叶绿素荧光是光合作用研究的探针
藻类学-期末复习重点整理

褐藻【异丝体】为原始类型,基本特征是藻体由匍匐部和直立部组成,直立部为单列细胞的分枝体,匍匐部则为匍匐假根,以此固着于基质上。
【假膜体】较异丝体高级,基本特征是由许多的藻丝胶粘在一起,外形似膜状的一种结构。
【膜状体】为高级进化的种类,从外形上已有类似根、茎、叶或气囊等部分的分化,内部细胞向多方面分裂形成数层细胞的膜状体。
【褐藻的细胞壁】内层:主要是由纤维质组成,比较坚韧外层:由藻胶质组成,藻胶质含有几种不同的藻胶,其中存在最广泛的为褐藻糖胶(fucoidin),在海带属及岩藻属中含量较多。
【褐藻的色素】叶绿素a、叶绿素c、叶黄素、β-胡萝卜素及藻褐素(藻褐素由于能吸收绿光,所以大部分褐藻类适合于深水层生长)。
【贮藏物质】褐藻淀粉、甘露醇。
褐藻类贮藏的碳水化合物都是可溶性的,贮存在液泡、细胞质或者整个原生质体内。
【褐藻多酚】又成为褐藻单宁酸,能结合蛋白,具有很强的还原性,主要贮存于许多褐藻细胞质的藻泡中。
在空气中容易被氧化,形成黑色色素,藻褐素。
作用:1)防止自身被草食动物摄食2)吸收紫外辐射3)作为细胞壁的组分【单室孢子囊】为一个细胞组成,产生于孢子体上。
孢子囊母细胞含单核,向外突出逐渐膨大,细胞核经过多次分裂产生2、4、8、16、32、64或128个子核,核的第一次分裂为减数分裂,在核分裂停止后细胞质也分裂成与细胞核同数的原生质块,每块中有一细胞核,经过变态形成具有不等长侧生双鞭毛的游孢子,孢子囊成熟后,游孢子通过囊壁顶端小孔逸出,萌发成配子体。
【多室孢子囊】产生于孢子体上,孢子囊母细胞经过多次横纵分裂,产生隔壁,形成许多小室,成为有许多立方形细胞组成细长的多列细胞机构,每个细胞内经过变态产生1~2个游孢子。
当多室孢子囊成熟时,各细胞间的隔壁逐渐溶解消失变成一个圆锥形的囊体,游孢子通过囊顶或侧面的小孔逸出。
多室孢子囊母细胞形成游孢子过程中,不经过减数分裂,因此形成的游孢子,仍然萌发为二倍体的孢子体。
叶绿素荧光在光合作用研究中的应用

叶绿素荧光在光合作用研究中的应用光合作用是生命活动中最为基础的过程之一,是植物通过气体交换和能量变换,将太阳能转化为生物能的过程。
在这一过程中,叶绿素是一种起到至关重要作用的物质,其荧光也成为了研究光合作用的一个重要工具。
本文将介绍叶绿素荧光在光合作用研究中的应用及其相关机制。
一、叶绿素荧光的基本概念叶绿素是一种广泛存在于绿色植物、藻类和一些细菌中的色素,其主要功能是对光能的吸收与转移。
在光合作用中,叶绿素可以通过光化学反应将太阳能转化为固定化合物的能量。
然而,当叶绿素分子所吸收的光子能量超过其转化能力时,叶绿素分子就会处于“激发态”,并通过荧光辐射的形式重新释放出多余的能量。
这种释放出的能量就是叶绿素荧光。
二、叶绿素荧光的特点及其测定方法叶绿素荧光的波长范围一般在640-750nm之间,其中680-690nm范围内的荧光波长用于反映植物光合作用的实际效率。
当叶绿素处于“激发态”时,其荧光发射光谱会发生改变,这种改变与其所处环境的不同而异。
因此,通过测量叶绿素荧光能够得到很多光合作用的信息,例如叶绿素的含量、光合作用的活性以及光合速率等。
目前,常用的测定叶绿素荧光的方法主要包括激发-发射光谱法、快速叶绿素荧光波动法和冷光源法等。
其中,快速叶绿素荧光波动法被广泛应用在光合作用研究中。
这种方法利用一个高速、高灵敏度的质谱仪,对荧光强度进行实时监测,并可以精确地测定荧光波动的特征。
通过这种方法,可以高效地获取光合作用反应链中的信息,进而揭示光合作用的机理。
三、1.检测光合作用的活性叶绿素荧光可以用于测定光合作用的活性,因为其荧光发射强度与光合作用的活性有很大的关系。
