干细胞冻存及复苏步骤
细胞冻存与复苏的基本原则
细胞冻存与复苏的基本原则1. 引言细胞冻存与复苏是一种重要的生物技术，它可以将活体细胞保存在极低温度下，并在需要时重新激活这些细胞。
这项技术在医学、科学研究和生物工程等领域具有广泛的应用前景。
本文将介绍细胞冻存与复苏的基本原则，包括冷冻过程、保护剂的选择、解冻过程以及相关实验技术。
2. 冷冻过程细胞冷冻是将活体细胞从正常生长温度（通常为37摄氏度）迅速降温到极低温度（通常为-196摄氏度）的过程。
这个过程需要严格控制，以避免对细胞造成伤害。
2.1 温度控制在开始冷冻之前，必须确保液氮罐内的温度稳定在-196摄氏度。
为了达到这个目标，可以使用液氮罐内置的温度计进行监测，并通过添加适量的液氮来保持温度稳定。
2.2 冷冻容器的选择为了保护细胞免受冷冻过程中的机械损伤，需要选择合适的冷冻容器。
常见的冷冻容器有液氮罐、干燥冰和低温保存管等。
其中，低温保存管是最常用的容器，因为它可以提供良好的细胞保护效果，并且方便存储和操作。
2.3 冷却速率控制快速降温是细胞冷冻过程中至关重要的一步。
过快或过慢的降温速率都会对细胞造成损伤。
通常情况下，推荐使用缓慢降温法，即将细胞置于预先调整好的液氮罐中，并逐渐将其浸入液氮中。
3. 保护剂的选择在细胞冷冻过程中，添加适量的保护剂可以减少细胞受到的损伤，并提高其存活率。
常用的保护剂包括甘露醇、甘油和DMSO等。
3.1 甘露醇甘露醇是一种具有良好保护细胞功能的保护剂。
它可以通过降低细胞内外渗透压的差异，减少细胞脱水和冰晶形成，从而保护细胞免受冷冻损伤。
3.2 甘油甘油是另一种常用的保护剂，与甘露醇类似，它也可以减少细胞脱水和冰晶形成。
此外，甘油还具有良好的渗透性，可以迅速进入细胞内部，并提供额外的保护作用。
3.3 DMSO二甲基亚砜（DMSO）是一种强效的保护剂。
它可以通过改变细胞膜的流动性和稳定性来保护细胞，并防止冷冻过程中产生的机械损伤。
4. 解冻过程解冻是将经过冷冻保存的细胞重新恢复到正常生长状态的过程。
细胞传代、铺板 、冻存、复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项
细胞传代的步骤（贴壁细胞为例）
首先，镜下观察细胞密度，90%以上即可传代培养（为了细胞的稳定，距离上 一次传代至少间隔一天。）。
准备工作：无菌枪头、培养瓶、离心管、废液桶等所需物品，培养基、血清、 PBS、胰酶等试剂类，可根据情况，提前放入生物安全柜，进行紫外灭菌；
细胞传代的步骤（贴壁细胞为例）
培养液量 （ml）
0.1 0.2 0.5 1 2 2 5 10 5 15-30
100%细胞量（105） （约） 1 2.5 5 10 25 20 52 137 50 200
培养板需要加入的细胞量
细胞培养板中加入细胞的数量，需要考虑一下几点： 1. 常规实验的设计：转染siRNA（约30%-50%），转染质粒（约70%-
结合镜下观察，调整浓度。 ❖2. 计数细胞：参考前文中各种规格中100%满时细胞的大概数量，再根据实验的
要求，计算加入的细胞的数量。（使用计数板）
细胞计数板的使用
细胞计数板
0.1ul
干净的盖玻片
细胞计数板的使用
10-20 ul 细胞悬液 注意: 避免有气泡！
数上不数下，数左不数右
计算公式： n/4 x104 （个/ml）
4.其他：轻轻移动他人的细胞，轻轻关闭培养箱的门等
