
α－脂蛋白 20~30% β－脂蛋白 20~30% 前β－脂蛋白 0~28%
级，这次她有了冠冕堂皇的理由，所以木子便没有那么害羞了。书很容易借到了
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琼脂糖凝胶电泳分离血清蛋白方法简单。将 血清脂蛋白用脂类染料苏丹黑进行预染。再将预 染过的血清加样于琼脂糖凝胶板加样槽中，通电 后可以看到脂蛋白向正极移动，并分离出几个区 带。
正常人血清脂蛋白可出现三条区带，从阴极 到阳极依次为β－脂蛋白，前β－脂蛋 白及α－脂蛋白，在原点处应无乳糜微粒。 有时前β－脂蛋白也显
琼脂糖主要通过氢键而形成凝胶。电泳时因 凝胶含水量大，近似自由电泳，因为固体支持物 的影响少，故电泳速度快，区带整齐。而且由于 琼脂糖不含带电荷的基团，电渗影响很少，是一 种较好的电泳材料，分离效果较好。
血清中脂类物质与血清载脂蛋白结合成水 溶性的脂蛋白形式存在。各种脂蛋白中所含载脂 蛋白的种类及数量不同，各种脂蛋白颗粒大小也 相差很大，因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电 场中可使各种脂蛋白颗粒分离开来。
3、凝胶缓冲液取三羟甲基氨基甲烷 1.212g、 EDTA0.29g 及 NaCl5.85g，用蒸馏水溶解后，稀
释至 1000mL，pH 为 8.6。
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4、琼脂糖凝胶称取琼脂糖 0.45g 溶于 50mL 凝胶缓冲液中，再加水 50mL。在水浴中加热至沸， 待琼脂糖完全溶解后，立即停止加热。