多肉组培
多肉植物大和锦组织培养技术的研究
多肉植物大和锦组织培养技术的研究闫金国王大鹏孔丽娜赵著梅（潍坊护理职业学院山东潍坊262500）摘要：为了解决制约多肉植物产业快速发展的繁殖问题，建立大和锦组织培养体系，本研究以大和锦的不同部位作为外植体，探究不同消毒方式、不同部位对愈伤组织诱导、分化的影响，为大和锦组培快繁、商业化快速生产和新品种的培育提供技术支持。
关键词：大和锦；组织培养中图分类号：S682.33文献标识码：A文章编号：1005-7897（2020）06-0005-02植物组织培养技术利用植物细胞的全能性原理，能够在较短的时间获得大量性状一致的组培苗，可以用来解决制约多肉植物产业快速发展的繁殖问题。
早期多肉植物组培的外植体主要是花茎和子房[1-2]，近年来多选用叶片[3]，但是对不同部位组培的比较研究较少。
本研究以景天科拟石莲花属大和锦为试验材料，探究不同消毒方式、不同部位对愈伤组织诱导、分化的影响，以期对多肉植物的组培快繁、商业化快速生产和新品种的培育提供技术支持。
1材料与方法1.1试验材料试验用大和锦于2018年购自山东省青州市南环路新花卉市场。
1.2试验方法1.2.1培养基诱导分化培养基为MS培养基+6-MA3mg/L+NAA0.5mg/L，增殖培养基为MS培养基+6-MA3mg/L+NAA0.1mg/L。
上述所有培养基pH5.8~6.0。
1.2.2外植体的消毒本试验选择次氯酸钠（NaClO）作为消毒剂，通过调整消毒剂浓度和消毒时间以获得最佳的消毒方式。
选取成熟、无病害的大和锦叶片，先用流水冲洗30min，然后分别用1%、2%、10%次氯酸钠溶液浸泡消毒5、10、20min。
取出叶片，用无菌蒸馏水冲洗5次，放置在无菌滤纸上吸干多余的水分后，将叶片切成0.5cm见方的小块，接种到MS培养基中，每个处理接种30个外植体。
30d 后观察其生长情况，并统计污染率。
污染率=污染数/30伊100%1.2.3愈伤组织的诱导与分化将大和锦叶片、花朵和幼嫩花茎洗消毒后进行切分。
珍稀多肉植物种质资源组培保存和快速繁殖技术_刘与明
多肉植物（Succulent）也可称为多浆或多汁植物，是近年来逐渐流行的一类观赏植物，在花卉产业中逐渐占有它的一席之地，特别是在出口小盆栽植物上有着相当大的比重。
多肉植物外观一般小巧玲珑，植株肥厚多汁，造型特异，仪态万千。
其中景天科、仙人掌科等多数多肉植物有着与一般植物不同的特殊的代谢形式，即景天酸代谢。
它们多在晚上天气较凉爽潮湿时才打开植株上的气孔，放出O2，吸收CO2，经过羧化反应固定大量CO2，贮存于苹果酸内，白天气温高时，气孔关闭，不吸收CO2，而是将前一晚上形成的苹果酸氧化，放出CO2，供给植物进行光合作用。
故这类多肉植物有着特殊的耐干旱能力和净化空气有利健康的特别功能。
因而，栽培这类多肉植物迎合了现代人们崇尚健康和追求美的理念，现在越来越多的人们喜欢收藏莳养。
而许多名优珍稀多肉植物品种因为自然繁殖率低，有的连种子都不结，限制了它的推广，市场上名品价格居高不下。
采用组织培养技术快速繁殖多肉植物是一种行之有效的方法，它对于保存多肉植物优良的种质资源、繁殖名优珍稀品种、快速繁殖出口需要和园林绿化需要的优良品种，有着特别重要的意义。
厦门市园林植物园经过多年的研究，已经掌握了糊斑金城、白洋宫锦、玉露、玉露锦、玉章、康平寿、绿玉扇、千代田锦、琉璃姬孔雀、金边龙舌兰、翡翠盘、吉祥、百惠、细叶景天等多种珍稀多肉植物的种质资源组培保存和快繁技术，试验成功的多肉植物品种涉及3个科5个属20多种；基本摸清不同科、属、种的多肉植物在诱导、增殖等培养阶段的差异，掌握了相应的培养基配方以及供试的各种多肉植物在增殖快繁时培养基激素的调整规律。
更重要的是采用花梗作为外植体进行组织培养，能诱导出带“锦”的组培苗，克服因使用侧芽为外植体建立的组培体系失“锦”的问题。
现将主要技术介绍如下。
1外植体取材季节和部位珍稀名贵的多肉植物往往是不易繁殖或繁殖系数很低，若取其茎尖进行培养，必然要损伤或损坏母本植物，因此，选取的部位既不能损坏母本植物又要求能诱导成功。
十二卷类植物的组培技术研究附培养基配方
十二卷类植物的组培技术研究附培养基配方
1植物简介
