溶瘤病毒载体制备及纯化策略

溶瘤病毒载体制备及纯化策略

基因治疗(gene therapy)是指将外源正常基因导入靶细胞,以纠正或补偿缺陷和异常基因引起的疾病,以达到治疗目的。也包括转基因等方面的技术应用。也就是将外源基因通过基因转移技术将其插入病人的适当的受体细胞中,使外源基因制造的产物能治疗某种疾病。从广义说,基因治疗还可包括从DNA水平采取的治疗某些疾病的措施和新技术。2017年10月19日,美国政府批准第二种基于改造患者自身免疫细胞的疗法(yescarta基因疗法)治疗特定淋巴癌患者。(选自搜狗百科)

近20年来,只有少数几种病毒如反转录病毒(包括HIV病毒)、腺病毒、腺病毒伴随病毒、疱疹病毒(包括单纯疱疹病毒、痘苗病毒及EB病毒)、甲病毒等被成功地改造成为基因转移载体并开展了不同程度的应用。

1. 逆转录病毒(retrovirus vectors,RVJ载体

逆转录病毒载体基因转移系统包括两部分:一部分是用外源基因替换病毒结构基因的

逆转录病毒载体;另一部分是包装细胞的基因组DNA中整合了逆转录病毒结构基因。到目前为止,RV载体是基因治疗临床试验使用最多的载体,较常用的是基于moloney 鼠白血病病毒(MMLV)改造而来的各种Rv载体。RV载体具有基因表达持久而稳定、转染效率较高等优点,但只能感染分裂期细胞,载体容量<8kb,与宿主细胞基因组的随机整合可引起基因突变及产生可复制的野生型病毒等危险故需要进一步的改造完善。

2. 腺病毒(adenovirus,AV)载体

腺病毒载体自1993年首次被应用于临床试验以来,迄今为止大约有40%基因治疗临

床试验方案采用腺病毒为载体,仅次于RV载体_3 J。至今AV载体已经发展了4代,第2、3代腺病毒去除EI、E2和E4编码序列,与第一代相比,有更低的免疫原性和更大的载体容量。第四代腺病毒仅含有反向末端重复序列(1TRs)和包装信号,载体容量

达37kb,进一步降低了免疫原性,被称为“高容量”载体。AV载体具有宿主范围广、基因转移效率高、对非分裂细胞也有感染性、比较容易制备和操作、理化性质稳定、遗

传毒性较低及比较安全等优点。

3. 腺相关病毒(adeno-associated virus,AVV)载体

腺病毒相关病毒(AAv)是一种缺陷型的单链DNA病毒,只有在辅助病毒如腺病毒、单

纯疱疹病毒、痘苗病毒等存在的情况下,才能进行最佳复制,产生新的病毒颗粒,否

则只能进行潜伏感染。从v载体既可以转染分裂细胞又可以转染非分裂细胞,在宿主

体内以定向整合的方式存在,70%以上的整合位点位于第19号染色体q13.3-qter 区,且对人体无致病性,故AAv重组体在细胞内能长期稳定地表达,还可避免随机整

合可能引起的抑癌基因失活和原癌基因激活的危险,且在体内不引起明显的病理变化,表明AAV是一种很有前途的基因治疗载体_9j。AAv载体在多种组织已进行了成功的转染,如肝、脑、心肌、骨骼肌、视网膜和呼吸道上皮等组织,未发现对机体有致病性。

4. 慢病毒(1eraivlrus)载体

慢病毒属逆转录病毒科,为二倍体RNA病毒,分为灵长类病毒如人类免疫缺陷病毒一

1(HIV-1)、猴免疫缺陷病毒(SIV)和非灵长类病毒如马传染性贫血病毒(EIAV),但它与

逆转录病毒不同,能感染非分裂细胞。

5. 单纯疱疹病毒(herpes si卫叩Iex virus,I-ISV)载体

单纯疱疹病毒是一种双链DNA病毒,作为基因治疗载体具有以下优点:①容纳外源基因的长度达4o~50I,是目前容量最大的病毒载体。②具嗜神经性,可在神经元中建

立终生潜伏性感染,非常适用于神经系统疾病如帕金森病、Azheimer病等。③滴度高。

④可感染分裂期和非分裂期细胞。

6. 基因治疗病毒载量的制备

将外源基因包装到病毒壳粒中,是病毒载体生产的核心技术。一般地,病毒载体的制

备包括以下要素:

宿主细胞

虽然现在已有可能对有些病毒载体(如AAV载体)进行体外(无细胞)包装(Zhou XH et al . 1998; Ding L et al. 1997),但是这种包装系统仍然需要细胞提取物,并且

包装效率相当低,远远达不到可生产水平。

至今为止,病毒载体的包装主要是在对该病毒敏感的宿主细胞中进行的。宿主细胞不

但提供了病毒复制和包装的环境条件,许多细胞成分还直接参与了病毒复制和包装的

过程。

病毒复制和包装所必需的顺式作用元件和外源基因的表达盒一般地,病毒复制和包装所必需的顺式作用元件和外源基因的表达盒由细菌质粒携带,组成病毒载体质粒,是

被包装的对象。由于病毒复制方式的不同,有些病毒载体如单纯疱疹病毒扩增子(HSV amplicon)载体在包装时,整个载体质粒都被包装进入病毒颗粒中;而有些病

毒载体如反转录病毒、腺病毒伴随病毒载体的质粒骨架部分并不被包装到病毒颗粒中,只有病毒复制和包装所必需的顺式作用元件和外源基因表达盒被包装到病毒颗粒中。

构建重组型病毒载体时,病毒复制和包装所需的顺式作用元件存在于病毒基因组中(病毒基因组可以由具有感染性的病毒颗粒提供,也可以质粒形式提供)。先将外源

基因表达盒插入穿梭质粒携带的病毒同源序列中;将重组穿梭质粒转染至细胞中,再

用辅助病毒超感染;或将重组穿梭质粒与病毒基因组质粒共转染细胞;重组质粒与病

毒基因组在细胞中进行同源重组而产生表达外源基因的重组病毒。重组腺病毒(Graham FL and Prevec L 1995)和重组单纯疱疹病毒(Pyles RB et al. 1997;Kramm CM et al. 1997)的传统制备方法都是采用这种方式。为了使病毒载体的生产

更为方便,病毒复制和包装所必需的顺式作用元件和外源基因的表达盒除了可以用质粒携带以外,也可以用另一种病毒(往往是辅助病毒)或生产细胞来携带。

辅助元件

包括病毒复制和包装所必需的所有反式作用元件。这些元件一般包括病毒基因转录调控基因、病毒DNA合成和包装所需的各种酶类的基因、病毒的外壳蛋白基因等。

辅助元件的表现形式可以多种多样。常用的形式有:

①辅助质粒(helper plasmid),如用于产生重组腺病毒的质粒JM17,用于重组AAV 包装的辅助质粒pAAV/Ad(Rolling F and Samulski J 1995)等;

