药理学实验
药理学实验报告讨论
一、实验目的本次实验旨在探究不同药物剂量对小白鼠的影响，以戊巴比妥为例，探讨药物剂量与药理效应之间的关系。
二、实验原理药物剂量与药理效应之间存在一定的关系，即剂量效应关系。
在一定范围内，药物剂量增加，药理效应也随之增强。
然而，药物剂量达到一定程度后，药理效应不再随剂量增加而增强，甚至可能产生毒副作用。
因此，合理掌握药物剂量对于临床用药具有重要意义。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠18-22g，2只/组；2. 试剂：苦味酸、1mL注射器、生理盐水、戊巴比妥0.2%、0.4%、0.8%戊巴比妥钠溶液；3. 仪器：鼠称、电子天平、秒表、实验记录表。
四、实验方法1. 将小白鼠分为4组，每组2只，分别编号；2. 第1组：给予0.2%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g；3. 第2组：给予0.4%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g；4. 第3组：给予0.8%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g；5. 第4组：给予生理盐水0.1mL/10g作为对照组；6. 观察并记录各组小白鼠的翻正反射消失时间和恢复时间，以及活动情况；7. 对实验数据进行统计分析，得出结论。
五、实验结果1. 第1组：翻正反射消失时间约为5分钟，恢复时间约为10分钟；2. 第2组：翻正反射消失时间约为3分钟，恢复时间约为8分钟；3. 第3组：翻正反射消失时间约为1分钟，恢复时间约为5分钟；4. 第4组：翻正反射消失时间约为30分钟，恢复时间约为45分钟。
六、实验讨论1. 实验结果显示，随着戊巴比妥钠剂量的增加，小白鼠的翻正反射消失时间和恢复时间均呈缩短趋势，说明药物剂量与药理效应之间存在正相关关系。
这与药物剂量效应关系的原理相符。
2. 在实验过程中，我们发现0.8%戊巴比妥钠溶液组的小白鼠出现呼吸抑制现象，表明药物剂量过大可能产生毒副作用。
因此，在临床用药过程中，应根据患者的病情和体质，合理调整药物剂量，避免药物过量导致的毒副作用。
3. 本实验采用腹腔注射给药方式，与临床实际给药方式有所不同。
药理实验方法学
药理实验方法学药理学是研究药物在生物体内作用机理和药效学的科学。
药理实验方法学是药理学的基础，是药理学实验研究的方法和技术的总称。
药理实验方法学的研究对于揭示药物的作用机制、药效学、毒理学等具有重要意义。
下面将介绍一些常见的药理实验方法学。
首先，药理学实验的基本方法之一是体外实验方法。
体外实验是指在体外环境中进行的实验，常用的体外实验方法包括离体器官实验、细胞培养实验等。
离体器官实验是将动物的器官取出后放置在适当的培养液中进行实验，通过观察器官的生理功能变化来研究药物的作用机制。
细胞培养实验是将动物组织中的细胞进行离体培养，然后进行药物的作用研究。
体外实验方法可以减少动物的使用，同时也可以更好地控制实验条件，是药理学研究中常用的方法之一。
其次，药理学实验的另一种方法是体内实验方法。
体内实验是指在活体动物体内进行的实验，常用的体内实验方法包括动物实验、药物代谢实验等。
动物实验是将药物通过不同的给药途径给予实验动物，然后观察动物的生理、病理变化，从而研究药物的药效学和毒理学。
药物代谢实验是研究药物在体内的代谢过程，通过检测药物及其代谢产物在体内的浓度变化来研究药物的代谢途径和代谢动力学。
体内实验方法可以更好地模拟药物在生物体内的作用过程，是药理学研究中不可或缺的方法。
此外，药理学实验还可以采用计算机辅助实验方法。
随着计算机技术的发展，计算机辅助实验方法在药理学研究中得到了广泛应用。
计算机辅助实验方法包括药物分子模拟、药效动力学模拟等。
药物分子模拟是利用计算机对药物分子进行模拟，从而研究药物与受体的结合方式和作用机制。
药效动力学模拟是通过建立药物在体内的动力学模型，模拟药物在体内的代谢和排泄过程。
计算机辅助实验方法可以更好地理解药物的作用机制和药效学特性，为药物研发提供重要的参考。
