植物多酚氧化酶研究综述

合集下载

植物多酚氧化酶、超氧化物歧化酶的测定

植物多酚氧化酶、超氧化物歧化酶的测定

植物体内多酚氧化酶活性的测定一、目的通过实验,掌握植物体内多酚氧化酶活性的测定方法。

二、原理多酚氧化酶是一种含铜的氧化酶,在有氧的条件下,能使一元酚和二元酚氧化产生醌。

用分光光度法在525nm波长下测其吸光度,即可计算出多酚氧化酶的活力和比活性。

反应式如下:多酚氧化酶邻苯二酚(儿茶酚)+1∕2 O2 ——————→ 邻醌+H2O三、材料、仪器及试剂1. 材料:马铃薯块茎等2. 仪器:UV-1206或UV-1240分光光度计;离心机;恒温水浴;研钵或匀浆机;试管;移液管;纱布袋等。

3. 试剂:聚乙烯吡咯烷酮(PVP);0.01mol·L-1 pH 6.5磷酸缓冲液;0.1m mol·L-1pH6.5磷酸缓冲液;0.05 mol·L-1 pH5.5磷酸缓冲液;30%饱和度硫酸铵;0.1 mol·L-1儿茶酚;20%三氯乙酸。

四、实验步骤1. 粗酶液的制备称取马铃薯块茎5g于研钵中,加入0.5g 不溶性聚乙烯吡咯烷酮(事先用蒸馏水浸洗,然后过滤以除去杂质)和100ml 0.1mol·L-1pH6.5磷酸缓冲液,磨成匀浆,用几层纱布袋过滤,滤液加入30%饱和度硫酸铵,离心除沉淀,上清液再加硫酸铵使达60%饱和度,离心收集沉淀。

将所得沉淀溶于2~3ml 0.01mol·L-1 pH6.5磷酸缓冲液中,即为粗制酶液。

2. 活性酶的测定在试管中加入3.9ml 0.05 mol·L-1 pH5.5磷酸缓冲液,1.0ml 0.1 mol·L-1儿茶酚在37℃恒温水浴中保温10min ,然后加入0.5ml酶液(可视酶活性增减用量),迅速摇匀,倒入比色杯内,于525nm波长处以时间扫描方式,在1~2min内测定吸光度变化(A)值。

五、酶活性的计算以每min内A525值变化0.01为1个酶活力单位,按下式计算多酚氧化酶的活力和比活性。

A 酶提取液总量(ml)酶活力(0.01A·min-1)=———————×———————————0.01×反应时间测定时酶液用量(ml)A 酶提取液总量(ml)酶的比活性(0.01A·g-1Fw·min)=—————————×——————————0.01×W×反应时间测定时酶液用量(ml)公式中:A —为反应时间内吸光度的变化值;W为样品鲜重(g)。

多酚氧化酶活性测定及控制[文献综述]

多酚氧化酶活性测定及控制[文献综述]

毕业论文文献综述生物工程多酚氧化酶活性测定及控制1 前言多酚氧化酶(PPO)广泛存在于自然界,在果实和蔬菜收获后,PPO所引起的反应常常会使果肉发生褐变、产生异味和损失营养。

本文总结了多酚氧化酶的活性测定方法以及对其活性的控制,主要研究了抑制剂对其活性的影响,为果蔬贮藏和加工中酶促褐变的防治提供思路。

多酚氧化酶(PPO)作为一种植物酶类,是引起果蔬褐变的主要因素。

鲜切果蔬因组织被切分使PPO与酚类底物的接触机会增加,酚类物质被氧化成棕褐色的醌,导致产品褐变。

抑制PPO活性取决于抑制剂的性质和浓度、底物的可利用性、pH值和温度。

一些还原剂、酶类、螯合剂和蜂蜜等均已被用于防止果蔬酶褐变。

本文主要总结了抑制剂对于控制果蔬PPO活性的研究。

2 主题部分2.1 从果蔬中提取PPO(以莲藕为例)2.1.1 丙酮法(丙酮法提取所得酶液比活力最高。

适合需大量制样时使用)将莲藕洗净,去皮,切碎,加4倍量预冷至.18。

C的丙酮(w/v为1:4)捣碎,搅拌3min,抽滤,冷风吹干残渣后,混匀,得丙酮粉。

称取丙酮粉O.5 g,加入0.2 mol/L,pH为5.4的预冷磷酸二氢钠.柠檬酸缓冲液20ml,搅拌3min,8 000r/min离心10min,所得上层清液即为粗酶液。

