琼脂糖凝胶电泳
DNA的琼脂糖凝胶电泳实验原理和操作步骤
DNA的琼脂糖凝胶电泳实验原理和操作步骤DNA的琼脂糖凝胶电泳是一种常用的分子生物学技术，用于分析DNA 的大小和纯度，以及进行DNA分子的分离和纯化。
凝胶电泳实验可以帮助我们确定DNA样本的大小和获得纯化的DNA片段供进一步研究使用。
下面是DNA琼脂糖凝胶电泳实验的原理和操作步骤。
【原理】DNA琼脂糖凝胶电泳是根据DNA分子在电场中的不同迁移速率来分离大小不同的DNA片段。
琼脂糖凝胶是一种凝胶状物质，其孔隙大小能够将DNA分子限制在一定范围内，较大的DNA分子迁移速率较慢，而较小的DNA分子迁移速率较快。
琼脂糖凝胶通常是在平均浓度为1%至2%之间的范围内制备，以便在不同大小的DNA分子之间提供适当的分辨率。
实验中，DNA样品通过切割酶或PCR等方法获得，样品经过核酸电泳缓冲液稀释，并在琼脂糖凝胶板上进行电泳。
凝胶板两侧连接电源，DNA 的带电粒子将在电场的作用下从负极迁移到正极，迁移过程中形成DNA的“条带”，条带的位置和长度反映了DNA的大小。
通常，DNA条带由荧光染料或核酸染料标记，以便在电泳结束后进行可视化。
【操作步骤】以下是DNA琼脂糖凝胶电泳实验的一般操作步骤：1.制备琼脂糖凝胶板：a.准备琼脂糖粉末和核酸电泳缓冲液（通常为TAE或TBE缓冲液）。
b.按照说明书将琼脂糖粉末溶解于核酸电泳缓冲液中。
c.将溶液加热至沸腾并搅拌，使琼脂糖完全溶解。
d.将溶液倒入预先准备好的电泳仓中，插入梳子或制备好的孔板，使其凝固。
2.样品制备：a.提取DNA样品并测定其浓度。
b. 将DNA样品稀释到适当浓度，通常为10-50 ng/μL。
c. 添加适当的加载缓冲液，通常是一些染料和甘胺酸（glycine）或其他添加剂。
3.DNA加载和电泳：a.打开琼脂糖凝胶仓盖，将DNA样品负载于凝胶孔内。
b.将DNA负载区域和样品标注在电泳仓中，以便在电泳结束后可以准确识别DNA带。
c.关闭盖子，将电泳仓放入电泳设备中。
琼脂糖凝胶电泳
琼脂糖凝胶电泳
一．试剂
TAE液，EB,电泳，1%琼脂糖
二、仪器连接方法
（一）连线：电泳仪的连接，正极（红色）---红色，负极——黑色；
（二）凝胶槽的准备：采用胶布固定凝胶槽的两端，并应该使梳子的高度调到距槽底2、3mm.
（三）首先取出0.8g的琼脂糖，加入80ml的TAE中，热浴溶解到透明状为最佳。
然后在60℃左右时，添加100μl的EB，然后倒入到凝胶槽中，在实验过程中应该注意胶面的平整性，没有气泡。
最后冷却之后拔去梳子。
三、加样
首先取出封胶条，并将试管号的胶板放在电泳槽中，然后加入buffer，使其高出胶面的1-3mm，最后采用进样器进行吸取样品20μl并加入到样品槽中。
四、电泳
V=100V。
1-1.5h,至溴酚蓝移出2/3。
PCR产物的琼脂糖凝胶电泳分析
PCR产物的琼脂糖凝胶电泳分析PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种利用DNA复制酶扩增DNA片段的技术。
通过PCR，可以产生大量特定的DNA序列，以便后续的分析和研究。
PCR产物的琼脂糖凝胶电泳分析是一种常用的方法，用于确定扩增反应的成功与否，并得到扩增产物的大小信息。
琼脂糖凝胶电泳是一种分离和检测DNA分子的方法，基于DNA的大小和电荷的差异。
琼脂糖是一种高分子量的糖，在加热后形成凝胶状。
通过将DNA样品混合到熔化的琼脂糖溶液中，然后在电场的作用下，DNA分子会在凝胶中移动，从而分离成不同大小的带状条带。