十二卷（Haworthia fasciata）类植物属于百合科十二卷属，是多年生多肉类常绿草本，全属约有150余个种，世界各地广泛分布，我国华南、西南地区的热带、亚热带地区亦有分布。
2培养条件
诱导培养基：MS+2mg/L BA+0.2mg/L NAA；
增殖培养基：MS+1~2mg/L BA+0.1~0.2mg/L NAA；
生根培养基：1/2MS+0.2mg/L NAA。
培养基中蔗糖30g/L、琼脂6g/L、pH值5.8。
培养室温度25℃，24h恒温，每天12h光照，光照强度35μmol/㎡/s左右，生根培养基中蔗糖浓度为20g/L。
3材料与方法
于5~6月间选取春季叶丛中抽生的幼嫩花枝作外植体（标准为枝条柔软，顶部花蕾少量开放），从基部剪下并剪去顶部幼嫩部位及基部老熟部位，用洗涤剂清洗2遍，用干净纱布包裹后置自来水龙头下用流水冲洗4h后沥干备用。
在无菌室超净台上用“三步法”进行消毒，第一步，用75%酒精消毒1min；第二步，用1:50洁尔敏消毒20min；第三步，用10%次氯酸钠滤清液消毒15min，无菌水冲洗3遍，用无菌滤纸吸干。
4生长及分化
在超净台上将消毒的花枝切成长1～1.5cm的茎段，接种于诱导培养基上，经过约90d左右的培养，无菌芽长出，进入继代增殖阶段。
待无菌芽形成丛生芽，高度1.5cm 以上，每株有2~4个芽，即可转入生根培养。
5炼苗移栽
先将瓶苗放置室内光亮处常温下炼苗24h，第2天用镊子轻取幼苗，在清水中洗净根部培养基，移至塑料温室大棚苗床上炼苗驯化。
炼苗基质为泥炭+珍珠岩+蛭石，三者配比1∶1∶1。
自己做组培多肉植物实验，这样弄长得真的快！
自己做组培多肉植物实验，这样弄长得真的快！小编大四狗，园林技术专业。
6年前就开始对多肉植物有所接触了。
，从此一发不可收拾买了各种小苗种了各种各种（现在都还是小丑比就不拿出来了）。
也去花鸟鱼市撸了大把的叶子，可是十多天了才有几个有生长的迹象。
正直大四论文实验阶段，突然想起来用组织培养岂不是很速度的就有了？看一些文献，在我设计自己论文的实验（丙烯酰胺降解菌的筛选及其降解特性的研究，有木有很高端。
）的同时看了一些组培的文献，想趁机给老师提出来，毕竟灭菌锅，无菌操作台什么的是暂时我自己买不来的。
我觉得我老师还是很好说话的，于是就在提交自己的实验设计的时候顺便说了这么一嘴。
废话不多了，开始上今天的实验图片吧~ 其实今天的没啥意思就是陪母液用到的药品和配方（这张纸上的是添加物维生素各种什么酸的还有微量元素），还有大量元素什么的在别的地方没有拍。
其实就是ms培养基，可以自行百度~对了，老师从花农那里拿来这两个，就是要把他们切碎，组织培养～说实话我不太认识，是静夜和桃美人么？称量微量元素的时候好蛋疼~放大一百倍才称量那么几十毫克，点一点多了~扒拉一点少了~称的太特么闹心了~ 然后用那个加热搅拌溶化了~1L容量瓶定容~老师要求挺精密的~突然觉得要是真的我自己做这个实验那还不累蒙逼了一上午就是这几大瓶，大量元素，微量元素，铁盐，附加物，NAA，6—BA就是这么些东西~ 然后把按比例混起来~每升加入30克蔗糖和7克琼脂粉~一共陪了三套培养基，比例不同~ 看那个更合适。
这是再调pH，把培养基的pH调到5.9，其实是需要5.8的，高压灭菌后里面的糖会降解，pH就会下降到5.8左右~ 调这个也是个蛋疼活。
一滴一滴的加缓冲液。
把花市里面买来的冬美人粉碎在做组培的时候一定要先进行消毒处理，不然的话可能会组培出一大堆的霉菌什么鬼的。
花了1个多小时把组培瓶消毒然后密封准备下一步装营养基质。
把切碎的多肉植物碎片在无菌的环境下把他们放入培养基质中。
多肉植物吸财树组培快繁技术
