大鼠实验的排除标准
大鼠乙醇毒效应检测指标
大鼠乙醇毒效应检测指标在检测大鼠乙醇毒效应时，通常会关注以下几个主要的指标：1.生理指标：观察大鼠的呼吸频率、心率以及血压等生理指标。
乙醇摄入可能导致这些指标的改变，如呼吸急促、心率不规律或血压波动等。
2.行为指标：通过观察大鼠的日常行为，如饮食、睡眠、运动等，可以评估乙醇对大鼠行为的影响。
乙醇摄入可能导致大鼠的行为改变，如食欲减退、活动减少等。
3.血液生化指标：检测大鼠血液中的生化指标，如血糖、肝功能（如谷丙转氨酶、谷草转氨酶等）、肾功能（如尿素氮、肌酐等）等。
乙醇摄入可能影响这些指标的数值，反映肝肾功能的受损情况。
4.组织病理学检查：对大鼠的重要器官（如肝、肾、脑等）进行组织病理学检查，以观察乙醇对器官结构的影响。
这种检查可以揭示乙醇引起的微观结构变化。
5.基因表达分析：利用基因表达谱芯片技术，检测大鼠在乙醇处理后的基因表达情况。
这有助于了解乙醇对大鼠基因表达的影响，进一步揭示乙醇毒性的分子机制。
6.代谢产物分析：检测大鼠体内乙醇及其代谢产物的含量，如乙醛、乙酸等。
这些代谢产物的含量可以反映大鼠对乙醇的代谢情况，从而评估乙醇的毒性作用。
7.免疫功能评估：评估大鼠的免疫功能，如抗体生成、淋巴细胞活性等。
乙醇摄入可能影响免疫系统的功能，导致免疫力下降。
8.生化指标检测：通过生化分析方法检测大鼠体内的其他相关生化指标，如脂肪酶、淀粉酶、碱性磷酸酶等。
这些指标可以反映大鼠的生理状态，如肝肾功能状况、消化系统功能等。
9.血液流变学分析：检测大鼠的血液流变学参数，如全血黏度、血浆黏度、红细胞变形能力等。
这些参数可以反映大鼠的血液流动性和循环系统状况，可能与乙醇对心血管系统的毒性作用有关。
10.器官功能评估：对大鼠的各个器官功能进行评估，如肝肾功能、心脏功能等。
这可以通过一系列的生理生化指标和病理学检查来实现。
综合以上各项指标的检测结果，可以对大鼠的乙醇毒效应进行全面评估和分析。
需要注意的是，在进行实验设计和实际操作时，应严格遵守动物实验的相关伦理和法律规定，确保实验过程的规范性和科学性。
新事物识别实验排除标准
新事物识别实验（Novel Object Recognition Test，NORT）是一种常用于评估动物（尤其是啮齿类动物如大鼠和小鼠）学习和记忆能力的行为学实验。
该实验基于动物对新奇事物的天然好奇心和探索行为。
以下是进行新事物识别实验时可能需要遵循的一些排除标准：
健康状况：任何显示疾病迹象或异常行为的动物都应被排除。
例如，体重过轻或过重、毛发光泽异常、行动不便等。
先前的经验：如果动物在实验前已经接触过可能的“新事物”，则这些动物可能不适合参与实验，因为它们不会对“新事物”表现出预期的好奇心。
焦虑或过度活跃：一些动物可能表现出高度的焦虑或过度活跃，这可能会影响它们对新事物的探索。
这些动物可能需要被排除或单独分析。
感官缺陷：视觉、嗅觉或其他感官缺陷可能会影响动物对新事物的识别和探索。
因此，有感官缺陷的动物通常会被排除。
年龄：年龄过大或过小的动物可能不适合参与实验，因为它们的认知能力和探索行为可能与成年动物不同。
怀孕或哺乳期：怀孕或哺乳期的动物可能会有不同的行为模式，因此通常会被排除。
药物治疗或遗传操作：近期接受过药物治疗或遗传操作的动物可能会影响实验结果，需要根据具体情况考虑是否排除。
社交因素：在某些情况下，动物的社交状态（如独居或群居）可能会影响其在新事物识别实验中的表现。
学习障碍：已知有学习障碍的动物应被排除，因为它们可能无法正常完成新事物识别任务。
请注意，具体的排除标准可能会根据实验的具体目标、设计和条件而有所不同。
