侧流免疫层析实验实验报告

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层析法_实验报告

层析法_实验报告

一、实验目的1. 了解层析法的原理和操作步骤。

2. 掌握利用层析法分离氨基酸的方法。

3. 熟悉层析实验中各种试剂和仪器的使用。

二、实验原理层析法是一种利用混合物中各组分在两相中分配系数不同,通过流动相的移动使各组分在固定相上形成不同的浓度梯度,从而实现分离的方法。

在本实验中,我们使用纸层析法分离氨基酸混合物。

纸层析法的基本原理是:滤纸作为固定相,氨基酸混合物作为样品,展开剂作为流动相。

样品点在滤纸一端,展开剂在滤纸上扩散,使氨基酸在固定相和流动相之间进行分配,从而实现分离。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:氨基酸混合物、滤纸、展开剂、显色剂等。

2. 实验仪器:层析槽、滴管、铅笔、剪刀、尺子、显微镜等。

四、实验步骤1. 准备层析槽:将滤纸剪成长约10cm、宽约2cm的条状,对折成V形,并将两端用剪刀剪去一小段,使其呈三角形状。

2. 准备样品:取一定量的氨基酸混合物,用少量蒸馏水溶解,配制成一定浓度的溶液。

3. 点样:用滴管将样品溶液滴在滤纸的三角顶端,使样品点直径约为1mm。

4. 展开层析:将点好的滤纸放入层析槽中,加入适量展开剂,使展开剂液面低于样品点。

静置一段时间,待展开剂液面接近滤纸底部时取出滤纸。

5. 显色:将层析后的滤纸晾干,用显色剂进行显色。

6. 观察结果:将显色后的滤纸放在显微镜下观察,记录各氨基酸的层析点位置。

五、实验结果与分析1. 实验结果:通过观察显微镜下的显色结果,可以看到氨基酸混合物在滤纸上分离成几个不同的层析点。

2. 结果分析:(1)各氨基酸的层析点位置与已知标准样品的层析点位置进行对比,可以鉴定出氨基酸的种类。

(2)根据各氨基酸层析点的Rf值(层析比移值),可以计算各氨基酸在混合物中的含量。

(3)通过改变展开剂和层析条件,可以进一步优化层析效果,提高分离纯度。

六、实验总结本实验通过层析法成功分离了氨基酸混合物,验证了层析法的原理和操作步骤。

在实验过程中,需要注意以下几点:1. 点样时样品点直径要适中,不宜过大或过小。

胶体金侧流层析法快速检测蓖麻毒素

胶体金侧流层析法快速检测蓖麻毒素

胶体金侧流层析法快速检测蓖麻毒素盖雪姣,韩振宇,云瀚漩,范龙兴①,彭媛①,白家磊①,宁保安①,刘颖①*(内蒙古医科大学公共卫生学院,内蒙古呼和浩特010110) 摘要:目的基于胶体金侧流层析技术,利用寡核苷酸序列为识别探针,建立裸眼半定量检测蓖麻毒素的方法㊂方法利用修饰生物素和FAM 的寡核苷酸序列为识别探针,与标记FAM 抗体的胶体金颗粒结合;在硝酸纤维素膜上包被链霉亲和素作为检测线,包被抗FAM 抗体的二抗作为控制线,建立蓖麻毒素裸眼检测方法,评价其特异性和重复性,并利用image J 软件进行数据处理分析,绘制检测曲线㊂结果胶体金侧流层析试纸条在120min 内完成检测,最低可检测到10ng/mL ,特异性㊁重复性良好㊂结论建立了检测蓖麻毒素的胶体金侧流层析方法,该方法无需制备相应抗体,且操作简单,可满足现场检测的需求㊂ 关键词: 蓖麻毒素; 胶体金; 寡核苷酸序列; 侧流层析; 裸眼检测 中图分类号:R991 文献标志码:A 文章编号:1001-5248(2020)12-0099-06基金项目:国家重点研发计划课题(No.2018YFC1602600)内蒙古自治区自然科学基金项目(No.2019MS08026)作者简介:盖雪姣(1994-),女,硕士研究生㊂从事流行病与食品安全相关研究工作㊂①军事科学院军事医学研究院环境医学与作业医学研究所*通信作者E-mail:yingruru@ 蓖麻,拉丁学名Ricinus communis L.,原产于非洲东北部的索马里和肯尼亚,在全球热带地区均有广泛分布㊂蓖麻植株的茎㊁叶或蓖麻籽实中含有有毒物质,主要包括蓖麻毒素㊁蓖麻碱㊁蓖麻反应原等〔1〕㊂蓖麻毒素经化学提纯后能够溶于弱酸或水中,且理化性质较为稳定㊂从化学结构而言,蓖麻毒素是由A㊁B 两条肽链所组成的高毒性植物蛋白㊂活性蓖麻毒蛋白通过B 链介导内吞作用进入真核细胞,随后A 链从28S rRNA 中纯化出特定的腺嘌呤,从而诱导蛋白质合成失败,并最终激活细胞死亡途径〔2〕㊂蓖麻毒素作为剧毒蛋白质,其毒性高于氰化物6000倍〔3〕㊂蓖麻毒蛋白由于其强毒性和易获得性,不但吸引科研人员的兴趣,同时也成为恐怖分子的利器,著名的马尔科夫毒伞案就是例子㊂开发灵敏㊁高效的检测手段是应对威胁的主要措施㊂传统的检测技术主要有放射免疫技术㊁酶联免疫吸附技术(ELISA)〔4-6〕㊁高效液相色谱〔7-9〕㊁免疫PCR㊁纳米金增强光谱技术〔10-13〕等㊂但这些检测方法需要依托昂贵仪器及专业技术人员进行,不利于在现场使用,限制其进一步应用和推广㊂胶体金侧流层析法(colloidal gold later-flow assay)是20世纪末研发的一种利用胶体金纳米粒子作为显色元件,与免疫识别技术和层析技术相结合的一种现场㊁快速检测方法㊂其基本原理是利用抗原抗体的特异性识别结合,导致胶体金在侧向层析试纸条上出现颜色变化㊂利用侧向层析试纸条技术,已经实现了水中汞离子的快速测定〔14-15〕㊁以及通过信号放大实现水产品中甲霜灵〔16〕的超灵敏检测等㊂本研究基于胶体金侧流层析方法,根据蓖麻毒素A 链可以纯化出腺嘌呤,使得含有腺嘌呤的寡核苷酸序列断裂的原理,设计了生物素和FAM 共同修饰的寡核苷酸序列H1为识别探针,以此建立了裸眼检测蓖麻毒素的试纸条方法,该方法操作简单,无需大型仪器设备,可满足现场检测的需求㊂此外,本方法采用寡核苷酸链作为识别元件,无需制备蓖麻毒素抗体,降低了成本㊂1 材料与方法1.1 原料与仪器 LX-200掌式离心机㊁ST70-2微孔恒温振荡器㊁OSE-DB-02制冷型五段程控金属浴㊁恒温孵育仪㊁蓖麻毒素标准品(北京翰谱医药生物研究所)㊁金黄色葡萄球菌肠毒素B(SEB)(课题组自制)㊁伏马毒素标准品(山东蓝都生物科技有限公司)㊁牛血清白蛋白(BSA)和卵清蛋白(OVA)(Sigma-Aldrich)㊁相思子毒素凝集素(军事医学研究院毒物药物研究所,北京)㊁Milenia Hybri Detect㊂所有核苷酸(ODN)均购自上海生工生物科技有限公司(中国上海),并经高效液相色谱(HPLC)纯化具体如下:表1 寡核苷酸序列DNA 链序列(5'-3')P15’-Biotin -TTT TTT TTT ATA TAT ATA-3’(18bp)P25’-TAA CAT AAT TAG GTC TTT