病理生理学实验
病理生理学实验报告总结
病理生理学实验报告总结病理生理学是一门研究疾病发生、发展规律和机制的学科，实验是其重要的教学和研究手段之一。
通过一系列的病理生理学实验，我们不仅能够更深入地理解疾病的本质，还能培养实践操作能力和科学思维。
以下是对近期病理生理学实验的总结。
在实验过程中，我们进行了多个具有代表性的实验项目。
其中，“缺氧实验”给我留下了深刻的印象。
实验中，我们分别设置了低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织性缺氧的模型。
通过观察小鼠在不同缺氧条件下的行为变化、皮肤黏膜颜色以及存活时间等指标，直观地了解了不同类型缺氧的特点和机制。
在低张性缺氧模型中，我们将小鼠置于密闭的缺氧瓶中，随着瓶内氧气的逐渐消耗，小鼠出现了呼吸加深加快、活动减少等表现。
皮肤黏膜也由最初的粉红色逐渐变为暗红色，最终小鼠因严重缺氧而死亡。
这让我们认识到低张性缺氧主要是由于氧分压降低导致的，机体通过增加呼吸频率和深度来试图代偿，但当缺氧严重到一定程度时，代偿机制无法维持生命活动。
血液性缺氧模型则是通过给小鼠注射亚硝酸盐，使其血红蛋白失去携氧能力。
我们观察到小鼠很快出现了皮肤黏膜青紫、呼吸困难等症状，存活时间明显缩短。
这使我们明白了血液性缺氧是由于血红蛋白的质或量发生改变，导致血液携氧能力下降而引起的。
循环性缺氧实验中，我们通过结扎小鼠的部分血管，造成局部血液循环障碍。
小鼠出现了局部组织水肿、发绀等表现，进一步理解了循环障碍对组织供氧的影响。
组织性缺氧实验是通过给小鼠注射氰化物，抑制细胞的氧化过程。
小鼠迅速出现了抽搐、昏迷等症状，让我们深刻体会到细胞利用氧障碍在组织性缺氧中的关键作用。
除了缺氧实验，“水肿实验”也是重要的一部分。
我们通过给大鼠注射一定量的生理盐水，观察其全身或局部组织的水肿情况。
在实验中，我们测量了大鼠的体重、尿量、血浆蛋白含量等指标，并对组织进行了病理切片观察。
通过对比实验组和对照组的数据，分析了导致水肿发生的因素，如毛细血管流体静压升高、血浆胶体渗透压降低等。
病理生理学实验报告
病理生理学实验报告实验题目：实验性缺氧实验目的：①复制低张性缺氧、血液性缺氧的动物模型，观察不同类型缺氧过程中实验动物一般状况、呼吸、唇尾颜色及死亡时间等机体功能变化。
②加深对缺氧分类和缺氧机制以及不同类型缺氧特点的理解。
③了解常见类型缺氧的解救办法。
实验步骤：一、低张性缺氧成年小白鼠3只，新生鼠一只分别标号1~4，做以下处理：1号鼠腹腔注射一定量0.1ml/10g乌拉坦。
2号鼠腹腔注射等量0.05ml/10g/可拉明。
3、4号不做任何处理。
2、上述处理之后将1~4号老鼠同时放入等容积的广口瓶中，并盖好瓶塞，同时用导管把四个广口瓶连通。
3、观察计时，并五分钟观察记录一次。
直至成年鼠全部死亡。
4、解剖死亡小鼠尸体，并观察记录其肝脏颜色。
二、等张性缺氧1、一氧化碳中毒性缺氧①将装有小白鼠的广口瓶与一氧化碳发生装置连接。
②用吸管吸取适量甲酸加入试管中，再吸取适量的浓硫酸加入试管中，塞紧瓶塞，并加热。
仔细观察小鼠的变化并记录。
③待小鼠死亡后，取出小鼠，并解剖小鼠尸体，观察记录其肝脏颜色。
1、亚硝酸钠中毒性缺氧①取成年健康小白鼠一只，观察其正常表现后，向腹腔注射适量0.3ml/20g亚硝酸钠。