②辅助病毒(helper virus),如用于HSV 扩增子载体包装的辅助病毒HSV1 tsK株;

③包装细胞系如用于反转录病毒载体包装的PA317细胞。

这些表现形式之间可以相互转化或合并。例如,辅助病毒可以转化为辅助质粒:传统的AAV载体生产系统常用腺病毒作为辅助病毒。研究发现,并非腺病毒的所有基因对AAV病毒的产生都是必需的,只需要腺病毒E1a, E1b, E2a, E4和VA RNA 5种基因就行了。因此,将这5种基因置于同一个质粒中,构建成的这种新的辅助质粒就完全可以替代原来的辅助病毒(Xiao X et al. 1998; Grimm D et al. 1998 ),不但提高了包装效率,而且避免了产品中腺病毒污染的问题。

上述几种要素的不同组合,便产生了各种各样的病毒载体包装策略。根据病毒载体生产系统的组成因素的多少,可将其分成以下几种:

单组成因素生产系统(one-component system):

所有的组成成分都集中在生产细胞中。经典的反转录病毒生产系统就是由产病毒细胞(VPC)组成,重组反转录病毒由VPC细胞不断分泌至培养上清中。这种生产系统操作最为简单,但是往往产量不高或不稳定。采用这种策略,需要将重组病毒产生所需要的所有元件都稳定地置于生产细胞中。由于许多病毒基因产物本身对细胞有破坏作用或不能在细胞中稳定表达,因此这种策略在许多病毒载体的生产中难以实施。

双组成因素生产系统(two-component system)这种生产系统一般由"一株病毒/一株细胞"组成。典型的例子是重组腺病毒生产系统。先用共转染的方法获得重组腺病毒毒种,再由该毒种和生产细胞(如293细胞)组成一个双组成因素的生产系统使病毒大量扩增。多组成因素生产系统(multi-component system)是由两种以上的组成因素组成的生产系统。传统的AAV载体生产系统就是由载体质粒,辅助质粒,辅助病毒和生产细胞4种因素组成。这种策略的缺点是影响因素多,操作复杂,产量不容易稳定,不利于大规模生产。

以上各种生产系统也可以相互转化。我们实验室通过将上述AAV载体生产系统的4种因素进行两两合并,即将辅助质粒和辅助病毒合并成一种重组的辅助病毒,将载体质

粒和生产细胞合并成AAV前病毒细胞株,成功地将其转化成一种双组成因素的新型高效生产系统(伍志坚等,1999)。

一般来说,发展新的包装策略主要是为了以下几种目的:(1)减少生产系统中的组

成因素,简化操作过程;

(2)提高生产效率,降低生产成本;

(3)避免或降低野生型病毒的产生;

(4)避免使用难以与产品病毒分离的辅助病毒。

7. 基因治疗病毒载体的纯化

每种病毒载体具有特定的特征,所以某些纯化模式更易于发挥作用。为了纯化腺病毒,即Ad5,可以使用上述所有的色谱方法。由于Ad病毒在中性pH下带负电荷,因此可以使用各种阴离子交换吸附剂进行纯化。

基因治疗病毒载体在中性pH条件下带负电荷,因此都可以使用阴离子交换层析纯化,病毒尺寸比较大,也可以使用凝胶过滤层析进行精细纯化,病毒浓缩时需要用100-

300kD的膜超滤浓缩,科研少量纯化也可以使用超速离心,密度梯度离心,及PEG浓缩等方法,具体使用那种方法要根据处理量,纯度要求,滴度要求,成本等方面综合

考虑,工艺开发时多做实验。

溶瘤病毒载体制备及纯化策略

溶瘤病毒载体制备及纯化策略 基因治疗(gene therapy)是指将外源正常基因导入靶细胞,以纠正或补偿缺陷和异常基因引起的疾病,以达到治疗目的。也包括转基因等方面的技术应用。也就是将外源基因通过基因转移技术将其插入病人的适当的受体细胞中,使外源基因制造的产物能治疗某种疾病。从广义说,基因治疗还可包括从DNA水平采取的治疗某些疾病的措施和新技术。2017年10月19日,美国政府批准第二种基于改造患者自身免疫细胞的疗法(yescarta基因疗法)治疗特定淋巴癌患者。(选自搜狗百科) 近20年来,只有少数几种病毒如反转录病毒(包括HIV病毒)、腺病毒、腺病毒伴随病毒、疱疹病毒(包括单纯疱疹病毒、痘苗病毒及EB病毒)、甲病毒等被成功地改造成为基因转移载体并开展了不同程度的应用。

1. 逆转录病毒(retrovirus vectors,RVJ载体 逆转录病毒载体基因转移系统包括两部分:一部分是用外源基因替换病毒结构基因的 逆转录病毒载体;另一部分是包装细胞的基因组DNA中整合了逆转录病毒结构基因。到目前为止,RV载体是基因治疗临床试验使用最多的载体,较常用的是基于moloney 鼠白血病病毒(MMLV)改造而来的各种Rv载体。RV载体具有基因表达持久而稳定、转染效率较高等优点,但只能感染分裂期细胞,载体容量<8kb,与宿主细胞基因组的随机整合可引起基因突变及产生可复制的野生型病毒等危险故需要进一步的改造完善。 2. 腺病毒(adenovirus,AV)载体 腺病毒载体自1993年首次被应用于临床试验以来,迄今为止大约有40%基因治疗临 床试验方案采用腺病毒为载体,仅次于RV载体_3 J。至今AV载体已经发展了4代,第2、3代腺病毒去除EI、E2和E4编码序列,与第一代相比,有更低的免疫原性和更大的载体容量。第四代腺病毒仅含有反向末端重复序列(1TRs)和包装信号,载体容量 达37kb,进一步降低了免疫原性,被称为“高容量”载体。AV载体具有宿主范围广、基因转移效率高、对非分裂细胞也有感染性、比较容易制备和操作、理化性质稳定、遗 传毒性较低及比较安全等优点。 3. 腺相关病毒(adeno-associated virus,AVV)载体 腺病毒相关病毒(AAv)是一种缺陷型的单链DNA病毒,只有在辅助病毒如腺病毒、单 纯疱疹病毒、痘苗病毒等存在的情况下,才能进行最佳复制,产生新的病毒颗粒,否 则只能进行潜伏感染。从v载体既可以转染分裂细胞又可以转染非分裂细胞,在宿主 体内以定向整合的方式存在,70%以上的整合位点位于第19号染色体q13.3-qter 区,且对人体无致病性,故AAv重组体在细胞内能长期稳定地表达,还可避免随机整 合可能引起的抑癌基因失活和原癌基因激活的危险,且在体内不引起明显的病理变化,表明AAV是一种很有前途的基因治疗载体_9j。AAv载体在多种组织已进行了成功的转染,如肝、脑、心肌、骨骼肌、视网膜和呼吸道上皮等组织,未发现对机体有致病性。 4. 慢病毒(1eraivlrus)载体 慢病毒属逆转录病毒科,为二倍体RNA病毒,分为灵长类病毒如人类免疫缺陷病毒一 1(HIV-1)、猴免疫缺陷病毒(SIV)和非灵长类病毒如马传染性贫血病毒(EIAV),但它与 逆转录病毒不同,能感染非分裂细胞。 5. 单纯疱疹病毒(herpes si卫叩Iex virus,I-ISV)载体 单纯疱疹病毒是一种双链DNA病毒,作为基因治疗载体具有以下优点:①容纳外源基因的长度达4o~50I,是目前容量最大的病毒载体。②具嗜神经性,可在神经元中建