这些条带可以被观察和测量，从而获得PCR产物的大小信息。
琼脂糖凝胶电泳分析的步骤如下：1.准备琼脂糖凝胶：将适量的琼脂糖粉末加入缓冲溶液中，加热并搅拌，使其溶解。
然后将琼脂糖溶液倒入凝胶模板中，插入梳子，待凝胶固化。
2.样品处理：将PCR产物与DNA标记物（如DNA分子量标记物）混合。
DNA标记物是一系列已知大小的DNA片段，用于标记未知PCR产物的大小。
3.载样：将样品和DNA标记物载入琼脂糖凝胶的孔中，通常使用微量移液器进行操作。
同时加入负向和正向的电源极，以形成电场。
4.电泳：使用适当的电压将琼脂糖凝胶浸入缓冲液中，然后启动电源，开始电泳。
DNA分子在电场的作用下，从孔洞区域向凝胶的另一端移动。
5.可视化：电泳结束后，可以使用紫外灯或染料（如溴化乙锭）将凝胶上的DNA分子可视化。
DNA分子会产生荧光，从而形成带状条纹。
6.分析：根据带状条纹的迁移距离和DNA标记物的大小，可以确定PCR产物的大小。
通过比较PCR产物的迁移距离和DNA标记物，并结合PCR的设计和预期产物的大小，可以确定PCR反应是否成功。
此外，可以使用图像分析软件测量和分析带状条纹的大小。
总结起来，PCR产物的琼脂糖凝胶电泳分析是一种常用的方法，用于确定PCR反应的成功与否，并获取PCR产物的大小信息。
高中生物琼脂糖凝胶电泳
高中生物琼脂糖凝胶电泳高中生物学是非常重要的一门学科，它涉及到人类的生命、健康和环境保护等方面。
在学习生物学过程中，琼脂糖凝胶电泳是一个重要而又基础的实验课程。
在这个实验中，我们利用琼脂糖凝胶电泳技术来分离和检测DNA 条带，以便于准确鉴定生物特征。
简单介绍琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶电泳是一种分子生物学的实验方法，它利用琼脂糖凝胶的特性将DNA 条带分离。
琼脂糖是一种胶体物质，通过加热和冷却过程，将其转变成凝胶状。
凝胶的孔隙大小和密度是可调的，可以根据需要进行操作。
琼脂糖凝胶电泳是利用电场的力学作用，将DNA 条带分离为不同的迁移带，大小和迁移速度的差异可以对不同的DNA 条带进行鉴定和分析。
实验步骤琼脂糖凝胶电泳是一项基础性的实验，下面我们来简单介绍一下实验步骤。
准备琼脂糖凝胶首先，我们需要准备琼脂糖凝胶。
将琼脂糖粉末加入缓冲溶液中，在加热的过程中充分混合，然后冷却成凝胶状态。
准备DNA 样本接下来，我们需要提取DNA 样本。
可以通过DNA 提取试剂盒快速提取DNA 样本，或者手动分离DNA 样本。
电泳操作将准备好的琼脂糖凝胶放置于电泳槽中，加入适量缓冲溶液。
然后在琼脂糖凝胶中插入电极片，加入电泳缓冲液。
在电泳桥的一侧加入DNA 样本，另一侧加入DNA 分子量标准品。
运行电泳在电泳过程中，DNA 样本会在电场力的作用下迁移至阳极端，较小的分子将更远地迁移。
DNA 分离后，通过染色技术来识别各段片段。
注意事项在实验过程中，需要注意电压和时间的控制，以保证良好的分离效果。
同时，对琼脂糖凝胶的制备和保存也需要注意。
结语总结一下，琼脂糖凝胶电泳是一项基础性的实验操作，需要掌握一定的实验技能和知识。
通过这项实验，我们能够更加深入地了解生命的分子基础，并加深对遗传学、基因工程等方面的理解。
电泳琼脂糖凝胶的配制
电泳琼脂糖凝胶的配制
配制电泳琼脂糖凝胶的步骤如下：
1. 准备所需材料，包括琼脂糖粉、缓冲液、电解质溶液、蒸馏水等。
2. 根据实验的需要，根据琼脂糖的浓度选择适当比例的琼脂糖粉，一般浓度为0.8-2%。