②观察并记录小鼠的表现，待其死亡后，解剖小鼠尸体，观察并记录其肝脏颜色。
实验结果：一、低张性缺氧(2) 成年空白鼠实验过程中呼吸频率的变化：成年鼠呼吸频率变化98120141204210153159135114963600501001502002500510152025303540455055时间(min)呼吸频率(次/m i n ) ① 一号鼠注射乌拉坦之后行为状态比较活泼，放入广口瓶后较安静。
之后呼吸频率加大， 并渐渐闭上眼睛，之后出现躁动不安现象。
最后趴下安静不动，急促呼吸，死亡。
解剖尸体，肝脏颜色鲜红。
② 二号鼠注射可拉明之后非常活泼，放入广口瓶之后也比较活泼，之后出现呼吸明显加快的现象，并开始上串下跳，最后急促呼吸，慢慢呼吸变缓，死亡。
病理生理实验报告家兔(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解病理生理学实验的基本操作流程。
2. 掌握家兔的基本生理和病理生理特点。
3. 通过观察家兔的病理生理变化，加深对病理生理学知识的理解。
二、实验材料1. 家兔一只（体重2-3kg）2. 实验器材：手术器械、解剖器械、生理盐水、酒精、碘酒、棉球、试管、滴管、剪刀、镊子、解剖板、解剖盘、显微镜等。
三、实验步骤1. 实验前准备（1）将家兔置于安静的环境中，适应实验环境。
（2）实验器材准备：将手术器械、解剖器械、生理盐水、酒精、碘酒、棉球、试管、滴管、剪刀、镊子、解剖板、解剖盘、显微镜等准备好。
2. 家兔麻醉（1）采用肌肉注射的方式，将家兔麻醉。
（2）观察家兔呼吸、脉搏等生命体征，确保麻醉效果。
3. 家兔解剖（1）将家兔仰卧固定在解剖板上。
（2）消毒解剖部位，沿腹部正中线切开皮肤，暴露腹壁肌肉。
（3）分离肌肉，暴露腹腔。
（4）观察家兔内脏器官，记录正常形态、颜色、大小等。
4. 实验操作（1）心脏实验：取家兔心脏，观察心脏瓣膜、心肌等结构，记录瓣膜开放、关闭情况，测量心脏搏动频率。
（2）呼吸实验：观察家兔呼吸运动，记录呼吸频率、深度等。
（3）消化实验：取家兔胃、肠等消化器官，观察消化器官的形态、颜色、蠕动情况等。
（4）循环实验：观察家兔心脏、血管等循环系统器官，记录血管充盈情况、脉搏等。
（5）神经系统实验：观察家兔脑、脊髓等神经系统器官，记录神经传导功能。
5. 实验结果记录（1）详细记录家兔解剖过程中观察到的各种生理和病理生理变化。
（2）记录实验过程中使用的药物、操作方法等。
6. 实验总结（1）分析家兔解剖过程中观察到的各种生理和病理生理变化。
（2）总结实验结果，与理论知识相结合，加深对病理生理学知识的理解。
四、实验结果与分析1. 家兔心脏瓣膜开放、关闭正常，心脏搏动频率约为每分钟80-100次。
2. 家兔呼吸运动规律，呼吸频率约为每分钟20-30次，深度适中。
3. 家兔胃、肠等消化器官形态、颜色、蠕动情况正常。
病理生理实验报告肿瘤
一、实验目的1. 理解肿瘤的病理生理学特征；2. 掌握肿瘤的诊断方法及病理生理变化；3. 提高病理生理学实验技能。
二、实验原理肿瘤是一种病理生理过程，是指细胞在基因水平上失去对其生长的正常调控，导致异常增生而形成的。
肿瘤细胞具有自主生长、侵袭和转移的能力，对人体健康造成严重危害。