制备慢病毒载体

现今常用的制备慢病毒载体的方法为使用3或者4质粒系统转染293T细胞。此外,也有使用其它几类慢病毒包装细胞系制备慢病毒载体。 瞬时转染制备慢病毒: 细胞:慢病毒包装常用人胚肾细胞(HEK, human embryonic kidney)293T,其含有SV40病毒的大T抗原蛋白编 码基因,转染效率极高。但其贴壁性不好,所以需要使用多聚赖氨酸包被的培养皿增加其吸附性。多聚赖氨酸培养皿可购买,也可自行制备。转染前,细胞密度控制在40-70%比较好。 DNA:每10 cm培养皿约含5x106 293T细胞,需用30-40 ug不含内毒素的质粒进行转染。质粒的纯度对慢病 毒载体的包装效率非常关键。不同的包膜蛋白表达载体,其使用量也不同。 转染:最经济的转染方法是磷酸钙转染法,虽然其溶液配置影响因素多,不易稳定重复得到最佳的转染结果。其它方法有脂质体法和PEI法。转染48-60后可以收集上清,通过低速离心,然后滤膜过滤可以去除上清中的细胞碎片。如果使用VSV-G包膜蛋白的话,可以通过两次超速离心进行浓缩,从而最高可以获得滴度高达1011-1012 IU/ml的慢病 毒载体。之后可以将病毒载体溶解在PBS,HBSS或者DMEM中,并置于-80℃储存。储存溶液添加血清会帮助提高 病毒冻融时的存活率,然而有些病毒在侵染细胞时,血清会有干扰,所以需要依据具体病毒种类考虑是否添加血清。 病毒滴度:含VSV-G的慢病毒载体,其滴度在浓缩前一般为107 IU/ml,浓缩之后可以达到109 -107 IU/ml 。含有荧光标记或者其它报告基因的病毒载体,可以通过梯度稀释侵染HeLa或者293,NIH3T3细胞来确定其滴度;不含报告基因的可通过测定病毒颗粒中相关病毒蛋白的活性或者含量来确定其滴度,比如使用p24gag的elisa试剂盒。一般来说,每4-60 x 103个病毒载体含1ng p24 gag。然而这种方法测出来的滴度并不准确,不同的病毒载体类型,不同的储 存方式,都会导致p24 gag和病毒载体颗粒的比值变化较大。甚至是不同的实验室测出来的都会有差异。亦可使用PCR 法测定滴度,其引物设计针对病毒颗粒的通用cDNA区域,因此不受外源插入片段的影响,也不需要反转录步骤,而且可以用于所有慢病毒载体。 注意事项 1.避免使用小量抽提质粒,其纯度相比中抽和大抽而来的质粒纯度较低,可能会降低包装效率。 2.对于基于HIV-1的慢病毒载体而言,依实验目的,可能需要Vpr或者Rev辅助蛋白因子。有些细胞类型需要这些辅助蛋白的参与才能达到高侵染效率。 3.包装细胞系的质量对高效包装病毒非常关键。转染时,细胞密度在70-90%之间比较合适,过低或者过高密度 都可能会降低病毒包装效率。细胞开始出现汇合时,需要及时更换或者添加新鲜培养基以保持细胞健康状态。 4.氯喹对细胞有毒性,一般将标准使用浓度之下的氯喹与细胞共孵育的时间控制在8小时之内。或者降低氯喹的使用浓度,延长孵育时间。 5.病毒包装时的细胞培养温度需要综合两方面因素考虑:a),370C最有利于保持细胞健康状态;b),320C最有利于维持重组病毒的稳定性。 6,收集病毒上清时的离心步骤可以去除细胞碎片以及少数悬浮的293T细胞。必要时,需要过滤以彻底去除一些细胞成分的污染。 7.冻融会降低病毒侵染效率50%,因此需要避免多次反复冻融。病毒放置于4℃时每36-48小时侵染效率下降50%。 8.视实验目的而定,为降低血清成分污染,建议使用低浓度血清培养基。 9.通过使用0.45mm的滤膜不仅可以去除细胞碎片残留,还可以去除VSV-G残留片段对细胞的毒性影响,但同 时也会部分影响病毒滴度,所以过滤步骤需要依据具体实验目的而定。 10.使用TNE重悬病毒沉淀时,虽然低体积会增加病毒浓度,然而由于VSV-G介导病毒与细胞的融合,所以高 浓度VSV-G对细胞会造成一定毒性,而有些细胞对VSV-G引起的毒性比较敏感,因此最终体积需要依据具体实验而定。

生物载体及其制备研究

生物载体及其制备研究 随着生物技术的不断发展和应用,生物载体的制备研究也越来越受到关注。生物载体是指用来携带和传递基因信息的一类物质,其应用范围广泛,在基因工程、药物研究和治疗等领域都有着重要的应用价值。本文将从生物载体的种类、制备方法以及应用等方面进行讨论。 一、生物载体的种类 根据不同的应用需求和载体特性,生物载体可以分为许多不同的类型。其中,质粒是最常见的生物载体之一,它主要是用来在细胞中进行遗传改造和表达,具有载量大、构建简单等优点。此外,还有病毒载体、人工合成载体等不同类型的生物载体。病毒载体是指利用病毒进行基因传递和改造的一类生物载体。病毒载体可以很好地突破宿主细胞的防御机制,从而携带外源基因进入宿主细胞,但同时也存在较大的安全风险。人工合成载体则是指利用生物合成技术将各种原材料组合成为一类全新的载体,该类型的生物载体具有自定义性高、构建灵活等特点。 二、生物载体的制备方法 针对不同类型的生物载体,其制备方法也有所不同。对于质粒等非病毒载体,通常采用化学方法或者启动子替换方法进行制备。其中,化学方法主要是利用DNA回收、唾液酸等特殊的化学试剂对质粒进行分离和提取。而启动子替换方法则是通过利用改良的PCR技术来替换质粒所带的启动子序列,以达到改造质粒的目的。对于病毒载体,通常采用基因重组技术或者转染技术进行制备。其中,基因重组技术利用病毒自身的复制和转移机制来进行基因转移。而转染则是通过利用转染剂将外源基因直接转移进入宿主细胞。对于人工合成载体,则需要利用生物合成技术将各种原材料进行组合和合成。 三、生物载体的应用

