DNA测序常见问题及其分析
DNA测序技术的使用中常见问题

DNA测序技术的使用中常见问题DNA测序技术是一项重要的科学工具,被广泛应用于生物医学研究、进化学、司法科学等领域。
然而,在使用DNA测序技术的过程中,常常会遇到一些问题。
本文将介绍DNA测序技术使用中常见的问题,并提供相应的解决方案。
1. 样品质量问题在DNA测序之前,样品质量是至关重要的。
低质量的样品会导致测序结果的偏差和错误。
常见的样品质量问题包括样品的纯度不高、浓度不足或者样品受到了污染。
解决方案:- 提高样品纯化方法:使用恰当的纯化试剂和技术来提高样品的纯度,例如使用芳香族化合物或异维酮类物质。
- 检测样品浓度:使用光谱法或者比色法来测量样品中DNA的浓度,确保其符合测序要求。
- 避免样品污染:在样品处理过程中,严格遵守无菌操作规程,使用经过无菌过滤器过滤的试剂和器具。
2. 序列读取长度问题DNA测序技术可以产生从数十个碱基对到上百万个碱基对的序列。
然而,部分DNA测序技术的读取长度有限,这可能影响到某些研究或应用的结果。
解决方案:- 选择合适的测序方法:不同的测序方法具有不同的读取长度,选择适合自己研究目的的测序方法,以满足相关的研究需求。
- 使用测序技术的新发展:不断发展的测序技术,如第三代测序技术,具有较长的读取长度和更高的准确性,可以解决传统测序方法的限制。
3. 突变检测问题DNA测序技术不仅可以用于确定特定序列的顺序,还可以用于检测和鉴定突变。
然而,突变的检测可能受到多种因素的影响,如检测方法的灵敏度和特异性、突变类型的多样性等。
解决方案:- 选择合适的突变检测方法:不同的突变具有不同的检测方法,如SNP分析、插入和缺失突变的分析等。
选择合适的方法来检测特定类型的突变。
- 结合多种检测方法:结合使用不同的突变检测方法可以提高突变检测的准确性和可靠性。
- 验证突变结果:通过使用其他独立的测序技术或方法来验证突变结果,以确保结果的可靠性。
4. 数据分析问题DNA测序技术生成的数据量巨大,数据分析是一个复杂而耗时的过程。
DNA测序常见问题分析及解决办法

客户自己提供2ug纯化好的质粒
PCR产物定量
极低
重新电泳检测已纯化的PCR产物,确认有足够的量,或提供PCR原液由公司进行纯化
测序结果正常,与预期不符
找不到引物
质粒模板
检测是否为空载体,从其互补链上寻找,克隆位点离测序引物太近,长插入片段未测通。
PCR模板
不可能找到所用的测序引物,短片段可以从互补链上找到另一段的引物,长片段由于测不通,无法找到相应序列想得到全序列,短片段可以从两端进行测序,长片段需要经克隆后进行测序。
现象
可能原因
是否收费
收
不收
反应无信号或全部杂峰
引物与模板结合不好(引物或模板原因)
不收
质粒抽提未成功
质粒太大或活化方式不好、转化不好
不收
鉴定质粒或PCR浓度
建议50ul(pcr)/20ul(质粒)去离子水溶解
不收
帮助客户设计引物和序列拼接
不收
300bp以前中断或衰减
高级结构GC结构重复序列
PCR除外
收
客户提供引物导致测序结果不理想
引物不纯
收
质粒抽提成功率60%以下(大单)
质粒太大或活化方式不好、转化不好
质粒抽提不成功的,加收3元/质粒
验证实验结果,两次结果
一致
收2次费
不一致
收1收费
PCR原液纯化后
无反应结果
引物与模板结合不好(引物或模板原因)
收纯化费
不收测序费
测反向互补序列,AC结构不影响测序
严重的重复结构
测反向互补序列
模板特性决定的
根据具体情况决定
信号极弱或无信号
信号极弱或无信号
模板质量差
DNA测序常见问题分析及解决办法总结

请提供详细资料我们会根据结果具体分析。
常见问题
具体情况
可能的原因
处理办法
备注
样品准备问题
菌培养不好或失败
抗性不对或菌已死