【1】2.1.2 匀浆法(匀浆法提取的酶液没有活性)将莲藕洗净,去皮,切碎,加入0.05mol/L,pH5.4的预冷磷酸氢二钠.柠檬酸缓冲溶液(含5%的PVPP),料液比为1:2.2,捣碎,搅拌,抽滤。

向滤渣中加入0.05mol/L,pH5.4磷酸氢二钠一柠檬酸缓冲溶液(W/V为1:1)再次搅拌,抽滤,两次滤液合并,8 000r/min离心10rain,所得上清液即为粗酶液。

【2】2.2.3 匀浆浸提法(匀浆浸提法提取所得粗酶液活性最高,操作简便,提取所得粗酶液活性高,且可以直接用于研究)(1)将莲藕洗净,去皮,切碎,加入0.05mol/L,pH5.4的预冷磷酸氢二钠.柠檬酸缓冲溶液(含5%的PVPP),料液比为1:2.2,捣碎,搅拌,4。

多酚氧化酶6页

多酚氧化酶6页

多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)是自然界中分布极广的一种金属蛋白酶,普遍存在于植物、真菌、昆虫的质体中,甚至在土壤中腐烂的植物残渣上都可以检测到多酚氧化酶的活性。

由于其检测方便,是被最早研究的几类酶之一。

自1883年Yoghid发现日本漆树液汁变硬可能和某种活性物质相关,1938年Keilin D.和Mann G.研究了蘑菇多酚氧化酶的提取和纯化,得到多酚氧化酶并将这类酶称为polyphenol oxidase。

多酚氧化酶又称儿茶酚氧化酶,酪氨酸酶,苯酚酶,甲酚酶,邻苯二酚氧化还原酶,是六大类酶中的第一大类氧化还原酶。

多酚氧化酶的共同特征是能够通过分子氧氧化酚或多酚形成对应的醌。

在广义上,多酚氧化酶可分为三大类:单酚单氧化酶(酪氨酸酶tyrosinase,EC.1.14.18.1)、双酚氧化酶(儿茶酚氧化酶catechol oxidse,EC.1.10.3.2)和漆酶(laccase,EC.1.10.3.1)。

在这三大类多酚氧化酶中,儿茶酚酶主要分布在植物中,微生物中的多酚氧化酶主要包括漆酶和酪氨酸酶。

现在大部分文献所说的多酚氧化酶一般是儿茶酚氧化酶和漆酶的统称。

编辑本段二、多酚氧化酶在自然界的分布1植物中的多酚氧化酶及作用在植物(如苹果、荔枝、菠菜、马铃薯、豆类、茶叶、桑叶、烟草等)组织中,PPO是与内囊体膜结合在一起的,天然状态无活性,但将组织匀浆或损伤后PPO被活化,从而表现出活性。

在果蔬细胞组织中,PPO存在的位置因原料的种类、品种及成熟度的不同而有差异,绿叶中PPO活性大部分存在于叶绿体内[7];马铃薯块茎中几乎所有的亚细胞部分都含有PPO,含量大约与蛋白质部分相同[8];在茶叶中的PPO 分为游离态和束缚态,前者主要存在于细胞液中属可溶态PPO,而后者则主要存在于叶绿体、线粒体等细胞器中,与这些细胞器的膜系统或其他特异部位结合呈不溶态[9],ThanarajS.N.(1990)研究了茶树新梢中PPO活性及多酚含量对红茶品质的影响,发现PPO活性强,多酚含量高,对红茶品质有利,相反则利于绿茶的生产[10];新鲜的苹果中,多酚氧化酶几乎全部存在于叶绿体和线粒体中。