生物载体作为基因工程和生物技术领域中不可或缺的重要部分,其应用范围极广。在基因治疗方面,利用生物载体传递和表达治疗相关基因可以有效地治疗多种疾病,如遗传性疾病、肿瘤等。在药物研究领域,生物载体也可以用来研发新型药物,并进行过表达、筛选和鉴定等相关研究。此外,生物载体在农业和畜牧业生产中也有着重要的应用价值,如利用转基因技术进行作物种植和畜禽养殖等。 总之,生物载体的制备研究和应用一直是生命科学领域中的热门话题。不同类 型的生物载体具有不同的优点和缺点,因此在不同领域和应用中需要考虑各种因素,制定适合的生物载体方案。通过不断研究和创新,我们相信生物载体将会有着更广阔的应用前景。

病毒转染原理及步骤

病毒转染原理及步骤 在细胞相关的实验操作中,对于一些按常规方法难以转染甚至无法转染的细胞,通过病毒介导的实验能够大大提高基因的转导效率,以达到目的基因的高效瞬时表达。 病毒转染包括以下步骤:1构建载体2包装提纯病毒3感染靶细胞。以慢病毒为例。 慢病毒(Lentivirus)载体是以HIV-1(人类免疫缺陷I型病毒)为基础发展起来 的基因治疗载体。区别一般的逆转录病毒载体,它对分裂细胞和非分裂细胞均具有感染能力。慢病毒载体的研究发展得很快,研究的也非常深入。该载体可以将外源基因有效地整合到宿主染色体上,从而达到持久性表达。在感染能力方面可有效地感染神经元细胞、肝细胞、心肌细胞、肿瘤细胞、内皮细胞、干细胞等多种类型的细胞,从而达到良好的的基因治疗效果,在美国已经开展了临床研究,效果非常理想,因此具有广阔的应用前景。 一、慢病毒载体构建原理: 慢病毒载体的包装系统一般由两部分组成,即包装成分和载体成分。包装成分由HIV-1基因组去除了包装、逆转录和整合所需的顺式作用序列而构建,能够反式提供产生病毒颗粒所必需的蛋白;载体成分则与包装成分互补,即含有包装、逆转录和整合所需的顺式作用序列,同时具有异源启动子控制下的多克隆位点及在此位点插入的目的基因。将包装成分与载体成分的多个质粒共转染包装细胞,即可在细胞上清中收获携带目的基因的复制缺陷型慢病毒载体颗粒。

慢病毒表达载体包含了包装、转染、稳定整合所需要的遗传信息。慢病毒包装质粒可提供所有的转录并包装RNA 到重组的假病毒载体所需要的所有辅助蛋白。为产生高滴度的病毒颗粒,需要利用表达载体和包装质粒同时共转染细胞,在细胞中进行病毒的包装,包装好的假病毒颗粒分泌到细胞外的培养基中,离心取得上清液后,可以直接用于宿主细胞的感染,目的基因进入到宿主细胞之后,经过反转录,整合到基因组,从而高水平的表达效应分子。 对于一些较难转染的细胞,如原代细胞、干细胞、不分化的细胞等,能大大提高目的基因转导效率,而且目的基因整合到宿主细胞基因组的几率大大增加,这就为RNAi,cDNA 克隆以及报告基因的研究提供了一个有利的途径。对进行稳转细胞株的筛选,为活体动物模型实验提供高质量的包含目的基因的病毒液提供基础。 二、慢病毒载体构建及包装流程: (一)实验流程(1和2为并列步骤) 1.慢病毒过表达质粒载体的构建 设计上下游特异性扩增引物,同时引入酶切位点,PCR(采用高保真KOD 酶,3K内突变率为0%)从模板中(CDNA质粒或者文库)调取目的基因 CDS区(coding sequence)连入T载体。将CDS区从T载体上切下,装 入慢病毒过表达质粒载体。 2.慢病毒干扰质粒载体的构建 合成siRNA对应的DNA颈环结构,退火后连入慢病毒干扰质粒载体 3. 慢病毒载体的包装与浓缩纯化

新型疫苗技术——基因工程疫苗

新型疫苗技术——基因工程疫苗疫苗是预防传染病的有效手段之一。在人类历史上,疫苗的发明和广泛应用,给人类带来了巨大的利益。与传统的灭活疫苗和蛋白亚单位疫苗相比,基因工程疫苗在制备、质量控制和免疫效果等方面具有明显的优势。下面我们就来了解一下新型疫苗技术——基因工程疫苗。 一、基因工程疫苗的基本概念 基因工程疫苗是通过基因工程技术制备的疫苗,其制备方法是将与目标传染病有关的病原微生物的基因克隆到载体中,然后将其进行表达、纯化和制剂制备等一系列过程,制备出能够引起免疫反应的疫苗。 与传统的灭活疫苗和蛋白亚单位疫苗相比,基因工程疫苗制备过程中无需培养病原微生物,避免了大规模培养和生产过程中可能会产生的生物安全风险。此外,基因工程疫苗的质量控制也比传统疫苗更加严格,能够保证其质量的稳定性和一致性。 二、基因工程疫苗的制备方法

基因工程疫苗的制备方法主要包括以下几个步骤: 1.基因克隆 首先,需要从与目标传染病有关的病原微生物中克隆出与其有关的基因。具体方法包括PCR扩增、限制性内切酶切割、连接转化等。 2.载体构建 将克隆的基因插入到载体中,构建成表达基因的载体。车载体主要有质粒、病毒载体等,不同载体使用条件不同。 3.表达和纯化 将表达基因的载体导入到宿主细胞中,使其产生表达蛋白。接着,利用不同的纯化方法纯化目标蛋白。 4.制剂制备

将目标蛋白纯化后进行制剂制备。常用的制剂方式包括冻干法、油质悬液剂、微乳剂等。 三、基因工程疫苗的应用 基因工程疫苗已经在临床应用中展现出了其巨大的潜力。其应 用领域包括肿瘤疫苗、病毒疫苗、细菌疫苗等。 1.肿瘤疫苗 肿瘤疫苗是指使用病原体或其成分,诱导机体产生对肿瘤特异 性抗原的免疫。在基因工程疫苗的制备方面,研究人员通过构建 嵌合病毒疫苗、多肽基因工程疫苗等方式制备出多种肿瘤疫苗, 并且其抗肿瘤效果已经得到了初步的验证。 2.病毒疫苗 在病毒疫苗方面,基因工程疫苗主要针对病毒表面上的抗原, 如人乙型肝炎病毒、人乳头瘤病毒等,制备出相应的病毒疫苗。