核对抗性,尽可能提供载体信息。
或菌培养条件特殊
重新提供菌液,或提供2ug纯化质粒。
质粒提不出
质粒拷贝数极低或
客户自己采取大量提取的方法提供2ug纯化质粒。
培养方式不当
质粒产量很低
低拷贝数质粒或
客户自己采取大量提取的方法提供2ug纯化质粒。
培养方式不当
自带质粒或已纯化PCR产物量极低
是否为电泳法定量,
质粒:电泳检测浓度大于100ng/ul,体积大于20ul。
测OD值法不可靠,电泳检测
总量是否足够
已纯化PCR产物:根据片段长度提供足够量的模板,一般要求是100ng/反应/Kb,进行多个反应的应相应增加量。
测序出现双峰或信号中断
双峰
重复序列,如polyT、polyA或几个碱基重复
质粒产量极低
客户自己提供2ug纯化好的质粒
PCR产物定量极低
重新电泳检测已纯化的PCR产物,确认有足够的量,或提供PCR原液由公司进行纯化
测序结果正常,与预期不符
找不到引物
质粒模板
检测是否为空载体,从其互补链上寻找,克隆位点离测序引物太近,长插入片段未测通。
PCR模板
不可能找到所用的测序引物,短片段可以从互补链上找到另一段的引物,长片段由于测不通,无法找到相应序列想得到全序列,短片段可以从两端进行测序,长片段需要经克隆后进行测序。
用反向引物中出现套峰
可能是样品非单克隆,挑其他克隆测序。
PCR产物测序中,某一点后序列变乱
4.DNA测序故障排除

32
红色污染
33
测序产物稳定性
34
室温80h后的测序长度
Q20 Read Length (bases)
0 hr 2 hrs 4 hrs 12 hrs 14 hrs 16 hrs 24 hrs 26 hrs 28 hrs 36 hrs 38 hrs 40 hrs 48 hrs 50 hrs 52 hrs 54 hrs 60 hrs 62 hrs 64 hrs 72 hrs 74 hrs 76 hrs 84 hrs 86 hrs 88 hrs
分装,高压消毒。
30
2nd or 3rd Panel的大T峰
G-Breakdown/G-bolbs
31
荧光污染物质
迁移率与400 bp片段相当,所以出现在400 bp处 激光照射下产生荧光,所以出现杂峰 因为其波长与BigDye碱基不同,所以“透明” 在通风橱里吹一段时间,污染物质蒸发后,信号变干净
44
富AG区域
BDT v2 BDT v3.1
46
BigDye Terminator v3.1
0
ABI 168
BigDye T.0erminator v2
BigDye Terminator v3.1
47
引物
引物合成质量不佳
合成时部分引物 多一个碱基
合成时部分引物 少一个碱基
软件使用
49
重设起点 读出更多数据
引物峰在2300点左右才出现
71
出峰时间延迟的原因
毛细管离开水或者缓冲液一段时间 – 严重程度取决于环境 样品里面有杂质 Block或者毛细管里有气泡 电泳缓冲液稀释错误 Block不畅通 Syringe pump故障
72
DNA测序结果中常见的几个问题

1 、为什么开始一段序列的信号很杂乱,几乎难以辨别这主要是因为残存的染料单体造成的干扰峰所致,该干扰峰和正常序列峰重叠在一起;另外,测序电泳开始阶段电压有一个稳定期,所以经常有20-50 bp 的紧接着引物的片段读不清楚,有时甚至更长。
2 、为什么在序列的末端容易产生 N 值,峰图较杂由于测序反应的信号是逐渐减弱的,所以序列末端的信号会很弱,峰图自然就会杂乱,加上测序胶的分辨率问题,如果碱基分不开,就会产生 N 值,正常情况下ABI377测序仪能正确读出500个碱基的有效序列。
3 、测序结果怎么找不到我的引物序列如果找不到测序所用的引物序列。