在进行实验之前，最好详细规划并确定合适的排除标准。
实验动物的选择原则及健康状态判断
实验动物的选择原则及健康状态判断一、实验动物的选择原则在医学研究中首先要从研究目的和实验要求来选择实验动物,其次要考虑是否容易获得、是否经济及容易饲养等因素.实验动物通常应该具备个体间的均一性、遗传性能的稳定性和比较容易获得这三个基本要求。
具体要求如下：1．尽量选用功能、代谢、结构及其他方面与人类相似的实验动物医学研究的最终目的是要解决人类疾病的预防和治疗问题。
因此，应尽量选择那些在功能、代谢、结构诸方面与人类相似的实验动物做实验,利用其与人类某些相近的特征,通过实验观察对人类疾病的过程进行推断和探索。
一般来说，动物的进化阶段愈高，功能、代谢、结构愈复杂，也就愈接近人类。
如灵长类动物是最近似人类的实验动物。
2．选用标准化的实验动物标准化实验动物指遗传背景明确、饲养环境与动物体内的微生物得到控制、符合一定标准的实验动物.只有选用标准化实验动物，而且实验过程也在标准环境中饲养的动物，在实验中才能排除因动物杂交、遗传上的不均质及环境条件的变化所引起的个体反应不一致,排除因动物携带细菌、病毒、寄生虫和潜在疾病的影响，才能便于分析实验结果，减少实验误差，提高科学性和准确性，把所获得的结果与同类研究进行比较、交流，并得到承认.在实验研究中应避免使用随意交配繁殖的动物，根据研究目的选择用遗传学的方法培育出来的近交系、突变系、系统杂交或封闭群动物。
同时应对实验动物进行微生物学控制,发展使用无菌动物、悉生动物或无特定病原体（SPF）动物。
3．选用解剖、生理特点符合实验目和要求的动物进行实验这是保证实验研究成功的关键。
各种实验动物具有某些解剖、生理特点和差别,如选择得恰当，将使实验的操作难度降低，实验容易成功.4．选用不同种系的动物的某些特殊反应，使适合于不同研究目的的需要不同种系实验动物对同一因素的反应虽然有相似的地方，但往往程度不一样，有些甚至还会出现特殊反应。
实验研究中常选用那些对实验因素最敏感的动物作为实验对象。
保健食品有助于维持血压健康水平功能检验方法2020
有助于维持血压健康水平功能检验方法1 动物实验1.1 实验原理以受试样品给予自发高血压大鼠动物模型或通过实验方法造成的高血压动物模型，观察受试样品对高血压动物模型的血压、心率等指标的影响，评价受试样品的降血压作用。
1.2 测定方法血压、心率的测定采用间接测压法，仪器的测压原理一般为尾脉搏法。
1.3 实验内容1.3.1 试验项目1.3.1.1 一般情况观察：体重，生长状况1.3.1.2 血压、心率1.3.2实验动物推荐用大鼠，首选自发高血压大鼠（SHR），SHR宜选用10-12周龄，体重180－220克，雌雄可以兼用，其次为肾血管型高血压大鼠。
每组8－12只。
正常动物选择Wistar、SD大鼠等。
1.3.3 剂量分组及受试样品给予时间实验设三个剂量组和一个阴性对照组，以人体推荐量的5倍为其中的一个剂量组，另设二个剂量组，同时设给予受试样品高剂量的正常动物组。
必要时设阳性对照组。
受试样品给予时间30天，必要时可延长至45天。
1.4 实验方法1.4.1 肾血管型高血压大鼠模型制备肾血管型高血压大鼠需手术制备，常用两肾一夹型。
术中选用内径为0.20-0.25mm的银夹，放置于左肾动脉尽量靠近主动脉处。
30天后，选用血压≥21.3kPa（160mmHg）且较稳定者，也可根据情况选用血压较术前升高4KPa者。
1.4.2 血压、心率测定的具体方法实验前一周对受试动物进行多次血压测量，使其适应测压环境。