细胞冻存
准备工作：FBS，完全培养基，DMSO，或无血清冻存液，冻存管，冻存盒。 常规的细胞传代步骤，至细胞消化后离心完毕，根据细胞的量以及需要冻存的管
数配制冻存液； 冻存液： 10%DMSO+90%FBS/完全培养基（A），或者无血清冻存液（B）。 冻存程序： A ： 1. 使用冻存盒：可直接放入-80℃冰箱，第二天转移入液氮罐中。
把细胞转移到生物安全柜中，吸去培养基，加入无菌PBS（只要没过即 可），轻轻摇动清洗细胞，尽量弃尽PBS。
细胞冻存和细胞复苏的方法步骤以及细胞的运输
细胞冻存和细胞复苏的方法步骤以及细胞的运输细胞株(系)的使用，为医学研究和测试工作带来了极大的方便。
但细胞的传代是有限制的，长期连续传代的细胞，不仅消耗大量的人力和物力，而且细胞的生长与形态等会有一定退变或转化，因而细胞失去原有的遗传特性，有时还会由于细胞污染而造成传代中断，种子丢失。
因此，在实际工作中常需冻存一定数量的细胞，以备替换使用。
细胞冷冻与复苏是细胞培养室的常规工作和通用技术。
细胞的冻存一、概述目前，细胞冻存最常用的技术是液氮冷冻保存法，主要采用加适量保护剂的缓慢冷冻法冻存细胞。
细胞在不加任何保护剂的情况下直接冷冻，细胞内外的水分会很快形成冰晶，从而引起一系列不良反应。
如细胞脱水使局部电解质浓度增高，pH值改变，部分蛋白质由于上述原因而变性，引起细胞内部空间结构紊乱，溶酶体膜由此遭到损伤而释放出溶酶体酶，使细胞内结构成分造成破坏，线粒体肿胀，功能丢失，并造成能量代谢障碍。
胞膜上的类脂蛋白复合体也易破坏引起细胞膜通透性的改变，使细胞内容物丢失。
如果细胞内冰晶形成较多，随冷冻温度的降低，冰晶体积膨胀造成细胞核DNA空间构型发生不可逆的损伤，而致细胞死亡。
因此，细胞冷冻技术的关键是尽可能地减少细胞内水分，减少细胞内冰晶的形成。
采用甘油或二甲基亚砜作保护剂，这两种物质分子量小，溶解度大，易穿透细胞，可以使冰点下降，提高细胞膜对水的通透性，且对细胞无明显毒性。
慢速冷冻方法又可使细胞内的水分渗出细胞外，减少胞内形成冰结晶的机会，从而减少冰晶对细胞的损伤。
二、主要冷冻设备和材料常用的细胞冷冻贮存器为液氮贮存器，规格有35L3和50L3两种。
使用时要注意以下几点：（1）一般两周需充液氮一次，至少一个月充氮一次。
液氮温度达-19 6℃，使用时注意勿让液氮溅到皮肤上，以免引起冻伤。
（2）液氮容器为双层结构，中间为真空层，瓶口有双层焊接处，应防止焊接部裂开。
（3）在装入液氮时，要注意缓慢小心，并用厚纸卷筒或特制漏斗作引导，使液氮直达瓶底，如有专用液氮灌注装置则更好。
3.2 造血干细胞的采集,冻存,及回输
造血干细胞的采集原理、冻存及回输山东省立医院姜玉杰造血干细胞移植的原理造血干细胞移植（hematopoietic stem cell transplantation, HSCT)）是经过大剂量放、化疗或其他免疫抑制预处理，清除受体体内的肿瘤细胞、异常克隆细胞、阻断发病机制，然后把自体或异体造血干细胞通过静脉回输给受体，以替代原有的病理性造血干细胞，从而使患者正常的造血及免疫系统得以重建，从而达到治疗的目的的一种治疗手段。