这是正常的,因为引物本身是不被标记的,所以在测序报告中是找不到的;如果找不到克隆片段中的扩增引物,可能是您克隆的酶切位点距离您的测序引物太近,开始一段序列很杂,几乎难以辨别,有可能看不清或看不到扩增引物;另外插入片段的插入方向如果是反的,此时需找引物的互补序列。
4 、测序结果怎么看不到我克隆的酶切位点可能的原因同上,您克隆的酶切位点距离您的测序引物太近,开始一段序列很杂,几乎难以辨别,有可能看不清或看不到酶切位点。
通常我们会尽量选择距离酶切位点远点的引物,当然,若是样品出现意外原因,如空载、载体自连等,克隆的酶切位点也是看不到的。
5 、你测出的结果与我预想的不一致,给我的结果与我需要的序列有差距,这是怎么回事首先,我们会核实给您的测序结果是否对应您的样品编号,如果对应的是您的样品,由于不知您的实验背景,测得的序列是否与您预想的结果一致我们无法判断,我们能做到的是检查发送给您的测序结果和您提供来的样品是否一致。
6 、序列图为什么会有背景噪音(杂带)是否会影响测序结果序列图的背景杂带是由荧光染料引起,如果太强会影响测序结果,要看信噪比,我们给的结果信噪比大都在98%以上。
7 、测序结果为什么与标准序列有差别原因可能有:样品个体之间的差别、测序准确率的问题,自动测序仪分析序列的准确并非100%,建议至少测一次双向,通过双向测序可以最大限度减少测序的错误。
一代测序常见问题及解决策略

测序常见问题及解决策略一、PCR常见问题1.假阴性,不出现扩增条带PCR出现假阴性结果,可从以下几个方面来寻找原因:1)模板:①模板中有杂蛋白;②模板中有Taq酶抑制剂;③在提取制备模板时丢失过多;④模板核酸变性不彻底。
2)酶:酶失活或反应时忘了加酶。
3)Mg2+浓度:Mg2+浓度过高可降低PCR扩增的特异性,浓度过低则影响PCR扩增产量甚至使PCR扩增失败而不出扩增条带。
4)反应条件:变性对PCR扩增来说相当重要,如变性温度低,变性时间短,极有可能出现假阴性;退火温度过低,可致非特异性扩增而降低特异性扩增效率退火温度过高影响引物与模板的结合而降低PCR扩增效率。
5)靶序列变异:靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,其PCR扩增是不会成功的。
2.假阳性假阳性:出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致,有时其条带更整齐,亮度更高。
常见原因有:1)引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。
靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。
需重新设计引物。
2)靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。
这种假阳性可用以下方法解决:操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。
二是空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。
可互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致假阳性的产生,可用巢式PCR方法来减轻或消除。
3.出现非特异性扩增带PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致,或大或小,或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。
非特异性条带的出现,其原因:一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。
