SD大鼠麻醉
大鼠静脉麻醉方法
大鼠静脉麻醉方法
小伙伴，今天咱们来聊聊大鼠静脉麻醉这事儿。
然后呢，就是选择麻醉药物啦。
像戊巴比妥钠之类的就是比较常见的。
不过用药量可得算好哦，太多了对小老鼠可不好，太少了又起不到麻醉的效果。
这就像做菜放盐，得不多不少刚刚好。
一般按照大鼠的体重来计算合适的药量，就像是给不同身材的小老鼠定制专属的麻醉套餐。
在注射的时候呢，要特别小心。
用那种很细的注射器针头，轻轻的刺进尾巴静脉。
这一步就像在做一个超级精细的小手工，得小心翼翼的。
如果扎偏了，小老鼠可能会疼，而且麻醉药也不能准确地进入血管。
当看到注射器里的药液缓缓推进血管，就像给小老鼠注入了一个安静的魔法。
注射完之后呀，就等着小老鼠慢慢进入麻醉状态啦。
它可能会变得越来越安静，眼睛也没那么有神了。
这时候你可别以为就万事大吉喽。
得在旁边好好看着它，就像照顾一个生病的小宝贝。
要观察它的呼吸是不是平稳，身体有没有什么异常的反应。
如果发现小老鼠呼吸急促或者有其他不对劲的地方，那可能就得采取点措施啦，比如说调整它的姿势，或者看看是不是药量出了问题。
还有哦，不同的大鼠可能对麻醉的反应会有点差异。
就像每个人的酒量不一样似的。
有的大鼠可能很快就麻倒了，有的可能还会挣扎一会儿。
所以每一次给大鼠做静脉麻醉都像是一次小小的冒险，充满了未知，但只要我们细心又耐心，就能顺利完成这个小挑战啦。
总之呢，大鼠静脉麻醉虽然有点小复杂，但只要掌握了要点，就像学会了一个小魔法，可以让我们在实验或者其他需要的情况下，让小老鼠安安静静地接受我们的操作啦。
SD大鼠脾脏切除手术最适麻醉的探究
SD大鼠脾脏切除手术最适麻醉的探究【摘要】目的探究SD大鼠脾脏切除手术的最适麻醉剂，及最适手术切口大小，为大鼠行脾脏切除手术及用于医学实验外科教学提供有力的数据资料。
方法将40只健康同龄SD雄性大鼠随机平均分为4组(A、B、C、D组)，A组水合氯醛麻醉，行1.5 cm切口；B组戊巴比妥钠麻醉，行1.5 cm切口；C组水合氯醛麻醉，行2.0 cm切口；D组戊巴比妥钠麻醉，行2.0 cm切口，分别按要求行脾脏切除手术。
结果比较麻醉前后体温、呼吸，P＜0.05；对比分析A、C和B、D两组术后苏醒时间，P＜0.05；麻醉后心率、术后伤口恢复时间，P＞0.05。
结论戊巴比妥钠对大鼠的呼吸频率、体温抑制较强，水合氯醛对大鼠呼吸频率和体温的抑制作用较少，且首剂麻醉成功率高，麻醉起效的时间快，是大鼠脾脏切除手术的最适麻药，该手术最适切口大小为2.0 cm。
【关键词】脾脏切除;麻醉;切口大小;水合氯醛;戊巴比妥钠脾脏切除术是每一位外科医生都需要掌握的外科基本手术，其中所涉及的基本操作是每个医生必须具备的实践能力[1]，也是反映外科医生基本素质和工作能力的基本手术[2]。
本文从选取最适麻醉药品、手术最适开口大小，探究SD大鼠脾脏切除手术，希望为外科实验教学及临床技能实践提供有力的数据资料。
1 材料和方法1.1 实验动物雄性SD大鼠40只，体重(300±20)g，由南充市川北医学院动物实验中心提供。
1.2 器材和药品电子秤，计时器，天平，智能体温计(量程:32℃~42℃，型号：7S0，制造商：豪展医疗有限公司)，戊巴比妥钠(生产批号：WS20060401，上海西唐生物科技有限公司生产)，蒸馏水配制成10%溶液，水合氯醛(生产批号：20060712，天津福晨化学试剂厂生产)，蒸馏水配制成1%溶液。
1.3 实验阶段1.3.1 麻醉方法及用量动物于实验前禁食不禁水12 h,实验当天禁水。
10%水合氯醛溶液经预试确定麻醉剂量为4.5 ml/kg[3];戊巴比妥钠配制为1%溶液,麻醉剂量为6 ml/kg。
大鼠水合氯醛麻醉心得[参考内容]
![大鼠水合氯醛麻醉心得[参考内容]](https://img.taocdn.com/s3/m/f86865f571fe910ef12df87d.png)
大鼠水合氯醛麻醉心得本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。
在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间）现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。
因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。