总之，药理实验方法学是药理学研究的基础，不同的实验方法可以相互补充，共同揭示药物的作用机制和药效学特性。
随着科学技术的不断发展，药理实验方法学也在不断创新和完善，为药物研发和临床应用提供了有力支持。
药学本科药理学实验报告
实验名称：传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响实验目的：1. 观察传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响。
2. 掌握实验操作技能，加深对传出神经系统药物作用机制的理解。
实验材料：1. 家兔1只，体重2-3kg。
2. 生理盐水100ml。
3. 0.1%肾上腺素0.5ml。
4. 0.01%心得安0.5ml。
5. 0.01%酚妥拉明0.5ml。
6. 0.01%硝普钠0.5ml。
7. 心电图机1台。
8. 动物手术器械一套。
实验方法：1. 将家兔固定于手术台上，打开胸腔，暴露心脏。
2. 将心电图机连接到家兔心脏，记录基础心率。
3. 向家兔心脏注射生理盐水0.5ml，观察并记录心率变化。
4. 向家兔心脏注射0.1%肾上腺素0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
5. 向家兔心脏注射0.01%心得安0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
6. 向家兔心脏注射0.01%酚妥拉明0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
7. 向家兔心脏注射0.01%硝普钠0.5ml，观察并记录心率、血压和心电图变化。
实验结果：1. 注射生理盐水后，家兔心率无明显变化。
2. 注射肾上腺素后，家兔心率明显加快，血压升高，心电图出现室性早搏。
3. 注射心得安后，家兔心率明显减慢，血压降低，心电图出现房性早搏。
4. 注射酚妥拉明后，家兔心率无明显变化，血压降低。
5. 注射硝普钠后，家兔心率明显减慢，血压降低，心电图出现室性早搏。
实验分析：1. 肾上腺素是一种α、β受体激动剂，可以兴奋心脏和血管，使心率加快、血压升高。
2. 心得安是一种β受体阻断剂，可以抑制心脏和血管，使心率减慢、血压降低。
3. 酚妥拉明是一种α受体阻断剂，可以降低血压，但对心率影响不明显。
4. 硝普钠是一种血管扩张剂，可以降低血压，但对心率影响不明显。
实验结论：通过本次实验，我们观察到传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响。
肾上腺素可以兴奋心脏和血管，心得安可以抑制心脏和血管，酚妥拉明和硝普钠可以降低血压。
药理学常见实验操作方法
药理学常见实验操作方法药理学是研究药物在生物体内的活性、代谢、毒性和药物与生物体之间的相互作用等问题的学科。
药理学实验是药理学研究的重要手段，通过实验可以研究药物的药效、药代动力学、药物的药理作用和机制等方面的问题。
下面将介绍一些药理学常见的实验操作方法。
1. 细胞培养实验：细胞培养实验是研究药物对细胞的作用的一种常见的药理学实验方法。
首先需要选择合适的细胞系进行培养，如癌细胞、原代细胞等。
接下来，将药物加入到细胞培养基中，观察药物对细胞的影响，如细胞的增殖、凋亡、分化等。
可以使用细胞形态学方法、免疫组化、蛋白质分析等技术手段来评估药物对细胞的影响。
2. 动物实验：动物实验是研究药物在整个生物体内的药效和毒性的重要手段。
常见的动物实验包括药物的急性毒性实验、慢性毒性实验、药物代谢动力学实验、药效学实验等。
首先需要选择合适的动物模型，如小鼠、大鼠、猴子等。
然后，将药物给予动物进行观察和检测，如观察动物的行为、记录动物的生理指标、取动物组织样本进行药物浓度测定等。
3. 体外药物解剖学实验：体外解剖学实验是研究药物在体内分布、转化和代谢的重要手段。
常见的体外实验包括药物的分配实验、药物代谢实验、药物排泄实验等。
该实验通过收集和分析体内样本（如血液、尿液、组织）中的药物浓度以及代谢产物的浓度来评估药物在体内的代谢和排泄情况。
使用的方法包括液相色谱质谱联用技术、高效液相色谱技术、放射性同位素标记技术等。