二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低,及PCR循环次数过多有关。
三是酶的质和量,往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现,酶量过多有时也会出现非特异性扩增。
DNA测序中的一些常见问题和对策

其抗 <+ 抗体属中和抗 $%&’# 和 $%&’! 的共同抗原决定簇, 体, 中和病毒的能力最强, 能与 $%& 的 <+ 抗原特异结合, 结 果改变了病毒的表面结构, 阻断了病毒对宿主细胞的吸附,
[@] 使病毒失去了感染能力 。本实验所用的 5678% 中既有能
识别 $%& 的 <;、 也有 <+ 抗原的型共同性特异性单克隆抗体, 能识别 $%& 的 <= 的型特异性单克隆抗体, 体外中和试验也 证明其中和效价为 #( 2 #( , 具有很强的中和病毒的作用
[$, %] 序, 都存在下列问题 。
点琼脂糖凝胶回收并用专用试剂盒纯化, 注意纯化后要进行 电泳检测。 # 测序信号提前共同终止, 测序反应无法继续进行
[@] 、 常见原因: 模板 !"# 中有二级结构形成 8"?& 浓度不
当或模板浓度过大, 导致测序反应提前终止。 对策: 一般商售试剂盒中配套试剂很少出现问题, 若为 自制试剂, 可予替换或重新配制, 再重复实验。由于测序反 应要求模板必须为单链, 所以对于二级结构形成导致的测序 反应共同终止, 可以提高模板变性温度使之充分分解为单 链, 或加入甲酰胺使模板变性充分、 彻底。 $ 无正常测序信号 常见原因: 引物设计不当或模板 3A’ 含量过高。 对策: 测序引物通常分为通用引物和特异性引物。前者 是针对不同克隆载体设计的引物, 一般不会存在上述问题。 特异性引物是指与模板特异性且唯一性结合的引物, 设计原 则如下: ($) 引物长度 ! $= .B, 一般 %)%C .B; ( %) 3A’ 含量 ! 一般为 C)D<)D ( ;@) 避免引物自身形成互补; ( E) C)D , @F 末 端为 3 或 ’ 更为合理。模板 3A’ 含量过高者可采用专门为 高 3A’ 含量模板设计的测序试剂盒。 靠近引物的区域, 其测序信号可能由于引物峰遮盖而无 法阅读, 是 测 序 的 难 点。可 以 尝 试 加 入 /*% G( $)) HH64 , I
总结了测序中经常遇到的问题及原因分析,希望对大家有帮助!

总结了测序中经常遇到的问题及原因分析,希望对大家有帮助!Q:测序结果中为什么找不到引物序列?A:找不到用来测序的引物,这是正常的,因为测序的方法是荧光标记测序法,仪器通过检测 ddNTP 上的荧光来读取所测序列,而引物本身是不被标记的,所以仪器无法检测到;找不到所测片段的扩增引物,这种情况是因为您所采用的酶切位点离所用的测序引物距离太近,一般荧光燃料会干扰几十个碱基的读取,这部分碱基会损失掉,损失掉的序列很可能就包含引物的序列,所以引物的序列无法找到;测出的引物序列是原引物序列的反向互补序列,这是因为 TA 克隆的插入没有方向性,如果插入片段是相反的,这时就要反向互补查找引物;测出的结果为空载体,这是因为由于某种原因导致质粒上没有插入外源片段,这时所测的为载体序列,所以就找不到引物了;存在单引物扩增,有一条引物的特异性不好,有多个结合位点,导致只有一条引物参与扩增。
Q:为什么测序结果中引物的序列有个别碱基不同了?A: 这是因为引物区同样存在错配的可能,出现这种可能性有两种: 合成错误和引物区有错配我们可以挑选同批次 2个以上的克隆进行测序验证,如果结果完全相同,应该是合成错误;如果在引物的相同位置错误的碱基不一样那就应该是引物区有错配。