典型的情况下,光合作用的活性取决于其吸收到的太阳光能和其转化为生物物质的能力。
通过测定叶绿素荧光,可以检测光合作用过程中植物体内能量的流动和最终耗散,从而揭示光合作用的实际效率和转化效率。
此外,利用叶绿素荧光还可以评估不同物种对光合作用适应性的差异,有助于农业植物育种和种植品种的筛选。
叶绿素荧光是光合作用研究的探针

非光化学猝灭
qp=(Fm’-Fs)/(Fm’-F0) 光化学猝灭系数
qN=(Fm’-F0’)/(Fm-F0) 非光化学猝灭系数
D=1-Fv’/Fm’
吸收光能通过热耗散消耗的部分
精选课件
21
1、基础荧光参数
●Fo:最小荧光产量,也称初始荧光产量或基础荧光产 量 。是对充分暗适应叶片(PSⅡ反应中心处于完全开放 状态)照以极弱的测量光后发出的荧光。此时光化学猝灭 系数qP=1,非光化学猝灭系数qNP=0。一般认为,这部 分荧光是在天线中的激发能尚未被反应中心捕获之前,由 天线叶绿素发射出的。
精选课件
25
3、反映PSII光化学效率的荧光参数
● Fv/Fm:是重要的荧光参数之一,名称很多,有:最大 原初光化学产量;PSII最大潜在量子产量;开放的PSII反 应中心量子效率等 ;我们习惯上称其为“PSII最大光化 学效率”。其值恒小于1。
Fv/Fm是暗适应下PSⅡ反应中心完全开放时的最大光化学 效率。反映PSⅡ反应中心最大光能转换效率。
程能量吸收、传递与转换的机理。但对于
植物生理生态学研究者而言,主要兴趣集
中在光合作用的能量利用效率、过剩光能
导致的光合作用光抑制、光破坏,以及
光破坏防御机制精等选课方件 面。
29
Fig.1 Responses of Fv/Fm to chilling treatment and subsequent
其中从O→P相为快速上升阶段(约1-2秒), 从P→S相为荧光慢速下降(猝灭)阶段(4- 5分钟)。
精选课件
15
低温荧光
在77K(-196度,液氮中)小,与温度有关的酶反 应和电子传递能力对荧光水平的影响被避免,因此只 有原初光化学反应被反映出来。
光合作用基本过程与 叶绿素荧光原理

短饱和脉冲光 PS II反应中心被暂时完全关闭
光化学淬灭全部被抑制
剩余的荧光淬灭即为非光化学淬灭
• E=P + D + F = 1 (能量守恒定律) • 打开饱和脉冲时:P=0, F=Fm, D=Dm, Dm=1-Fm • 假设在打开饱和脉冲的短暂时间内,D/F的比值保持 不变,则 D/F=Dm/Fm D=F • Dm/Fm=F • (1-Fm)/Fm 因此,PS II的量子产量P可根据下式计算: P=1-F-D =1-F-F • (1-Fm)/Fm =(Fm-F)/Fm =ΔF/Fm
叶绿素荧光参数
• Fv’/Fm’=(Fm’-Fo’)/Fm’ =1-Fo’/Fm’: PS II光化学 的有效量子产量 • 由于在光适应状态下非光化学过程得到活化,因此 Fv’/Fm’往往小于Fv/Fm • rETR =PAR·ΔF/Fm’·0.84·0.5 : 相对电子传递速率 • rETR随PAR的变化图即为光响应曲线
光合作用基本过程与 叶绿素荧光原理
韩 志 国
光系统与光合作用 基本过程
光合作用作为地球上最重要的化学反应,主 要在绿色植物叶肉细胞的叶绿体内进行
光合作用过程
光反应
暗反应
光合膜的结构与光反应
PS II
Cytb6/f
PS I
AO2固定过程—Calvin循环
CO2
叶绿素荧光参数
• qP=(Fm’-Fs)/Fv’=1-(Fs-Fo’)/(Fm’-Fo’) :光化学淬灭 • 即由光合作用引起的荧光淬灭,反映了光合活性的高低
• 非光化学淬灭
• qN=(Fv-Fv’)/Fv=1-(Fm’-Fo’)/(Fm-Fo) • NPQ=(Fm-Fm’)/Fm’=Fm/Fm’-1 ,不需测定Fo’,适合野外 调查 • qN或NPQ反映了植物耗散过剩光能为热的能力,反映了植 物的光保护能力