基因转化的方法

基因转化的方法 基因转化是指将外源基因或DNA片段引入到目标细胞中,使其表达新的蛋白质或表达 方式发生变化的技术。目前,基因转化技术已经广泛应用于农业、医药、生物工程等领域,是现代生命科学中的重要工具。本文将介绍基因转化的几种常见方法及其基本操作步骤。 一、化学转化法 化学转化法是一种常用的基因转化方法,其操作简单、费用低、适用范围广。其基本 工作原理是通过一些小分子化合物,如聚乙烯醇(PEG)、钙离子等,使目标细胞膜渗透性增加,以便将外源DNA导入细胞内。 操作步骤: 1.培养细胞 首先需要准备目标细胞,并在适当的培养条件下生长,以保证细胞数量充足。 2.制备外源DNA 其次需要制备外源DNA,将其纯化并检测其完整性和纯度。 3.与PEG或钙离子混合 将制备好的外源DNA与PEG或钙离子等小分子化合物混合,形成DNA-PEG或DNA-钙离子复合物。 4.处理目标细胞 将目标细胞接种入细胞培养基中,配合溶液进行预处理,以提高细胞渗透性。混合好 的DNA-PEG或DNA-钙离子复合物缓慢加入培养基中,使其与目标细胞充分接触。 5.筛选转化细胞 在进行培养一段时间后,可以根据是否出现明显表型变化来判断细胞是否已完成基因 转化过程。通过对筛选条件的调整,可以得到更稳定的转化效果。 二、电穿孔法 电穿孔法是利用短暂的高压脉冲,使目标细胞膜发生破裂,以便外源DNA进入细胞内 的一种方法。该方法适用于许多细胞类型,包括哺乳动物、植物和微生物等。 操作步骤:

1.制备目标细胞 与化学转化法类似,需要先制备并培养出目标细胞。 2.制备外源DNA 也需要先制备外源DNA并检测其完整性和纯度。 3.过量的DNA与细胞混合 将制备好的DNA与目标细胞混合放置在电穿孔脉冲电极电容器中。 4.施加电压脉冲 设定电压脉冲的电压和时间参数,施加短暂的高压脉冲使细胞膜产生破裂,外源DNA 得以进入细胞质。 5.恢复细胞状态 待电穿孔脉冲结束后,细胞需要一定时间才能恢复正常状态。最终需要将电穿孔脉冲完成后的混合物接种入细胞培养基中,经过一段时间的培养,进行筛选转化细胞。 三、冷冻/解冻法 冷冻/解冻法是一种简单而又高效的基因转化方法,因其适用于广泛的细胞类型,而被广泛应用。冷冻/解冻法的工作原理是使DNA在低温下与目标细胞暴露一段时间,以便可控制的程度将DNA导入细胞内。 操作步骤: 1.制备目标细胞 先制备目标细胞并培养在适宜的培养环境中。 2.制备外源DNA 制备好外源DNA,并对其进行纯化和检测。 3.混合目标细胞和外源DNA 将制备好的外源DNA与目标细胞混合,并在-80℃左右的低温下静置数小时。 4.解除冷冻状态 解除目标细胞混合物的冷冻状态,并在37℃的恒温下恢复细胞的生长状态。 5.恢复细胞状态

转基因病毒制备技术的使用技巧

转基因病毒制备技术的使用技巧 随着科学技术的不断进步,转基因技术已经成为生物学和医学领域中的重要工具。转基因病毒制备技术是其中一种常用的方法,它通过改变病毒的基因组成来研究疾病的发生机制、开发新的治疗方法等。本文将介绍转基因病毒制备技术的一些使用技巧,希望能对相关研究人员提供帮助。 首先,选择合适的病毒载体是制备转基因病毒的重要一步。病毒载体可以作为 基因的载体,将目标基因导入宿主细胞内。常用的病毒载体包括腺病毒、腺相关病毒、慢病毒等,研究人员需要根据自己的研究目的和要求选择合适的载体。例如,腺病毒载体适用于高效的基因传递和表达,而慢病毒载体则适用于基因的稳定整合和长期表达。 其次,在转基因病毒制备过程中,正确的基因构建是非常关键的。基因构建包 括两个主要步骤,即插入目标基因和调控序列到病毒载体中。实验者需要根据自己的需要设计合适的引物,通过PCR扩增所需基因,并经过酶切等操作将其插入载 体中。同时,为了确保基因的高效表达,调控序列如启动子、启动子增强子和终止子等也需要精心设计。 第三,转染是制备转基因病毒的关键一环。转染是将经过构建的转基因载体导 入到宿主细胞中的过程。可以采用物理方法(如电穿孔、基因枪)或化学方法(如钙磷酸盐共沉淀、聚合物转染剂)来实现。选择适当的转染方法需要考虑细胞毒性、转染效率和细胞类型等因素,并应根据实验目的进行优化。此外,病毒感染和复制的时间点和细胞密度也需要控制好,以便获得满意的转染效果。 第四,经过转染后,为了确保得到纯化的转基因病毒,必须进行筛选和纯化。 筛选可以通过检测转基因病毒的表达蛋白或标记物来进行,例如利用荧光蛋白标记基因来筛选转染阳性细胞。纯化则可以采用不同的方法,如超速离心、密度梯度离心、柱层析和亲和层析等。

car-nk制备方法

car-nk制备方法 【最新版3篇】 目录(篇1) 1.介绍 CAR-NK 制备方法的背景和重要性 2.详述 CAR-NK 制备方法的步骤 3.分析 CAR-NK 制备方法的优缺点 4.总结 CAR-NK 制备方法的研究进展及未来展望 正文(篇1) CAR-NK 制备方法是一种将自然杀伤 (NK) 细胞转化为具有肿瘤杀伤作用的新型免疫疗法。这种方法通过基因工程技术,将具有识别肿瘤相关抗原的 CAR(嵌合抗原受体) 与 NK 细胞相结合,使 NK 细胞具有更强的肿瘤特异性识别和杀伤能力。CAR-NK 制备方法在肿瘤免疫治疗领域具有广泛的应用前景,为众多肿瘤患者带来了希望。 CAR-NK 制备方法主要分为以下几个步骤: 1.获取 NK 细胞:从患者或捐献者体内分离获得 NK 细胞,一般采用外周血单个核细胞分离方法。 2.CAR 基因设计与构建:根据肿瘤相关抗原的特异性,设计并构建具有相应抗原特异性的 CAR 基因。 3.CAR 基因转导:将构建好的 CAR 基因通过病毒载体等方法转导至NK 细胞中,使 NK 细胞表达 CAR。 4.CAR-NK 细胞扩增与培养:将转导后的 CAR-NK 细胞在体外进行扩增与培养,以获得足够数量的 CAR-NK 细胞用于治疗。 5.CAR-NK 细胞输注:将培养好的 CAR-NK 细胞输注至患者体内,使其在体内发挥肿瘤杀伤作用。