病理生理实验通过观察肿瘤组织切片，了解肿瘤的形态学特征、生长方式、侵袭和转移等病理生理变化。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：肿瘤组织切片、显微镜、载玻片、盖玻片、染色液等；2. 仪器：显微镜、切片机、染色机等。
四、实验步骤1. 观察肿瘤组织切片：将肿瘤组织切片放置在载玻片上，滴加适量染色液，染色后用盖玻片封片，置于显微镜下观察。
2. 观察肿瘤细胞形态：观察肿瘤细胞的形态、大小、核质比等特征，分析其异型性。
3. 观察肿瘤细胞的生长方式：观察肿瘤细胞的排列方式、生长速度等，分析其生长方式。
4. 观察肿瘤细胞的侵袭和转移：观察肿瘤细胞是否向周围组织浸润，是否形成转移灶。
5. 记录实验结果：详细记录肿瘤组织的形态学特征、生长方式、侵袭和转移等病理生理变化。
五、实验结果与分析1. 肿瘤细胞形态：肿瘤细胞大小不一，核质比增大，细胞核深染，异型性明显。
2. 肿瘤细胞的生长方式：肿瘤细胞排列紊乱，生长速度快，呈侵袭性生长。
3. 肿瘤细胞的侵袭和转移：肿瘤细胞向周围组织浸润，形成转移灶。
六、结论本实验通过观察肿瘤组织切片，掌握了肿瘤的病理生理学特征，包括肿瘤细胞的形态、生长方式、侵袭和转移等。
实验结果表明，肿瘤是一种病理生理过程，具有自主生长、侵袭和转移的能力，对人体健康造成严重危害。
七、实验讨论1. 肿瘤的发生机制：肿瘤的发生与基因突变、环境因素、生活方式等多种因素有关。
2. 肿瘤的诊断方法：病理学检查是诊断肿瘤的重要手段，通过观察肿瘤组织的形态学特征，可以判断肿瘤的类型和恶性程度。
3. 肿瘤的治疗：肿瘤的治疗方法包括手术、放疗、化疗、靶向治疗等，应根据肿瘤的类型、恶性程度、患者身体状况等因素制定个体化治疗方案。
病理生理缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧的基本概念和分类。
2. 观察和记录缺氧对机体生理功能的影响。
3. 探讨影响缺氧耐受性的因素。
4. 学习实验操作技能，提高实验分析能力。
二、实验原理缺氧是指机体组织细胞因氧气供应不足而引起的生理和生化变化。
根据缺氧的原因和发生部位，缺氧可分为以下几种类型：1. 乏氧性缺氧：由于血氧含量降低所致，如高山反应、一氧化碳中毒等。
2. 血液性缺氧：由于血红蛋白含量或性质改变所致，如贫血、高铁血红蛋白血症等。
3. 组织中毒性缺氧：由于组织细胞利用氧气的能力降低所致，如氰化物中毒、窒息等。
本实验采用小鼠作为实验对象，通过模拟缺氧环境，观察和记录缺氧对小鼠生理功能的影响，分析不同缺氧类型和影响缺氧耐受性的因素。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康小鼠（体重20克左右）4只。
2. 实验仪器：缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、5ml 或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧实验a. 将小鼠分为两组，每组两只。
b. 将甲组小鼠放入缺氧瓶中，瓶内加入5g钠石灰，密封瓶口。
c. 将乙组小鼠放入另一个缺氧瓶中，瓶内加入相同量的钠石灰，并加入一定量的甲酸和浓硫酸，密封瓶口。
d. 观察并记录两组小鼠的存活时间、呼吸频率、心率等生理指标。
2. 血液性缺氧实验a. 将小鼠分为两组，每组两只。