动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。
结果：如下表格所示：水合氯醛浓度 4% 7% 7% 10% 10%水合氯醛剂量 0.5mL/100g 0.3mL/100g 0.2mL/100g 0.2 mL/100g 0.3 mL/100g诱导时间约7min 约4min 约7min 约4min 约4min麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉麻醉开始清醒时间约90min 约100min 未观察约68min 114min 结论：1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。
但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。
2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。
3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗？》的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，我的经验是这样：（1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。
（2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。
对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。
大鼠的麻醉
用量：0.25ml/100g
6、2%戊巴比妥钠50mg/kg，书上推荐的剂量是40～50mg/kg（ip）；或者苯巴比妥钠+乙醚麻醉，效果也可以.。
7、在建立肠道缺血再灌注损伤模型中使用戊巴比妥钠，是沿用了很多同事的方案。使用中麻醉很平稳。效果很不错。估计肾脏移植模型和肠道相差不大，不知对否。
二、异氟醚大鼠麻醉
安全且具有麻醉科特色。
我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。使用时打开盖子，将杯子对着大鼠，大鼠顺势会自己进去，然后竖起杯子盖上盖，连抓大鼠都省了，超级安全！然后接麻醉机（临床淘汰的机型，不过作试验足够了），注意要事先准备好连接管道（临床上各种管子都是可以互相接口的），打开挥发器就行了。我们一般先开最大，大鼠一会儿不动了就麻好了（杯子要求至少半透明）。
4、3%的戊巴比妥钠，1ml～1.5ml/kg，但要体重称准。
5、戊巴比妥钠，40mg/kg，但不安全，用水合氯醛腹腔注射最安全，300mg/kg。或是用乌拉坦。用复合麻醉，2小时左右很有效。
配方：
戊巴比妥钠：0.886g
水合氯醛：4.25g
硫酸镁：2.12g
无水酒精：14.25ml
丙二醇：33.8ml
3、水合氯醛和戊巴比妥钠均可以的，前者的麻醉持续时间短些，看你的手术需要了，前者的一般剂量为350～400mg/kg，后者的剂量一般可为30mg/kg，均是ip注射，安全性是很好的。戊巴比妥钠最好用进口分装的，上海试剂公司有售。??
注：我们一般同时接着氧气，所以安全过程中的维持麻醉一般也采用吸入麻醉，与诱导时基本类似。取出诱导好的大鼠，快速固定四肢在操作板上，给大鼠口鼻处罩上剪下的合适注射器（好像是20或30ml注射器）前端，注射器头接诱导时的麻醉管道，连接到麻醉机上，一般维持时开到2，同时供氧，没有给它们插过气管插管，也没有出现窒息的（至少我没见过）。可作除开胸外的手术，一般切皮处给予少量局麻。作过颈部血管手术和股动静脉穿刺置管效果都很好。
SD大鼠脂肪采取
SD大鼠脂肪采取简介SD大鼠脂肪采取是一种常用的实验方法，用于研究大鼠脂肪组织的特性和功能。
在这篇文档中，我们将介绍SD大鼠脂肪采取的步骤和注意事项。
希望本文能为相关科研人员提供一些帮助。
步骤1.准备实验材料：–SD大鼠–麻醉剂（如异氟醚）–消毒液–手术器械（如手术刀、手术剪、镊子等）–无菌培养皿和离心管2.麻醉SD大鼠：–将SD大鼠置于麻醉箱中，通过给予适量的麻醉剂使其进入麻醉状态。
–确保大鼠完全进入麻醉状态后，将其取出放在手术台上。
3.消毒操作区域：–使用消毒液彻底清洗手术台及手术器械，以减少感染风险。
4.实施脂肪采取：–使用手术刀在大鼠身体的特定位置（如腰部）切开皮肤，并将切口扩大。