4. 离体器官实验：离体器官实验是研究药物在特定器官上的药理作用的一种常见实验方法。
常见的离体器官实验包括离体心脏实验、离体肠段实验、离体骨骼肌实验等。
该实验将动物的某个器官取出，放置在体外培养液中，然后加入药物进行实验。
通过记录器官的生理活动的变化来评估药物对该器官的作用。
以上是药理学常见的一些实验操作方法，这些实验方法可以帮助研究人员深入了解药物的药理学特性和作用机制。
当然，在进行这些实验时，也需要遵守实验操作规范，保护实验动物的权益，确保实验结果的准确性和可靠性。
《药理学实验》课件
实验结果
分析药物对炎症反应的抑制作用，探 究药物作用机制，为临床用药提供依 据。
04
药理学实验的最新进展
高通量药物筛选技术
高通量药物筛选技术是一种高效、自动化的药物筛选方法，通过同时测试大量化合 物来发现具有潜在治疗作用的候选药物。
该技术利用高灵敏度检测系统和自动化设备，在短时间内对大量化合物进行筛选， 大大提高了药物发现的效率。
实验结果
分析药物对中枢神经系统的抑 制作用，探究药物作用机制，
为临床用药提供依据。
利尿药的实验研究
总结词
通过观察利尿药对动物排尿量和电解质 平衡的影响，评估药物的利尿效果和安
全性。
实验方法
给动物不同剂量的药物，收集尿液并 检测尿量、尿电解质等指标，评估利
尿效果。
实验动物
常用大鼠作为实验对象，观察药物对 动物排尿量、尿电解质成分及肾功能 的影响。
实验操作的安全规范
01
实验前的安全评估
对实验过程进行安全评估，识别 潜在的安全风险和隐患，并采取 相应的预防措施。
02
03
个人防护措施
危险品管理
实验人员应穿戴适当的防护服、 护目镜、手套等个人防护用品， 以降低意外伤害的风险。
对危险品进行严格管理，确保储 存、使用和处理过程的安全可控 。
实验废弃物的处理与环保要求
给பைடு நூலகம்方法
根据实验要求和药品性质，选择适当的给药途径和方法，如灌胃、注射、口服等 ，确保药物能够有效地进入动物体内。
实验数据的记录与处理
数据记录
在实验过程中，及时、准确记录各项实验数据，包括动物体 重、给药剂量、反应情况等，确保数据的完整性和准确性。
数据处理
对实验数据进行整理、统计和分析，运用适当的统计学方法 ，得出科学、可靠的结论，为进一步的药理学研究提供依据 。
药理学实验报告范文(共6篇)
篇一：药理学实验报告 1实验三 1、地西泮抗惊厥作用【目的】观察地西泮的抗惊厥作用。
【原理】尼可刹米可吸收入血，以至出现兴奋、抽搐、惊厥。
地西泮作用于边缘系统，加强了gaba能神经元的抑制作用，可有效地对抗中毒性惊厥。
【动物】家兔1只，体重2kg~3kg。
【药品】0.5%地西泮溶液、25%尼可刹米。
【器材】兔固定箱、台式磅秤、注射器（5ml）、针头（6号）。
【方法】取家兔1只，秤重并观察正常活动情况，然后静脉注射25%尼可刹米（0.5ml/kg 给药）。
观察动物的活动姿势、肌张力及呼吸等变化。
当家兔出现明显惊厥后，由耳静脉缓慢推注0.5%地西泮（按0.5ml/kg~1ml/kg给药），直到肌肉松弛为止。
【结果】将实验结果填入下表。
表地西泮对兔惊厥作用的影响给药前家兔反应正常尼可刹米给药后惊厥、肌肉强直肌肉松弛、镇静、催眠注射地西泮【讨论题】地西泮抗惊厥作用、作用机制及用途有哪些？【注意事项】家兔出现强直性惊厥后，应缓慢推注地西泮，过快可抑制呼吸。
2、用化学刺激法观察药物的镇痛作用【目的】观察药物的镇痛作用；学习化学刺激法筛选镇痛药或比较药物镇痛效果的方法。
【原理】腹膜的感觉神分布广泛，把醋酸等化学刺激物注入腹腔，使小鼠产生疼痛反应，表现为腹部双侧凹陷，躯体扭曲，后肢伸展，臀部高起，称扭体反应。
曲马多有镇痛作用，可明显抑制扭体反应。
【动物】小鼠2只，体重28g~32g。
【药品】0.2%盐酸曲马多溶液、0.6%醋酸溶液、生理盐水。
【器材】天平、注射器（1ml）、针头（5号）、秒表。
【方法】1、取小鼠2只，称重后观察正常活动后标号。
2、甲鼠腹腔注射盐酸曲马多溶液0.1ml/10g；乙鼠腹腔注射生理盐水0.1ml/10g。
3、给药30min后两鼠均腹腔注射醋酸0.2ml/只，观察记录注射醋酸后15min内两鼠出现扭体反应情况。