TTT-FAM -3’(21bp)P35’-GAC CTA ATT ATG AAA AAA AAA AAA TTA TAT ATA TAT-3’(36bp)A15’-TAA CAT AAT TAG GTC TTT TTT-Biotin -3’(21bp)A25’-GAC CTA ATT ATG AAA AAA AAA AAA TTA TAT ATA TAT-FAM-3’(36bp)H15’-FAM-GAC CTA CTT ATG AAA AAA AAA AAA TTA TAT CTA TCT-Biotin-3’(36bp)1.2 DNA序列设计与筛选 本研究以蓖麻毒素为目标物,根据孙洁芳等文献〔17〕,分别设计了3套寡核苷酸序列,一套是:含有连续腺嘌呤的寡核苷酸P3序列㊁修饰生物素P1序列㊁修饰FAM抗体的P2序列;第二套是:修饰生物素的A1序列和修饰FAM 且含有连续腺嘌呤的A2序列;第三套是:同时修饰生物素和FAM且含有连续腺嘌呤的H1序列,通过聚丙烯酰胺凝胶电泳实验和SYBR Green1荧光实验对上述DNA序列进行筛选㊂1.3 试纸条检测蓖麻毒素实验原理 蓖麻毒素侧流层析试纸的检测原理如图1所示㊂它包括两个步骤:(1)H1-AuNPs-FAM抗体与蓖麻毒素孵育;(2)用侧向层析(Lateral-flow assay,LFA)试纸检测,进行结果判读㊂本研究以蓖麻毒素为目标物,根据活性蓖麻毒蛋白A链可以纯化腺嘌呤㊁使得含有腺嘌呤的寡核苷酸序列断裂的原理,设计含有连续腺嘌呤的寡核苷酸序列P3㊁A2㊁H1,以H1为例,如图1a 所示,当目标物蓖麻毒素存在时,会切割H1序列上的连续多个腺嘌呤,导致H1序列断裂㊂对于LFA 试纸条,如图1b所示,它包括四个部分:样品垫㊁吸收垫和带塑料背卡NC膜㊂链霉亲和素和抗FAM 抗体的二抗分别固定在NC膜的检测线和控制线上〔18-19〕㊂AuNPs表面修饰有FAM抗体,当不存在目标物时,H1序列和AuNPs-FAM抗体的混合液滴加到样品垫上后,混合液在毛细管力的作用下向吸收垫迁移,标记了生物素和FAM的H1将与修饰FAM抗体的金纳米颗粒特异性结合,形成复合物㊂当这些复合物通过检测线时,会被固定在检测线上的链霉亲和素捕获,在检测线上产生明显可见信号㊂过量的金纳米颗粒继续在NC膜上迁移,并被固定在控制线上的抗FAM抗体的二抗捕获,从而显色㊂如果样品中存在蓖麻毒素,进行混合孵育后,H1序列会出现断裂和溶解,则检测线上的复合物减少或消失,检测线颜色变浅或消失㊂简而言之,在目标物蓖麻毒素不存在的情况下,观察到两条红线( on”)为阴性结果㊂随着目标物浓度的增加,检测线颜色逐渐变浅,当浓度达到一定程度时,仅在控制线上观察到一条红线( 关闭”),作为阳性结果㊂控制线上的红色用于证明LFA试纸正常工作㊂1.4 实验条件优化1.4.1 序列的筛选 表1中列出了设计的含有连续A的寡核苷酸序列,其中,P1㊁P2序列分别与P3序列的两端互补配对,由此形成P1-P3-P2复合物, P1磷酸端修饰有生物素,P2羧基端修饰有FAM,因此该复合物可被检测线上的链霉亲和素捕获而显色㊂A1序列可与A2序列互补配对,A1羧基端修饰有生物素,A2羧基端修饰有FAM,它们也可以被检测线上的链霉亲和素捕获而显色㊂根据上述设计的序列,在相同体积和浓度下,分别向不同寡核苷酸序列中加入相同浓度的蓖麻毒素,用聚丙烯酰胺凝胶电泳表征毒素对寡核苷酸序列切割溶解能力㊂利用SYBR Green1只染色双链DNA的原理,考察序列互补配对情况,最终筛选出合适的寡核苷酸序列㊂图1 胶体金侧流试纸条定性检测蓖麻毒素的流程和原理示意图1.4.2 H1序列孵育浓度的优化 将5μL50nM㊁25nM㊁10nM和1nM的寡核苷酸序列H1置于金属浴中孵育1h(设置4段程:95℃5min 80℃10min 50℃10min 37℃10min),向反应管中加入10μL50ng/mL FAM-AuNPs和85μL Tris-HCl 缓冲液,配置成100μL的反应体系,取50μL反应液滴加在试纸条样品区,静止10min观察实验结果㊂1.4.3 与目标物孵育时间的优化 向含有5μL H1-AuNPs-FAM抗体的反应管中分别加入不同浓度的蓖麻毒素标准品,置于微孔恒温振荡器中,在37℃700rpm分别孵育30min㊁60min㊁90min和120min,待反应结束后,取50μL反应液滴加在试纸条样品区,静止10min观察实验结果㊂1.5 检测范围的确定 将蓖麻毒素用Tris-HCl缓冲液配制成系列浓度:1μg/mL㊁100ng/mL㊁80ng/mL㊁10ng/mL㊁1ng/mL,每个浓度检测3次㊂用Tris-HCl缓冲液作为阴性对照㊂取95μL不同浓度的蓖麻毒素加入5μLH1-AuNPs-FAM抗体复合物进行混合孵育120min,待反应结束后,取50μL 反应液滴加在试纸条样品区,静止10min观察实验结果,用image J软件进行结果分析㊂1.6 特异性检测 用制备好的胶体金侧流层析试纸条在相同实验条件下,检测相思子毒素㊁胎牛血清白蛋白(BSA)㊁卵清蛋白(OVA)㊁金黄色葡萄球菌肠毒素B㊁伏马毒素㊂重复3次,考察试纸条的特异性㊂1.7 重复性检测 在线性检测范围内,检测高㊁中㊁低3个浓度(100ng/mL㊁60ng/mL㊁20ng/mL),每个浓度重复测6次,以拟合曲线计算浓度,以方差(STDEVA)与平均值(AVERAGE)的比值计算重复率(CV)㊂2 结果与讨论2.1 寡核苷酸序列的筛选 用聚丙烯酰胺凝胶电泳考察验证目标物对寡核苷酸序列切割溶解能力㊂如图2a所示,在相同体积和浓度下,分别向不同寡核苷酸序列中加入相同浓度的目标物,加入目标物后出现弥散条带,且亮度明显降低㊂说明目标物可以切割溶解含有连续腺嘌呤的寡核苷酸序列㊂使用P1-P3-P2体系作为识别元件检测蓖麻毒素时,最低检测限高达到50μg/mL,无法满足实际需求㊂推测可能是P1-P3-P2结合率较低,导致大量P3链剩余,从而影响毒素对检测线上P1-P3-P2体系的切割㊂此外,利用SYBR Green1只染色双链DNA的原理,将A1㊁A2序列分别孵育㊁混合孵育后用SYBR Green1染色,荧光结果(图2b)显示,A1和A2序列混合孵育后会产生A1-A2结合双链,而A1㊁A2自身也会折叠形成双链㊂因此,A1㊁A2序列无法完全互补结合而剩余部分A1链或A2链,剩余的A2链也影响毒素对检测线上A1-A2体系的切割,干扰检测线颜色变化㊂因此最终选择H1序列为识别元件㊂图2 a聚丙烯酰胺凝胶电泳图b寡核苷酸序列荧光光谱图 (a图:Lane1:P1;Lane2:P2;Lane3:P3;Lane4:P3+RT;Lane5:A2;Lane6:A2+RT;Lane7H1;Lane8:H1+RT;b图:100nM