3. 将所需缓冲液加入容器中，根据实验需要选择适当的缓冲液，例如Tris缓冲液、磷酸缓冲液等。
4. 在缓冲液中加入适量的琼脂糖粉，搅拌均匀，可以使用磁力搅拌器。
5. 根据实验需要，在琼脂糖溶液中添加适量的电解质溶液，例如SDS、尿素等，用于改变凝胶的性质。
6. 使用蒸馏水将溶液补充至所需体积，同时搅拌均匀，确保溶液中无颗粒。
7. 将准备好的琼脂糖溶液加热至70-80摄氏度，使其完全溶解。
8. 静置琼脂糖溶液至室温，或者加入适量冷却剂，如冰块，以加快冷却过程。
9. 将准备好的琼脂糖溶液倒入凝胶模板中，避免气泡的产生。
10. 等待凝胶完全固化，通常需要约30分钟至1小时。
11. 凝胶固化后，根据实验需要在凝胶上形成孔洞，以供电泳样品加入。
以上是电泳琼脂糖凝胶的简要配制步骤，具体的实验条件和步骤可以根据实验的要求进行调整。
琼脂糖凝胶电泳原理
琼脂糖凝胶电泳原理琼脂糖凝胶电泳是一种常用的蛋白质分离和分析技术，它利用琼脂糖凝胶作为分离介质，根据蛋白质的分子大小和电荷来进行分离。
在琼脂糖凝胶电泳中，蛋白质样品被加载到琼脂糖凝胶中，然后通过电场进行电泳分离，最终形成不同的蛋白质条带，从而实现蛋白质的分离和分析。
琼脂糖凝胶电泳的原理主要包括琼脂糖凝胶的特性和电泳过程中蛋白质的迁移。
首先，琼脂糖凝胶是一种多孔性凝胶，其孔隙大小可以根据需要进行调整，通常用于分离大分子量的蛋白质。
其次，电泳过程中，蛋白质样品在电场的作用下向电极迁移，根据蛋白质的分子大小和电荷不同，迁移速度也不同，从而实现蛋白质的分离。
在进行琼脂糖凝胶电泳实验时，首先需要准备琼脂糖凝胶板和蛋白质样品。
将琼脂糖凝胶板放置在电泳槽中，然后将蛋白质样品加载到琼脂糖凝胶板上。
接下来，将电泳槽中注满电泳缓冲液，然后连接电源进行电泳。
在电泳过程中，蛋白质样品将会在琼脂糖凝胶板上形成条带，根据其分子大小和电荷特性进行分离。
琼脂糖凝胶电泳的原理简单清晰，操作也相对容易，因此被广泛应用于生物化学和分子生物学领域。
通过琼脂糖凝胶电泳，可以对蛋白质进行分离和纯化，也可以用于分析蛋白质的相对分子质量和电荷性质。
此外，琼脂糖凝胶电泳还可以与其他技术相结合，如Western blotting等，用于进一步的蛋白质分析。
总之，琼脂糖凝胶电泳作为一种重要的蛋白质分离和分析技术，具有简单易操作、分辨率高、分离效果好等优点，被广泛应用于生命科学领域。
通过对琼脂糖凝胶电泳原理的深入理解，可以更好地应用该技术进行蛋白质研究，为生命科学研究提供更多有益信息。
琼脂糖凝胶电泳的实验器材列表
琼脂糖凝胶电泳的实验器材列表全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：琼脂糖凝胶电泳是一种常用的蛋白质分离和分析技术，它通过将待检样品加入琼脂糖凝胶中，然后施加电场进行电泳，根据蛋白质的大小和电荷来实现分离。
在进行琼脂糖凝胶电泳实验时，需要准备一系列的实验器材来保证实验顺利进行。
下面就为大家介绍一份关于琼脂糖凝胶电泳的实验器材清单。
1. 琼脂糖凝胶板：用于制备琼脂糖凝胶电泳所需的琼脂糖凝胶板。
琼脂糖凝胶板有不同厚度和孔径的选择，可以根据实验需要选择合适的琼脂糖凝胶板。
2. 电泳槽：用于放置琼脂糖凝胶板和提供电场进行电泳的设备。
电泳槽有不同尺寸和型号，可以根据实验需要选择合适的电泳槽。
3. 电源和电源线：用于提供电流进行电泳实验，电源的输出电流和电压应根据实验要求进行调节。
电源线连接电源和电泳槽，确保实验可以正常进行。