叶绿素荧光分析技术在植物生物学研究中的应用

=Fm’-Fs
Fs
Fs为照光条件下产生 的稳态叶绿素荧光, 因为照光下,部分反 应中心关闭,所以荧 光发射较高。
t
Fo
M -脉冲调制光 S- 饱和脉冲光
叶绿素荧光诱导动力学曲线
Fm’: 光适应下最大荧光(在作用光下用饱和脉冲光测定)。 Fo’: 光适应下最小荧光(在作用光下用脉冲调整光测定)。 Fs : 为照光条件下产生的稳态叶绿素荧光。
Handy PEA
PEA
常用荧光参数及其意义
Fo: 初始荧光,是PSⅡ反应中心处于完全开放状态时
(经过 充分暗适应以后)的初始荧光产量。
当反应中心失活或者遭到破坏时,Fo上 升。因此,可以用Fo变化来反映PSII反应 中心的失活状态
Fm :最大荧光,是PSⅡ反应中心完全关闭时
(强光照射后)的荧光产量。
用连线激发式荧光仪测定的荧光诱导曲线
Relative fluorescence intensity 1 .2 1 .0 .8 .6 .4 .2 0 .0 100 101 102
b' c'
O
K
J
c a ( a ')
I
P
b
103
104
105
106
107
T im e ( μ s )
连续激发式荧光仪有:Handy PEA, PEA,Pocket PEA, PEA Senior, M-PEA 等
.3
(C)
.2 0 50 100 150 200 250 NaCl (mmol/L)
.9 (A) .8 .7 qP .6 (C)
.7 .6 .5 ΦP39;/Fm' .6 .5 .4 .3 .2 27 30 33 36 39 42 45 48 27 30 33 36 39 42 45 48 Tem perature ( o C) (B) (D)
植物叶绿素荧光成像系统PlantExplorer v3

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精确获知叶绿素荧光、叶绿素、花青素和 R/G/B 图像每个
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像素的变化
可设置进行延时成像测量
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嵌入式电脑进行精确的成像、时间控制、光强控制和数据
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存储 英特尔双核处理器 8 GB 内存 128 GB SSD 固定硬盘,Windows 7 操作系统 1 TB Hybrid 混合硬盘用于数据存储
数据传输方式:Ethernet 叶绿素荧光激发光源:红色 LED,光强 0-3 000 µmol m-2 s-1 光化光源:红色 LED,光强 0-1 000 µmol m-2 s-1 多光谱和彩色图像光源:白色 LED 和近红外 LED 成像面积:20 x 15 cm 工作温度:+5~+40℃ 尺寸:50(W) x 61(D) x 100(H) cm 重量:55 kg 供电需求:110-240 V 交流电 功耗:测量叶绿素荧光时峰值 3 kW,待机时 200 W 成像参数:
参考文献
Björkman O, Demmig B (1987). Photon yield of 02 evolution and chlorophyll fluorescence characteristics at 77K among vascular plants of diverse origin. Planta, 170: 489-504.