HSCT的基本流程•Injection：供者注射动员剂（G-CSF）•Mobilization：干细胞动员•Collection：干细胞采集•Storage (Cryopreservation)：干细胞分装储存（冻存）•Conditioning：预处理•Transfusion：干细胞回输•Engraftment & recovery：植入和恢复HSCT基本流程造血干细胞的表面标志•CD34 造血细胞的一种重要标志，CD34+细胞占骨髓细胞的1%~4%•CD117 是干细胞生长因子受体，IgSF（免疫球蛋白超家族）成员，CD117+约细胞占骨髓细胞的1%~4%•50%~70%的CD117+骨髓细胞表达CD34供体造血干细胞采集标准•选择合适的方式,通过外周血或骨髓采集供体的造血干细胞。
•造血干细胞需要采集到一定的数量：•单个核细胞须达到4-6 ×108/;•CD34+细胞(造血干细胞)在HLA半相合时，应达到达到2 ～4 ×106/kg 和1 ×107/kg，全相合和自体造血干细胞移植患者可适当放宽标准；•如有HLA抗原理想的脐带血,也是儿童患者合适的干细胞来源。
血液成份分离基于它们不同的重力，在一定的离心力下分离细胞.PlasmaPacked red cells BuffycoatGranulocytes1.085*Monocytes1.065*Lymphocytes1.071*Platelets1.048**Average specific gravity of cell type shown*以上显示的为细胞的平均比重自体造血干细胞的采集•采集时机：•WBC>5 109/L BPC>50（30） 109/L CD34+细胞>1%•采集用血细胞分离机COBE Spectra Baxter CS 3000•采集细胞数（移植阈）•MNC >6~8 108/Kg•CD34+ >2 106/Kg•多发性骨髓瘤（二次移植）体外净化技术•物理学方法：微波加热（42-43℃）、光敏剂步化青（MC-540）•药物学方法：选择药物：血液学毒性小、易灭活、对肿瘤及正常造血干细胞杀伤存在较大差异。
细胞冻存与复苏的主要操作步骤
细胞冻存与复苏的主要操作步骤细胞冻存和复苏听起来像是高深的科学术语，其实说白了，就像把细胞装进冰箱里暂时“冷藏”，然后再拿出来“解冻”一样。
这样做的目的，是为了保存细胞的活性和功能，方便未来的研究或治疗。
那具体怎么操作呢？来，我给你一步步拆解这门科学。
1. 细胞冻存1.1 准备工作首先，你得确保你手头有一切所需的材料。
想象一下，你要出门旅行，得先把行李打包好对吧？冻存细胞也是一样，你需要准备冻存管、冻存液（通常是含有二甲基亚砜（DMSO）的冻存液）、冷冻设备等。
1.2 细胞收集接下来就是收集细胞了。
像是在收集宝贵的珍珠一样，你要小心翼翼地操作。
取出细胞时，要确保培养基是温暖的，细胞在里面像小鱼在水中一样舒适。
把细胞离心后，用吸管轻轻地取出细胞沉淀物，别弄成一团糟。
此时，你的细胞就像小小的珍宝，正准备“打包”进冻存管。
1.3 冻存液准备冻存液的准备很重要。
通常，冻存液里含有二甲基亚砜（DMSO），它能帮助保护细胞免受冷冻过程中冰晶形成的伤害。
用时，一般是按照比例混合好，倒入已经准备好的细胞悬液中，搅拌均匀。
这就像是给你的细胞穿上一件防寒大衣，确保它们在寒冷的“冰箱”里不会感冒。
1.4 冻存过程好了，液体准备好了，接下来就要将细胞放入冻存管中，然后开始冷冻过程了。
细胞冻存管要放进预冷的冰箱里，逐渐降温。
这时候，温度得降得非常缓慢，不能急功近利。
通常，我们会在80°C的冰箱里慢慢降温，直到彻底冻住。
记住，冷冻过程就像等待一锅慢炖汤，急不得。