A1;100n M A2;100nM A1-A2)2.2 H 1序列孵育浓度优化 同时修饰FAM 和生物素抗体的H1序列是侧流条带中的识别元件,在侧流层析过程中,H1序列与预先固定在试纸条检测线上的链霉亲和素特异性结合,在检测线上形成的三明治结构会产生明显的可见信号㊂因此,H1序列的加入浓度对检测线颜色影响较大,而且其用量对检测范围和检测限有决定性影响㊂于是,先优化了H1序列的用量㊂观察加入不同浓度的H1序列(100nM㊁50nM㊁25nM㊁10nM 和1nM)时检测线和控制线颜色变化(图3),由图可知,随着加入H1序列浓度的降低,检测线逐渐变浅,控制线无明显变化,说明检测线上与链霉亲和素结合的H1序列随加入浓度的降低逐渐变少㊂为了获得明显的检测信号,同时为保证有良好的检测灵敏度,选择H1的加入浓度为10nM㊂2.3 加入目标物孵育时间优化 当存在目标物蓖麻毒素时,切割溶解含有腺嘌呤的H1序列,导致H1序列断裂,检测线颜色变浅或消失㊂因此,目标物与H1序列孵育时间对检测效果影响较大㊂在本研究中,相同浓度H1序列和目标物在不同孵育时间(30min㊁60min㊁90min 和120min)的条件下,观察检测线和控制线颜色变化(图4),从图中可以看出,随着孵育时间的增加,检测线颜色逐渐变浅,表明越来越多的H1序列被切断㊂为获得明显的检测信号,选择目标物与H1序列混合孵育的时间为120min㊂2.4 定性检测的灵敏度 蓖麻毒素用Tris-HCl 缓冲液稀释至100ng /mL㊁80ng /mL㊁40ng /mL㊁10ng /mL 和1ng /mL,用胶体金侧流层析试纸条进行检测,结果如图5所示㊂与空白对照相比(图5中的6),10ng /mL 毒素的检测线颜色变浅(图5中的4)㊂(图5)㊂而成人吸入及肌注蓖麻毒素的LD 50约为22μg /kg,口服的LD 50约为1mg /kg 〔13〕,该试纸条能够满足蓖麻毒素的实际检测需求㊂图3 H1序列浓度优化1~5依次为H1100nM ㊁50nM ㊁25nM ㊁10nM 和1nM2.5 标准曲线拟合 以蓖麻毒素浓度的对数(100ng /mL㊁80ng /mL㊁40ng /mL㊁10ng /mL㊁1ng /mL)为横坐标,以各浓度的相对强度为纵坐标,相对强度(T/C)表示检测线和控制线的集成密度比,误差棒表示三次测量的标准差㊂线性方程为y =-0.1605x+0.9518;R 2=0.9916㊂在1~100ng/mL 范围内线性关系良好㊂图4 蓖麻毒素与H1-AuNPs-FAM 抗体混合孵育时间优化,1~4依次为加入1μg /mL 蓖麻毒素孵育30min ㊁60min ㊁90min 和120min图5 蓖麻毒素胶体金侧流层析试纸条的目测灵敏度,1~5依次为蓖麻毒素100ng /mL ㊁80ng /mL ㊁40ng /mL ㊁10ng /mL 和1ng /mL ;6:空白对照图6 相对强度与蓖麻毒素对数浓度之间的线性关系2.6 特异性 用Tris -HCl 缓冲液将卵清蛋白(OVA)㊁胎牛血清白蛋白(BSA)㊁相思子毒素㊁金黄色葡萄球菌肠毒素B(SEB)㊁伏马毒素(FB1)稀释至100ng /mL,用胶体金侧流层析试纸条检测,结果如图7所示㊂只有蓖麻毒素的检测线条带颜色相对变浅,而其他蛋白及毒素的检测线与对照组相比无明显差异,说明该试纸条具有良好的特异性㊂特异性源自于:蓖麻毒素是由两条肽链RTA 和RTB 构成,RTA 是蓖麻毒素的效应链,具有催化H1序列脱去腺嘌呤A 的特性㊂而上述其他蛋白及毒素不具备这项催化能力,因此无法切割H1序列,因此检测线颜色与空白对照无明显差异㊂2.7 重复性检测 在线性检测范围内,检测高㊁中㊁低3个浓度(100ng /mL㊁60ng /mL㊁20ng /mL),每个浓度测6次,分别计算CV 值,结果如表2所示,CV 均≤20%,表明胶体金侧流层析试纸条具有良好的稳定性,后续可以进行实样检测㊂图7 蓖麻毒素胶体金侧流层析试纸条特异性检测1:蓖麻毒素;2:相思子毒素;3:SEB ;4:BSA ;5:OVA ;6:FB1;7:空白对照表2 蓖麻毒素胶体金侧流层析试纸条的重复性检测实际浓度(ng/mL)AVERAGE(ng/mL)STDEVA CV(%)100103.160917.5216.986065.3917.18510.992022.4462.7312.173 结论 蓖麻毒素毒性强㊁易获得,是潜在的生物恐怖战剂,因此,亟待建立快速检测蓖麻毒素的方法,以保障国家公共安全㊂本研究建立了一种快速半定量检测蓖麻毒素的方法,利用活性蓖麻毒蛋白A 链可以纯化出特定的腺嘌呤,切割溶解含腺嘌呤的H1序列,导致H1序列断裂的特性〔17〕,开发了以修饰FAM 和生物素的H1序列为识别元件的胶体金侧流层析试纸条,实现了蓖麻毒素的裸眼半定量检测,并考察了检测方法的灵敏度和特异性㊂研制的蓖麻毒素胶体金侧流层析试纸条最低检测值低于10ng /mL,可以满足检测需要㊂参考文献:〔1〕 ZHAO X,LI H X,LI J,WANG K L,WANG B,WANG Y,WANG Y X,LI X Z,ZHONG W.Novel small molecule retrograde transport blocker confers post-exposure protection against ricin intoxication 〔J〕.ActaPharmaceutica Sinica B,2020,10(3):498.〔2〕 李春宏.蓖麻毒素的检测及其在靶向抗肿瘤中的应用研究〔D〕.西南大学,2018.〔3〕 刘宁,张柏林,窦全丽,等.蓖麻毒素结构及其活性检测方法研究进展〔J〕.安徽农业科学,2018,46(18):33.〔4〕 GARBER E A C,THOLE J.Application of Microwave Ir⁃radiation and Heat to Improve Gliadin Detection and Ri⁃cin ELISA Throughput with Food Samples〔J〕.Toxins,2015,7(6):2135.〔5〕 BRANDON D L,MCKEON T A,PATFIELD S A,et al .Analysis of Castor by ELISAs that Distinguish Ricin and Ricinus communis agglutinin (RCA)〔J〕.Journal of theAmerican Oil Chemists'Society,2016,93(3):359.〔6〕 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侧流免疫层析英语