多肉植物吸财树组培快繁技术管菊;万劲;陈嘉裔【摘要】分别以吸财树叶片、茎段为外植体,诱导建立无菌快繁体系;在此基础上,筛选适合吸财树组培快繁不同生长阶段的最适培养基以及炼苗移栽方法.结果表明:以茎段为外植体,采用75%乙醇处理15 s,0.1%HgCl2处理12 min为吸财树的最佳消毒处理方法;MS+2 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1 NAA为最佳诱导配方,每株丛生芽诱导量可达4.21个;MS+1 mg·L-1 KT+0.1 mg·L-1 NAA可使植物保持正常状态,并且达到最高增殖倍数6.54;经瓶内诱导生根的组培苗在保持湿润的介质中生长最好、成活率最高,为吸财树最优炼苗处理方法.【期刊名称】《浙江农业科学》【年(卷),期】2017(058)010【总页数】4页(P1829-1831,1836)【关键词】吸财树;组织培养;多肉植物;培养基【作者】管菊;万劲;陈嘉裔【作者单位】西南林业大学园林学院, 云南昆明 650224;三江学院建筑学院, 江苏南京 210012;东南大学成贤学院, 江苏南京 210088【正文语种】中文【中图分类】S682.36吸财树(Crassula oblique Gollum)是以观叶为主的景天科青锁龙属多肉植物，原产地南非纳塔尔省。
植株形态呈多分支的灌木状，茎明显，叶密集互生于茎的顶端、肉质筒状，故又称筒叶花月，是一种理想的室内小型观叶植物，具有很高的观赏价值[1]。
本实验通过对吸财树组织培养过程中无菌体系建立、高效增殖培养途径、生根炼苗等关键环节的研究，获取最适宜培养基、最佳的增殖配方以及适当的出瓶种植方法，从而为吸财树的规模化繁育工作提供科学依据。
1.1 材料以西南林业大学大棚内种植的多肉植物吸财树为试验材料，选取长势良好的植株上茎段与叶片为供试材料。
叶片要求为从基部与茎段分离的完整叶片，叶片饱满挺拔、表面无伤痕；茎段要求为当年生幼嫩茎段，表面无伤痕、无虫害。
多肉植物组织培养中污染现象及预防措施
村乡科技XIANGCUN KEJI96XIANGCUN KEJI 2020年7月（下）多肉植物组织培养中污染现象及预防措施李浩罗伟沼石浩杨晓莹王德信（菏泽学院，山东菏泽274000）［摘要］污染是多肉植物组织培养过程中的常见问题，严重影响了多肉植物的组培成功率。
为了提高多肉植物组培苗的成活率，本文对多肉植物组织培养过程中出现的污染及其产生原因进行分析，并提出防止污染使死亡率降至最低的有效方法，为多肉植物组织培养提供技术支持。
［关键词］多肉植物；组织培养；污染；预防措施［中图分类号］S682.33［文献标识码］B［文章编号］1674-7909（2020）21-96-2随着经济的发展及医疗保健业的进步，人们越来越向往高质量的生活，并出现了回归自然的潮流，人们越来越热衷养花来陶冶情操、缓解压力。
多肉植物是指某些营养器官具有发达的薄壁组织可以贮藏大量的水分，在形态结构上肥厚多汁的一类植物。
多肉植物品种繁多、管理简单、抗逆性强、颜色丰富、造型各异、易种植以及对土壤要求不高，并具有良好的空气净化功能。
此外，多肉植物浇水少，属于典型的懒人植物，近年来逐渐成为深受广大消费者喜爱的景观植物。
但是，多肉植物在长期栽培过程中存在质量退化现象，珍贵的多肉植物成活率低、成本高；在自然条件下，短时间内繁殖非常困难。
通过组织培养技术可有效解决上述问题。
利用多肉植物叶片、茎尖等作为外植体，通过诱导愈伤组织、丛生芽分化、生根和无菌苗移栽等多个步骤建立高效的快速繁殖体系，能有效加快多肉植物繁殖的工厂化进程。
但在多肉植物组织培养过程中，无菌苗经常会出现污染现象，严重影响多肉植物组织培养效果。
本文积极探讨多肉植物组织培养中污染产生的因素，探寻预防策略，为多肉植物组织培养提供技术支持。
1多肉植物组织培养中污染现象及其产生的原因污染是在组织培养过程中，由于试验材料、环境等灭菌不彻底等原因，使细菌、微生物混入培养基中，从而产生细菌或者霉菌导致培养失败的现象。
多肉植物东云系2_个品种组培快繁技术初探
山西农业科学 2023，51（8）：861-866Journal of Shanxi Agricultural Sciences多肉植物东云系2个品种组培快繁技术初探陆琳1，2，3，张天东4，柯燚5，李涵1，2，3，苗振3，拔利超3，杨平3，李仕柳3，曹桦1，2，3（1.云南省农业科学院花卉研究所，云南昆明 650100；2.国家观赏园艺工程技术研究中心，云南昆明 650100；3.玉溪澄花生物科技有限公司，云南玉溪 652500；4.闵卉（福建）园艺有限公司，福建宁德 352000；5.玉溪市江川区乡村产业发展中心，云南玉溪 652600）摘要：以东云系多肉植物品种HBG和阿姆斯特壮为试验材料，对外植体选择、诱导培养、增殖培养、生根培养和炼苗移栽等关键技术进行对比分析，旨在总结出东云系多肉的组培快繁体系，为解决东云系多肉植物繁殖率低的问题提供科学依据。