2. 细胞复苏2.1 取出冻存管当你需要使用冻存的细胞时，首先要把冻存管从冷冻设备里拿出来。
这个步骤就像你从冰箱里拿出刚冷藏好的冰淇淋。
速度要快，不然细胞受热时间过长，可能会损失活性。
拿出来后，立刻放入37°C的水浴中，快速解冻。
2.2 解冻解冻的时候，就像把冰淇淋从冰箱里拿出来放在桌上，过一会儿就开始变得柔软。
细胞的冻存管要在水浴中不断摇晃，确保液体均匀加热。
细胞传代冻存复苏步骤
细胞传代冻存复苏步骤细胞的传代冻存技术是生物医学研究中的一个重要方式。
该技术可以将细胞批量保存并长期维持其活性，以便进行进一步的研究。
细胞传代冻存的过程可以简单地概括为以下几个步骤：从培养皿中收集细胞，处理和停滞细胞增殖，添加冻存保护剂，将细胞悬液冷冻存储，最后进行复苏。
下面我们就详细描述一下这个具体步骤：1. 收集细胞收集细胞需要注意细胞的龄期，通常在细胞的对数生长期收集更好。
另外要注意细胞的数量不能过少或过多。
2. 停滞细胞增殖为了将细胞传代，减少增值周期并停滞细胞增殖是必要的。
对于一些高度增殖性的细胞，可以通过干预细胞内基因表达、添加生长因子等方式来实现。
一般可以使用过量的培养基，并将细胞保存在低吸附的容器中来停滞细胞增殖。
这样可以防止细胞形成多层，而保证单层生长。
3. 添加冻存保护剂添加冻存保护剂是细胞传代冻存的关键步骤之一。
冻存保护剂可以有效地保护细胞免受冻结脱水、冰晶形成和低温应力等因素的损害。
最常用的冻存保护剂是一些有机溶剂，例如DMSO（二甲基亚砜）、甘油等。
这些保护剂可以在细胞冷冻存储的过程中降低溶液的结冰点，防止冰晶的形成。
4. 冷冻存储在添加了冻存保护剂后，可以将细胞悬液装入冷冻管中，使用缓慢冷冻和液氮快速冷冻两种方法将细胞冷冻存储；液氮快速冷冻的方式冷冻效率高，但是会对细胞产生更大的应激，可能会降低细胞的复苏率。
缓慢冷冻是比较安全的方式，可以使用-80度的冰箱进行冷冻，时间从数小时到数日不等。
5. 复苏细胞冻存后，想要复苏它们，需要将细胞迅速退回到正常培养条件下。
此时需要谨慎地处理，以免破坏细胞结构和细胞膜等。
复苏的过程需要按照以下步骤：- 缓慢加热：将冻存细胞悬液从液氮中取出，快速将冻存管放入37度的水浴中，缓慢加热，让细胞悬浮在解冻液中的DMSO等有机溶剂逐渐被稀释。
- 洗涤：用无血清的培养基或PBS等洗涤一遍细胞，约10分钟，以去除有机溶剂。
- 均匀吸附：将无血清培养基或PBS加入细胞悬液中，让细胞吸附于培养皿上，约30分钟。
细胞的复苏实验报告
一、实验目的1. 掌握细胞复苏的基本原理和操作步骤。
2. 学习如何将冻存的细胞恢复到适宜的生长状态。
3. 观察复苏细胞的形态变化，评估复苏效果。
二、实验原理细胞复苏是指将冻存的细胞从超低温状态恢复到正常生长状态的过程。
冻存细胞在超低温下，其代谢活动几乎停止，细胞膜和细胞器结构保持稳定。
复苏过程中，细胞需经历快速复温和缓慢复温两个阶段，以避免细胞结构和功能的损伤。
三、实验材料1. 冻存细胞（如人胚胎干细胞、小鼠成纤维细胞等）2. DMEM培养基（含10%胎牛血清）3. 灭菌的0.25%胰蛋白酶4. 灭菌的磷酸盐缓冲盐溶液（PBS）5. 灭菌的75%酒精6. 灭菌的移液器、吸管、培养皿、培养瓶等四、实验步骤1. 准备工作：将DMEM培养基预热至37℃，将胰蛋白酶、PBS、75%酒精等实验试剂准备齐全。
2. 复苏细胞：a. 将冻存管置于37℃水浴中预热5分钟。