叶绿素荧光分析在研究植物光抑制中的应用

叶绿素荧光技术在藻类光合作用中的应用

内的类囊体膜上。光合作用的第一步是利用光合 色素捕获光能 , 藻类 的光合色素多种多样 , 这有利
于 不 同的 藻类适 应 不 同 的生活 环境 。游 离 的 色素 分 子不具 有 捕获 光 能 的 功 能 , 有 与 蛋 白质 结 合 只
吸收 、 激发能传 递和光化学反应等光合作用 的原 初反应过程 , 而且与电子传递 、 子梯度的建立及 质
叶绿 素 荧 光 技 术 在 藻类 光 合 作 用 中 的应 用
陈莲 花 , 刘 雷
( 昌大学环境科 学与工程学院 , 南 江西 南 昌 30 3 ) 3 0 1
摘要 : 绍 了藻类光合 活性和叶绿素 荧光测 定的一些常用参数 , 介 综述 了叶绿素 荧光技 术分析 藻类光合 系统 P s Ⅱ 反应 中心 的光化 学情 况、 非光化 学情 况、 光保护和光损伤 以及在 其它领域 的应 用。
关键词 : 藻类 ; 光合作用 ; 叶绿素 荧光 ; 用 应
中图分类号 :731 X 0 . 文 献标识码 : A
App ia i n o he Ch o o hy lFl o e c nc n Ph t s n he i fAl a lc to ft l r p l u r s e e i o o y t sso g e
r s e o r ito uc d, n he h tc e ity, o — p o o h mit , h tp oe to n p o e o n e we e n r d e a d t p o o h m sr n n h tc e sr p oo r t ci n a d h — y
tihbtr fP ooytm t fag e a d t ea piain n smeo e ed ees mmaie . on ii y o h ts s o e Io la n h p l t si o t rf lsw r u c o h i r d z
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指标变化范围大,比Fv/Fm更易区别不同处理间的差别。 两个指标的意义基本相同。一般没有必要同时用Fv/Fm和 Fv/Fo来表示PSII最大光化学效率。
在非胁迫条件下,Fv/Fm的值很稳定, 据Bjorkman and Demmig对大量植物的测定, 其平均值为0.832+0.004,但在逆境条件下, Fv/Fm显著降低。正因为如此,所以Fv/Fm 的降低常作为发生光抑制或PSII遭受其他伤 害的指标。 在一些研究论文中,CO2同化的表观量子 效率的降低也常常作为光抑制的指标,但其 意义是不同的。
荧光猝灭-任何使荧光产额低于其最大值的过程。 光化学猝灭-由光化学反应引起的荧光产额的降低,它 依赖于氧化态QA的存在。
非光化学猝灭-由非光化学过程如热耗散过程引起的荧 光产额的降低。 非光化学猝灭涉及三个不同的机理:
qE -- 依赖类囊体膜内外的质子浓度差,暗豫驰的半 时间 T1/2小于1分钟; qT - - 依赖状态 1 向状态 2 的转换,增加向 PSI 的能量 分配;
●Fv’/Fm’:光适应下PSⅡ最大光化学效 率。它反映有热耗散存在时,开放的PSⅡ反 应中心的光化学效率。 ● φ PSⅡ=(Fm’-Fs)/Fm’ : PSⅡ实际 光化学效率。它反映在照光下PSⅡ反应中心 部分关闭的情况下的实际光化学效率。
● ETR (或Prate) = φ PSⅡ× PFDa ×0.5 : 表观光合电子传递速率(PFDa为实际吸收的 光量子,一般设定为入射PFD的0.84;0.5为 假设光能在两个光系统中各分配50%)
Fig.1 Responses of Fv/Fm to chilling treatment and subsequent recovery. Subsequent recovery was conducted under 25 C and 100 m mol m-2 s-1 PFD. ▲, chilling treatment under low irradiance; , chilling treatment in the dark. Each point represents the mean SD of 5 measurements on separate leaves.