多酚氧化酶的研究应用综述

多酚氧化酶的研究应用综述

多酚氧化酶的研究应用综述马烨09营养20090804159(徐州工程学院食品(生物)工程学院江苏徐州221000)摘要:多酚氧化酶(Polyphenol Oxidase简称PPO)是一类广泛分布于植物体中的一种铜结合酶。

它是由核基因编码、多基因控制,在细胞质中合成,通过一定的方式转运至质体内而成为具酶活性的形式,对农产品品质形成有重要影响。

本文系作者在结合了多篇文章和研究报道后简单的论述了其在生物中的存在和定位、分子结构、生理功能及应用进展等方面近年来的研究成果,最后展望了发展前景。

关键词:多酚氧化酶,分子结构,生理功能,应用进展多酚氧化酶(polyphenol oxidase)是一类广泛存在于植物体内的能催化多酚类氧化成醌类的含铜质体金属酶[2]。

由于多酚氧化酶的酶促褐变与果蔬加工、茶叶品质、组培成功等密切相关,人们很早就开始对它进行深入细致的研究。

随着研究的不断深入,对多酚氧化酶各方面都有了更深一步的认识。

本文就多酚氧化酶的生理作用、功能、定位分布做简要介绍。

1 多酚氧化酶的分布和定位PPO普遍存在于植物、真菌、昆虫中。

PPO相当稳定,甚至在土壤中已腐烂的植物残渣上都可检测到PPO的活性。

研究表明,有活性的PPO定位于正常细胞的质体中。

叶绿体的PPO存在于类囊体上,其它类型质体的PPO存在于各种囊泡上。

定位于类囊体的PPO究竟是结合于类囊体膜上,还是溶解在膜腔中,目前尚无定论。

虽然几乎所有的质体中都包含PPO,但在某些组织中很难检测到PPO活性:例如C4植物的维管束鞘细胞和保卫细胞的质体。

有些报道认为PPO位于腔中,如马铃薯毛状体的Mr 为59000的PPO,番茄PPOE基因产物,蚕豆PPO。

与此相反,Soderhall和Soderhall认为,萝卜的PPO 最初合成时无活性,是可溶性(不与膜相连)的PPO前体,在进行分级分离时才与膜结合,从而造成与膜结合的假象[1]。

2 多酚氧化酶的分子结构2.1 PPO的基因特性PPO是由核基因编码,多个基因控制,表现出多基因的家族性。

植物多酚氧化酶研究综述_代丽

植物多酚氧化酶研究综述_代丽

多酚氧化酶(PPO)是动物、植物、真菌体内普遍存在的一类铜结合酶。

早在1883年Yoghid就发现日本漆树树汁变硬可能与某种活性物质有关。

1894年Betrand首次研究了这种物质,发现它是一种酶蛋白。

1937年Kubowitz在Warburg实验室中第1次分离出多酚氧化酶[1,2]。

随着研究的不断深入,对多酚氧化酶各方面都有了更深一步的认识。

笔者就多酚氧化酶的生理作用、功能、定位分布做简要介绍。

1多酚氧化酶的分布和定位多酚氧化酶广泛存在于植物体的各种器官或组织中,如花器官、分生组织、叶片、块茎、根中,一般在幼嫩部位含量高,而成熟部位较少[2]。

番茄的茎杆的韧皮部、叶片的表皮细胞、花蕾的分生组织、种子和果实中均有积累,在靠近顶端幼叶的PPO主要积累在表皮细胞和毛状体中,成熟叶片中的PPO主要积累在分化的叶肉、韧皮部、毛状体中[3]。

马铃薯芽、根的多酚氧化酶的活性最高,幼叶和成熟块茎中活性中等,成熟叶和茎叶活性最低[4]。

烟叶在苗期时PPO的活性较高,叶片进入旺盛生长期后PPO逐渐升高,在叶片定长时PPO达最大,进入成熟期后PPO活性开始下降,并且同一生育期烟叶PPO活性比较上部叶>中部叶>下部叶[5]。