【结果】表药物对醋酸所致小鼠疼痛作用的影响鼠号药物用药前扭体反应次数甲乙醋酸---盐酸曲马多醋酸---生理盐水 4 19 用药后扭体反应次数 0 16【讨论题】结合实验结果说明曲马多的镇痛效果与临床用途。
药理学实验报告
药理学实验报告一、实验目的本次药理学实验的主要目的是研究药物药物名称对动物生理机能的影响，通过实验观察和数据分析，深入了解药物的作用机制、药效特点以及可能产生的不良反应，为临床合理用药提供科学依据。
二、实验材料1、实验动物选用健康的动物种类，体重在体重范围，雌雄各半。
实验前动物在实验室适应环境适应天数。
2、药品与试剂药物名称，规格为规格详情，由生产厂家生产。
实验中所需的其他试剂，如生理盐水、试剂名称等。
3、实验仪器电子天平、注射器、手术器械、生理记录仪等。
三、实验方法1、动物分组将实验动物随机分为分组数量组，每组每组动物数量只。
分别标记为实验组和对照组。
2、给药途径与剂量实验组动物通过给药途径，如静脉注射、腹腔注射等给予药物剂量的药物名称；对照组动物给予等体积的生理盐水。
3、观察指标在给药后的不同时间点（如具体时间点 1、具体时间点 2等），观察并记录以下指标：（1）动物的一般行为表现，如活动情况、精神状态等。
（2）生理指标，包括体温、心率、血压等。
（3）生化指标，如血液中某些酶的活性、代谢产物的含量等。
4、实验操作步骤（1）动物称重后，用适当的麻醉剂进行麻醉。
（2）进行手术操作，如插管、安装传感器等，以监测生理指标。
（3）按照预定的方案进行给药，并密切观察动物的反应。
（4）在规定的时间点采集血液、组织等样本，进行相关指标的检测。
四、实验结果1、一般行为表现实验组动物在给药后具体时间出现了具体行为变化，如活动减少、嗜睡等，而对照组动物行为正常。
2、生理指标变化（1）体温：实验组动物体温在给药后时间开始下降，具体时间达到最低点，与对照组相比差异显著（P<005）。
（2）心率：实验组心率在给药后时间出现减慢，具体时间恢复到正常水平，与对照组相比有统计学差异（P<005）。
（3）血压：实验组血压在给药后时间出现短暂升高，随后逐渐下降，与对照组相比差异明显（P<005）。
3、生化指标结果（1）血液中酶名称的活性：实验组动物血液中该酶的活性在给药后时间显著降低（P<005），而对照组无明显变化。
药理学实验实验报告
实验名称：不同给药途径对戊巴比妥钠药效影响的研究一、实验目的1. 探究不同给药途径对戊巴比妥钠药效的影响。
2. 理解药物剂量与药效之间的关系。
3. 学习和掌握实验设计、操作和数据分析的方法。
二、实验原理药物剂量的大小决定血药浓度的高低，血药浓度又决定药理效应，因此药物剂量决定药理作用的强弱。
给药途径不同，吸收速度有差别，药物反应的潜伏期和程度亦有差别。
一般而言，腹腔给药大于皮下给药大于灌胃给药的药效。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠18-22g，2只/组。
2. 实验药物：戊巴比妥钠溶液（0.2%、0.4%、0.8%）。
3. 实验器材：苦味酸、1mL注射器、生理盐水、电子天平、计时器、实验记录表等。
四、实验方法1. 将小白鼠随机分为三组，每组2只，分别编号为A、B、C。
2. A组：腹腔注射0.2%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g。
3. B组：皮下注射0.4%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g。
4. C组：灌胃0.8%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g。
5. 给药后，分别观察记录各组小白鼠的睡眠时间、活动情况等。
6. 实验结束后，对各组小白鼠进行麻醉，观察并记录其呼吸、心率等生命体征。
五、实验结果与分析1. 实验结果A组：小白鼠睡眠时间为30分钟，活动减少，呼吸平稳，心率正常。
B组：小白鼠睡眠时间为25分钟，活动减少，呼吸平稳，心率正常。
C组：小白鼠睡眠时间为20分钟，活动减少，呼吸平稳，心率正常。
2. 实验分析本实验结果表明，随着戊巴比妥钠剂量的增加，小白鼠的睡眠时间逐渐缩短，活动逐渐减少，呼吸和心率保持平稳。