Q:哪些引物不适合作为测序引物?A:①兼并引物:简并引物要在测序模板上有多个结合位点,直接影响测序结果;②随机引物:如 RAPD 引物,随机引物一般都比较短,所用退火温度低,在测序反应的条件下,不能很好地与模板结合;③过长的引物:一般要求测序引物不大于 24bp,过长的引物在测序反应的较低的条件下容易在测序模板上有多个结合位点,导致测序结果背景增高。
另外,较长的引物纯度也将难以保证。
通常用于测序的引物纯度要在 90%以上,引物纯度低时,测序反应的背景将明显增大,直接影响到测序结果;④有特殊标记的引物:该情况主要指荧光标记的引物。
我们测序反应的四种碱基都是荧光标记的,这样,荧光标记的引物将产生干扰。
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测序常见问题及其分析Collected by RobertoRun,12.10.2008(From: HTUTUUUTTH)1、PCR产物测序时出现重叠峰问题图1(模板中有碱基缺失,往往是单一位点(1-1)或两个位点(1-2)碱基缺失导致测序结果移码)图1-1图1-2解决方法:将PCR产物克隆到质粒(如T载体)中挑单克隆测序,或将PCR 产物进行PAGE纯化(至少琼脂糖充分电泳后切胶纯化)后再进行测序。
问题图2(PCR产物不纯,含部分序列一致的两种以上的片段,长度不一)图2解决方法:主要原因是PCR产物没有纯化,含有部分序列一致的两种以上长度不一的片段,将PCR产物进行PAGE纯化(至少琼脂糖充分电泳后切胶纯化)后再进行测序,便可解决。
问题图3(测序引物有碱基缺失)测序引物有碱基缺失(一般是引物的5'端缺失),和模板的碱基缺失即图1有些类似,所不同的是模板碱基缺失一般是在一段正常测序序列后才出现移码,而引物碱基缺失的话,则从测序一开始就出现移码,表面在图形上便是一开始就是严重的峰形重叠。
解决方法:重新合成引物,或将引物进行PAGE纯化2、克隆测序时出现峰形重叠原因:所挑选的重组子不是单克隆,所提供的测序用质粒中含有两种以上插入片段不同的质粒;或是是送测序的菌液污染解决方法:重新挑单克隆的菌落(划线分离单菌落),提质粒或送菌液再次测序。
3、样品有杂合/突变位点模板中有杂合型突变,也就说模板本身在这个位点出现突变;或者是从基因组中扩增出来的杂合位点。
如果模板有杂合(突变或缺失),那么测序图形中其他的位點一般都是單一的峰形,然后突然在某一個位點出現重叠峰(如图中箭頭所示)。
解决方法:建议将DNA片段克隆到载体再测序。
4、poly A/T和C/G cluster导致的套峰和测序信号衰减图4-1图4-3图4-4RACE测序时经常遇到图4-1和图4-4的情形,解决方法:从另一端测序;但如果这样的序列出现在中间,呵呵,目前还没有很好的解决方法,要看测序公司的本事了。
C/Gcluster在PrV基因组测序时遇到过。
后来还是让TaKaRa公司给解决了,虽然不喜欢鬼子,但有时候却不得不用它们的产品和服务。
5、基因中含有重复序列可能的原因:样品中含有重復序列导致的测序结果和PolyA/T的结果一样,会导致Frame滑动,较短的重復序列会导致测序结果出现移码;而较长的重復序列会使定序信号衰减。
解决办法:反向测序有时能够顺利的通过重復序列区域(但不是一定都能够),通过多次的测序结果比对,拼接可以得到全序列结果。
TT测序结果常见的几个问题TT(From: HTUTUUUTTH )1 、为什么开始一段序列的信号很杂乱,几乎难以辨别?这主要是因为残存的染料单体造成的干扰峰所致,该干扰峰和正常序列峰重叠在一起;另外,测序电泳开始阶段电压有一个稳定期,所以经常有20-50 bp 的紧接着引物的片段读不清楚,有时甚至更长。
2 、为什么在序列的末端容易产生 N 值,峰图较杂?由于测序反应的信号是逐渐减弱的,所以序列末端的信号会很弱,峰图自然就会杂乱,加上测序胶的分辨率问题,如果碱基分不开,就会产生 N 值,正常情况下ABI377测序仪能正确读出500个碱基的有效序列。