侧流免疫层析英语

侧流免疫层析(Lateral Flow Immunoassay,简称LFIA)是一种快速、简便、低成本的检测方法,广泛应用于生物医学领域。

这种方法结合了免疫学和流体力学原理,通过在试纸条上固定特异性抗体或抗原,与待测样本中的相应分子发生特异性结合,形成可观察到的复合物。

然后,复合物沿着试纸条移动,经过一系列含有酶标记物的试剂带,使酶标记物与复合物发生反应,产生可测量的信号。

最后,通过读取信号强度,可以定量或定性地判断待测样本中目标分子的存在与否。

Lateral Flow Immunoassay (LFIA) is a fast, simple, and low-cost detection method widely used in the biomedical field. This method combines the principles of immunology and fluid dynamics, by fixing specific antibodies or antigens on test strips, and specifically binding with the corresponding molecules in the test sample to form observable complexes. Then, the complex moves along the test strip and passes through a series of reagent bands containing enzyme markers, causing the enzyme markers to react with the complex and generate measurable signals. Finally, by reading the signal strength, the presence or absence of target molecules in the test sample can be quantitatively or qualitatively determined.侧流免疫层析具有以下优点:Side flow immunochromatography has the following advantages:1. 快速:整个检测过程通常在几分钟内完成,适用于现场快速筛查和大规模筛查。

