唾液淀粉酶的性质和活力测定·
自主实验唾液淀粉酶活力的测定(共6张PPT)
▪ 0.1%氯化汞溶液：称取0.1g氯化汞溶于100ml水中即可。
四、仪器：
▪ 三角烧瓶、移液管、洗耳球、水浴锅、分光
光度计、比色杯、擦镜纸、天平、烧杯、蒸 馏水、玻璃棒、吸水纸。
五、实验操作：
▪ 1、取4个50ml的三角瓶，按下表操作：
量的ห้องสมุดไป่ตู้液，在适宜的条件下唾液淀粉酶将部 5ml溶解候混匀，定容500ml，保存在棕色瓶子中以备用。
1N碘贮存液：精确称取1. 1N碘贮存液：精确称取1.
分的淀粉水解。 5ml溶解候混匀，定容500ml，保存在棕色瓶子中以备用。
5g,共至于500ml烧杯中，加入蒸馏水350ml，并加入HCL4. 1g氯化汞溶于100ml水中即可。 从而推算出淀粉酶的活力。
化钾22.5g,共至于500ml烧杯中，加入蒸馏水350ml， 6g淀粉在50ml烧杯中，加入20ml蒸馏水调匀，转入沸水中，一分钟后冷却，定容至1000ml。
6g淀粉在50ml烧杯中，加入20ml蒸馏水调匀，转入沸水中，一分钟后冷却，定容至1000ml。
1根N据碘蓝贮色存的液深：并浅精得确出加称未取水1入.解淀粉H的C量。L4.5ml溶解候混匀，定容500ml，保存在 棕色瓶子中以备用。 1%氯化汞溶液：称取0.
淀粉可被淀粉酶水解为糊精和麦芽糖。
出淀粉酶的活力。 16%淀粉溶液（在1000ml烧杯加入800ml的蒸馏水，加热到沸腾备用。
三、试剂：
▪ 0.16%淀粉溶液（在1000ml烧杯加入800ml的蒸馏
根据蓝色的深水浅得出，未水加解淀粉热的量到。 沸腾备用。准确称取1.6g淀粉在50ml烧 杯中，加入20ml蒸馏水调匀，转入沸水中，一分钟 785g碘酸钾，碘化钾22.
唾液淀粉酶活力的测定
唾液淀粉酶活力的测定一、实验目的了解并掌握唾液淀粉酶活力的测定方法二、实验原理唾液淀粉酶能催化水解淀粉，生成分子较小的糊精和麦芽糖。
本实验利用碘的呈色反应来测定唾液淀粉酶水解淀粉作用的速度，从而测定唾液淀粉酶活力的大小。
三、实验仪器和试剂1. 仪器（1）多孔白瓷板（2）50mL三角瓶（3）恒温水浴锅（4）烧杯（5）500mL容量瓶（6）100mL容量瓶（7）漏斗（8）吸管2. 试剂（1）原碘液：称取碘11g、碘化钾22g，加少量蒸馏水完全溶解后，定容至500mL，于棕色瓶中保存。
（2）稀碘液：吸取原碘液2mL，加碘化钾20g，用蒸馏水溶解，定容至500mL，于棕色瓶保存。
（3）标准“终点色”溶液①准确称取氯化钴40.2439g、重铬酸钾0.4878g，加蒸馏水溶解并定容至500mL。
②准确称取铬黑T 40mg，加蒸馏水溶解并定容至100mL。
取①液80mL与②液10mL混合，即为终点色。
冰箱保存。
（4）2％可溶性淀粉溶液：称取烘干可溶性淀粉2.00g，先以少许蒸馏水混匀，倾入80mL沸水中，继续煮沸至透明，冷却后用蒸馏水定容至100mL。
（需新鲜配制）（5）稀释100倍的唾液用蒸馏水漱口，以清除食物残渣，然后让唾液流入量筒并稀释100倍，混合备用。
（6）0.02mol/L、pH6.8磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲溶液：称取磷酸氢二钠45.23g和柠檬酸8.07g，用蒸馏水溶解后定容至1000mL，配好后用酸度计或精密试纸校正pH。
四、操作步骤（1）将“标准色”溶液滴于白瓷板的左上角空穴内，作为比较终点色的标准。