这说明药物剂量与药效之间存在一定的关系。
同时，实验结果也表明，腹腔注射、皮下注射和灌胃给药对戊巴比妥钠的药效有一定的影响，其中腹腔注射的药效最强，其次是皮下注射，灌胃给药的药效最弱。
六、实验结论1. 戊巴比妥钠的药效与剂量呈正相关，剂量越大，药效越强。
2. 不同给药途径对戊巴比妥钠的药效有一定的影响，其中腹腔注射的药效最强，其次是皮下注射，灌胃给药的药效最弱。
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实验一 药理学实验的基础知识
考核方法
一、实验操作考核占10％ 小鼠 1.抓持 2.灌胃 3.腹腔注射 4.皮下注射 家兔：抓持 剂量换算 二、自主探索性设计占总成绩的60％： 1. 实验准备考核及实验准备程度。占总成绩的10％ 2. 实验基本操作的正确程度以及认真程度。占总成绩的20％ 2. 平时实验报告的书写以及实验的成功率或者失败分析。占总成绩的30％ 三、综合设计性实验占30％： 1.实验设计前准备及PPT制作，占10% 2.实验实验报告，占10% 3.自主实验操作，占10%
药理学和毒理学、生 殖生理、口腔医学、 营养、代谢、行为学 和高级神经活动研究 及老年病、器官移植、 眼科、内分泌病和畸 胎学、肿瘤学研究
实验动物的分类
根据遗传特性分为近交系、杂交一代、封闭群、突
变品系等 按微生物控制标准又分为普通级（一级）、清洁级 （二级）、无特殊病原体级（三级）和无菌级（四 级）等
大鼠的给药方法
方法基本同小鼠。给药容量一般为： 灌胃——1~2ml/100g 皮下注射——0.5~1ml /100g 腹腔注射——0.5~1ml /100g 肌内注射——0.1~0.2ml/100g 尾静脉注射——0.2~0.5ml/100g
兔的给药方法
灌胃法：将兔置于固定箱内，用开口器插入兔口，使兔
耳缘静脉注射：将家兔置于固
定箱内，沿耳后缘拔去兔毛， 用干棉球擦兔耳或用手指轻弹， 使耳缘静脉扩张。 以手捏在耳 根部压住静脉，使其充血，然 后进针，见回血后注入药液。 推注时如有阻力，局部肿胀变 白，表明针头不在血管内，须 重新穿刺。注射量一般为 0.2~2ml／kg
5. 实验动物给药量的计算
实验二
溶液PH值 对某些药物吸收速率的影响
【目的】通过对不同PH值的阿托品溶液滴眼后 作用快慢的比较，了解溶液的PH值对弱碱 （或弱酸）性药物穿透生物膜速率的的影响 【动物】家兔1只 【药品】
1% 硫酸阿托品（PH＝9） 1% 硫酸阿托品 （PH＝5）
【器材】兔固定箱，滴管，测瞳尺，手电筒
二、实验结果的整理和报告撰写
[实验目的] 简要
[实验材料] 包括仪器、药品和动物
[实验方法] 写清楚关键环节或简要步骤 [实验结果] 将实验获得的数据进行整理、归纳、分析
和对比，尽量总结出图表或曲线，进行正确的统计学 处理 [结论] 是从实验结果归纳出来的概括性判断 [讨论]包括对实验结果的分析、实验中出现异常现象 的分析、认识、肌的M 受体， 使扩约肌松弛，导致瞳孔散大
M-胆碱受体激动剂
瞳孔括约肌收缩， 引起缩瞳
阿托品是一个生物碱（弱碱性）
B＋H+ BH+
根据Handerson-Hasselbalch公式
BH+ B
10 PKa
PH
方法
1. 取兔1只，置兔固定箱内，给药前于适度
的光照下，用测瞳尺测量两眼瞳孔的大小 （以mm表示）。另用手电筒光照试验对光 反射，即用闪射光照射兔眼，如瞳孔随光照 而缩小，即为对光反射阳性，否则为阴性
4. 实验动物的捉持与常用给药方法
小鼠的捉持
双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或粗糙面
上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗 糙面上。迅速用左手拇指和食指捏其双耳间 颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部 皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持
单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和
拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾， 然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤
三、基本操作技术训练
常用实验动物
实验动物是药理学研究最重要的和不可替代
的实验材料 动物实验是研究药理学规律的的基本手段 常用实验动物如小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、 犬、猴等，分别用于不同目的
小鼠（Mouse )
用量最大、用途最广、品
种最多的实验动物，繁殖 力强，被广泛的用于药理 学、毒理学的科研、生产 和教学，如药物筛选、毒 性试验、药物效价检定， 避孕药、营养试验、多种 疾病模型、免疫学、肿瘤、 遗传性疾病等研究
一级：要求不带有动物烈性传染病和人畜共患病原体 二级：除不带有普通动物应排除的病原体外，还不应携 带对动物危害大和对科学实验干扰大的病原体 三级：不带有普通动物、清洁动物应排除的病原体外， 还应排除有潜在感染或条件性致病的病原体，以及对实 验干扰大的病原 四级：采用当前的技术手段无法在动物体表、体内检出 一切其他生物体
皮下注射（sc）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮
肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易 摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给 药量为0.05~0.2ml/10g体重
腹腔注射（ip）：左手固
定动物，右手持注射器， 从下腹部外侧，呈45角 刺入腹腔，进针约 3~5mm，一般给药量为 0.1~0.3ml/10g体重
大鼠的捉持
捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴
上防护手套，并应动作轻柔 用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉 鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠 的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插 入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后 背皮肤即可
兔的捉持
用一手抓住家兔的项部皮肤，将兔提起，另
遗传药理学和 毒理学、肿瘤、 免疫学实验研 究和教学
猫（Cat）
神经系统和循环
系统较发达，可 以耐受麻醉与脑 的部分破坏手术， 保持正常血压， 常用于神经、循 环和呼吸方面的 实验
犬（Dog）
常用于基础医学、
药理、毒理学、实 验外科学、行为学、 肿瘤学等方面研究
猴（Monkey）
主要用于传染病学、
药前后瞳孔变化，要在同一光强条件下比较 2．滴药液时，将兔下眼睑拉开，使其成杯状，并 在结膜囊内保留30秒，再将手放开 3．测瞳时不能刺激角膜，测量角度须前后一致， 否则将影响结果的精准度 4．观察对光反射只能用闪射灯光 5.两药液的作用差异在滴药后2～5min最明显
药理实验的基本操作技术
1. 实验动物的编号
2. 实验动物性别的辨别 3. 实验动物的处死法 4. 实验动物的捉持与常用给药方法 5. 实验动物给药量的计算
1. 动物的编号
可用3~5％苦味酸溶
液（黄色）涂于大鼠、 小鼠和兔皮毛不同部 位以标号
4 1 2 3 5 7 8 9
6
2. 动物性别的辨别
一手托其臀部，使兔呈坐式姿势。
常用的给药方法
小鼠的给药方法
灌胃（ig）：将小鼠固定后，
使颈部拉直，右手持装有灌 胃针头的注射器，自口角插 入口腔，压其头部，使口腔 与食道成一直线，沿上腭壁 向鼠口腔的后下方轻轻插入 食道。如遇阻力，可将针头 抽出再插，以免刺破食管或 误入气管。一般给药量为 0.1~0.3ml/10g体重
实验记录
实验记录是将实验内容如实地记录下来，长期保存
1.