3 、测序结果怎么找不到我的引物序列?如果找不到测序所用的引物序列。
这是正常的,因为引物本身是不被标记的,所以在测序报告中是找不到的;如果找不到克隆片段中的扩增引物,可能是您克隆的酶切位点距离您的测序引物太近,开始一段序列很杂,几乎难以辨别,有可能看不清或看不到扩增引物;另外插入片段的插入方向如果是反的,此时需找引物的互补序列。
4 、测序结果怎么看不到我克隆的酶切位点?可能的原因同上,您克隆的酶切位点距离您的测序引物太近,开始一段序列很杂,几乎难以辨别,有可能看不清或看不到酶切位点。
通常我们会尽量选择距离酶切位点远点的引物,当然,若是样品出现意外原因,如空载、载体自连等,克隆的酶切位点也是看不到的。
5 、你测出的结果与我预想的不一致,给我的结果与我需要的序列有差距,这是怎么回事?首先,我们会核实给您的测序结果是否对应您的样品编号,如果对应的是您的样品,由于不知您的实验背景,测得的序列是否与您预想的结果一致我们无法判断,我们能做到的是检查发送给您的测序结果和您提供来的样品是否一致。
6 、序列图为什么会有背景噪音(杂带)?是否会影响测序结果?序列图的背景杂带是由荧光染料引起,如果太强会影响测序结果,要看信噪比,我们给的结果信噪比大都在98%以上。
7 、测序结果为什么与标准序列有差别?原因可能有:样品个体之间的差别、测序准确率的问题,自动测序仪分析序列的准确并非100%,建议至少测一次双向,通过双向测序可以最大限度减少测序的错误。
当然尽管我们有时做了最大努力,但还是保证不了和文献序列完全一致,但我们测序报告是客户样品序列的真实结果。
8 、 PCR 产物测序与克隆后测序序列为什么有差别?PCR 产物克隆到载体中进行测序,有两个方面可能序列有变化:首先, PCR 扩增过程中可能产生错配。
将片段克隆到载体中也有可能发生突变;其次,测序的准确率并非100%。
9 、有杂合位点,但你们的报告上看不到杂合的信号!如果在您认为应该出现杂合信号的位置上只出现单一的信号,那么可能是您样品突变的模板与正常的模板的比例没达到可以测出的浓度。
测序反应的信号强度直接与模板的量有关,如果突变的模板所占的比例很低,仪器会自动将它作为背景信号了,很难检测出来。
只有当测序反应体系中正常的和突变的模板量比较接近时,才能较可靠地检测到突变体的存在。
其次,在同一位置,不同碱基的信号强度一般是不一样的,这样即使突变的模板所占的比例较高时,也不一定能准确检测到突变的存在,因为,测序仪是主要用来测序正常的碱基序列的,软件分析结果时,会尽量提高主峰而将背景信号尽量压低,以得到尽可能好的结果。
尊重结果,我们是不会人为将出现单一的信号修改为杂合位点的。
10 、 DNA 测序样品用 TE 溶液溶解好不好?由于 EDTA 是 Taq 聚合酶的一种潜在的抑制物, DNA 的测序反应也是 Taq 酶的聚合反应,需要一个最佳的酶反应条件,因此 DNA 测序样品溶解时,最好用灭菌水溶解。
11 、我送什么形式的菌体样品好?菌体的一般形态有、菌液,平板培养菌、穿刺培养菌,甘油保存菌等。
我们建议客户所送的形态以方便且不易受污染为准则,推荐穿刺培养菌。
上海客户用过夜培养好的菌液2 ml 。
12 、为什么你们给我的序列是反的?测出来的结果与您预期的方向并不一致,可能是片断插入方向是非定向的,这在PCR 产物 T/A 克隆中较常见。
有时,客户要求的测序引物离克隆位点较近,如果反向引物相对克隆位点较远,为得到更好的结果,我们会选择反向引物测序,若是这种情况,用看图软件 Chromas 可以把图反转过来,就可得到正向序列。
13 、 Template mixed 为何种情况?测序结果表现为套峰,测序反应信号很好,测序结果杂乱,即同一个位置有二个峰。