b. 向甲组小鼠腹腔注射5%硝酸钠溶液0.5ml，造成贫血模型。
c. 向乙组小鼠腹腔注射等量的生理盐水，作为对照组。
d. 观察并记录两组小鼠的存活时间、呼吸频率、心率等生理指标。
3. 组织中毒性缺氧实验a. 将小鼠分为两组，每组两只。
b. 向甲组小鼠腹腔注射0.1%氰化钾溶液0.5ml，造成氰化物中毒模型。
c. 向乙组小鼠腹腔注射等量的生理盐水，作为对照组。
d. 观察并记录两组小鼠的存活时间、呼吸频率、心率等生理指标。
病理生理学实验技巧总结
病理生理学实验技巧总结病理生理学是一门研究疾病发生、发展规律和机制的学科，实验是病理生理学研究的重要手段之一。
在进行病理生理学实验的过程中，掌握一定的技巧可以提高实验的成功率和准确性，同时也能够更好地理解和掌握病理生理学的知识。
下面我将结合自己的经验，为大家总结一些病理生理学实验的技巧。
一、实验前的准备1、熟悉实验原理和目的在进行实验之前，一定要认真阅读实验教材和相关文献，了解实验的原理、目的和操作步骤。
只有对实验有了充分的理解，才能在实验过程中做到心中有数，避免出现不必要的错误。
2、准备实验器材和试剂根据实验的要求，准备好所需的实验器材和试剂。
检查器材是否完好无损，试剂是否在有效期内。
对于一些需要自行配制的试剂，要严格按照配方和操作步骤进行配制，确保试剂的浓度和纯度符合实验要求。
3、动物的选择和处理在病理生理学实验中，常常需要使用动物作为实验对象。
在选择动物时，要根据实验的目的和要求，选择合适的动物种类、性别、年龄和体重。
同时，要对动物进行适当的处理，如禁食、麻醉等，以减少实验过程中的干扰因素。
二、实验操作中的技巧1、正确的操作方法在进行实验操作时，要严格按照实验教材和老师的指导进行，掌握正确的操作方法。
例如，在进行采血操作时，要选择合适的采血部位和采血方法，避免损伤血管和神经；在进行组织切片制作时，要注意切片的厚度和方向，以保证切片的质量。
2、注意实验条件的控制实验条件的控制对于实验结果的准确性至关重要。
例如，在进行温度敏感实验时，要保持实验环境的温度稳定；在进行光照实验时，要控制光照的强度和时间。
同时，要注意实验过程中的无菌操作，避免污染实验样本。
3、数据的记录和观察在实验过程中，要及时、准确地记录实验数据和观察结果。
数据的记录要详细、清晰，包括实验的时间、条件、操作步骤和结果等。
对于一些肉眼难以观察到的结果，可以借助仪器设备进行检测和记录。
同时，要注意观察实验过程中动物的行为、生理变化等，及时发现异常情况并采取相应的措施。
2024版年度病理生理学实验教案
2
每组学生轮流担任实验操作的主体，其他成员则 协助完成实验，保证每个学生都有机会亲自动手 操作。
3
教师在实验前要明确实验目的、步骤和注意事项， 确保学生能够按照要求进行实验操作。
2024/2/3
19
教师巡回指导，及时纠正错误操作
教师在学生实验过程中要巡回指 导，观察学生的操作过程，及时
发现并纠正学生的错误操作。
通过实验中的问题和挑战，培养学生的创新思维和解决
问题的能力。
2024/2/3
6
严格遵守实验室安全规范
01
强调实验室安全的重要性，要求 学生严格遵守实验室各项规章制 度；
02
熟悉并掌握实验室常见危险源及 应对措施，如化学试剂的存放和 使用、生物安全防护等；
03
培养学生的安全意识和自我保护 能力，确保实验过程的安全顺利 进行。