4. 琼脂糖：用于制备琼脂糖凝胶板的主要原料，琼脂糖的纯度和质量对实验结果有重要影响，应选择优质的琼脂糖。
5. 蛋白质样品：待检样品，用于进行琼脂糖凝胶电泳分析。
样品预处理和加载方法会对实验结果产生影响，应根据实验目的选择合适的样品处理方法。
6. 样品缓冲液：用于稀释样品和维持合适的pH值，以及提供电泳所需的离子条件。
不同类型的琼脂糖凝胶电泳需要不同种类的样品缓冲液。
7. 饱和盐溶液：用于制备电泳缓冲液和维持电泳过程的离子条件，常用的饱和盐溶液包括氯化钠和磷酸钾。
8. 蛋白质标记剂：用于标记蛋白质样品，通过标记蛋白质使其在电泳过程中可见，以便后续的分析和检测。
9. 蛋白质分子量标准品：用于校准琼脂糖凝胶电泳的分子量刻度，帮助确定待检样品的分子量。
10. 染色剂：用于染色琼脂糖凝胶板上的样品，使样品可见并方便后续的分析和检测。
以上就是一份关于琼脂糖凝胶电泳实验器材清单，这些器材是进行琼脂糖凝胶电泳实验时必备的。
在选择和使用这些器材时，需要注意其质量和操作规范，以确保实验结果的准确性和可靠性。
琼脂糖凝胶电泳 实验报告
琼脂糖凝胶电泳实验报告琼脂糖凝胶电泳实验报告引言：琼脂糖凝胶电泳是一种常用的分离和分析生物大分子的方法。
它基于琼脂糖凝胶的孔隙大小，通过电场作用下分离样品中的不同分子。
本实验旨在通过琼脂糖凝胶电泳技术，分离并分析DNA样品中的不同片段。
实验材料与方法：1. 实验材料：-琼脂糖凝胶：用于制备凝胶基质，提供分离分子的孔隙。
-缓冲液：用于维持凝胶的pH值和离子浓度稳定。
-DNA样品：包含待分离的DNA片段，可通过PCR扩增获得。
2. 实验步骤：（1）制备琼脂糖凝胶：将适量琼脂糖加入缓冲液中，加热搅拌至溶解，待冷却至大约60℃时，倒入凝胶模具中，插入梳子，待凝胶完全固化后，取出梳子。
（2）样品处理：将待分离的DNA样品与DNA加载缓冲液混合，加热至95℃，使DNA变性，然后迅速冷却至室温。
（3）电泳分离：将凝胶模具放入电泳槽中，加入足够的缓冲液，将DNA样品加入凝胶孔中，连接电源，施加适当电压，进行电泳分离。
结果与讨论：经过电泳分离后，我们观察到琼脂糖凝胶上出现了一系列DNA条带。
这些条带的迁移距离与DNA片段的大小成反比，即较小的片段迁移距离较远，较大的片段迁移距离较短。
实验结果的解释可以通过琼脂糖凝胶电泳的原理来理解。
琼脂糖凝胶的孔隙大小决定了不同大小的DNA片段在凝胶中的迁移速度。
较小的DNA片段能够更容易通过凝胶孔隙，因此迁移距离较远；而较大的DNA片段则受到凝胶孔隙的限制，迁移距离较短。
通过对DNA条带的大小和形状进行分析，我们可以获得关于DNA样品的重要信息。
例如，我们可以确定样品中是否存在特定的DNA片段，或者在PCR扩增中是否成功地放大了目标片段。
总结：琼脂糖凝胶电泳是一种简单而有效的生物大分子分离和分析方法。
通过电泳分离DNA样品，我们可以快速获得关于样品中DNA片段的信息。
这种技术在分子生物学、遗传学等领域有着广泛的应用，对于研究和诊断基因相关的疾病具有重要意义。
在今后的研究中，我们可以进一步探索琼脂糖凝胶电泳的应用，并结合其他分析技术，提高实验的准确性和灵敏度。
琼脂糖凝胶电泳详解
一、简介琼脂糖凝胶电泳是以琼脂糖凝胶作为支持介质、利用核酸分子在电场中时的电荷效应和琼脂凝胶的分子筛效应，达到分离核酸混合物的一种电泳技术。
1、琼脂糖的分子筛效应1）琼脂糖（Agarose）来源于海洋红藻细胞壁，是一种大分子线性聚合物，基本结构是由D-半乳糖和3,6-anhydro-α-L-半乳糖通过β-1,4糖苷键结合而成的双糖单位在α-1,3糖苷键的连接下形成的一个长链。