免疫实验技术实验报告模板

免疫实验技术实验报告模板

免疫实验技术实验报告模板一、实验目的1. 掌握免疫实验技术的基本操作流程。

2. 学习如何通过免疫实验技术检测特定抗原或抗体。

3. 理解免疫实验技术在生物医学研究中的应用。

二、实验原理免疫实验技术是一种利用抗原-抗体反应的原理来检测和定量分析生物样本中的特定分子。

通过标记的抗体或抗原与目标分子结合,利用酶联免疫吸附测定(ELISA)、免疫荧光、免疫电泳等方法来检测和分析。

三、实验材料1. 待测样本:血清、组织匀浆等。

2. 试剂:特异性抗体、酶标记的二抗、底物溶液等。

3. 仪器:酶标仪、离心机、恒温水浴、显微镜等。

四、实验方法1. 样本准备:根据实验要求,将待测样本进行适当的处理和稀释。

2. 抗原-抗体反应:将待测样本与特异性抗体混合,进行孵育,使抗原与抗体结合。

3. 标记与检测:使用酶标记的二抗与一抗结合,通过底物反应产生可检测的信号。

4. 数据记录:记录实验过程中的各个时间点和条件,以及最终的检测结果。

五、实验步骤1. 样本稀释:将待测样本按照实验要求进行稀释。

2. 抗原-抗体孵育:将稀释后的样本与特异性抗体混合,放入恒温水浴中孵育一定时间。

3. 洗涤:使用缓冲液洗涤反应板,去除未结合的抗体。

4. 二抗标记:加入酶标记的二抗,再次孵育。

5. 显色反应:加入底物溶液,使酶催化底物产生颜色变化。

6. 光度测定:使用酶标仪测定各孔的吸光度,记录数据。

六、实验结果1. 数据展示:将测定的吸光度值以图表的形式展示。

2. 结果分析:根据吸光度值的变化,分析样本中目标分子的浓度或存在情况。

七、讨论1. 分析实验结果与预期的关系,讨论可能的原因。

2. 探讨实验条件对结果的影响,如孵育时间、温度等。

3. 提出实验中可能存在的问题及改进建议。

八、结论根据实验结果,得出结论。

说明免疫实验技术在检测特定抗原或抗体方面的有效性和准确性。

九、参考文献[1] 参考文献格式示例。

[2] 参考文献格式示例。

十、附录1. 实验原始记录。

[层析,纳米材料,真菌]不同纳米材料的侧流免疫层析技术在真菌毒素检测中的应用

[层析,纳米材料,真菌]不同纳米材料的侧流免疫层析技术在真菌毒素检测中的应用

不同纳米材料的侧流免疫层析技术在真菌毒素检测中的应用1引言侧流免疫层析检测技术(LFIA)也称横向流动免疫检测技术,是出现于20世纪60年代初期的一种独特的免疫分析方式,以条状纤维层析材料为固相,借助毛细管的吸附作用使样品在层析材料上移动,其中样品中的待测物与层析材料上一定区域的抗体结合,通过酶促显色反应或直接使用着色标记物短时间获得直观的测试结果。

1990年,Begg、等最先将其用于人绒毛膜促性腺激素(HCG)的测定,随后该技术逐渐在环境监控、食品安全临床诊断等领域得到广泛应用,同时该技术也用于动物用药、农药残留霉菌毒素等污染物以及核酸、蛋白等生物大分子的检测领域。

真菌毒素(Mycotoxins)是由真菌产生的次级代谢产物,主要包括黄曲霉毒素(Aflatoxins,AFs) ,脱氧雪腐镰刀菌烯醇( Deoxynivalenol,DON ) ,储曲霉毒素A ( OchratoxinA ,OTA )、玉米赤霉烯酮( Zearalenone ,ZEN )、伏马毒素(Fumonisins , FBs)等,对人和动物的毒性主要有致癌、致畸、致突变、肝细胞毒性、中毒性肾损害、免疫抑制和生殖紊乱等。

这些真菌毒素会污染农作物,植物及其副产品等,进而给人类和家畜健康带来威肋、。

世界各国对农产品、食品和饲料中的真菌毒素的含量做出了严格规定。

目前,最常见的真菌毒素测定方法有仪器分析法和免疫分析法等。

常用仪器分析法主要有高效液相色谱法(HPLC)和色谱领谱法。

仪器分析法作为常规真菌毒素检测方法,因其灵敏度高,结果准确可靠而受到检测机构的青睐,其缺点是:需要对样品进行较为繁琐的预处理;需要具有专业实验技能的人员操作;仪器昂贵精密,且所用仪器的检测费用和维修费用昂贵,无法满足批量样品的快速筛查检测。