–使用手术剪和镊子小心地分离脂肪组织，注意不要损伤其他组织。
–通过运用轻柔的力量，将脂肪组织完整地取出，并放置在无菌培养皿中。
5.脂肪组织的处理：–将采取的脂肪组织放入离心管中，并加入适量的生理盐水进行清洗。
–对脂肪组织进行离心，以去除其中的杂质。
–可根据实验需求，将清洗后的脂肪组织进行冷冻保存或进一步处理。
6.注意事项：–在实施脂肪采取之前，应经过相关机构的批准，并遵循相关伦理规定。
–在实施手术时，应注意麻醉剂的使用量，确保大鼠在手术过程中不会醒来。
–手术过程中要小心操作，避免伤及大鼠的其他组织。
–操作过程中要保持工作区域的洁净，使用无菌器械进行操作，以减少感染风险。
结论SD大鼠脂肪采取是一项常见的实验技术，用于研究脂肪组织的性质和功能。
通过遵循正确的操作步骤和注意事项，可以获得高质量的脂肪样本，为后续的实验研究提供可靠的基础。
同时，在进行实验前应获得相关批准，并遵循伦理规定，以确保动物的福利和实验的科学性。
希望本文对于进行SD大鼠脂肪采取的科研人员有所帮助。
注：本文所提供的步骤和注意事项仅供参考，具体操作应根据实验要求和相关规定来进行。
普鲁卡因麻醉实验报告
普鲁卡因麻醉实验报告一、实验目的：本实验旨在探究普鲁卡因麻醉在手术中的应用效果，为临床手术提供参考依据。
二、实验设计：选取50只SD大鼠作为实验对象，随机分成试验组和对照组各25只。
试验组使用普鲁卡因麻醉剂进行麻醉，对照组使用常规麻醉剂进行麻醉。
通过对伤口愈合时间、血管反应情况、术后疼痛度等指标的观察，比较两种麻醉方式的效果。
三、实验方法：1.麻醉剂制备：将普鲁卡因麻醉剂以0.5%浓度混合制成。
2.实验操作：试验组SD大鼠按照身体重量0.1ml/g的剂量使用制备好的普鲁卡因麻醉剂进行麻醉，对照组SD大鼠按照常规剂量使用麻醉剂进行麻醉。
3.比较指标：分别记录组内SD大鼠伤口愈合时间、血管反应情况和术后疼痛度，进行数据整理和统计分析。
四、实验结果与分析：1.实验结果：试验组的伤口愈合时间、血管反应情况和术后疼痛度均较对照组有显著改善。
2.分析：普鲁卡因麻醉剂能够有效减轻手术后的疼痛，促进伤口的愈合。
与传统麻醉剂相比，其具有更好的稳定性，不会出现麻醉深度波动较大等问题。
五、结论：本实验结果表明，普鲁卡因麻醉在手术中具有较好的应用效果，能够有效降低术后疼痛的程度，促进伤口的愈合。
六、注意事项：1.实验操作应小心谨慎，避免对SD大鼠造成不必要的伤害。
2.实验过程中应加强麻醉监测力度，确保SD大鼠的生命安全。
3.实验后应做好动物身体护理工作，避免术后感染和疼痛等问题。
七、参考文献：1.郭东峰，论现代麻醉学的现状与发展，麻醉学杂志，2017年3月，第2期。
2.李晓，普鲁卡因麻醉在脊柱手术中的应用，中国医学论坛，2018年6月，第15期。
SD大鼠麻醉后生化指标变化
2008年1月第18卷 第1期中国比较医学杂志CHINESE JOURNA L OF COMPARATIVE ME DICINE January ,2008V ol.18 N o.1研究报告SD 大鼠麻醉后生化指标变化谭剑斌,陈瑞仪,胡帅尔(广东省疾病预防控制中心) 【摘要】 目的 观察S D 大鼠麻醉后生化指标的变化。
方法 50只2月龄SPF 级S D 种大鼠,雄性28只,雌性22只,每鼠空腹16h ,分别在麻醉后0、5、10和20min 采血,检测血清A LT 、AST 、G LU 、BUN 、TP 、A LB 、AK P 、CRE A 、CH O L 、TG 。
结果 随麻醉时间的延长,S D 大鼠的生化指标有不同程度的变化。
结论 规范麻醉采血操作,缩短S D 大鼠麻醉后等待采血的时间可减少生化指标的波动。
【关键词】 麻醉;生化指标;戊巴比妥钠;S D 大鼠【中图分类号】R 233 【文献标识码】A 【文章编号】167127856(2008)0120043203Changes of Biochemistry I ndexes in SD R ats after AnesthesiaT AN Jian 2bin ,CHE N Rui 2yi ,H U Shuai 2er(Department of T oxicology ,Center for Disease C ontrol and Prevention of G uang D ong Province ,G uang Zhou 510300,China )【Abstract 】 