●Fm’:光适应下最大荧光产量。是在光照条件下照 以饱和脉冲光后测得。 (此时存在非光化学猝灭,即 qNP>0;PSⅡ反应中心又全部关闭qP=0) ●Fo’:光适应下的最小荧光产量。在测定前照射弱 远红光 (7mmolm-2s-1 ; l>700nm) 测 得 。目的 是激活 PSI ,加速由 PSII 向 PSI 的电子传递,产生“基础荧 光猝灭”(qo) ●Fv:暗适应下最大可变荧光 (Fv=Fm-Fo) 。 ●Fv’: 光适应下最大可变荧光 (Fv’=Fm’-Fo’)。
调制荧光
用于测定荧光的光源被调制,也就是使用很高频率不 断开关的光源,而且检测器通过选择性放大仅仅检测这种 调制光激发的荧光,因此可以在背景光,特别是在田间很 强的太阳光存在的情况下测定相对的荧光产额。
荧光猝灭――使荧光产量从它的最大值(Fm)下降的各
种过程。分为两大类: 光化学猝灭(qP), 代表被开放的PSII反应中心捕获并 转化为化学能的那部分能量。 非光化学猝灭(qN), 代表各种非光化学去激过程所耗 散的能量。
叶绿素荧光动力学研究得到广泛应用的原因
1、包含着光合作用过程的丰富信息 ●光能的吸收与转换 ●能量的传递与分配 ●反应中心的状态 ●过剩光能及其耗散 ●光合作用光抑制与光破坏……等等
2、可以对光合器官进行“无损伤探查”,获得 “原位” 的(in situ)信息。 3、近年来测定仪器的性能和自动化程度越来越高,操 作步骤越也来越简便。
三、叶绿素荧光诱导动力学及其测量
叶绿素荧光诱导现象是 1931 年由德国 Kautsky 首先发 现的,所以又称Kautsky效应。叶绿素荧光诱导动力学是 指当暗适应的绿色植物材料转到光下时,其体内叶绿素 荧光强度会产生有规律的随时间的变化(图)。
有几个特征性的点,分别被命名为O、I、D、P、S、 M和T。 在照光的第一秒钟内,荧光水平从O上升到P, 这一段被 称为快相;在接下来的几分钟内,荧光从P下降到T,这 一段被称为慢相;快相与 PSII 的原初过程有关,慢相则 主要与类囊体膜上和间质中的一些反应过程有关。
调制式荧光仪测定原理
MR-经调制的弱测量光,2mmolm-2s-1,l=583nm(绿光);频率600Hz AR-作用光, 白光, 持续照射, ; SR-饱和脉冲光, 白光, 8500mmolm-2s-1, 照射0.5s FR-弱远红光,7-10mmolm-2s-1;l >700nm ; D-荧光检测器;A-信号放大器;SF-短波滤光片;LF-长波滤光片
经过暗适应后的叶片从黑暗中转入光下,叶片的荧光产 量随时间而发生的动态变化,称为 Kautsky 效应,荧光 的这种动态变化所描绘出的曲线即Kautsky 曲线。
●完整的 Kautsky 曲线可分为两部分,从开始照光到荧 光产量达到最大值时的荧光上升部分,所用时间很短, 只需0.5-2.0s,称为快速荧光动力学曲线;此后,荧光产 量降低,并逐渐达到一个稳恒值,时间大致需要8-10min, 称为慢速荧光动力学曲线。 ●荧光产量降低是荧光猝灭 (Quench) 的结果。所谓荧光 猝灭,是指叶绿素吸收光量子后的部分激发能通过光化 学途径或以热的方式散失,从而使荧光发射量减少的现 象。
Brewster(1834)在观察一束太阳光通过 月桂叶片的乙醇提取液时,在反射光方 向看到的是红色,而不是绿色。
1852 年, Stokes 认为这是一种光发射 现象,命名为荧光(fluorescence)。
二.叶绿素荧光的来源及其量子产量