（2）在50mL的三角瓶中，加入2％可溶性淀粉溶液20mL，加缓冲液5mL在37℃水浴中平衡约10min，加入0.5mL稀释唾液，立即记录时间，充分摇匀。
定时用滴管取出反应液约0.25mL，滴于预先充满此稀碘液（约0.75mL）的调色板空穴内，当空穴颜色由紫色变为棕红色，与标准色相同时，即为反应终点，记录时间T（min）。
酶学实验实验报告唾液
一、实验目的1. 了解唾液淀粉酶的生物学特性及其在消化过程中的作用。
2. 掌握酶活性测定的基本原理和方法。
3. 通过实验观察和分析唾液淀粉酶活性受温度、pH值等因素的影响。
二、实验原理唾液淀粉酶是一种消化酶，主要存在于唾液中，负责将食物中的淀粉分解为麦芽糖，为后续消化提供能量。
酶活性是指酶催化反应的能力，受多种因素的影响，如温度、pH值、底物浓度等。
本实验通过测定不同条件下唾液淀粉酶对淀粉的分解速率，观察酶活性变化。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 新鲜唾液- 淀粉溶液- 碘液- pH试纸- 温度计- 烧杯- 试管- 移液器2. 实验仪器：- 恒温水浴箱- 酶标仪- 移液器四、实验步骤1. 唾液淀粉酶活性测定：（1）取两只试管，分别加入2mL淀粉溶液。
（2）用移液器取1mL唾液，加入第一只试管中，混匀。
（3）将第一只试管放入37℃恒温水浴箱中，观察淀粉分解情况。
（4）每隔5分钟，用移液器取1mL反应液，加入碘液中，观察颜色变化。
（5）记录淀粉分解所需时间。
2. 温度对唾液淀粉酶活性的影响：（1）设置不同温度（如25℃、37℃、50℃、65℃）的水浴箱。
（2）重复步骤1，观察不同温度下淀粉分解所需时间。
3. pH值对唾液淀粉酶活性的影响：（1）用pH试纸测定唾液的pH值。
（2）调整唾液的pH值至不同水平（如4、5、6、7、8、9）。
（3）重复步骤1，观察不同pH值下淀粉分解所需时间。
五、实验结果与分析1. 唾液淀粉酶活性测定：在37℃恒温水浴箱中，淀粉分解所需时间为10分钟。
2. 温度对唾液淀粉酶活性的影响：随着温度升高，淀粉分解所需时间逐渐缩短，说明唾液淀粉酶活性随温度升高而增强。
在50℃时，淀粉分解所需时间最短，说明50℃为唾液淀粉酶的最适温度。
3. pH值对唾液淀粉酶活性的影响：随着pH值升高，淀粉分解所需时间逐渐缩短，说明唾液淀粉酶活性随pH值升高而增强。
在pH值为7时，淀粉分解所需时间最短，说明pH值为7为唾液淀粉酶的最适pH值。
唾液淀粉酶活性观察实验报告
2 唾液淀粉酶活性观察实验报告一、实验目的1.了解环境因素对酶活性的影响及酶的高效性；2.掌握酶定性分析的方法和注意事项。
二、基本原理1.酶是生物催化剂，具有极高的催化效率，其催化效率比一般催化剂高106~1013.在生物体内过氧化氢酶能催化H2O2分解成H2O和O2，铁粉地H2O2分解也有催化作用，但其效率远低于酶。
2.酶的活性受温度的影响。
在一定的温度范围内，温度升高，酶的活性也会增大。
当到了最大值后，此时温度为酶的最适温度，由于温度过高，酶开始失活，导致酶的效率降低，最后完全失活。
3.酶的活性受PH值的影响。
酶在一定范围的PH值下才有活性，高于或低于最适PH，都会使酶的活性降低。
4.酶活性常受到某些物质的影响。
有些物质能使酶的活性增加，称为激活剂，有些物质能使酶的活性降低，称为抵制剂。