结果表明，以幼嫩花芽为外植体诱导效果最佳，非花期可选用嫩芽；适宜诱导东云系多肉植物愈伤组织及丛生芽的培养基为MS+0.6~0.8 mg/L 6-BA+0.3~0.4 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+7 g/L琼脂，pH值5.8~6.0；适宜东云系多肉植物的增殖培养基为MS+0.4~0.6 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+7 g/L琼脂，pH值5.8~6.0；适宜东云系多肉植物的生根培养基为MS+0.2~0.3 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+7 g/L琼脂，pH值5.8~6.0；直接剪去生根苗根部后再进行扦插，能大大提高其成活率。
关键词：东云系多肉；外植体；组织培养；快繁技术中图分类号：S682.33 文献标识码：A 文章编号：1002‒2481（2023）08‒0861‒06Preliminary Study on Tissue Culture and Rapid Propagation of TwoSucculents Varieties from Echeveria agavoides LinesLU Lin1，2，3，ZHANG Tiandong4，KE Yi5，LI Han1，2，3，MIAO Zhen3，BA Lichao3，YANG Ping3，LI Shiliu3，CAO Hua1，2，3（1.Flower Research Institute， Yunnan Academy of Agricultural Sciences，Kunming 650100，China；2.National Engineering Research Center for Ornamental Horticulture，Kunming 650100，China；3.Yuxi ChenghuaBiotechnology Co.，Ltd.，Yuxi 652500，China；4.Minhui（Fujian） Horticulture，Co.，Ltd.，Ningde 352000，China；5.Yuxi City Jiangchuan District Rural Industrial Development Center，Yuxi 652600，China）Abstract：In this study, using succulent varieties HBG and Armstrong from Echeveria agavoides as the experimental materials, comparative analysis of key technologies such as explant selection, induction culture, proliferation culture, rooting culture, and seedling transplant was conducted to summarize the tissue culture and rapid propagation system of succulent plants from Echeveria agavoides lines, and to provide scientific basis for solving the problems of low reproduction rate and leaf cutting rate of succulent plants from Echeveria agavoides lines. The results showed that young flower buds were the best explants for induction, and tender