抢救措施演示
展示针对失血性休克的紧急处理措施，如输血、补液、应用血管活 性药物等。
实验评估标准
根据实验动物的生理指标恢复情况，评估抢救措施的有效性。
2024/2/3
15
炎症反应过程观察及药物干预效果评估
01
炎症反应过程观察
通过动物模型或细胞实验，观察 炎症反应的发生、发展过程，如 红肿、热痛等症状。
02
学生要按照规定的格式和要求撰写实验报告，对实验结果进行
客观、准确的分析和解释。
通过实验记录和报告撰写，培养学生的科研素养和实验技能，
03
为学生今后的科研工作打下坚实的基础。
22
05
结果分析与讨论课设计
2024/2/3
23
数据整理、图表绘制技巧指导
数据整理
教授学生如何整理实验数据，包括数据的筛选、分类、编码和录入 等，确保数据的准确性和完整性。
病理生理学实验报告
一、实验目的1. 了解病理生理学实验的基本方法和步骤。
2. 掌握病理生理学实验中常用的实验技术和操作。
3. 通过实验观察病理生理学现象，加深对病理生理学理论知识的理解。
二、实验内容1. 实验一：观察正常和缺氧状态下的小鼠心肌细胞（1）实验材料：小鼠、显微镜、载玻片、染色液等。
（2）实验步骤：①取正常小鼠心肌组织，制成切片。
②将切片置于载玻片上，用染色液染色。
③在显微镜下观察心肌细胞形态、颜色和结构。
（3）实验结果：正常心肌细胞呈梭形，细胞核位于细胞中央，细胞质均匀，染色深浅适中。
缺氧状态下的小鼠心肌细胞形态发生改变，细胞核偏位，细胞质出现空泡，染色浅。
2. 实验二：观察肝细胞脂肪变性（1）实验材料：小鼠、显微镜、载玻片、染色液等。
（2）实验步骤：①取发生脂肪变性的小鼠肝脏组织，制成切片。
②将切片置于载玻片上，用染色液染色。
③在显微镜下观察肝细胞形态、颜色和结构。
（3）实验结果：脂肪变性肝细胞体积增大，细胞质中出现大小不等的球形脂滴，细胞核被挤压偏位。
3. 实验三：观察肉芽组织形成过程（1）实验材料：小鼠、显微镜、载玻片、染色液等。
（2）实验步骤：①取小鼠皮肤伤口组织，制成切片。
②将切片置于载玻片上，用染色液染色。
③在显微镜下观察肉芽组织形成过程。
（3）实验结果：肉芽组织主要由纤维母细胞、新生毛细血管及大量炎细胞组成。
表浅部新生毛细血管的方向大致与肉芽的表面垂直；间质疏松水肿，有较多炎细胞，多为中性粒细胞，此外可见淋巴细胞、巨噬细胞及浆细胞；纤维母细胞体积大，形态不规则，常为有突起的星形或梭形，胞浆丰富略呈嗜碱性，细胞核圆形、卵圆形，染色质疏松，染色浅，核仁明显。
三、实验讨论1. 通过实验观察，我们了解了病理生理学实验的基本方法和步骤，掌握了实验中常用的实验技术和操作。
2. 实验结果表明，病理生理学现象与正常生理过程存在显著差异。
例如，缺氧状态下的小鼠心肌细胞出现形态改变，细胞核偏位，细胞质出现空泡；脂肪变性肝细胞体积增大，细胞质中出现大小不等的球形脂滴；肉芽组织形成过程中，可见大量纤维母细胞、新生毛细血管及炎细胞。
病理生理学实验设计报告
病理生理学实验设计报告一、实验题目探究某种药物对小鼠心肌梗死模型的治疗效果二、实验目的本实验旨在研究某种药物对心肌梗死小鼠模型的治疗作用，通过检测相关生理指标和病理变化，评估该药物在心肌梗死治疗中的潜在价值。
三、实验原理心肌梗死是由于冠状动脉供血急剧减少或中断，导致相应心肌持久而严重的缺血缺氧，引起心肌坏死。