CAR-NK 制备方法具有以下优点: 1.高度特异性:CAR-NK 细胞具有针对特定肿瘤相关抗原的高度特异性,可减少对正常细胞的毒副作用。 2.强大的杀伤能力:CAR-NK 细胞具有较强的肿瘤杀伤能力,可弥补NK 细胞在肿瘤免疫治疗中的不足。 3.适应症广泛:CAR-NK 制备方法适用于多种肿瘤类型,为不同类型的肿瘤患者提供了可能性。 然而,CAR-NK 制备方法也存在一些缺点,如病毒载体的安全性问题、CAR-NK 细胞的制备成本较高以及在体内持续时间较短等。 近年来,随着 CAR-NK 制备方法的研究不断深入,越来越多的研究者开始关注这一领域。未来,CAR-NK 制备方法有望通过改进 CAR 结构、优化病毒载体以及提高细胞在体内的持久性等方面,进一步提高其在肿瘤免疫治疗中的应用价值。 综上所述,CAR-NK 制备方法作为一种新型肿瘤免疫治疗策略,具有广泛的应用前景。 目录(篇2) 1.概述 2.car-nk 制备方法的步骤 3.car-nk 细胞的应用 4.car-nk 制备方法的优缺点 5.未来发展方向 正文(篇2) 1.概述 car-nk 细胞是一种具有强大抗肿瘤效应的细胞疗法,通过基因工程

重组VSV病毒载体和重组VSV病毒及其制备方法和用途

(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 CN1590552A (43)申请公布日 2005.03.09 (21)申请号CN03156144.6 (22)申请日2003.09.01 (71)申请人北京大学 地址100871 北京市海淀区中关村 (72)发明人邓宏魁;丁明孝;聂玉春;袁菲;王在;郭延平;胡建军;李锦全;易凌 (74)专利代理机构北京市商泰律师事务所 代理人陈倩 (51)Int.CI C12N15/86; C12N7/01; C12N15/11; C12N5/10; A61K39/12; A61K39/42; 权利要求说明书说明书幅图 (54)发明名称 重组VSV病毒载体和重组VSV病毒及其制备方法和用途 (57)摘要 本发明构建了包含VSV(水疱性口炎病毒) 病毒基因组、可携带外源基因,能恢复出重组

VSV病毒的重组VSV病毒载体,还制备了具有复 制功能及感染性,可在被感染的宿主细胞中增殖 并表达基因组中所携带的外源基因的重组VSV病 毒颗粒。本发明将上述病毒载体及重组病毒用于 高效表达外源基因,所表达的外源基因产物可被 纯化,或直接将重组VSV病毒用于感染实验动物 而获得外源基因产物的抗体或中和抗体,并可用 于各种病毒或细菌性疾病的疫苗研制。 法律状态 法律状态公告日法律状态信息法律状态 2005-03-09公开公开 2005-05-11实质审查的生效实质审查的生效 2006-10-04发明专利申请公布后的驳回发明专利申请公布后的驳回

权利要求说明书 重组VSV病毒载体和重组VSV病毒及其制备方法和用途的权利要求说明书内容是....请下载后查看

重组HSV-Ⅱ新型溶瘤病毒疫苗可行性报告

重组HSV-Ⅱ新型溶瘤病毒疫苗可行性报告 摘要:经过重组减毒的Ⅱ型溶瘤单纯疱疹病毒在体外具有良好的溶瘤效果,经过研究,目前已经能建立以Vero细胞为基质的重组HSV一Ⅱ病毒疫苗反应器微载体无血清悬浮培养生产工艺,最大病毒滴度可达到6.62 lgTCID50/ml以上。为以Vero细胞为基质的无血清病毒疫苗规模化培养提供了一种简便、高效的工艺方法,可计划用于工业化生产。 关键词:重组HSV-Ⅱ;Vero细胞;生物反应器;微载体培养 正文: 1.产品的意义:目前恶性肿瘤已超过心脑血管类疾病成为首位人类致死性疾病 , 采用 Vero细胞培养技术生产的重组溶瘤性Ⅱ型单纯疱疹病毒(HSV-Ⅱ)具有良好的溶源性、靶向性和安全性 , 具有重要的应用价值。国人类肿瘤疫苗的有关研究处于刚起步状态,面临多重难题,建立高效的肿瘤疫苗生产工艺具有非常重要的社会和经济价值。经过重组减毒的Ⅱ型溶瘤单纯疱疹病毒作为高效新型病毒疫苗有望用于肿瘤的临床研究。 图1.溶瘤病毒的作用机制 2.生产材料: ①细胞培养:Vero 细胞 ②病毒株:重组Ⅱ型溶瘤单纯疱疹病毒HSV—II,中国医学科学院肿瘤研究所提供。

③微载体: Cytodex 1 ④生物反应器 图2.产品外观图3. Cytodex 1微载体 图4.Vero细胞图5.生物反应器 3.经济效益: 经查阅ATCC,Vero细胞为免费(不包邮);病毒株需向中国医学科学院肿瘤研究所申请提供(几乎免费);微载体Cytodex 1市价为3元/瓶;生物反应器可租借。 成本保守估计(不算设备使用费):每支成本约为6元,预售价为98元,除去设备费和人工生产费,约可净得利润30RMB/支(1ml)。 4.生产工艺流程:

基因药物系列(三)——溶瘤病毒(下)

基因药物系列(三)——溶瘤病毒(下) 作者:药链圈 上篇介绍了溶瘤病毒的发展历史,治疗原理以及联合用药治疗肿瘤时惊艳的临床表现,本篇我们将介绍CDE的重要技术指导原则,以及国内重点研发企业。 重磅技术指导原则公布,产业发展驶向快车道 2020年国家药品监督管理局药品审评中心(CDE)发布关于公开征求《溶瘤病毒类药物临床试验设计指导原则(征求意见稿)》意见的通知,指导原则在临床试验设计要点(包括受试人群、给药方案、疗效评价、安全性评价和随访)和风险控制两大方面提出意见,这是我国首次针对溶瘤病毒类药物发布临床试验设计指导原则。此前不仅国内尚无相关指导原则,即便是ICH、EMA和 FDA这些国际先进的药品监管机构也尚未发布过相关内容。 这一指导原则的发布为企业临床试验设计指明方向,随着溶瘤病毒和免疫检查点抑制剂联合用药越来越多惊艳的临床数据公布,更多的企业投身于产品研发中,溶瘤病毒行业发展步入快车道。 国内企业创新研发活跃,企业间的产品授权交易和并购频繁 目前国内获得CDE受理的溶瘤病毒产品共有22个,载体种类以腺病毒为主,主要包括腺病毒、疱疹病毒、柯萨奇病毒等。 表:获得CDE受理的溶瘤病毒产品

下文中我们主要介绍了国内主要的溶瘤病毒研发企业,可以发现多数企业近两年融资或产品授权交易较为活跃,恒瑞、天士力、上海医药、李氏大药厂大药厂、乐普医疗、养生堂等产业资本纷纷出手布局,这其中既有龙头医药企业又有医药流通企业,还有保健品企业,足以证明溶瘤病毒这一赛道的吸引力和发展前景。 上海三维生物技术有限公司 上海医药子公司上海三维生物的核心产品安柯瑞对国内基因疗法有开创意义,作为全球首个上市的溶瘤病毒类药物,安柯瑞于2006年