Kruger等研究了小麦籽粒发育和成熟过程中PPO活性变化,指出在籽粒早期就有PPO存在,未成熟籽粒的PPO主要存在于胚乳中,随籽粒的发育成熟,籽粒中的双酚氧化酶活性很高,在成熟后降至很低[6,7]。

Thygesen等[8]报道,马铃薯匍匐茎、块茎、根和花中PPO活性高,而叶和茎中的低,在块茎发育过程中块茎的PPO活性不断升高。

基因水平同样证明,植物多酚氧化酶研究综述代丽1,宫长荣1,史霖1,陈付军1,巩培智2(1河南农业大学农学院,河南郑州450002;2湖北襄樊市烟草公司,湖北襄樊441003)摘要:多酚氧化酶(PolyphenolOxidase简称PPO)是一类广泛分布于植物体中的一种铜结合酶。

多酚氧化酶

多酚氧化酶
多酚氧化酶的研究
简介
多酚氧化酶(polyphenol oxidase, 简称PPO)是一类广泛存在于植 物体内的含铜金属酶类.由于其与 果蔬加工、品质等密切相关,人们 很早就开始对它进行深入细致的 研究.
• 铜是酶的活性中心,从蛋白质中除 去一部分或全部铜,将引起酶活性 下降或完全失活,若添加铜的话, 酶活又能恢复。不同果蔬中的PPO铜 辅基的数量会有所不同,如蘑菇中 PPO含4个铜原子,而扁豆的PPO含1 个铜原子。
琼酯糖凝胶
已装柱好的苯基琼脂糖 PenlysepharoseCL4B柱,用高盐缓冲 液A预平衡, 酶液借助梯级蠕动泵加 在柱上,洗脱液以一定流速,从高盐缓 冲液A减弱至低盐缓冲液B,最后以 50%的乙二醇进行洗脱 。由紫外监 控器(280nm)监控,调节分级收集器 流速收集。
酶活性测定 测定波长视底物而定,测定 温度为25℃,反应液由pH4的柠檬 磷酸缓冲液、测定底物和酶液组 成,一个酶活力单位为测定条件下, 每分钟引起光密度改变0.001所需 的酶量。
葡聚糖凝胶
文献报道植物组织中PPO分子量一般 介于40-70K之间,根据葡聚糖凝胶分离大 分子的原理,葡聚糖凝胶分离PPO与杂蛋白。 不同型号凝胶的分离范围是根据球形蛋白 理论模型确定的,而实际分离蛋白的结构 与理论模型常有较大差异,因此在纯化PPO 时,采用不同型号的葡聚糖凝胶进 行分离效果的比较。
包括Sepharose和Bio-gel A等。 Sepharose与2,3二溴丙醇反应,形Sepharose CL型凝胶(CL-2B ~4B),分离特性基本没变,
琼脂糖是从琼提高,可以在更
广泛的pH范围内应用。
琼脂糖凝胶稳定性要超过一般的葡聚糖 凝胶和聚丙烯酰胺凝胶。琼脂糖凝胶对样 品的吸附作用很小。琼脂糖凝胶的机械强 度和孔穴的稳定性都很好,一般好于前两 种凝胶,使用琼脂糖凝胶时洗脱速度可以 比较快。 琼脂糖凝胶的排阻极限很大,分离范 围很广,适合于分离大分子物质,但分辨 率较低。琼脂糖凝胶不耐高温。

多酚氧化酶的研究现状

多酚氧化酶的研究现状

多酚氧化酶的研究现状多酚氧化酶的研究现状论文关键词:多酚氧化酶(PPO);催化机理;生理功能一、多酚氧化酶PPO的结构特性二、PPO的催化机理三、PPO的生理功能PPO作为一种氧化还原酶还在光合作用中发挥作用。