Objective T o observe the changes of biochemistry indexes in S D rats after anesthesia.Methods 50SPF S Drats aged 2m onths ,28males and 22females were collected blood in 0、5、10、20min after anesthesia ,and serum A LT 、AST 、G LU 、BUN 、TP 、A LB 、AK P 、CRE A 、CH O L 、TG were detected after fasting of 12hours.R esults The biochemistry indexes in S D rats varied as anaesthetic time increases.Conclusion S tandaring the blood collecting operation ,and reducing the time to wait for collecting blood in postanesthesia S D rats can decrease the changes of biochemistry indexes.【K ey w ords 】 Anaesthesia ;Biochemistry index ;Pentobarbital S odium ;S D rats[作者简介] 谭剑斌(1977-),男,技师,本科,主要从事食品毒理学的研究。
绵羊、狗和 SD 大鼠的麻醉方法(完整版)
绵羊、狗和SD 大鼠的麻醉方法（完整版）首先一点就说鄙人完全反对腹腔内给予麻醉药物，因为经验证明那样做效果非常差，有的时候给药剂量非常大而且等待一两个小时了动物还很精神。
1、绵羊比较温顺，一般体重在30 公斤左右，我们是拿绳子绑在它脖子上牵回实验室，然后普通安定10 毫克，东莨菪碱0.3 毫克肌注。
羊对这些药物的反应性很好，一般10 多分钟后就比较安静，在实验室走动一会就趴下休息了。
我们正好可以利用这个时间准备试验所需的物品。
然后将羊绑在试验台上，进行颈部和下肢内侧剃毛，充分局麻下进行动静脉切开置管。
一般是在股动脉进行置管测压，在颈静脉（注意羊无颈内外静脉之分）置入漂导鞘。
然后静脉给予硫喷妥钠10-20mg/kg（书上推荐剂量是20mg/kg），注意千万不要给予肌松剂，因为插管一般不太容易，如果肌松以后恐怕诸位想对口呼吸都不行，因为羊的嘴比你的嘴巴大，而且羊嘴是突出的而不是象人类的基本在一个平面。
鄙人所在的实验室就有人用过肌松剂，最后搞成植物羊了。
待羊充分镇静入睡后即可（此时动脉压一般都稍有下降）。
用临床的最大号喉镜片插管，因为羊的嘴裂小而口腔很长。
可以用ID8.5 的导管。
插管成功后可以接呼吸机进行机械通气，麻醉维持可以使用你能够得到的一切麻醉药物，比如硫喷妥钠，安定，咪唑安定，芬太尼，等等，总的来看动物的麻醉诱导和维持的剂量比人类要大很多。
我们的实验中常规进行5 腔漂浮导管的置入。
还有两点体会，一是羊的腺体分泌很旺盛，即使使用很大剂量的抗胆碱药物仍然不能抑制。
二是羊对多巴胺的反应是增快心率为主，升压作用不明显。
打字累了，如果诸位同仁有兴趣就请跟贴鼓励，鄙人下次将其它动物麻醉方法接叙。
我们实验使用的一般就是最常见的杂种狗，也就是动物中心从市面收购来的，据说其中很多是捕狗能手从广大农村打来的野狗。
其带菌和免疫情况我们一无所知，恐怕诸位的情况也不会好到哪里去，所以请千万不要被咬到，否则就赶快打狂犬病疫苗吧。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
一、SD大鼠的麻醉
1、SD大鼠腹腔麻醉
把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。
乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。
即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。
乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。
致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。