疫苗研发中的病毒载体技术

疫苗研发中的病毒载体技术新冠病毒的爆发让全球陷入了一场前所未有的危机当中,疫苗成为了人们最为关注的话题之一。在这场疫情下,病毒载体技术成为了备受关注的关键疫苗研发技术。 什么是病毒载体技术? 病毒载体技术,是将目标抗原基因和病毒基因组进行重组,从而将目标抗原表达在病毒表面并刺激免疫反应的一种技术手段。具体而言,就是将病毒作为载体,将目标抗原的基因组加入病毒基因组中,经过相关工艺生产疫苗,上市后即可作为疫苗接种。 以新冠疫苗为例,当前已有的疫苗大多采用了病毒载体技术。这些疫苗通过将新冠病毒的抗原基因进行重组,将这些基因插入到另外一个已知能够安全的病毒上,通过制备病毒疫苗刺激免疫系统应对新冠病毒而产生的保护性免疫。 病毒载体技术能够有效提升疫苗的有效性

病毒载体技术在疫苗研发中,可以大大提升疫苗的有效性。这 是因为在病毒载体技术下,新冠病毒的抗原基因会由病毒本身来 表达出来。而病毒的基因组,能很好的将抗原基因与病毒结合在 一起,并能够通过病毒自身的生物反应基础来制备疫苗,从而使 得疫苗楹特别安全和有效。 此外,病毒载体技术还能够将多个抗原基因进行合并,以刺激 更加强大的免疫系统反应,从而在疾病预防和治疗方面发挥着越 来越重要的作用。比如,在SARS的全球大范围大流行期间,首 次使用了病毒载体技术,成功研发出了对SARS的冠状病毒的疫苗。这也说明了该技术在抗击全球传染病方面的潜在应用性。 重要的生产工艺流程 病毒载体技术在疫苗研发流程中,需要进行病毒重组和制备过程。在进行病毒重组时,科学家们需要先进行核酸重组,将目标 抗原基因与病毒基因进行重组,得到新的暂时性重组物。随后, 科学家们需要通过慢慢提升筛选程序,得到最终的重组病毒,这 样就能够让其完美表达目标病原体的识别位点并成功制备出疫苗。

慢病毒包装、浓缩、纯化、滴度实验步骤

一、包装细胞293T细胞的培养 一、293T细胞的冻存 1. 随着传代的次数增加,293T细胞会出现生长状态下降,出现突变等。所以要在细胞购进时就进行冻存。 2. 在细胞对数生长期进行冻存,增加细胞复苏成活率。 3. 倒去细胞上清液,加入D-Hank's液洗去残留的培养基。 4. 加入0.25%的胰酶,消化10-20s后倒去。 5. 镜下观察细胞变圆,细胞间间隙加大时,加入新鲜培养基吹打混匀。 6. 细胞计数。 7.将细胞离心,1000rpm,2min。 8. 根据计数结果加入细胞冻存液(70%完全培养基+20%FBS+10% DMSO)重悬细胞,密度为3×106个/ml。 10. 第二天将细胞放入液氮灌,并记录。 二、293T细胞的传代 1. 当细胞生长至汇合率达到80~90%需要对细胞进行传代操作,以扩大细胞数量,维持细胞良好的生长状态。 2. 消化细胞,方法同上。 3. 细胞离心结束后,加入完全培养基重悬。密度为3×105个/ml。 4. 分到10cm培养皿中,10ml/皿。 三、293T细胞的复苏 1. 当细胞传代次数过多(超过50代),细胞状态变差时或细胞出现污染事故时,需要丢弃并对开始冻存的细胞进行复苏。 2. 打开水浴锅,设置温度为40℃。 3. 查看细胞库记录,根据记录从液氮灌中取出冻存的细胞(需戴上棉手套,防止被冻伤),迅速丢入水浴锅中并快速晃动,在1~2 min内使细胞溶液完全溶解。 4. 将1ml细胞溶液加入9 ml完全培养基中并混匀后转入10cm培养皿。 5. 放回37℃、3%CO2和95%相对湿度的培养箱中培养。 6. 第二天观察细胞存活率。倒掉旧的培养基,加入10ml新鲜培养基。 二、慢病毒的包装、浓缩和滴度测定 1. 所用病毒检测引物为WPRE特异引物,序列如下

病毒载体概述

病毒载体概述 引言 基因导入系统(gene delivery system)是基因治疗的核心技术,可分为病毒载体系统和非病毒载体系统。本章主要论述用于人类基因治疗的病毒载体系统。 用于基因治疗的病毒载体应具备以下基本条件: 1、携带外源基因并能包装成病毒颗粒; 2、介导外源基因的转移和表达; 3、对机体不致病。 然而,大多数野生型病毒对机体都具有致病性。因此需要对其进行改造后才能用于人体。原则上,各种类型的病毒都能被改造成病毒载体。但是由于病毒的多样性及与机体复杂的依存关系,人们至今对许多病毒的生活周期、分子生物学、与疾病发生及发展的关系等的认识还很不全面,从而限制了许多病毒发展成为具有实用性的载体。近20年来,只有少数几种病毒如反转录病毒(包括HIV病毒)、腺病毒、腺病毒伴随病毒、疱疹病毒(包括单纯疱疹病毒、痘苗病毒及EB病毒)、甲病毒等被成功地改造成为基因转移载体并开展了不同程度的应用。 第一节病毒载体产生的原理 病毒载体的产生建立在对病毒的生活周期和分子生物学认识的基础之上。研究病毒载体首先要对病毒的基因组结构和功能有充分的了解,最好能获得病毒基因组全序列信息。病毒基因组可分为编码区和非编码区。编码区基因产生病毒的结构蛋白和非结构蛋白;根据其对病毒感染性复制的影响,又可分为必需基因和非必需基因。非编码区中含有病毒进行复制和包装等功能所必需的顺式作用元件。 各种野生型病毒颗粒都具有一定的包装容量,即对所包装的病毒基因组的长度有一定的限制。一般来说,病毒包装容量不超过自身基因组大小的105~110%。