依据测压仪器的要求进行动物清醒、安静状态下的血压、心率的测定。
实验开始后每周测压1-2次。
停止给予受试样品之后，一般继续观察直至血压恢复至对照组水平或继续观察7－14天。
1.4.3正常动物选健康成年动物按1.4.2测定血压、心率。
1.5 数据处理和结果判定：血压测定为计量资料，采用方差分析，但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验，方差齐，计算F值，F值<F0.05，结论：各组均数间差异无显著性；F值≥F0.05，P≤0.05，用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进行统计；对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换，待满足正态或方差齐要求后，用转换后的数据进行统计；若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的，改用秩和检验进行统计。
实验动物微生物质量与动物实验
• 仙台病毒
• Mouse Hepatitis Virus
• 小鼠肺炎病毒
• Sendai Virus
• 呼肠孤病毒III型 • 小鼠细小病毒 • 小鼠脑脊髓炎病毒
• Pneumonia Virus of
Mice
• Reovirus type III • Minute Virus of mice 29
隔离环境
GF动物 植入 GN动物 污染 GF动物
植入
污染
屏障环境
SPF动物
25
普通级动物 清洁级动物 SPF级动物
无菌动物 悉生动物
26
不同微生物学等级的实验动物比较
项目 传染病 寄生虫 实验结果 应用动物数 长期实验效果 死亡率
长期实验存活率
实验标准设计 统计价值
实验结果的价值
GF 无 无 准确 少量 可能好 很低 约100％ 可能 很好 很高
44
• 小鼠肝炎病毒(MHV)
属冠状病毒科，冠状病毒 属，与人冠状病毒 (普通感冒，或 肺炎)，大鼠冠状病毒 (新生大鼠 肺炎)，大鼠唾液腺病毒(唾液腺， 泪腺炎)同属。有多种毒株。
45
• 消瘦肝炎病毒是实验小鼠重要的病
毒感染之一。呈现世界范围分布， 无明显的季节性。临床表现为肝炎， 脑炎和肠炎。
发育阶段分为五型：
• 滋养体和包囊出现在中间宿主体内， • 裂殖体，配子体和卵囊只出现在终
宿主－－猫体内。
34
• 传播途径
• 任何动物食入弓形虫的包囊，卵囊或活体，
都能受到感染而患弓形虫病。猫科动物的粪 便中，常带有卵囊。可以污染草原、牧场、 蔬菜、水果等。猫的身上和口腔内常常有弓 形虫包囊和活体。直接接触猫易受感染。狗 的身上和口腔内常有包囊或活体，养狗的人 不小心可能感染。其他家畜、家禽，如：鸡、 鸭、鹅、猪、牛、马、羊等动物体内有时带 弓形虫包囊和活体。所以食用肉、蛋奶也可 能感染，鱼肉体内有时也有弓形虫包囊或活
动物实验规范设定
一级 普通动物（CV），系指微生物不受特殊控制的一般动物。要求排除人兽共患病的病原体和积少数的实验动物烈性传染病的病原体。为防止传染病，在实验动物饲养和繁殖时，要采取一定的措施，应保证其用于测试的结果具有反应的重现性（即无论不同的操作人员，在不同的时间，用同一品系的动物按规定的实验规程所做的实验，都能获得几乎相同的结果）。
无菌、已知菌以及无特殊病原体动物都需要在无菌或尽可能无菌的环境里饲养，这种环境，目前国际上通用称为屏障环境，即用一道屏障把动物与周围污染的环境隔开，就如胎鼠在母鼠子宫内一样。这种环境从控制微生物的角度分为隔离系统、屏障系统、半屏障系统、开放系统和层流架系统等五大类。