buds could be used in non-flowering period. The optimal culture medium for callus induction and multiple buds of succulent plants from Echeveria agavoides lines was MS + 0.6-0.8 mg/L of 6-BA + 0.3-0.4 mg/L of NAA + 30 g/L of sucrose + 7 g/L of agar, pH 5.8-6.0. The most suitable proliferation medium was MS + 0.4-0.6 mg/L of 6-BA + 0.2 mg/L of NAA + 30 g/L of sucrose + 7 g/L of agar, pH 5.8-6.0. The optimal rooting medium was MS + 0.2-0.3 mg/L of NAA + 30 g/L of sucrose + 7 g/L of agar, pH 5.8-6.0. The survival rate could be greatly improved by cutting the root of rooting seedlings directly before planting.Key words：succulent plants from Echeveria agavoides lines; explant; tissue culture; rapid propagation technology近年来，多肉植物因种类繁多、体态清雅、形状奇特、色彩丰富等特点，越来越受到人们的喜爱[1]。
多肉植物白牡丹(Graptoveria 'Titubans')组培快繁技术
多肉植物白牡丹(Graptoveria 'Titubans')组培快繁技术管菊;万劲;陈嘉裔【摘要】以白牡丹叶片及幼嫩茎段为外植体,建立无菌快繁体系,在此基础上筛选适合白牡丹组培快繁不同生长阶段的最适培养基.结果表明:最适宜的外植体材料为叶片,灭菌方法为75％乙醇处理15 s、0.1％ HgCl2处理12 min;最佳的丛生芽诱导培养基为MS+2 mg/L 6-BA +0.2 mg/L NAA,芽诱导量可达10.8个/张;最适增殖培养基为 MS+0.2 mg/L NAA+2 mg/L 6-BA+1 mg/L KT,增殖倍数可达11.57;使用切根苗于干燥基质上进行生根炼苗可取得较好效果,炼苗成活率可达95％.【期刊名称】《江苏农业科学》【年(卷),期】2017(045)014【总页数】3页(P36-38)【关键词】多肉植物;白牡丹;组织培养【作者】管菊;万劲;陈嘉裔【作者单位】西南林业大学园林学院,云南昆明 650224;三江学院,江苏南京210012;昆明绿岛园艺有限公司,云南昆明 650224【正文语种】中文【中图分类】S682.330.4+3白牡丹(Graptoveria ‘Titubans’)由景天科石莲花属多肉植物静夜(Echeveria derenbergii)与风车草属胧月(Graptopetalum paraguayense)杂交培育而来，是目前较为流行的多肉园艺品种之一。
白牡丹茎叶肉质化，全株被白粉，互生叶排列成莲座形，如牡丹花绽放，具有很高的观赏价值[1]。
白牡丹繁殖方式目前仅局限于扦插以及分株繁殖，白牡丹规模繁殖一直存在技术瓶颈。
因此，对于白牡丹组培快繁技术进行研究具有一定意义，本研究将为白牡丹组培扩繁提供试验依据。
1.1 试验材料试验材料为西南林业大学大棚内种植的多肉植物白牡丹。
选取的外植体分别为白牡丹植株的叶片、茎段。
1.2 试验方法1.2.1 培养条件本试验采用MS为基本培养基，附加 0.4% 1 500 g/cm2强度卡拉胶、30 g/L蔗糖，pH值调节至 5.8～6.0，121 ℃高压灭菌锅中灭菌15 min备用。
植物组织培养的弊端
植物组织培养的弊端1、硬化不足：组培快繁苗由于在一个几近完美的环境下生存，其抗逆性和自控性就很差，换句话说就是吃激素喂大的孩子，这就需要在从实验室进入温室后进行驯化栽培，行内称作“硬化”。