琼脂糖具有亲水性，并几乎完全不存在带电基团，对敏感的大分子极少引起变性和吸附，是理想的惰性载体。
常用作电泳、层析等技术中的半固体支持物，用于生物大分子或小分子物质的分离和分析。
琼脂糖在水中一般加热到90℃以上溶解，温度下降到40℃左右形成良好的半固体状凝胶。
琼脂糖加热溶解后分子呈随机线团状分布，当温度降低时链间糖分子上的羟基通过氢键作用相连接，形成直径从50nm-200nm不等的孔径结构，孔径的大小由凝胶浓度控制。
琼脂糖凝胶中孔径的大小，影响了通过的核酸分子的大小以及通过的速度。
通常来说，琼脂糖凝胶的浓度越高，孔径越小，能够通过的核酸分子越小，迁移速度也越慢。
DNA片段越小，所需的胶浓度越大；而DNA 片段越长，所需的胶浓度则越小。
选择合适的胶浓度才能更好的分离片段。
2）琼脂的质量评价琼脂糖通常通过其凝胶强度和电内渗情况判断质量好坏。
强度越高，凝胶性能越好。
质量较好的琼脂糖强度通常在1200g/cm2以上，硫酸根含量在0.2%以下，电内渗在0.13以下。
琼脂糖是从琼脂中分离而来的。
琼脂由琼脂糖和琼脂果胶组成的，琼脂果胶是由许多更小的分子组成的异质混合物，和琼脂糖结构相似，但带硫酸根和羧基组分，凝胶能力差。
在琼脂糖制备过程中需要把琼脂果胶尽量去除，否则琼脂糖有可能存在极微量硫酸根和丙酮酸取代电离基团，附着到琼脂糖的多糖基质上，造成电内渗（EEO）。
电内渗会导致缓冲液中产生正电荷反向离子，它们向负极移动，从而造成与DNA反方向迁移的液流，使DNA的分离效果变差。
琼脂糖凝胶电泳
• 上样缓冲液
• 甘油可增加样品密度，使其 比重增加，以确保DNA均匀 沉入加样孔内
• 在电泳中形成肉眼可见的指 示带，可预测核酸电泳的速 度和位置
• 使样品呈色，使加样操作更 方便
琼脂糖凝胶电泳
• 电压1-5V/cm • 电泳时间大约1小时 • 最前缘至胶全长3/4时停止
+
溴化乙锭( EB)染色
– 迁移距离相同的两 条带，大小相同
Log MW
Distance
注意事项
• 一定要等凝胶冷却至60℃时再入加溴化乙 锭
• 切记DNA样品由负极往正极泳动(靠近加样 孔的一端为负)
• 加完样品后最好先观察一段时间 • 插电极或拔电极时必须将仪器电源关掉 • 不要使样品跑出凝胶
琼脂糖凝胶电泳应用
• PCR产物鉴
溴化乙锭是一种荧光染 料,可嵌入核酸双链的 碱基对之间，在紫外 线激发下，发出红色 荧光，常用 0.5mg/ml
+
+
EB堆砌在DNA双螺旋 的碱基对之间
DNA 分子越小,结合的 EB 越少,染色越淡
DNA的琼脂糖凝胶电泳照片
琼脂糖凝胶电泳
• 结果
片段大小的鉴定分析
– 通过marker比较不 同条带的迁移率
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琼脂糖凝胶电泳注意事项及操作流程
凝胶电泳操作注意事项：
1. 缓冲系统：在没有离子存在时，电导率最小，DNA不迁移，或迁移极慢，在高离子强度
的缓冲液中，电导很高并产热，可能导致DNA变性，因此应注意缓冲液的使用是否正确。长
时间高压电泳时，常更新缓冲液或在两槽间进行缓冲液的循环是可取的。
2. 琼脂糖：不同厂家、不同批号的琼脂糖，其杂质含量不同，影响DNA的迁移及荧光背景
的强度，应有选择地使用。
3. 凝胶的制备：凝胶中所加缓冲液应与电泳槽中的相一致，溶解的凝胶应及时倒入板中，