光合机构吸收的光能有三个可能的去处: 1.光化学反应(光合作用、光呼吸、氮代谢) 2. 放热,又称非辐射能量耗散 3. 发射荧光 这三者之间存在此消彼长的竞争关系,所以可以通过 荧光的变化探测光合作用的变化。 通常色素分子是处于能量的最低状态-基态,吸收一 个光量子后,会引起原子结构内电子分布的重新排列。其 中一个低能的电子获得能量而成为激发态。
qI - - 与 光 合 作 用 的 光 抑 制 有 关 , 表 现 为 Fv/Fm 的下降。
叶绿素荧光分析方法示意图
荧光参数的意义
Fv/Fm
ΦPSII= (Fm’-Fs)/Fm’ Fv’/Fm’ P=ΦPSII ×PFD NPQ=Fm/Fm’-1
最大光化学效率
PSⅡ实际光化学效率 PSⅡ最大天线转化效率 光化学反应速度 非光化学猝灭
叶绿素荧光诱导动力学曲线
非调制式荧光仪:
可把荧光诱导动力学曲线划分为: O 点(原 点)→I(偏转)→D(小坑)→P(最高峰) → S (半稳态) → M (次峰) → T (终点)这 几相(phase)。 其中从 O→P 相为快速上升阶段(约 1 - 2 秒), 从P→S相为荧光慢速下降(猝灭)阶段(4- 5分钟)。
qp=(Fm’-Fs)/(Fm’-F0) 光化学猝灭系数
qN=(Fm’-F0’)/(Fm-F0) 非光化学猝灭系数 D=1-Fv’/Fm’ 吸收光能通过热耗散消耗的部分
1、基础荧光参数 ●Fo:最小荧光产量,也称初始荧光产量或基础荧光产 量 。是对充分暗适应叶片(PSⅡ反应中心处于完全开放
状态)照以极弱的测量光后发出的荧光。此时光化学猝灭
在理论上,荧光量子产量(Фf)的定义为:
Фf=F/Ia F-----发射荧光量子总数
Ia-----吸收光量子总数
Фf 的大小取决于各种去激途径的竞争。
若 Kf 、 Kh 、 Kt 、 Kq 和 Kp 分别代表荧光、热耗散、激 发能传递、荧光猝灭和光化学反应的去激速度常数,则 Chl a荧光量子产量(Фf)与各种K的关系如下:
●Fm:最大荧光产量(Maximal
fluorescence),
是PSⅡ反应中心完全关闭时的荧光产量。此时 光化学和非光化学荧光猝灭均为0 (qP=0, qNP=0)。 Fm可反映通过PSⅡ的电子传递最大潜力。通 常叶片经暗适应至少20min后照以饱和脉冲光 后测得。
●Fs:
稳态荧光产量。即在光照下,光-暗反 应达到动态平衡时的荧光产量。
Фf=Kf/Kf+Kh+Kt+Kq+Kp
在以上各种去激途径中,Фf受Kp的影响最大。
在弱光下,PSII原初电子受体QA处于完全氧化状态(即 PSII反应中心开放),这时: Kp>>Kf+Kh+Kq+Kt
则所吸收的光量子90%以上用于光化学反应,结果得最 小的Фf(约0.6%)
在饱和光下 , 当 QA 完全还原时 ( 即 PSII 反 应中心关闭),此时 Kp→0 ,其 Фf 最大(约 3 %,肉眼难以 观测到)。由此可见,植物体内荧光去激 途径仅占总去激途径的一小部分。在溶液 中,Фf 可达30%。
低温荧光
在77K(-196度,液氮中)小,与温度有关的酶反 应和电子传递能力对荧光水平的影响被避免,因此只 有原初光化学反应被反映出来。 77K荧光是测定 PSII光化学效率( Fv/Fm)的一个重 要工具,健康植物叶片的Fv/Fm值为0.832。 77K 荧光常用于研究两个光系统之间的能量分配。 PSI 在 735nm 处的荧光增加往往是 PSII 向 PSI 增加分配 的结果。
四. 荧光动力学技术在逆境生理研究中
的应用
叶绿素荧光动力学特性包含着丰富的信 息。在理论上,可以用来研究光合作用过 程能量吸收、传递与转换的机理。但对于 植物生理生态学研究者而言,主要兴趣集
中在光合作用的 能量利用效率 、 过剩光能
导致的光合作用 光抑制 、 光破坏 ,以及 光破坏防御机制等方面。
3、反映PSII光化学效率的荧光参数