b. 将冻存管取出，用无菌移液器吸取适量预热的DMEM培养基，加入冻存管中，轻摇使细胞与培养基混合。
c. 将冻存管置于37℃水浴中，待细胞完全融化后取出。
d. 将细胞悬液用无菌移液器转移至培养皿中，轻轻吹打使细胞分散。
3. 计数：取适量细胞悬液，用血细胞计数板进行细胞计数，计算细胞浓度。
4. 传代：a. 将细胞悬液用胰蛋白酶消化后，用PBS清洗，重新计数。
b. 根据细胞浓度，按1:2或1:10的比例传代至新的培养瓶中。
5. 培养：将传代后的细胞置于37℃、5%CO2的培养箱中培养，观察细胞生长情况。
五、实验结果1. 细胞复苏成功，细胞活力较高。
2. 细胞形态正常，呈典型的纺锤形。
3. 细胞生长旺盛，分裂速度较快。
六、实验分析1. 冻存细胞在复苏过程中，需注意以下几点：a. 快速复温：避免细胞在复苏过程中受冻害。
b. 轻轻吹打：避免细胞在吹打过程中受到损伤。
c. 适量传代：避免细胞过度拥挤，影响生长。
2. 冻存细胞的复苏效果与冻存时间、冻存方法等因素有关。
细胞复苏及培养实验方法
细胞复苏及培养实验方法
一、准备细胞复苏所需物品
1.离心管
2.细胞计数板
3.移液管
4.细胞培养瓶
5.细胞冻存管
6.液氮
7.37℃水浴
8.培养基
9.血清
10.抗生素
二、细胞复苏步骤
1.从液氮中取出细胞冻存管，迅速放入37℃水浴中快速复苏。
2.待细胞冻存管外表面融化后，打开管盖，用移液管吸出细胞悬液，放入离心管中。
3.将离心管中的细胞悬液以适当的转速和时间离心，去除上清液。
4.离心后，用含有一定比例血清和抗生素的培养基重悬细胞，制成细胞悬液。
5.将细胞悬液均匀分装到细胞培养瓶中，放入培养箱中进行培养。
三、细胞培养步骤
1.将细胞培养瓶放入培养箱中进行培养，保持适宜的温度和湿度。
2.根据需要更换培养基，保持细胞生长所需的营养和生长因子。
3.根据细胞的生长情况，适时进行传代培养，保持细胞的生长活力和数量。
4.在培养过程中进行必要的细胞鉴定和表型检测，确保细胞质量和实验结果
的可靠性。
5.记录细胞的生长情况、传代次数和鉴定结果等信息，建立完整的细胞系档案。
注意事项：
1.在操作过程中要保持无菌操作，避免污染。
2.根据不同的细胞类型和实验需求，选择适宜的培养基、血清和生长因子。
3.定期检查细胞的形态、生长情况和传代情况，及时发现异常并进行处理。
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干细胞冻存及复苏步骤
细胞冻存（缓存）
1、0.25％trypsin（或＋0.02％EDTA）消化5min左右，镜下见细胞回缩间隙增大，即可
吹打脱落。
1、800r离心5分钟，2次（无EDTA，离心一次即可）
2、配制冻存液：甘油:血清:完全培养基=1:2:7
3、50ml培养瓶的细胞（约5×105），用1ml冻存液重悬细胞，放入冻存管中。
4、冻存步骤：4℃1h——－20℃1h——-－80℃1h——- -196℃液氮冻存。
（冻存细胞程
序性降温，4℃放置时间40min以上，3h以内，－20℃对细胞损伤最大，1h左右为
宜。
）
细胞复苏（速溶）
冻存管直接投入37℃水浴，平摇直至融化，种于50ml培养瓶中。
根据细胞贴壁情况换液（一般24-36h换液）。
计算存活率
取一滴冻存细胞悬液，台盼兰染色，活细胞不上色，死细胞染成兰色，计算细胞存活率。
（细胞总数－死细胞数）/细胞总数×100％。