避免倒入前凝固结块。倒入板中的凝胶应避免出现气泡，影响电泳结果。
4. 样品加入量：一般情况下，0.5cm宽的梳子可加0.5ug的DNA量，加样量的多少依据加
样孔的大小及DNA中片段的数量和大小而定，过多的量会造成加样孔超载，从而导致拖尾和
弥散，对于较大的DNA此现象更明显。
5. 电泳系统的变化会影响DNA的迁移，加入DNA标准参照物进行判定是必要的。
6. DNA样品中盐浓度会影响DNA的迁移率，平行对照样品应使用同样的缓冲条件以消除这
种影响。
7. DNA迁移率取决于琼脂糖凝胶的浓度，迁移分子的形状及大小。采用不同浓度的凝胶有
可能分辨范围广泛的DNA分子，制备琼脂糖凝胶可根据DNA分子的范围来决定凝胶的浓度。
小片段的DNA电泳应采用聚丙烯酰胺凝胶电泳以提高分辨率。
琼脂糖加样时候注意事项：
1、 用移液抢将样品加至点样孔。每孔点样的体积一般少于25ul，因此吸取每一个样品时，
操作要稳当且细心。
2、 常加一定量的蔗糖来增加样品的浓度，以使每个样品停留在各自的点样孔中。
3、 在样品中加入水溶性的阴离子追踪染料（如溴酚蓝），用以看出样品移动的距离。
4、 在一个或几个孔中加入标准分子质量样品，电泳结束后，根据已知分子质量的带的相应
位置可用来做出标准曲线。
5、 电泳一般是在追踪染料泳动到胶的80%部位时停止。注意电泳期间，电泳槽盖要安全盖
好，以防止液体蒸发，又可以降低电击的可能性。
6、 电泳结束后，将胶浸没在1mg/L的溴化乙锭（EB）中，5min后即可看到DNA带，EB通
过插入在双螺旋的配对核苷酸之间同NDA结合。另一种方法是电泳时，在胶中加入EB。
7、 在紫外灯下，由于EB发出强烈的橘红色的荧光，所以可以看到DNA带。利用这种方法
检测的界限是每条带约10ng DNA。带上塑料安全眼镜可防止紫外光对眼睛的伤害。可用尺
子来测量每条带至点样孔的距离。同样，利用特制的照相机和调焦器，也可以对凝胶拍照。
8、 如果要对某一条带（如质粒）进一步分析，可用小刀将含该带的凝胶切割下来，从带中
回收DNA。
琼脂糖核酸电泳实验操作流程
1.用蒸馏水将制胶模具和梳子冲洗干净，放在制胶平板上，封闭模具边缘，架好梳子；
2.根据欲分离DNA片段大小用凝胶缓冲液配制适宜浓度的琼脂糖凝胶：准确称量琼脂糖干
粉，加入到配胶用的三角烧瓶内，定量加入电泳缓冲液（一般20~30 ml）；
3.放入到微波炉内加热熔化。冷却片刻，加入一滴荧光染料，轻轻旋转以充分混匀凝胶溶液，
倒入电泳槽中，待其凝固；
4.室温下30~45分钟后凝胶完全凝结，小心拔出梳子，将凝胶安放在电泳槽内；
5.向电泳槽中倒入电泳缓冲液，其量以没过胶面1mm为宜，如样品孔内有气泡，应设法除去；
6.在DNA样品中加入10×体积的载样缓冲液（loading buffer），混匀后，用枪将样品混
合液缓慢加入被浸没的凝胶加样孔内；
7.接通电源，红色为正极，黑色为负极，切记DNA样品由负极往正极泳动 (靠近加样孔的一
端为负)。一般60～100V电压，电泳20～40min即可；
8. 根据指示剂泳动的位置，判断是否终止电泳；
9.电泳完毕，关上电源，在凝胶成像仪上观察电泳带及其位置，并与核酸分子量标准Marker
比较被扩增产物的大小。
琼脂糖凝胶浓度与线形DNA的最佳分辨范围
琼脂糖凝胶浓度线形DNA的最佳分辨范围（bp）
0.5%1,000～30,000
0.7%800～12,000
1.0%500～10,000
1.2%400～7,000
1.5%200～3,000
2.0%50～2,000