原因可能有:样品并非单一模板、 PCR 产物中有杂带、质粒为双克隆产物、引物特异性不高,有两个结合点, PCR 产物电泳时看不出,但测序结果能清楚地说明这点。
14 、 polyT 或 polyA 后峰图杂,怎么也要收费?这种情况一般表现为 A 、 T 连续结构后面的测序结果出现套峰,是样品的内在原因。
这类问题我们应该同正常测序一样,给客户报告,反应按正常收费。
15 、我的引物做 PCR 条带很好,但为什么测不出序来?并不是能做 PCR 反应的引物都能测序,测序所用引物要求较高,必须与模板完全匹配(有时 5' 端可以有个别碱基的简并),引物长度一般为20个碱基左右、 GC 含量适中,而且用于测序的引物一定要足够纯。
16 、如果我的菌种培养得很好,测序应该不会有问题吧?对于宿主菌,提倡使用宿主菌DH5 α, DH1 、和 C600 E.coli 菌株也可,XL1-Blue E.coli 菌株也不错,但其生长过慢。
JM 系列、 TG1 系列和 HB101 系列 E.coli 菌株等由于产生大量的碳水化合物(即糖),而应当尽量避免使用;其它宿主菌可能会对测序造成影响。
17 、为什么 G/C rich 的样品没结果或结果不好,照常收费?由于 G/C 连续结构有时会造成反应中途无法正常进行,如果结构在引物下游近处,反应只有一小段的信号,有时甚至反应根本没信号。
对于这种情况,本身就潜在不确定性的测序,有很大的失败因素。
18 、 PCR 产物150 bp 以下的为什么不适于直接测序?PCR 产物 150bp 以下的纯化和定量都有一定困难,用于测序的 PCR 产物一般不低于150 bp 长度。
一个150 bp 的 PCR 产物用于测序,去掉两个引物的序列大约40到50 bp ,再加上测序起始端的一些读不好的碱基,真正能够得到的有用序列不过几十碱基。
这只是最理想的假设,这么短片断测序失败的几率非常大,因此只能克隆后再进行测序。
19 、我的质粒样品很好,测序结果怎不好?由于原因不明的复杂结构如发卡和回文结构,有时会出现突然信号减弱或消失;有时测序根本不能进行下去, DNA 碱基排列并无特别异常,可能是 DNA 整体出现复杂结构,反应无法进行。
20 、我的样品还保留了吗?我想现在反向再测一个反应。
出于保密原则我们测序样品只保留一个月,所以若要再测序,请抓紧时间,否则只有重新送样。
21 、已经测通了样品,但重叠的地方有错配,是为什么?测通的全序列是拼接后的结果,由于拼接处一般是在一次测序的末端和次个反应开始一段,通常会有一定的杂带,以序列信号好的为主,次的为参考,但也不绝对。
常见峰图及原因说明(From: HTUTUUUTTH )1.PCR产物电泳检测条带单一,为什么测序结果说模板杂?2. 什么是碱基缺失?3. 什么是引物不纯?4. 重复结构对测序有哪些影响?5. 什么是模板不单一?6. Poly结构的测序结果是怎样的?7. 含有回文结构的模板测序结果是怎样的?8. 测序峰图为前双峰的结果是什么样的?9. 测序峰图为后双峰是什么样的?10. 无信号的结果:信号值(ATGC的平均值)皆小于10011. 飘峰:这是由于用3.0特殊试剂盒时碱基产生替代而出现碱基位移12. 没有任何干扰的结果Q-1.PCR产物电泳检测条带单一,为什么测序结果说模板杂?A-1.PCR产物电泳检测的结果只是一个粗略的定性结果。
对于与目的片段条带大小只相差几个碱基的非特异性PCR扩增产物是无法用肉眼区分开的。
但是DNA 测序反应敏感而客观,可以直接反应出模板本身的情况。
需要强调的是,高质量的PCR产物才可能得到高质量的测序结果,如果您对PCR产物的纯度不很确定,希望您可以将PCR产物进行克隆处理,以确保得到好的测序结果。