5.碘液指示淀粉水解程度的不同色变化：淀粉淀粉酶紫色糊精淀粉酶暗褐糊精淀粉酶红色糊精淀粉酶麦芽糖+少量葡萄糖加碘后：蓝色紫红色暗褐色红棕色黄色三、试剂与器材0.5%淀粉溶液，碘液，PH＝3.8，6.8，8.0缓冲液，1%CuSO4溶液，0.9%NaCl 溶液，2%H2O2溶液，铁粉，生马铃薯糜，熟马铃薯糜，玻璃匀浆器，比色板，恒温水浴箱，三用水箱，制冰机。
四、操作步骤1.唾液淀粉酶的制备每人取一个干净的小烧杯，先用自来水漱口，将口腔内的食物残渣清除，干净。
然后取蒸馏水约20ml含入口中，做咀嚼动作了3~4min，以分泌较多的唾液。
将口腔中的蒸馏水吐入干净的小烧杯中，此即为稀释的唾液淀粉酶液。
2.酶的高效性及环境因素对酶活性的影响①PH值对酶活力的影响：取3支试管，编号：编号 1 2 3PH＝3.8的缓冲溶液3 －－PH＝6.8的缓冲溶液－ 3 －PH＝8.0的缓冲溶液－－ 30.5%淀粉溶液 1 1 1唾液淀粉酶液 1 1 1将上述各管溶液混合后在37度水浴中保温5min检查淀粉水解程度每隔1min，从2号试管中取出溶液置于白瓷板上，用碘液检查淀粉水解程度，待溶液不再变色时，从水浴中取出所有试管向各管均加入碘液1~2滴，摇匀观察，记录并解释现象②温度对酶的影响：取3支试管，编号：编号 1 2 3 唾液淀粉酶液0.5 0.5 0.5 PH＝6.8的缓冲溶液1 1 1 0.5%淀粉溶液ml 1 1 1反应温度(度，10min)0 37 100取出试管，并将在沸水浴中处理的试管用冷水冷却，然后向各管中滚圆碘液1~3滴。
口腔唾液测定实验报告
一、实验目的1. 了解口腔唾液的基本特性。
2. 掌握唾液淀粉酶活性的测定方法。
3. 分析影响唾液淀粉酶活性的因素。
二、实验原理唾液是一种无色、无味、无臭的黏稠液体，主要由水分、电解质、有机物和酶等组成。
其中，唾液淀粉酶是一种消化酶，主要参与食物的消化过程。
本实验通过测定唾液淀粉酶活性，了解唾液的基本特性，并分析影响唾液淀粉酶活性的因素。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：唾液样本、淀粉溶液、碘液、酚酞指示剂等。
2. 实验仪器：恒温水浴锅、移液器、试管、烧杯、滴定管等。
四、实验方法1. 唾液样本的采集：请实验参与者吐出唾液，收集于无菌试管中，充分混合后备用。
2. 唾液淀粉酶活性的测定：（1）取一定量的唾液样本，加入适量的淀粉溶液，充分混合。
（2）将混合液置于37℃恒温水浴锅中，定时取样。
（3）用碘液滴定剩余的淀粉，直至溶液呈现蓝色。
（4）根据消耗的碘液量，计算唾液淀粉酶活性。
3. 影响唾液淀粉酶活性的因素分析：（1）pH值对唾液淀粉酶活性的影响：设置不同pH值的缓冲液，测定唾液淀粉酶活性。
（2）温度对唾液淀粉酶活性的影响：设置不同温度的恒温水浴锅，测定唾液淀粉酶活性。
（3）激活剂与抑制剂对唾液淀粉酶活性的影响：加入适量的激活剂或抑制剂，测定唾液淀粉酶活性。
五、实验结果与分析1. 唾液淀粉酶活性测定结果：（1）实验参与者A：唾液淀粉酶活性为X U/ml。
（2）实验参与者B：唾液淀粉酶活性为Y U/ml。
2. 影响唾液淀粉酶活性的因素分析结果：（1）pH值对唾液淀粉酶活性的影响：在pH值为X时，唾液淀粉酶活性最高。
（2）温度对唾液淀粉酶活性的影响：在37℃时，唾液淀粉酶活性最高。
（3）激活剂与抑制剂对唾液淀粉酶活性的影响：加入激活剂后，唾液淀粉酶活性明显提高；加入抑制剂后，唾液淀粉酶活性明显降低。
六、实验结论1. 唾液淀粉酶是唾液中的重要成分，参与食物的消化过程。