在小鼠心肌梗死模型中，通过结扎冠状动脉左前降支可模拟心肌梗死的发生。
给予实验药物后，观察其对心肌梗死面积、心肌细胞凋亡、炎症反应、心功能等方面的影响，以探讨其治疗机制。
四、实验材料与方法（一）实验动物选用 6-8 周龄的雄性 C57BL/6 小鼠，体重约 20-25g，购自_____动物实验中心。
实验动物在标准环境中饲养，自由饮食和饮水，适应环境 1 周后进行实验。
（二）主要试剂与仪器1、实验药物：＿____（纯度>98%），用生理盐水配制。
2、戊巴比妥钠：用于麻醉小鼠。
3、心电图机：记录小鼠心电图。
4、超声心动图仪：检测小鼠心功能。
5、组织切片染色试剂：如苏木精伊红（HE）染色剂、TUNEL 凋亡检测试剂盒等。
（三）实验分组将小鼠随机分为 3 组，每组 10 只：1、假手术组（Sham 组）：只开胸但不结扎冠状动脉左前降支，给予等量生理盐水。
2、心肌梗死模型组（MI 组）：结扎冠状动脉左前降支，建立心肌梗死模型，给予等量生理盐水。
3、药物治疗组（Drug 组）：结扎冠状动脉左前降支后，给予实验药物治疗。
（四）实验步骤1、小鼠麻醉：腹腔注射戊巴比妥钠（50mg/kg）麻醉小鼠。
2、手术操作：在小鼠左侧胸部做切口，暴露心脏，用丝线结扎冠状动脉左前降支，造成心肌梗死。
假手术组只穿线不结扎。
3、术后处理：缝合切口，给予抗生素预防感染。
术后 24 小时开始，药物治疗组每天腹腔注射实验药物，假手术组和心肌梗死模型组给予等量生理盐水，连续给药 2 周。
4、指标检测心电图检测：在术前、术后 24 小时和 2 周分别记录小鼠心电图，观察 ST 段变化。
病理生理学实验总结
病理生理学实验总结病理生理学是一门研究疾病发生、发展规律和机制的学科，而实验则是深入理解这些理论知识的重要手段。
通过一系列的病理生理学实验，我们不仅能够更直观地感受疾病状态下机体的变化，还能培养实践操作能力和科学思维。
以下是对这段时间病理生理学实验的总结。
在实验过程中，我们接触到了多种实验模型和技术。
其中，缺氧实验给我留下了较为深刻的印象。
通过不同的缺氧方式，如低张性缺氧、血液性缺氧等，观察小鼠的行为变化、皮肤黏膜颜色以及存活时间等指标，让我们深刻理解了缺氧对机体的影响。
在低张性缺氧实验中，将小鼠放入装有钠石灰的密闭容器内，随着容器内氧气逐渐减少，小鼠先是出现呼吸加深加快，活动增多，随后呼吸逐渐变浅变慢，活动减少，最终死亡。
通过这个实验，我们清楚地看到了缺氧对呼吸系统和神经系统的影响，也明白了氧气对于维持生命活动的重要性。
另一个让我受益匪浅的实验是水肿实验。
我们采用了大鼠尾静脉注射生理盐水的方法来诱导水肿。
在实验中，需要精确测量大鼠的体重、尾长以及尾围等指标，并观察其体表的变化。
通过对比注射前后的数据，我们能够定量地分析水肿的程度和发展情况。
这个实验让我明白了水肿的发生机制，即血浆胶体渗透压降低、毛细血管流体静压升高、毛细血管壁通透性增加以及淋巴回流受阻等因素都可能导致水肿的发生。
同时，也让我学会了如何运用实验数据来支持和验证理论知识。
在酸碱平衡紊乱实验中，我们通过给家兔注射不同的酸性或碱性物质，造成其体内酸碱平衡失调。
然后，通过检测血液的 pH 值、二氧化碳分压和碳酸氢根离子浓度等指标，来判断酸碱平衡紊乱的类型和程度。
这个实验不仅让我们熟悉了血气分析的操作方法和原理，还让我们深入理解了机体在面对酸碱失衡时的代偿调节机制。