A隔离系统 是在带有操作手套的容器中饲养动物的系统，用于饲养无菌动物和栖生动物。内部保持按微生物要求的100级的洁净度，但其设置的房间及操作人员不必按无菌室考虑。
按国家标准动物实验室的设施要求配备的实验室应与所用动物的微生物学级别相一致，并应与饲养繁殖系统分开设置。由于小规模的动物繁育成本很高，企业的动物实验室通常可不考虑动物繁殖。我国许多大城市都有实验动物饲养基地，能提供常规的实验动物，保证实验动物的质量，建议企业建设的动物实验室不设置动物的繁殖室，只需根据药品检验项要求的动物，采用外购内养形式，满足产品检验的需要。
E开放系统 是对人、物、空气等进出房间均不施行消除污染的系统，药品必需经过严格的质量检验才能上市。不少药品在检验项中有动物检验条目，动物实验按《药品非临床研究质量管理规范》（1999年10月14日国家药品监督管理局第14号令）的要求必须在符合国家有关规定的动物实验室中进行。因此许多药品生产企业修建丁符合要求的动物实验室，改变了过去露养或棚养的简陋现象。检验药品使用的动物应符合《实验动物质量管理办法》（国科发财字[1997]593号文），动物繁殖、饲养、实验环境符合（GB14925-94）《实验动物环境及设施》的要求，在建设中根据使用动物的具体情况按上叙规定进行设施配备。根据已经建设的动物实验室进行总结，在建设中就以下问题应该加以注意：
动物实验的一般规则
动物实验的一般规则一、依据实验目的要求，如病毒LD50、LD100、ID50等、细菌毒力测定、免疫效力试验、免疫血清制备等，选择不同种类、品系及不同饲养管理条件下的实验动物式实验用动物。
常用的实验（用）动物包括小白鼠、大白鼠、豚鼠、绵羊、山羊、小香猪、他猪八戒、家兔、鸡、鸭、鹅等十几种。
其中部分动物又有自然繁殖、近交系等、SPF 与非SPF等区分。
二、依据动物骒病原体的敏感性或骒接种物的应答性不同，确定选用动物的年龄、性别，特别是使用动物的数量。
四、不同实验研究类型所要求的动物数量不相同，现简述如下：（一）现况研究（Cross-sectional study）的一般样本大小可用下列公式计算：S．E．=PQ/NS．E．=标准误，P=某病的现患率或感染率，Q=1-P，N为样本大小。
根据上述公式，可得到下列简便公式。
1、若容许误差d=0.10P,95%可信水平t=2样本的感染率P与总体感染P之间有差异d。
P-p=+（-）d=+（-）txS.E,S.E.=d/t.0.05水平,自由度为无限大时,t值约为2.P.Q P.Q t（2）PQN=————=——————=——————(S.E.)（2）(d/t)（2）d（2）令d=0.1P2（）PQ 4PQ QN=————————=————————=400X——（0.1P）() 0.02P() P2、若容许误差d=0.15P,则QN=178X——P3、若容许误差d=0.20P,则N=100XQ/P4、抽样调查肿瘤或其它发病率很低的疾病时，样本大小可参考Poisson分布期望可信限表。
（二）病例对照研究（case-control study），又称回顾性研究（retrospective studies），研究样本大小可按下列分式计算。
N=————————————Ka与Kb分别为a与b时正态分位数。
可以队表中查得。
P1和P2分别为估计对照组与病例组有暴露史的比例。
Q1=1-P1，Q2=1-P2P=（P1+P2）/2，Q=1-P另，病例的暴露史可用下列公式估计：P2=（ORXP1）/（1-P1+ORXP1）OR为比值比。
动物试验规范