2. pH值、温度、激活剂与抑制剂等因素对唾液淀粉酶活性有显著影响。
唾液淀粉酶活性的观察实验报告
唾液淀粉酶活性的观察实验报告摘要：唾液淀粉酶是一种能够水解淀粉质的酶，其活性可以被观察到并测量。
本实验对不同浓度淀粉溶液和唾液的淀粉酶活性进行了观察和测量，并将结果图表化。
实验结果表明，唾液对于淀粉的消化具有一定的浓度依赖性。
本实验为淀粉酶活性的研究提供了一定的参考价值。
实验目的：1.观察唾液淀粉酶的活性2.测量不同浓度淀粉溶液中唾液淀粉酶的活性实验原理：唾液中含有淀粉酶，可以将淀粉水解为葡萄糖。
水解反应需要一定的时间，根据反应物的浓度和酶的活性来决定反应的速率。
当反应物浓度大时，酶的饱和度高，反应速率也会增加。
实验步骤：1.准备不同浓度的淀粉溶液，如0.1%，0.5%和1%的淀粉溶液。
2.将淀粉溶液加入至离心管中,注入相应的唾液分别混合，并在室温下保存10分钟。
3.加入2ml的止血液，并室温下放置5分钟后停止反应。
4.将反应液室温下放置1小时，直到淀粉水解反应结束。
5.分别加入2ml的卡球蓝液，并室温下抖动管子，使卡球蓝充分混合后，观察颜色变化。
6.将各离心管中的反应液，吸取至比色皿中，并读取各样品的OD值。
实验结果：样品编号淀粉溶液浓度（%）OD值1 0.1% 0.1272 0.1% 0.1303 0.5% 0.1904 0.5% 0.1925 1% 0.2406 1% 0.241实验分析：通过实验结果可以看出，淀粉溶液浓度越高，唾液淀粉酶的活性也越高，这与理论原理相吻合。
同时，样品1和2以及样品3和4的数据相近，表明了实验具有一定的重复性。
结论：本实验通过测量唾液淀粉酶对于不同浓度淀粉溶液的消化，得出唾液淀粉酶的活性具有一定的浓度依赖性。
这为淀粉酶活性研究提供了参考价值。
唾液淀粉酶实验报告
唾液淀粉酶实验报告唾液淀粉酶实验报告引言：唾液淀粉酶是一种消化酶，能够将淀粉分解成较小的分子，为消化系统提供能量。
本实验旨在探究唾液淀粉酶的活性及其受到的影响因素。
实验材料与方法：实验材料：1. 淀粉溶液2. 唾液样本3. 碘液4. 试管5. 恒温水浴6. 酒精灯7. 显微镜8. 盖玻片实验方法：1. 取一定量的淀粉溶液倒入试管中。
2. 加入一滴碘液，观察试管中溶液颜色的变化，记录下颜色。
3. 将一定量的唾液样本加入另一个试管中。
4. 将两个试管放入恒温水浴中，保持温度恒定。
5. 同时开始计时，每隔一分钟，分别取出两个试管中的溶液滴在盖玻片上。
6. 用显微镜观察滴在盖玻片上的溶液，记录下观察结果。
7. 重复以上步骤，分别在不同温度和不同pH值条件下进行实验。
实验结果及讨论：在初始状态下，淀粉溶液的颜色为深蓝色，加入碘液后，颜色变为紫黑色。
这是因为碘液与淀粉反应生成了淀粉碘复合物，导致颜色变化。
在观察唾液淀粉酶活性的实验中，我们发现随着时间的推移，滴在盖玻片上的溶液逐渐变浅，最终变为无色。
这说明唾液淀粉酶能够将淀粉分解成较小的分子，从而使溶液中的淀粉含量减少。
在不同温度下的实验中，我们发现唾液淀粉酶的活性受到温度的影响。
当温度较低时，唾液淀粉酶的活性较低，反应速率较慢；而当温度较高时，唾液淀粉酶的活性较高，反应速率较快。
这是因为温度能够影响酶的构象和分子振动，从而影响酶的活性。
在不同pH值条件下的实验中，我们发现唾液淀粉酶的活性也受到pH值的影响。
在中性条件下，唾液淀粉酶的活性最高；而在酸性或碱性条件下，唾液淀粉酶的活性较低。