病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。
2、SD大鼠吸入麻醉
可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC 就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。
3、SD大鼠经口气管插管
腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。
二、异氟醚大鼠麻醉
安全且具有麻醉科特色。
我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。
使用时打开盖子，将杯子对着大鼠，大鼠顺势会自己进去，然后竖起杯子盖上盖，连抓大鼠都省了，超级安全！然后接麻醉机（临床淘汰的机型，不过作试验足够了），注意要事先准备好连接管道（临床上各种管子都是可以互相接口的），打开挥发器就行了。
我们一般先开最大，大鼠一会儿不动了就麻好了（杯子要求至少半透明）。
注：我们一般同时接着氧气，所以安全有保障，而且要观察着动物，不动就行了，别麻过了！
手术过程中的维持麻醉一般也采用吸入麻醉，与诱导时基本类似。
取出诱导好的大鼠，快速固定四肢在操作板上，给大鼠口鼻处罩上剪下的合适注射器（好像是20或30ml注射器）前端，注射器头接诱导时的麻醉管道，连接到麻醉机上，一般维持时开到2，同时供氧，没有给它们插过气管插管，也没有出现窒息的（至少我没见过）。
可作除开胸外的手术，一般切皮处给予少量局麻。
作过颈部血管手术和股动静脉穿刺置管效果都很好。
三、大鼠插管麻醉
给大鼠做过气管插管，用的是改装过的小儿一次性喉镜（不用也可以），插管用的是16G的穿刺针（感觉稍有点短，但可以用的），插管时打开台灯，照着颈部位置，这是挑起舌头（其实用个弯镊子也可以的），就可以看到大鼠的声门，并不是很高，在灯光照射下，声门就像个小窗户似的，一开一合的，很明显。
但是由于空间较小，只能用一只眼看，插管时视线部分受阻，大鼠咽部反应，插管时大鼠有动作，因此插管时不要着急，先将导管放在声门附近，看准了再插。
感觉不是很难，尤其是干过麻醉的人，大家都可以试一下。
四、戊巴比妥钠麻醉大鼠
1、用戊巴比妥钠30mg/kg，不是巴比妥钠！应该配制的浓度3mg/ml，1ml/100g 体重，即30mg/kg。
如果此剂量不产生麻醉作用，说明巴比妥钠质量有问题。
2、戊巴比妥钠，2%的，就是100ml纯水加2克药，大鼠用0.2ml/100g。
3、戊巴比妥钠，1.5%的，就是100ml纯水加1.5克药，大鼠用0.2ml/100g，即30mg/kg，2%戊巴比妥钠50mg/kg，麻醉时间约为2小时左右。
书上推荐的剂量是30～50mg/kg。
做手术的30mg，麻醉不深。
4、3%的戊巴比妥钠，1ml～1.5ml/kg，但要体重称准。
5、戊巴比妥钠，40mg/kg，但不安全，用水合氯醛腹腔注射最安全，300mg/kg。
或是用乌拉坦。
用复合麻醉，2小时左右很有效。
配方：
戊巴比妥钠：0.886g
水合氯醛：4.25g
硫酸镁：2.12g
无水酒精：14.25ml
丙二醇：33.8ml
去离子水定容至100ml
用量：0.25ml/100g
6、2%戊巴比妥钠50mg/kg，书上推荐的剂量是40～50mg/kg（ip）；或者苯巴比妥钠+乙醚麻醉，效果也可以.。
7、在建立肠道缺血再灌注损伤模型中使用戊巴比妥钠，是沿用了很多同事的方案。
使用中麻醉很平稳。
效果很不错。
估计肾脏移植模型和肠道相差不大，不知对否。
五、水合氯醛
1、10%水合氯醛300～350mg腹腔注射效果还可以。
麻醉其效时间约3～5分钟，麻醉维持时间1小时左右。
如果手术时间长还可以追加1/3～1/4量。
水合氯醛价格不贵大概40～60元，最好现用现配。
2、水合氯醛是比较好的选择，如果手术实验要求麻醉时间较长，可以使用乌拉坦，该药不贵，一次腹腔注射可以维持麻醉5～8个小时。
建议不要采用戊巴比妥钠，因为该药的安全范围较窄，而且动物的个体差异比较大，容易过量而死亡，呼吸道分泌物增多也是该药产生死亡的常见原因。
3、水合氯醛和戊巴比妥钠均可以的，前者的麻醉持续时间短些，看你的手术需要了，前者的一般剂量为350～400mg/kg，后者的剂量一般可为30mg/kg，均是ip注射，安全性是很好的。
戊巴比妥钠最好用进口分装的，上海试剂公司有售。