经过硬化的组培快繁苗的品质跟砍头、叶插苗完全一样，甚至更好。
那么缺点在哪里呢？就是有个别商家在组培苗没有完全硬化的情况下就出售，这就导致了购买后苗会快速液化死亡。
2、激素残留：组培快繁苗由于体内积累了较多的激素，或者对激素的敏感性变化，少部分苗会在后期发根后呈现出一些残留激素效应，这种效应不会超过一年。
比如比较容易出侧芽、开花增多或周期紊乱、大量畸形根出现等等。
但是这种情况并不是组培快繁苗所特有，用激素诱导的叶插和砍头苗也会出现这种症状，甚至更夸张!因此这一点并不是鉴别组培苗的根本。
这种情况一般在苗适应新环境1年后会慢慢改善直到过渡为正常的苗。
在此强调一下，只有少数组培快繁苗会出现这种状态，并不是全部，即我们买到状态很好的苗子可能也是组培快繁苗。
3、对有性繁殖的影响：由于组培快繁获得的苗都是小苗，需要经过硬化和长期的温室栽培才可能开花，所以一般来说对有性繁殖无影响。
但是极个别的苗由于激素敏感性的改变，会导致后期授粉结实的一些问题，但是绝大多数都是促进结实的!这一点很有趣，也就是说部分组培苗很容易授粉成功和获得大量种子。
而目前流传的一大谣言之一就是“组培植物不孕”，跟这个恰好相反！组培苗其实更容易获得大量种子。
4、根原基异常：由于激素环境下会对导致根原基维管束的排列紊乱，这就导致了出根可能会受到抑制，正常的根无法顺利萌发。
一般来说在组培快繁苗硬化的时候，可以切掉这部分异常根原基，获得正常的根系，只有少数不太懂多肉组培的操作者才会忽略这一点，有经验的组培操作者都会刻意的去掉这部分根原基。
如果不去掉这部分根原基的情况下，反倒可以作为一个识别组培苗的标志，就是根部有一段极为异常扭曲的浓缩茎，这部分叶子很细长狭小，有并排的畸形根或根原基，如果我们拿到这样的苗，其实很简单，用刀子完全切掉就可以了。
截形十二卷组培快繁试验
截形十二卷组培快繁试验Botanical Research 植物学研究, 2017, 6(3), 185-191Published Online May 2017 in Hans. /doc/b413434131.html/journal/brhttps:///doc/b413434131.html /10.12677/br.2017.63024文章引用: 徐森富, 陈依桃. 截形十二卷组培快繁试验[J]. 植物学研究, 2017, 6(3): 185-191.Haworthia Tissue Cultivate and Experimental ResearchSenfu Xu, Yitao ChenTaizhou Vocational College of Science & Technology, Taizhou ZhejiangReceived: May 7th, 2017; accepted: May 28th, 2017; published: May 31st, 2017AbstractThe technique of tissue culture was studied in this paper. The results show that MS + 1.0 mg ?L ?1 6-BA + 0.4 mg ?L ?1 NAA is best induced effect. Induction rate could reach 97%. MS + 2.0 mg ?L ?1 IAA + 2.5 mg ?L ?1 6-BA + 0.25 mg ?L ?1 NAA is induced proliferation ofthe best effect. Proliferation rate can be up to 3.6 times. 