基因重组技术的发展使病毒载体的产生成为可能。最简单的做法是,将适当长度的外源DNA插入病毒基因组的非必需区,包装成重组病毒颗粒。比如,本实验室曾将4.5kb的lacZ基因表达盒(CMV-lacZ-polyA)插入HSV1病毒的UL44(糖蛋白C)基因的XbaI位点中,病毒基因组的其余部分不改变,构建成重组病毒HSV1-lacZ100(吴小兵等,1998)。由于UL44基因产物对于HSV病毒在培养细胞中产毒性感染是非必需的,因此,该重组病毒可以在细胞中增殖传代。用这种重组病毒感染细胞,能将lacZ基因带入细胞并高效表达。用同样的方法,将AAV-2病毒的rep和cap基因片段(4.3kb)插入HSV1病毒的UL2(编码尿嘧啶DNA糖基化酶)或UL44(编码糖蛋白C)基因中,构建成具有提供重组AAV载体复制和包装所需的全部辅助功能的辅助病毒rHSV-rc(伍志坚等,1999)。 然而,这样的重组病毒作为基因转移载体有许多缺点。首先,许多野生型病毒通过在细胞中产毒性复制而导致细胞裂解死亡;或带有病毒癌基因而使细胞发生转化。因此必须经过改造使其成为复制缺陷性病毒并且删除致癌基因后才能用于基因治疗。其次,插入外源DNA的长度受到很大限制,尤其对于基因组本身较小的病毒如腺病毒伴随病毒(AAV,4.7kb)、反转录病毒(8~10kb)、腺病毒(36kb),如果不去除病毒基因,可供外源DNA插入的容量就十分小。因此,必须删除更多的病毒基因以腾出位置插入较大的外源DNA。为了增加病毒载体插入外源DNA的容量,除了可以删除病毒的非必需基因外,还可以进一步删去部分或全部必需基因,这些必需基因的功能由辅助病毒或包装细胞系反式提供。 病毒载体大体上可分为两种类型: 重组型病毒载体:这类载体是以完整的病毒基因组为改造对象。一般的步骤是选择性地删除病毒的某些必需基因尤其是立早基因或早期基因,或控制其表达;缺失的必需基因的功能由互补细胞反式提供;用外源基因表达单位替代病毒非必需基因区;病毒复制和包装所需的顺式作用元件不变。这类载体一般通过同源重组方法将外源基因表达单位插入病毒基因组中。如在传统的重组腺病毒构建方法中,将外源基因表达盒(exogenous gene expression cassette)插入穿梭质粒(如pXCX2或pFGdX1)的腺病毒同源序

病毒包装实验整体流程及原理(慢病毒、腺病毒)

广州英思特生物科技为您提供高效快速的病毒包装实验外包效劳, 病毒感染细胞实验整体流程及原理 目的基因不能直接整合到大多数真核细胞,常用的手段是将目的基因包装成病毒来感染细胞,从而得到表达满足实验需求。 1、病毒的种类 病毒有很多种,常见的有慢病毒和腺病毒 1.1慢病毒 1.原理 慢病毒〔Lentivirus〕是逆转录病毒的一种。构建的siRNA / miRNA慢病毒载体,与化学合成的siRNA 和基于瞬时表达载体构建的普通siRNA 载体相比,一方面可以扩增替代瞬时表达载体使用,另一方面,Lentivirus-siRNA 克隆经过慢病毒包装系统包装后,可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞,并且在感染后可以整合到受感染细胞的基因组,进行长时间的稳定表达。 1.1.2特点 1〕直接包装成为假病毒颗粒,对分裂和非分裂细胞均有感染作用,适合RNAi 研究和体内实验中难于转染的细胞(比方神经元细胞、干细胞或其它原代细胞)。 2〕可以通过简单方式,在短时间内获得稳定表达特定基因的多种细胞株。 3〕可用于基因敲除、基因治疗和转基因动物研究。 4〕无需任何转染试剂,操作简便。 5〕可以根据客户需要制备多种标记。 1.1.3慢病毒包装简要流程: 1〕含有目的基因的慢病毒RNAi 干扰载体的构建和质粒纯化提取。

2〕慢病毒载体,包装系统共转染病毒包装细胞293T等。 3〕培养48hrs - 72hrs 左右,收集含有病毒的上清培养液。 4〕病毒的纯化和浓缩。 5〕分装、- 80 ℃保存。 6〕滴度测定目的基因检定,并出具检测报告。 、腺病毒 1.2.1原理 腺病毒(Adenovirus,Ad)是一种无包膜的线状双链DNA病毒,其复制不依赖于宿主细胞的分裂。有近50个血清型,大多数Ad载体都是基于血清型2和5,通过转基因的方式取代E1和E3基因,降低病毒的复制能力。这些重组病毒仅在高水平表达E1和E3基因的细胞中复制,因此是一种适用于治疗的高效控制系统。 1.2.2特点 1〕几乎可以感染所有类型的细胞 2〕可以获得复制缺陷型(E1 和E3 缺失) 的腺病毒 3〕病毒滴度高,产生病毒经过浓缩后可以到达1012 PFU/mL,能有效的进行增殖。 4〕腺病毒载体感染宿主的范围比拟广,制备容易,操作简单. 5〕感染细胞时,不整合到染色体中,不存在激活致癌基因或插入突变等危险,生物平安性高。 腺病毒包装简要流程 1〕构建表达siRNA/miRNA 的腺病毒载体 2〕采用PacI 消化纯化的质粒。 3〕消化好的腺病毒表达载体转染293A 细胞,收获细胞以制备病毒粗提液。 4〕将病毒粗提液感染293A 细胞以扩增病毒。 5〕分装,-80℃保存。 1.3、慢病毒和腺病毒的比拟

新城疫病毒Italien株辅助质粒的构建及功能鉴定

新城疫病毒Italien株辅助质粒的构建及功能鉴定 任臻;尉丁;南刚;胡福泉;陈志南;边惠洁 【摘要】目的构建基于T7启动子的含新城疫病毒(NDV)Italien株核衣壳蛋白(NP)、磷酸化蛋白(P)和蛋白(L)基因的表达质粒,作为构建重组NDV所需的辅助质粒.方法将NDV的NP、P和L基因酶切后置于T7启动子和核糖体进入位点序列的下游,分别构建NP、P和L基因的表达质粒,转染BSR-T7/5细胞,采用间接免疫荧光法(1FA)检测病毒蛋白的表达,利用微型基因组(MG-L)质粒检测辅助质粒组装核糖核酸蛋白质复合物(RNP)的功能.结果测序证实辅助质粒构建正确.IFA检测可观察到NP和P基因的表达.与MG-L单转染对照组和空白对照组相比,辅助质粒和MG-L共转染后,报告基因萤火虫荧光素酶得到高效表达(P<0.001).结论成功构建了基于T7启动子的NDV辅助质粒,为进一步构建重组溶瘤NDV Italien株奠定了基础.%Objective Newcastle disease virus (NDV) is anaturally oncolytie virus that has been shown to be safe and effective for cancer therapy. NDV virions possess a non-segmented negative-sense single-stranded RNA genome which contains six genes encoding the nucleocapsid protein (NP), phosphoprotein (P), large polymerase protein (L), matrix protein, fusion protein, and hemagglutinin-neuraminidase. The ribonucleoprotein (RNP) complex consisting of the genomic RNA and the three proteins NP, P, and L are the active template for transcription and replication of the viral genome. The purpose of this study was to construct the expression plasmids of NP, P and L genes of NDV Italien strain in which phage T7 promoter was a transcription promoter for the aim of generation of recombinant NDV. Methods NP, P and L genes were cloned from the

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