随着特异性抗体技术的发展,免疫相关方法得以迅速发展,逐渐成为毒素检测的新趋势。

侧流层析免疫检测技术具有简便、快速、灵敏、经济等优点,特别适合于大批量样本的检测。

胶体金侧流免疫层析法

胶体金侧流免疫层析法

胶体金侧流免疫层析法
胶体金侧流免疫层析法是一种以抗原抗体反应为基础的免疫层析技术,主要应用于临床诊断、食品安全检测、环境监测等领域。

其原理是利用抗原抗体反应,来定性和定量地分析被检者体内的免疫球蛋白含量和类型。

胶体金侧流免疫层析法具有操作简便、结果快速可视化等特点。

其试剂通常包含特定抗体或抗原的测试线和对照线,当与试纸条上的抗体或抗原结合后,会形成可见的彩色线条。

这种方法的敏感性高、特异性强,可以在数分钟内得到结果,而且不需要复杂的仪器设备,因此在临床诊断、食品安全检测、环境监测等领域得到广泛应用。

需要注意的是,胶体金侧流免疫层析法的结果会受到一些因素的影响,如试剂的特异性、操作过程中的误差等。

因此,在解读结果时需要结合具体情况进行判断。

免疫层析试验

免疫层析试验

免疫层析试验以双抗体夹心法测尿hCG 为例来介绍免疫层析试验的方法。

[目的](1) 掌握免疫层析试验的原理。

(2) 熟悉双抗体夹心法测尿hCG 的方法、结果判定及应用。

[原理]抗hCG 免疫金复合物干片粘贴在试剂条近下端G区(图1- 17),抗hCG 单克隆抗体和小鼠IgG 抗体分别固化于NC 膜的测试区(T区) 和质控参照区(C 区)。

当试纸条下端(A区) 浸入液体标本中,吸水材料即吸取液体,通过层析作用,液体向B 端移动,流经干片时,使抗hCG免疫金复合物复溶,并带动其向膜条渗移。

若标本中有hCG,可与抗hCG 免疫金复合物结合。

此抗原体复合物流至T 区时即被固相抗hCG 单克隆抗体所获,形成金标抗体一抗原一抗体复合物,在T 区显现出红色反应线条。

过剩的免疫金复合物继续前行,至C 区被固相抗小鼠IgG 捕获,呈现出红色质控线条。

[材料](1) “一步金”法早早孕妊娠诊断试纸条(有商品供应)。

(2) 孕妇尿液,待测尿液。

(3) 尿液收集杯等。

[方法](1) 将试剂条及待测标本置室温一定时间以充分复温。

(2) 从原包装铝箔袋中取出试剂条,将试剂条按箭头方向插人尿液标本中。

注意: 尿液液面不能超过试剂条的标记线。

(3) 约5 S 后取出放于干净平整的台面上观察,3 min 时读取结果,10 min 后判定无效。

在戏迟出死~条心线待技床样无h(G(阴临)[结果判断]1.阴性试剂条上仅质控区出现条紫红色线,在测试区内无紫红色线出现(图1- 18a)。

2.阳性试剂条上出现两条紫红色线,一条位于测试区内,另一条位于质控区内(图1-18b)。

3.弱阳性试剂条测试区的线条颜色明显浅于质控区内的紫红色线,表明可疑,2 d 后应重新测试,以免漏诊(图1- 18c)。

4.无效试剂条上无任何线条出现,或仅出现测试区线条而质控区未出现,表明操作过程不正确或试剂条已变质失效。

如有侵权请联系告知删除,感谢你们的配合!。

胶体金三线定量法,革新的霉菌毒素检测方法

胶体金三线定量法,革新的霉菌毒素检测方法

胶体金三线定量法,革新的霉菌毒素检测方法作者:卜庆婧来源:《食品安全导刊》2017年第10期胶体金技术又称侧流向免疫层析技术,是以胶体金作为示踪标记物应用于样品中待测物检测的一种免疫检测技术,可用于样品中待测物质的快速定性或定量检测,是一种稳定、灵敏的检测方法。

该方法操作简单,无需专业培训,几分钟即可完成检测,非常适用于现场快速检测。

目前,胶体金免疫层析技术在霉菌毒素检测中的应用已经非常广泛,但由于只有一条检测线和一条质控线,通常只能进行定性检测,无法准确定量。

针对这一情况,美国Charm公司的科学家对定性霉菌毒素检测条进行了改进,增加了一条检测线,首创三线定量检测条,即包括两条检测线和一条质控线,同时结合读数仪,可实现准确定量。

Charm Rosa霉菌毒素定量检测系统采用的就是三线定量法。

Charm Rosa霉菌毒素定量检测系统能够在5分钟内快速定量测定粮食及其制品中的多种霉菌毒素,包括黄曲霉毒素、呕吐毒素、玉米赤霉烯酮、赭曲霉毒素A、伏马菌素和T2/HT2毒素。

Charm Rosa霉菌毒素检测系统组成Charm Rosa(Rapid One Step Assay)霉菌毒素检测系统由检测条、孵育器和读数仪三部分组成。

其中检测条采用3线设计,包括2条检测线(T线)和1条质控线(C线),这样便于准确定量,并增加了动态检测范围,因此检测范围较其它胶体金检测条更宽。

另外,检测条采用封闭包装,即可防潮,又可防止检测条因暴露在空气中而被污染,并且不同检测项目的检测条颜色不同,因此非常便于区分。

孵育器为保温装置,能够促进样品流动并确保反应温度在合适范围内,该孵育器可自动倒计时,孵育结束后发出“哔哔”声。

读数仪中有内置标准曲线,可读取定量检测结果。

三线定量检测条及读数仪中内置的标准曲线矩阵是准确定量的保证。

Charm Rosa霉菌毒素检测系统的检测原理试样提取液中的霉菌毒素与检测条中的胶体金微粒发生反应,霉菌毒素与胶体金微粒的结合物及胶体金微粒在侧流作用下移动,当到达检测线时,包被的抗原与胶体金微粒结合发生呈色反应,其颜色深浅与试样中霉菌毒素的含量相关。

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侧流免疫层析实验实验报告侧流免疫层析是一种基于抗原、抗体免疫反应的经典床旁检测技术。