动物试验规范根据实验动物微生物控制标准，可将实验动物分为四级：一级普通动物（CV），系指微生物不受特殊控制的一般动物。
要求排除人兽共患病的病原体和积少数的实验动物烈性传染病的病原体。
为防止传染病，在实验动物饲养和繁殖时，要采取一定的措施，应保证其用于测试的结果具有反应的重现性（即无论不同的操作人员，在不同的时间，用同一品系的动物按规定的实验规程所做的实验，都能获得几乎相同的结果）。
二级清洁动物（CL），要求排除人兽共患病及动物主要传染病的病原体。
三级无特殊病原体动物（SPF），要求到二级外，还要排除一些规定的病原体。
其除菌与灭菌的方法，可使用高效空气过滤器除菌法、紫外线灭菌法、三甘醇蒸气喷雾法及氯化锂水溶液喷雾法。
四级无菌动物（GF）或悉生动物（GN）。
无菌动物要求不带有任何用现有方法可检出的微生物。
悉生动物要求在无菌动物体上植入一种或数种已知的微生物。
在病理学检查上，四类实验动物也有不同的病理检查标准。
一级外观健康，主要器官不应有病灶。
二级除一级指标外，显微镜检查无二级微生物病原的病变。
三级无特殊病原体动物。
无二、三级微生物病原的病变。
四级不含二、三级微生物病原的病变，脾、淋巴结是无菌动物组织学结构。
综合上述，对不同级别的实验动物在动物房设计上和管理上则有不同的要求。
无菌、已知菌以及无特殊病原体动物都需要在无菌或尽可能无菌的环境里饲养，这种环境，目前国际上通用称为屏障环境，即用一道屏障把动物与周围污染的环境隔开，就如胎鼠在母鼠子宫内一样。
这种环境从控制微生物的角度分为隔离系统、屏障系统、半屏障系统、开放系统和层流架系统等五大类。
A隔离系统是在带有操作手套的容器中饲养动物的系统，用于饲养无菌动物和栖生动物。
内部保持按微生物要求的100级的洁净度，但其设置的房间及操作人员不必按无菌室考虑。
B屏障系统把10000~100000级左右的无菌洁净室作为饲养室，主要用于无特殊病原体动物的长期饲养和繁殖。
入室施行严格管理，如淋浴、换贴身衣服等。
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大鼠实验的排除标准
大鼠作为实验动物在许多科研领域中得到广泛应用。
在进行大鼠实验前需要制定一系
列的排除标准，以确保实验结果的可靠性、合理性和真实性。
以下是大鼠实验的排除标
准：
1. 健康状态：选择进行大鼠实验的动物必须是健康的，没有任何临床症状，如呼吸
困难、发热、体重减轻、皮肤病变等。
同时，应该对大鼠进行全面的健康检查，包括体温、心率、呼吸频率等指标的测量。
2. 年龄和性别：大鼠的年龄和性别也是选择实验动物的重要因素。
通常选择年龄相近、同性别的大鼠进行实验，以减少误差和结果的扰动。
此外，还需要注意动物的年龄和
性别与研究对象的相关性，以充分反映实验目的。
3. 饮食与喂养：大鼠的喂养和养护过程也是影响实验结果的重要因素。
应遵循国家
和地方的相关规定，在动物实验室内提供充足的饮食和水，保证动物的生理状态和营养需求。
同时，还需定期检查大鼠的体重和健康状况，如有异常应重新选择动物参加实验。
4. 基因背景：大鼠的基因背景也是影响实验结果的重要因素之一。
通常情况下，应
选择基因背景相同、同种大鼠进行实验，以减少实验结果的随机性和误差。
此外，应避免
使用一些处于特定基因背景下的大鼠，以避免干扰实验结果。
5. 实验环境：大鼠的实验环境也是影响实验结果的重要因素，如噪声、光照、气味、温度等都会对大鼠的行为和生理功能产生影响。
为了保证实验结果的准确性和实验动物的
稳定性，应在稳定、清洁、无噪声和光照协调的环境中进行实验。