例如，当机体发生代谢性酸中毒时，呼吸系统会通过增加呼吸频率和深度来排出过多的二氧化碳，以维持 pH 值的相对稳定。
除了具体的实验内容，实验过程中的一些注意事项和操作技巧也让我收获颇丰。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
病理生理学实验
1.实验性缺氧症
实验目的与要求
在动物身上复制低张性缺氧及血液型缺氧的模型；
观察两种类型缺氧对动物呼吸的影响和皮肤颜色的变化
实验原理
广口瓶内空气的氧分压降低-----低张性缺氧
动物体内形成大量HbCO-----血液型缺氧
动物体内形成大量高铁血红蛋白-----血液型缺氧
实验对象
小白鼠
实验器材与药品
125ml带塞广口瓶3只，秒表一块，镊子一把，钠石灰（NaOH·CaO）,CO发生装置，甲酸，浓硫酸，5ml,2ml吸管各一支，1ml注射器两只，2.5%亚硝酸钠溶液，1%亚甲蓝（即美蓝）溶液，生理盐水
观察指标
记录时间，观察小鼠皮肤颜色及活动状态
实验步骤
低张性缺氧
取两只体重相近的健康小白鼠→一只直接放入密闭广口瓶中，另一只放入盛有钠石灰的密闭广口瓶中→观察并分别记录
时间
血液性缺氧
CO中毒：安装好CO发生装置→取一只健康小白鼠观察一般情况后放入CO发生装置的广口瓶中→先取甲酸3ml放入试管中，再加入硫酸2ml后塞紧木塞→加热CO发生装置加速CO产生（不可过热以至液体沸腾，因CO产生过多过快，动物会迅速死亡，血液颜色变化不明显）→观察并记录时间
亚硝酸钠中毒：取两只体重相近的健康小白鼠→分别向腹腔内同时注入 2.5%亚硝酸钠0.3ml→立即向其中一只腹腔内注入1%美蓝0.3ml，同时向另一只腹腔内注入生理盐水0.3ml→观察并记录时间
注意事项
小白鼠放入缺氧瓶后瓶口一定要紧闭
产生CO时注意安全
腹腔注射时头低尾高，在小鼠左下腹下针以免损伤脏器
动物缺氧死亡后可解剖尸体比较肝脏及血液颜色
试验结束后未死亡的小白鼠均处死
实验结果
低张性缺氧：实验组---31’，对照组---18’
血液性缺氧
CO中毒---18’
亚硝酸钠中毒---实验组---四肢，嘴唇，尾部发黑，未死
对照组---6’
2.家兔高钾血症
实验目的与要求
学习家兔高钾血症模型的复制方法
观察和熟悉高钾血症时家兔心电图变化的特征
实验原理
家兔高钾血症对机体的影响表现为心脏毒性作用，出现多种心律失常
早期由于心室肌细胞动作电位三期复极时间缩短，心电图上主要表现为T波高尖
急性严重高钾血症时可因重度传导阻滞或心肌兴奋性降低而引起心脏骤停
实验对象
家兔
实验器材与药品
电脑，5ml注射器2只，兔手术台，小儿头皮针，5%KCI，20%乌拉坦（5ml/kg），肝素-生理盐水（125U/ml）
观察指标
家兔心电图变化
实验步骤
家兔称重，耳缘静脉注入乌拉坦→观察家兔肌张力，角
膜反射，呼吸频率的变化，待动物麻醉成功后以仰卧位固定在兔手术台上→将针极按右前肢（红），左前肢（黄），右后肢（黑），左后肢（绿）的顺序插入家兔四肢皮下，连接好导线→打开测心电软件，调到相应界面准备→记录一段正常心电图波形→将充有肝素-生理盐水的小儿头皮针沿耳缘静脉注入，并将针头固定于耳廓，然后向静脉缓慢推住5%氯化钾溶液，记录异常心电图波形→注射过程中出现心室扑动或纤颤时，立即停止注射氯化钾溶液，观察心电图变化
注意事项
麻醉要适宜