如调节叶绿体中有害的光氧化反应速度,参与其中电子传递;PPO还可促进伤口的愈合,也可增加植物对病原体的抗性。

如烟草对炭疽病、黄瓜对黑星病、苹果对轮纹病、棉苗对枯萎病菌、水稻对白叶枯病菌和细菌性条斑病以及番茄对小昆虫的抗性等。

PPO的`作用方式有:1.如番茄的具腺毛状体中含有大量PPO,PPO具有存在于表皮中、活化态和可溶性的特性,在毛状体介导的抗病过程中起作用[12]。

4.如番茄中PPO克隆的反义表达可对基因家族的各成员进行负调节,对病原体产生超敏感性(感受性过敏)[14]。

四、PPO活性影响因素随着诱导剂特性的不同,PPO的分子特性如分子量、等电点等都有所改变。

生长培养基的成分也可部分地控制PPO酶产量,例如:硫酸铵抑制PPO形成,而谷氨酸促进PPO形成。

在植物组织中激活剂可打破PPO的潜伏状态。

在蚕豆中PPO可被游离脂肪酸酸化激活,菠菜类囊体中分离出来的PPO可被亚麻酸激活。

这表明PPO的天然激活剂确实存在。

同样PPO的天然抑制剂也存在,例如菠菜叶中的草酸盐,茶叶中的橡黄素、白花青素等。

矿物质营养例如钙或磷的缺乏可导致PPO活性的降低;硼缺乏对单子叶植物无影响,但可导致双子叶植物中PPO活性的增加。

植物正常新陈代谢受到干扰也会导致PPO活性的改变:例如贮存时通风不好或生长时水分不够均可引起PPO水平的升高。

铜是PPO的组成部分,铜缺失时苜蓿叶片不能表现出PPO酶活性,即使后来再补充铜也不行,这说明全酶只能在发育的早期形成。

钟瑾等[16]用自制壳聚糖与戊二醛交联对PPO固定化进行了初步探讨,表明当戊二醛浓度为2%时,酶活力最高,并提出在确定给酶量时,要兼顾酶活和回收率二者的影响以达到最佳。

莲藕多酚氧化酶酶学性质及抑制论文

莲藕多酚氧化酶酶学性质及抑制论文

莲藕多酚氧化酶酶学性质及抑制研究[摘要] 通过研究温度、ph值、底物浓度以及抑制剂对莲藕多酚氧化酶(ppo) 活性的影响,结果表明:莲藕ppo最适ph值为7.0,最适温度为30℃。

亚硫酸钠、抗坏血酸(vc)等对莲藕ppo活性具有较好抑制作用,柠檬酸、半胱氨酸等对莲藕ppo活性也具有一定抑制作用。

可以通过抗坏血酸(vc)溶液浸泡、调节ph值、低温贮藏等方法来抑制莲藕ppo活性,控制莲藕褐变。

[关键词] 多酚氧化酶活性测定抑制剂莲藕是我国栽培面积最大,也是我国销售量最大的水生蔬菜之一。

莲藕可生食也可做菜,而且药用价值较高,是一种珍贵药用食材。

但莲藕表皮薄,含水量高,贮藏加工时易褐变等问题,致其鲜食货架期短,贮藏保鲜困难,严重影响了莲藕鲜食和相关加工产业的发展。

多酚氧化酶(polyphenol oxidase,ppo)是植物体内普遍存在的一种催化多酚氧化的含铜酶类。

ppo催化多酚类物质氧化成醌,醌可聚合成黑色素,因此ppo被认为是莲藕等果蔬褐变的主要原因之一。

通过抑制ppo活性控制不同果蔬褐变的研究相继开展并取得了一定成绩,如莴苣、苹果、烟草、茶叶、油桃。

李宁等对鲜切莲藕ppo酶学特性进行了研究对莲藕保鲜提供了一定的指导意义。

但迄今为止对莲藕工厂化生产及储存等实际操作的防褐变保鲜等研究未见报道。

本研究探讨在规模化生产过程中莲藕的保鲜和防褐变控制技术。

1.材料和方法1.1 材料与试剂材料:莲藕试剂:聚维酮(pvp)、氯化钙、乙酸、邻苯二酚、抗坏血酸、柠檬酸、亚硫酸钠、半胱氨酸、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、硫脲,均购自嘉信医药有限责任公司,为分析纯。