最初,研究人员采用纳米金制备层析试纸条,用于尿人绒毛膜促性腺激素检测,即我们熟知的胶体金。

但检测结果依赖人工判读,且检测灵敏度低、假阴性率高。

随后,一些对层析膜进行简单图像采集、处理的仪器相继出现,LFIA结果判读实现自动、半定量化。

近年来,LFIA不断发展,检测性能得到很大提升,已逐步向定量检测过渡,其可检测样品多样(如全血、血浆、汗液、唾液,尿液等),并且能对核酸进行检测。

本文综述了LFIA检测系统的研究进展以及LFIA的商品化应用现状,以期为相关领域提供参考。

一、LFIA结构及定量检测侧流免疫层析试纸条由样品垫、结合垫、层析膜、吸水纸和聚氯乙烯底板五部分组成。

单克隆抗体和二抗被预先固定在层析膜上以形成测试线或对照线,加入含待测物的样品后,待测物与结合垫上的标记抗体结合,随层析作用进一步被固定在T线上的单抗捕获。

过量的标记抗体被C线上的二抗捕获,通过特定检测仪器读取T/C线上的标记物信号强度,并代入预先绘制的标准曲线,在保留LFIA优点的同时实现了LFIA对待测物的定量分析。

对于完整的LFIA定量检测系统而言,标记物、层析膜、检测仪是保障定量结果快速、灵敏、准确的基础。

在近十年里,已研发出不同信号类型的灵敏标记物以及多种新型层析膜材料,还设计了一系列价格合理、结构紧凑的检测设备用于免疫层析结果的记录和量化。

特别地,为保证定量结果溯源性,对试验中所使用的标记物、耗材、试剂、仪器及检测程序均可开展量值溯源工作,以使LFIA产品的检测结果溯源至国家或国际标准。

可用经典的蛋白和分子检测方法,作为验证LFIA诊断效能的参比方法,如酶联免疫吸附试验和聚合酶链反应等。

LFIA实现定量检测使得检测结果不受主观因素制约,大大提高了其在即时检测领域的应用深度与广度。

下文就实现LFIA定量检测的三个重要组成部件即标记物、检测仪器、层析膜以及取得的应用进展进行详细阐述。

二、LFIA检测系统进展(一)高灵敏标记物纳米标记物的成功应用使LFIA迈向定量检测的新台阶,根据标记物产生的信号不同,将其大致分为三类:(1)有色型标记物:会产生肉眼可见的颜色;(2)荧光型标记物:在特定光源激发下可产生荧光;(3)其他标记物:包括纳米酶、磁珠等,分别产生酶学信号、磁信号。

1.有色型标记物:纳米金在水溶液中由于表面静电作用呈胶体状态,具有优异的理化性质且易于功能化,是LFIA中最常用的标记物。

但AuNPs存在粒径分布宽、稳定性差、储存条件高的不足。

近年来,已有研究采用油相合成、化学键合等方法来对AuNPs进行增强、组装、聚合,如二维黑磷,改良后的AuNPs既保留了原有特性,稳定性又得到很大提升,在微量药物、病毒糖蛋白的定量检测中,显示出广阔的应用前景。

碳纳米管是由石墨烯片组成的无缝空心管状体,具有高比表面积、良好的机械强度和化学惰性。

另外,自身黑色使AuNPs具有很强的辨识度,因此CNTs的灵敏度比AuNPs更高。

但CNTs易于聚集,几乎不溶于任何有机溶剂。

在CNTs表面添加亲水性的共价官能团,可改善CNTs的溶解性局限,并获得更好的稳定性,尤其适用于小分子化合物和特定蛋白的定量检测[5]。

2.荧光标记物:由于有色型标记物信号放大能力有限,现已将许多新型荧光材料用于LFIA的定量检测,常用的荧光标记物有量子点、镧系元素等。

量子点是一种半导体荧光纳米晶体,荧光强度大且稳定,其发光光谱可调、狭窄、对称,适用于微量物质的检测。

单一的QD经过两亲聚合物修饰后,可制备成核壳型量子点,其稳定性更好、保存期更长。

在肿瘤标志物和小分子药物的检测中,检测限可低至5.8ng/ml。

以QD为标记物的LFIA,还适用于荧光猝灭的方法,较其他标记物具有更宽的线性范围,在感染性疾病诊断、肿瘤诊断试剂开发和药物监测领域前景可观。

镧系元素具有原子态发射、长荧光寿命、窄发射光谱、宽斯托克斯位移的特性,常用作基于时间分辨的免疫分析,在小分子药物检测中,表现出良好的重复性,LOD比最灵敏的AuNPs低约100倍。

但LE 在水溶液中存在低荧光产量的缺陷,可将LE与纳米微球等载体结合,以增加荧光产量。

上转发光粒子是由稀土金属元素合成的晶体材料,和其他标记物相比,UCP具有独特的上转发光现象、低背景干扰和高稳定性,非常适合于检测成分复杂的样品,如尿液、唾液等。

检测结果与培养法和PCR法高度一致,可在20min内检测10种食源性致病菌。

荧光微球通常由纳米微球包裹荧光材料或在其表面偶联荧光物质制备而成,具有良好的亲和性和高比表面积,目前已经制备出包含有机染料、QD、UCP等荧光材料的FMS。

但FMS合成步骤复杂、产率低、成本高,仅在生物酶、小分子药物的检测中有研究报道。

3.其他标记物:拉曼散射指荧光物质的吸收光与发射光不等的现象,不同物质的拉曼散射不同,将拉曼分子与金属表面接触后可实现拉曼信号的放大,即表面增强拉曼散射,SERS信号稳定、灵敏,可用于多重检测生物大分子蛋白、病毒、细菌,但对特殊检测仪器的依赖,使得SERS在实际应用中并不广泛。

超顺磁珠是具有磁性内核和活性基团表面的复合纳米材料,具有易分离、信号稳定等优点,其结果不受样品中有色成分的影响,在微量激素、肿瘤标志物、药物检测中具有良好的应用前景,但超顺磁珠需要磁检测器或巨磁阻传感器,在一定程度上限制了其应用。