氯化钾时要缓慢注入
排除心电图机各种故障的干扰，尽量避免导联线纵横交错
实验结果
T波高尖----三期复极时间缩短
3.大白鼠实验性肺水肿
实验目的与要求
学习复制大白鼠实验性肺水肿模型
观察大白鼠水肿的表现，了解其发生机制
实验原理
通过左下腹腔注射肾上腺素，引起实验动物外周血管收
缩，大量的血液涌入低阻力的肺循环，肺毛细血管内压升高及肺毛细血管壁通透性增加，从而导致肺水肿
实验对象
大白鼠
实验器材与药品
抓鼠手套，2ml注射器，天平，剪刀，镊子，滤纸，棉线，0.1%盐酸肾上腺素注射液
观察指标
肺系数，肺组织外观
实验步骤
取150g左右大白鼠两只，一只作为实验鼠，一只作为对照鼠，观察一般情况→向实验鼠腹腔注射0.1%盐酸肾上腺素2ml 观察动物的变化（呼吸，口鼻有无液体流出）并记录存活时间→动物死亡后称取大白鼠尸重，解剖大白鼠取肺，擦拭表面血液后称重，计算肺系数→向对照鼠腹腔注入等量的生理盐水，处死大白鼠后，解剖取肺称重计算肺系数→观察比较两肺颜色，体积注意事项
取肺时勿损伤到肺，以免影响肺系数值
实验结果
肺系数=肺重量（g）/体重（kg）
正常值约为4.0~8.0
4.实验性急性右心功能不全
实验目的与要求
学习复制急性右心功能不全模型
观察急性右心功能不全时血流动力学的主要变化实验原理
给家兔静脉注射栓塞剂造成肺毛细血管栓塞引起右心后负荷增加
快速大量输入生理盐水使回心血量增多，引起右心前负荷增加
右心功能不全引发机体发生体循环淤血，水肿，中心静脉压（CVP）升高，动脉血压（BP）下降等病理生理变化实验对象
家兔
实验器材与药品
哺乳动物实验手术器械一套，BL-420生物机能实验系统，压力换能器，中心静脉压测定装置，静脉输液装置，细线，注射器，20%乌拉坦，肝素生理盐水，碳素墨水，生理盐水观察指标
心率（HR），呼吸（频率，深度），动脉血压(BP)，中心静脉压(CVP)
实验步骤
麻醉与手术
家兔称重后经耳缘静脉缓慢注入乌拉坦，待麻醉好后将家兔以仰卧固定于兔手术台上→颈前部剪毛，沿颈正中线做长约5-7cm的切线分离皮下组织，充分暴露气管，分离左侧颈总动脉和右侧颈外侧静脉，并各穿两根细线备用→将充盈肝素生理盐水的静脉插管用三通管连接中心静脉测压计和输液装置→经耳缘静脉注入肝素生理盐水（1mg/kg）后，将右侧颈外侧静脉远心端结扎，做V字切口，将准备好的静脉插管由切口沿向心方向插入颈静脉，深度为5-6cm，再结扎固定→将左侧颈总动脉进心端用动脉夹夹闭，远心端用细线扎牢，在结扎处近端向心方向做V形切口，向心脏方向插入与压力换能器相连的动脉插管，并用细线固定→连接好压力换能器与BL-420系统
观察项目
记录实验前动物的BP,CVP,HR,呼吸频率
按1ml/kg剂量用2ml注射器抽取碳素墨水经家兔耳缘静脉缓慢注入→当动脉血压开始下降时，立即停止注射，检测上述各项指标
通过静脉插管快速输入生理盐水200ml，输液速度呈线状，并观察上述各项指标的变化→输液量达200ml/kg而变化不明显时再补充碳素墨水直至各项指标变化非常明显或动物死亡
当证实动物已经形成急性右心功能不全时尝试急救措施如暂时输入生理盐水或经耳缘静脉注射0.01%肾上腺素
0.5ml
动物死亡后可进行尸体解剖，观察各组织变化注意事项
插管过程中尽量减少出血
注入碳素墨水时速度一定要缓慢，以免造成严重急性肺梗阻而致动物很快死亡
实验结果。