仪器:紫外可见分光光度计(uv754) ,组织捣碎机(jj-2),循环式真空泵(shb-ⅲ)。

1.2 实验方法1.2.1 莲藕ppo粗酶液的提取取鲜切莲藕片组织50 g,按1:2质量比例加入经过预冷(4℃)的0.1 mol/ l 的ph7.0 的磷酸缓冲液(含5%的pvp),在高速组织捣碎机上捣碎,然后于4℃下浸提2 h 。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

多酚氧化酶(PPO)是动物、植物、真菌体内普遍存在的一类铜结合酶。

早在1883年Yoghid就发现日本漆树树汁变硬可能与某种活性物质有关。

1894年Betrand首次研究了这种物质,发现它是一种酶蛋白。

1937年Kubowitz在Warburg实验室中第1次分离出多酚氧化酶[1,2]。

随着研究的不断深入,对多酚氧化酶各方面都有了更深一步的认识。

笔者就多酚氧化酶的生理作用、功能、定位分布做简要介绍。

1多酚氧化酶的分布和定位多酚氧化酶广泛存在于植物体的各种器官或组织中,如花器官、分生组织、叶片、块茎、根中,一般在幼嫩部位含量高,而成熟部位较少[2]。

番茄的茎杆的韧皮部、叶片的表皮细胞、花蕾的分生组织、种子和果实中均有积累,在靠近顶端幼叶的PPO主要积累在表皮细胞和毛状体中,成熟叶片中的PPO主要积累在分化的叶肉、韧皮部、毛状体中[3]。

马铃薯芽、根的多酚氧化酶的活性最高,幼叶和成熟块茎中活性中等,成熟叶和茎叶活性最低[4]。

烟叶在苗期时PPO的活性较高,叶片进入旺盛生长期后PPO逐渐升高,在叶片定长时PPO达最大,进入成熟期后PPO活性开始下降,并且同一生育期烟叶PPO活性比较上部叶>中部叶>下部叶[5]。

Kruger等研究了小麦籽粒发育和成熟过程中PPO活性变化,指出在籽粒早期就有PPO存在,未成熟籽粒的PPO主要存在于胚乳中,随籽粒的发育成熟,籽粒中的双酚氧化酶活性很高,在成熟后降至很低[6,7]。

Thygesen等[8]报道,马铃薯匍匐茎、块茎、根和花中PPO活性高,而叶和茎中的低,在块茎发育过程中块茎的PPO活性不断升高。

基因水平同样证明,植物多酚氧化酶研究综述代丽1,宫长荣1,史霖1,陈付军1,巩培智2(1河南农业大学农学院,河南郑州450002;2湖北襄樊市烟草公司,湖北襄樊441003)摘要:多酚氧化酶(PolyphenolOxidase简称PPO)是一类广泛分布于植物体中的一种铜结合酶。

它是由核基因编码、多基因控制,在细胞质中合成,通过一定的方式转运至质体内而成为具酶活性的形式,对农产品品质形成有重要影响。

介绍了多酚氧化酶在植物体内的存在和定位、分子结构、生理功能及调控措施等方面近年来的研究成果。

关键词:多酚氧化酶;分子结构;功能;调控措施中国分类号:Q945文献标识码:APolyphenolOxidaseinPlantsDaiLi1,GongChangrong1,ShiLin1,ChenFujun1,GongPeizhi2(1AgronomyCollegeofHenanAgriculturalUniversity,Zhengzhou450002;2XiangfanTobaccoCompanyofHubei,xiangfan441003)Abstract:Polyphenoloxidase(PPO)isaubiquitouscoppermetalloproteininmanyplants,PPOisencodedbymultiplenucleicgenes,synthesizedincytoplasm,transferredintoplastidsinsomeforms,andthentheybecomeofenzymeactivity.Itisbelievedtobetheprimaryfactorforthequalityofmanycrops.Inthisarti-cle,theresearchadvancesonexistence,localization,molecularstructure,physiologicalfunction,expressionandregulationofPolyphenolOxidase.Keywords:Polyphenoloxidase,Molecularstructure,Physiologicalfunction;Regulation基金项目:国家烟草专卖局科技攻关项目(110200302007)。