纳米酶是一类具有多孔结构的双金属纳米粒子,具有高比表面积和特殊的酶催化性能,但纳米酶合成困难、需额外的显色步骤。

与胶体金相比,纳米酶灵敏度提高了两个数量级,其LOD和线性范围与商业ELISA试剂盒相当。

(二)检测仪器1.金标检测仪:针对不同标记物信号,需用不同的检测仪器。

早期的免疫层析检测仪主要针对AuNPs设计,大多将T/C线的颜色信号转换成电信号或灰度图像,如光敏电阻法、图像处理法等,由于T/C线的宽度较窄,光敏电阻法的信号响应受到限制;图像处理法也存在对灰度图像的利用不充分的缺点。

现已报道了多种新型金标检测仪,如光热成像分析仪、压力读数仪[4,12],通过分析仪检测T/C线温度、气压变化,经过简单的数字转换就可以得到定量检测结果,灵敏度比光敏电阻法高68倍,有望应用于生物大分子检测。

2.荧光检测仪:随着荧光标记物的广泛使用,其配套的荧光检测仪也在不断的更新发展,为LFIA的检测提供了一种简单、快速、准确和定量的工具,不仅具有量化和客观解释结果的优势,还可以自动存档和传输结果。

现有的荧光检测仪主要有直接检测荧光强度和智能手机两种模式。

直接检测荧光强度:通过光电探测器从T/C线中获取背景和荧光信号并转换成电信号,是上述荧光标记物信号检测的主要方式,在大型医院中有广泛应用,但这种模式需要完整的机电、发射及检测系统,使得整套仪器笨重、复杂,不利于便携化和即时诊断。

智能手机:采用智能手机自带的闪光灯和相机,可对荧光及化学发光信号进行激发和检测,使智能手机成为便携检测仪的新可能。

You 等利用智能手机作为LFIA的检测器,配合相应的软件系统,可同时定量检测脑利钠肽与致瘤性2因子,LOD分别为17.46pg/ml和29.92ng/ml。

现有的智能手机检测器具有良好的不同信号辨识度和检测微弱T/C线信号的能力,在疾病的家庭自检中具有极大的应用前景。

(三)新型层析膜层析膜是进行层析作用的主要部件,对于保证免疫反应进行和实现多组分检测至关重要。

膜背景发光、孔径大小及分析物通过膜的液体流速既是评价膜性能好坏的重要指标,也是研发膜材料的切入点。

1.减少背景发光:大多数商用层析膜在可见光区域会产生明显的背景发光,其常见原因包括自发荧光、磷光和拉曼散射。

在进行LFIA分析前,如何选择低背景发光的层析膜,是需解决的首要问题。

Shah和Yager应用激发-发射荧光光谱来系统地表征膜材料的自发荧光,并评估背景发光对分析性能的影响。

为开发人员筛选低背景发光层析膜提供了一个简单的框架,使用该框架可减少耗时的实验优化过程,在对甲型流感病毒核蛋白检测中,LOD较未使用该框架前降低50%以上。

2.优化层析膜:现有的LFIA层析膜具有更少的背景干扰、更好的稳定性和样品利用率。

已有多种膜材料通过改变层析膜的孔径来控制液体流速,从而提高LFIA分析灵敏度。

如水凝胶-纸杂化材料可以增加待测物的反应时间;海绵具有良好的层析作用和亲水性;纳米纤维材料具有高比表面积、高孔隙率、互连的多孔网络和灵活的可修饰性。

Yew等在NC膜上喷涂聚己内酯形成疏水涂层,以提高靶标与金纳米颗粒之间的相互作用率,灵敏度提高了大约十倍。

另外,在进行全血样品分析时,可将层析膜与分离装置结合,以减少红细胞的空间位阻对待测物在膜上的流动造成的影响。

三、LFIA在核酸检测中的应用1.偶联适配体:目前大多数LFIA使用抗体作为靶标识别元件,但抗体的使用存在一些局限,如抗体成本高、热稳定性差、易受pH影响。

由于适配体易于修饰且具有高特异性、稳定性,已有研究将适配体作为抗体的替代物用于LFIA,实现对核酸、蛋白质、小分子化合物的灵敏检测。

与基于抗体的LFIA相比,适配体具有更高的灵敏度,适用于药物分析、疾病预防和靶向治疗领域。

同时,基于适配体的LFIA存在一些不足:适配体由指数富集获得,过程较复杂,价格昂贵;易受到钩效应影响,造成假阴性结果;可用的适配体性有限,与免疫测定相比,基于适配体的检测仍不成熟。

2.实现核酸检测:特异性核酸序列检测在医学诊断、食品安全分析和环境监测中具有重要作用。

近年来,结合了LFIA与核酸检测的侧流核酸生物传感器在生物分析和临床诊断中的应用显著增加,具有操作简单、不需要复杂的分析过程和特殊仪器的特点,成为POCT核酸分子诊断的新技术。

利用LFNAB进行核酸检测,通常需进行两个步骤,即靶分子扩增过程和试纸条层析过程,层析过程大多采用基于生物素-亲和素的夹心杂交法。

结合现有的等温扩增方法(如环介导的扩增)和信号放大法(荧光分析,电化学分析)可简化扩增过程、增加信号强度,使LFNAB 具备了检测时间短、成本效益高的优点。

Pavagada等提出了一种无需扩增步骤直接检测内源性miR-150-5p浓度的LFIA方法,为LFNAB提供了新方向。

LFNAB目前已实现对脱氧核糖核酸、16S核糖体核糖核酸、微小核糖核酸等核酸分子的快速、多重检测。

但由于探针序列普遍较短,容易造成假阳性;夹心杂交法的设计、构造过程复杂,LFNAB 的整体性能还有待提高。

四、商品化应用为明确LFIA的实际商品化应用情况,在国家药品监督管理局官网进行国家医疗器械许可查询,以"免疫层析"为关键词进行检索,结果显示用于免疫层析的医疗器械共计1249种,其中检测仪器43种(胶体金定量检测仪31种,荧光免疫层析仪12种),试剂盒1206种(包含811种定量检测试剂盒,395种定性检测试剂盒)。

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