这是因为酶的活性受到pH值的影响，过高或过低的pH值会破坏酶的构象，从而降低酶的活性。
结论：通过本实验，我们得出了以下结论：1. 唾液淀粉酶能够将淀粉分解成较小的分子。
2. 唾液淀粉酶的活性受到温度的影响，温度越高，活性越高。
3. 唾液淀粉酶的活性受到pH值的影响，中性条件下活性最高。
唾液定性实验报告
一、实验目的1. 了解唾液淀粉酶的生物学特性及其在消化过程中的作用。
2. 掌握唾液淀粉酶活性定性的实验方法。
3. 通过实验，验证唾液淀粉酶对淀粉的分解作用。
二、实验原理唾液淀粉酶是一种消化酶，主要存在于唾液中，能够将淀粉分解为麦芽糖，从而为人体提供能量。
在实验中，通过观察淀粉在唾液作用下的变化，可以定性分析唾液淀粉酶的活性。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：唾液、淀粉糊、碘液、烧杯、试管、滴管、温度计。
2. 实验仪器：恒温水浴锅、显微镜、离心机、pH计。
四、实验方法1. 取两支试管，分别编号为甲、乙。
2. 在甲试管中加入2ml唾液，乙试管中加入2ml清水。
3. 分别向甲、乙试管中加入2ml淀粉糊。
4. 将甲、乙试管放入37℃恒温水浴锅中，保温5分钟。
5. 取出试管，用滴管分别向甲、乙试管中加入1滴碘液。
6. 观察甲、乙试管中溶液的颜色变化。
五、实验现象1. 甲试管中加入唾液后，淀粉糊颜色变浅，碘液滴加后，溶液呈淡黄色。
2. 乙试管中加入清水后，淀粉糊颜色无变化，碘液滴加后，溶液呈蓝色。
六、实验结果与分析1. 通过实验现象可知，唾液对淀粉具有分解作用，而清水对淀粉无分解作用。
2. 根据实验原理，唾液中的唾液淀粉酶将淀粉分解为麦芽糖，导致溶液颜色变浅。
3. 实验结果表明，唾液淀粉酶活性较高，能有效地分解淀粉。
七、实验讨论1. 实验过程中，温度对唾液淀粉酶活性有一定影响。
在37℃恒温水浴锅中，唾液淀粉酶活性最高，因此选择此温度进行实验。
2. 实验过程中，唾液浓度对淀粉分解速度也有一定影响。
实验中采用2ml唾液，可以使淀粉糊颜色变浅，便于观察。
3. 实验过程中，碘液的作用是检测淀粉分解程度。
当淀粉被分解为麦芽糖后，碘液与麦芽糖反应，溶液颜色变浅。
八、实验结论通过本次实验，验证了唾液淀粉酶对淀粉的分解作用。
实验结果表明，唾液中的唾液淀粉酶活性较高，能有效地分解淀粉，为人体提供能量。
九、实验注意事项1. 实验过程中，要注意操作规范，避免污染。
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唾液淀粉酶的性质和活力测定
一．实验目的
（一）1通过唾液淀粉酶性质的测定，了解酶的专一性和多种因素对酶粗反应的影响，pH，底物浓度，温度，激活剂，抑制剂等2学习酶活力，酶活力单位，比活力的测定，加深对概念的理解；
3学会用考马斯亮蓝法测定蛋白质的含量，学会用3,5-二硝基水杨酸测定还原糖的含量，熟练操作分光光度计。
二．实验试剂和器材
器材：可见光分光光度计，试管，移液管，恒温水浴锅，pH试纸，1000ml容量瓶和100ml的容量瓶各一只；
药品：可溶性淀粉，考马斯亮蓝试剂G-250，3,5-二硝基水杨酸，NaoH,HCL，标准牛血清白蛋白溶液，醋酸，醋酸钠，蒸馏水，95%乙醇，85%磷,；0.15molNaCL/ml，0.15mol/L硫酸铜溶液，碘化钾–碘溶液：将碘化钾20克和碘10克溶解在100ml水中，使用前稀释10倍。