第一作者简介:代丽,1982年出生,女,山西长治人,硕士,主要从事烟草调制生理方面的研究。

通信地址:450002河南农业大学2265信箱。

E-mail:1009hot@sohu.com。

通讯作者:宫长荣,男,1948年出生,河南荥阳人,河南农业大学教授,主要从事烟草教学和科研工作。

E-mail:gongchr009@126.con。

收稿日期:2007-01-31,修回日期:2007-03-09。

PPOB、PPOE/F在番茄中许多器官中有丰富的转录产物,尤其在幼叶和花中有着最活跃的PPO的转录,PPOB在番茄幼叶中具有最丰富的PPOmRNA,PPOE/F在根的顶端分生组织和花序中表达水平相当高,它们的转录水平随着叶的成熟而下降[3]。

小麦籽粒萌发时,PPO基因强烈表达,特别是在胚芽鞘和胚根中,活性增长了几倍到几十倍[6]。

其他植物如马铃薯叶片中PPOmRNA含量不同,只有在幼嫩叶片中能测到[9]。

葡萄幼嫩的正在成长的浆果、叶片、根中有高水平的PPO基因表达,而在成熟组织中却很少[10]。

亚细胞水平上的定位问题,从多酚氧化酶发现以来,一直争论不休,目前还未有统一的说法。

在20世纪40年代,有研究者认为PPO是存在于叶绿体中,随后不断有人提出新的看法,如PPO是与线粒体、白色体相结合的[1];PPO存在于过氧化体中,与苹果酸脱氢酶和过氧化氢酶并存[11]。

随着检测手段的提高,在前人基础上有了更深一步的认识。

细胞化学与免疫细胞化学研究指出了多酚氧化酶是严格的质体酶,Tentoxin是一种专一影响质体从而导致黄化病的环状四肽毒素,生长在含Tentoxin溶液中的敏感植株的所有质体均完全缺乏多酚氧化酶活性[12]。

在光合组织中质体为叶绿体,PPO位于质体类囊体中;在非光合组织中,质体PPO位于各种囊泡中。

但是有质体的组织也可能没有多酚氧化酶,例如在C4植物叶中,只在叶肉组织中探测到多酚氧化酶活性,维管束鞘细胞尽管含有丰富叶绿体,却检测不到多酚氧化酶活性。

目前对PPO是连接在类囊体膜上还是存在于类囊体腔中,还存有争议。

有些报道认为PPO位于腔中,如马铃薯毛状体的Mr为59000的PPO[13],番茄PPOE基因产物[14],蚕豆PPO。

与此相反,Soderhall和Soderhall[15]认为,萝卜的PPO最初合成时无活性,是可溶性(不与膜相连)的PPO前体,在进行分级分离时才与膜结合,从而造成与膜结合的假象。

2多酚氧化酶的分子结构2.1PPO的基因特性PPO是由核基因编码,多个基因控制,表现出多基因的家族性。

在番茄中有7个编码PPO的核基因(PPOA、A′、B、C、D、E、F)[14];在马铃薯中,编码PPO的核基因至少有6个,分别为POT32、POT33、POT41、PT72、NOR333、P1、P2;蚕豆、苹果中至少有四个基因编码PPO;对小麦的PPO进行QTLs定位分析表明,小麦的PPO至少由3个不同的基因编码,控制PPO活性的主效基因位于2D染色体上,2A、2B、3B、3D和6B染色体上有一些微效基因[16]等等。