2.
3. 4. 5.
备用。其基本原则是真实、及时、准确、完整，实 验过程中应认真做好实验记录。内容一般应包括： 时间、温度； 实验标本：动物的种类、体重、标记和标号及如何 分组等。 实验药物：药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量 及给药途径。 实验进程、步骤和方法的详细记录。 观测指标的变化和原始的描记图纸。
大鼠（Rat）
广泛用于药物的
毒理试验、消化 系统、心血管及 老年病药物、抗 炎药物研究，以 及免疫学、内分 泌学、神经生理、 营养和代谢、传 染病、肿瘤等方 面的研究
豚鼠（Guinea pig）
对某些药物、
毒物非常敏感， 用于过敏性和 变态反应、微 生物感染试验。
兔（Rabbit）
广泛用于生殖、
实验室规范
书包存放规范；
操作完成后，打扫台面、器械及规范归还相关
实验器械； 动物尸体和活体规范归还； 值日生卫生包括：地面打扫、凳子摆放整齐、 动物尸体存放、门窗关闭、仪器设备关闭、垃 圾清理； 乱用U盘。 注射器使用规范。
一、药理学实验课程目的和要求
掌握药理学实验的基本方法和基本操作技能
小鼠（左为雄性，右为雌性）
3. 实验动物的处死法
颈椎脱臼法——常用于小鼠。用左手拇指、食指
或镊子用力压住小鼠的后头部，同时用右手抓住 鼠尾用力向后上方牵拉，使之颈椎脱臼死亡。 空气栓塞法——常用于兔。用注射器将空气快速 注入静脉使动物死亡。 击打法——可用于兔、大鼠和小鼠等。提起动物 的尾部，用力敲击动物头部，或用用木锤打击头 部，使动物死亡。 断头法——用于小鼠和大鼠。用剪刀将动物头部 剪断，由于脊髓离断且大量失血，使动物死亡。
2. 剪去兔眼的睫毛，在其左右眼结膜囊内分别 滴药，观察两眼瞳孔变化，用直尺测量直径并 测对光反射，直至两眼瞳孔不在扩大，对光反 射消失，结果记入下表
药液 P H 左眼 右眼
瞳孔直径（mm） 给药前 1min 2min 3min 4min 5min
对 光 反 射
9.0 5.0
注意事项
1．动物瞳孔大小可因光强不同而变化，故比较给
实验具体扣分项目
无故旷课（-5分） 上课迟到±2min（-2分） 实验不认真（玩手机、利用电脑娱乐等）（ -1分） 白大褂不穿（ -1分） 数据造假（ -5分） 实验准备不充分，考试成绩<60 （ -3分） 值日生卫生打扫规范（ -5分） 违反实验室规范（ -1分）
实验动物的选择
同一品系的实验动物，对同一刺激物反应存
在着个体差异。年龄、体重、性别、生理状 态和健康情况不同，往往导致对同一刺激的 不同结果 敏感性：幼年>老年>成年 如氯丙嗪对10～28周龄小鼠引起血糖升高， 对老年小鼠引起血糖降低 又如麦角新碱对5～6周龄的雄性大鼠有镇痛 效果，对该龄的雌性大鼠无镇痛效果
舌伸直并固定之。另一人将胃管（可用导尿管代替）从 开口器中央孔插入口内，再慢慢插入食管和胃，深15～ 18cm。插管时感觉顺利，动物不挣扎也无呼吸困难出 现，表示导尿管在胃内。将导尿管外端插入水中，如有 气泡吹出，表示已误入气管内，应拔出重插。如未见气 泡出现即证实在胃内。然后将药液注入。灌药量一般为 10ml/kg体重