注：（1）考马斯亮蓝G-250试剂：考马斯亮蓝试剂G-250100mg 溶于95%乙醇中，加入100ml85%磷酸，加水稀释至1000ml，过滤即可。
（2）标准牛血清白蛋白溶液：结晶牛血清白蛋白用凯式定氮法测蛋白含量，根据其纯度用0.15mol/L Nacl配置成0.1mg/L的蛋白液；
（3）配置0.01%g/ml,0.1%g/ml,，0.5%g/ml,1%g/ml,2%g/ml,3%g/ml 的的溶性淀粉溶液;
(4)配置一系列pH2的缓冲溶液
0.2Mol/L磷酸氢二钠溶液为28.40g/L,Mr=141.98,称取2.84g溶于100ml的水中
5配置0.15mol/L的NaCL溶液和0.15mol/L硫酸铜溶液
三．实验步骤
（一）
1 pH的对酶的影响
1）葡萄糖标准曲线的制定
准确称取100mgAR纯的葡萄糖，溶于蒸馏水中，定容于100ml的容量瓶中，配成1.0mg/L的溶液，水浴加热5min，迅速取出冷却，在向每管加入21.5ml的蒸馏水于550nm处测吸光度；
2）取一试管加入2ml淀粉并滴加两滴碘液，加入适量的酶，记录溶液颜色退去的时间，作为接下来各步反应的反应时间t；
3）取十二只试管并编号分别加入2ml缓冲液
加入2ml，0.1%淀粉，再加入适量的酶，反应t后加入3,5-二硝基水杨酸1.5毫升，水浴加热5min，迅速取出冷却，在向每管加入21.5ml 的蒸馏水于550nm处测吸光度；
4）由pH值和吸光度做曲线，找出最适pH值
2温度对酶活性的影响
1）取十只试管并编号，分别加入2ml，0.1%淀粉液和相同量的酶同时置于0---100，温度间隔10度，反应t后加入3,5-二硝基水杨酸1.5毫升，水浴加热5min，迅速取出冷却，在向每管加入21.5ml的蒸馏水于550nm处测吸光度；
2）由吸光度和温度做曲线，找出最适温度值
3底物浓度对酶活性的影响
1）取十只试管并编号并编号1-10，由1,2步知最适温度和最适PH调节温度PH值至最合适，然后分别加入0.01%g/ml,0.1%g/ml,，0.5%g/ml,1%g/ml,2%g/ml,3%g/ml淀粉溶液2ml并加入等量的酶，反应t后加入3,5-二硝基水杨酸1.5毫升，水浴加热5min，迅速取出冷却，在向每管加入21.5ml的蒸馏水于550nm处测吸光度；
2）做吸光度和底物浓度的曲线图，找出最适底物浓度；
4激活剂和抑制剂对酶活性的影响
取三试管并编号123，分别加入2ml0.1%淀粉溶液，加入最适pH值
的缓冲液并在最适温度水浴中保温5min
后加入1m稀释的唾液淀粉酶，T时间加入3,5-二硝基水杨酸1.5毫升，水浴加热5min，迅速取出冷却，在向每管加入21.5ml的蒸馏水于550nm处测吸光度；
比较吸光度的大小；
（二）酶活力和比活力的测定
1)蛋白质标准曲线的制作
取十二只试管平行操作
2）用标准蛋白质质量为横坐标，吸光度为纵坐标做标准曲线
3)定义：酶活力单位：每分钟生成1mg葡萄糖所需的酶量
4）取一只试管加入一定的酶液（用移液器）加入考马斯亮蓝G-250试剂1.00ml，并和0号管对比，加0.15mol/LnaCL是液面齐平，混匀，1h以内已0号试管为空白对照，在595nm处比色测吸光度；
5）根据蛋白质标准曲线求出酶蛋白含量；
6）调节ph加入最适淀粉量，t时间后加入3,5-二硝基水杨酸1.5毫升，水浴加热5min，迅速取出冷却，在向每管加入21.5ml的蒸馏水于550nm处测吸光度；
7）由葡萄糖标准曲线求出此时的葡萄糖含量；
8）计算酶活力和酶比活力；。