有一例外是,从葡萄中提取纯化多酚氧化酶得到分子量为40KD的单一蛋白,且southernanalysis表明葡萄PPO是由一个基因编码的[10]。

2.2分子结构特点2.2.1具有导肽进入叶绿体的蛋白是要通过翻译后加工,初始合成的前体要比成熟的蛋白长,导肽是负责细胞器外膜的初始识别,对细胞器蛋白的定位有重要意义。

现有研究也证明PPO分子由无活性转变为有活性的过程中需要经历肽链加工。

如杏果实PPO的前体Mr为67.1KD,成熟PPO的Mr为56.2KD[17];葡萄浆果PPO前体的Mr为67KD,其中包括了Mr为10.6KD的叶绿体导肽,成熟PPO的Mr为40KD[10];番茄中PPOs前体的Mr约为66 ̄71KD,成熟的PPOMr为57 ̄62KD[18];Hind等[19]报道了菠菜叶中PPO的前体Mr为64KD,成熟PPO的Mr为42.5KD,且对蛋白质测序后发现PPO的N-末端有23个氨基酸,其中前15个与LHC2Ⅱ的蛋白激酶相同,而成熟PPO蛋白却缺少规范的蛋白激酶序列,对蚕豆[20]的研究也发现了此现象。

2.2.2具有保守序列对植物PPO基因的研究过程中无一例外的发现:所研究的植物均含有保守序列-编码铜结合部位的功能区域。

Shahar[21]等在比较了铜结合区域后,指出了这段区域的寡核苷酸的排序及氨基酸的序列。

氨基酸序列的比较发现,PPO序列在铜结合位点附近比较一致,尤其是可能直接与铜离子结合的组氨酸,不同植物之间完全一致[22]。

大部分学者认为:PPO基因序列中含有2个铜结合位点,每个Cu与3个His残基以配位键相连,形成有特定三维结构(type3coppersbridged)的活性部位[23]。

但也有人认为还存在第三个铜结合区,它富含His,作用是与分子氧结合[9,24]。

PPO在进化过程中变异性很小,植物之间基因序列差异不大,研究的十几种植物,有菠菜、梨、桃、蚕豆、胡萝卜、马铃薯、番茄、葡萄和苹果,发现它们的PPO具有高度的相似性(45% ̄95%),甚至发现种间的相似性要大于种内的相似性[25]。

2.2.3不存在内含子长期以来对植物PPO基因的研究,认为PPO基因是无内含子的,如马铃薯[9]、葡萄[10]、杏[17]、番茄[21]等,然而Paul[26]等在研究香蕉时,在香蕉果肉中找到一个含85bp内含子的PPO基因,其内含子富含AT(85%),并有保守的5'供体(donor)和3'受体(acceptor)的剪切位点,符合内含子5′GT...AG3'原则。

3生理功能多酚氧化酶是一种末端氧化酶,参与生物氧化。

在PPO的作用下,底物脱氢后氢与氧结合生成水,但不产生能量ATP,目前对PPO生理意义还不清楚。

可能参与了叶绿体内的能量转移,与氧结合调节胞质中的氧化还原水平,以调节叶绿体中有害的光氧化反应速度。

在对多酚氧化酶深入的过程中,研究者们发现多酚氧化酶在植物抗病虫、对嫁接植物的生根扦插、果蔬加工褐变、茶叶、烟叶的香味物质形成等这些方面起作用。

3.1PPO对植物抗病性影响植物在抵御外界病原菌伤害时,首先是天然形态结构的屏障,包括了细胞壁的角质、蜡质、木质素等,其次植物通过组织结构局部坏死,在侵染部位形成枯斑,病原菌得不到营养而死亡;植物体内本身也含有一些物质对病菌有抑制作用。

Steffens.JC[27]为证明PPOs在植物中的抗病性,将马铃薯PPOs基因转移到番茄植株中,对该植株接种PseudomonasSyringaepvtomato的病原菌,试验发现:与对照相比,转化株的抗病性显著增加。

相关文档
最新文档