1/2MS + 0.01 mg ?L ?1 IAA + 0.05 mg ?L ?1 NAA is the best to take root and plants grow strong. The seeding matrix is the best in the soil of turf:perlite:vermiculite (1:1:1), smelting plants 23?C - 28?C temperature, air relative humidity of 80% - 90% is helpful to improve the sur-vival rate of seedlings.KeywordsMeaty Plant, Tissue Culture, Proliferation, Domesticated截形十二卷组培快繁试验徐森富，陈依桃台州科技职业学院，浙江台州收稿日期：2017年5月7日；录用日期：2017年5月28日；发布日期：2017年5月31日摘要以玉扇多肉为接种外植体，对其组织培养技术进行了初步的研究。
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多肉植物是指植物营养器官的某一部分，具有发达的薄壁组织用以贮藏水分，在外形上显得
肥厚多汁的一类植物。常见的有仙人掌科的仙人掌、仙人球、昙花、蟹爪兰、金琥；番杏科
的生石花、肉锥花；百合科的康平寿、玉露、卧牛；大戟科的虎刺梅、彩春锋；景天科的石
莲花、长寿花、虹之玉；龙舌兰科的金边龙舌兰、虎尾兰；菊科的翡翠珠等。
肉植物耐干旱，净化空气，具有外观小巧玲珑，植株肥厚多汁，造型特异等特点，是近年来
逐渐流行的一类观赏植物。组织培养技术，对保存多肉植物优良的种质资源、繁殖名优珍稀
品种、快速繁殖出口需要和园林绿化需要的优良品种。
传统多肉植物可依靠分株、扦插繁殖，分株繁殖如芦荟、仙人球、虎尾兰；扦插繁殖如蟹爪
兰、长寿花、落地生根，仙人掌则是分株和扦插繁殖都可以。值得一提的事，生石花在生长
中有一个脱皮、分裂的过程。通常在冬末春初，植株中缝逐渐开裂，在开裂处有一个或两三
个新的植株逐渐长大，而原有的植株逐渐枯萎，为新株所取代。这个由新植株替代老植株的
过程，就是脱皮生长和分裂繁殖过程。
外植体的选择
取优良母株新萌发的幼嫩侧芽、幼嫩枝条；一些没有侧芽的珍稀名贵品种的母株则可等待植
株开花期间取其较充实的花梗作为外植体。
夏季休眠期，多肉植物外植体在培养基中对激素常反应迟钝，生长静止，不易培养成功。
1. 消毒灭菌
2.1选择合适的培养基的，配置好、调节适当的激素浓度。
2.2制作好的培养基须立即放入高压灭菌锅灭菌，备用。，
2.3外植体材料的消毒： 切取多肉植物幼嫩的侧芽或花梗→肥皂水或洗洁精洗涤→在自来水
下冲洗→超净工作台中用 75%酒精浸泡数秒→ 0.1%升汞处理 10～30min，→无菌水冲
洗 6 遍，→消毒滤纸吸干水分
3.接种
无菌条件下操作→手术刀切取所需的培养材料→无菌操作植入初代诱导培养基中培养。 3.
培养3.1侧芽植入培养基后培养 15~21d，腋间萌发出多个腋芽芽点，至 30~45d，由外植体
长成一团丛芽。
3.2花梗外植体不定芽的诱导： 花梗植入诱导培养基，经 15~21d 培养，花梗节膨大，并萌
发 1~3 个不定芽，长至 1cm 左右约需 45d。
3.3丛生芽的增殖扩繁
侧芽外植体丛生芽的增殖：切分进行增殖培养→培养基培养周期 4~6 周，扩繁倍数约 3~5，
长至满瓶，并可继续不断增殖。在经若干次继代增殖培养后， 所建立的各个多肉植物品种
无性系无一例外都不再顺利增殖丛生芽，而是出现新芽少，芽体短簇，植株僵硬，类似俗称
的石头苗，有的芽或芽丛还出现玻璃化倾向，无法继续培养。这种现象说明增殖培养时添加
的激素浓度已不再适宜，调节外源激素的绝对浓度及不同种类激素的相对配比，当调整后，
瓶苗很快就恢复到原来良好的增殖状态， 激素的调整规律基本是以高低浓度适度地交错进
行， 只有这样才能使增殖扩繁顺利进行，既保持一定的增殖系数，又避免产生僵苗、畸形
苗、玻璃苗等。由花梗外植体诱导建立的无性系的增殖：花梗诱导出节芽后，数量同样相当
有限，需继续切分增殖，芽的增殖状况及激素调整规律，同侧芽外植体诱导建立的繁殖体系
基本一致。试验中发现，一些叶片带条纹俗称“锦”的多肉植物其珍贵的线条特征可在花梗
诱导建立的体系中保存下来，而取带“锦”植株的侧芽进行诱导建立的无性系则难于保持该
性状， 这可能和外植体组织所带的遗传信息有关，有待进一步研究。
6 生根培养及组培苗移栽
生根培养：当增殖的芽体长至 1~3cm，可切下转入生根培养，一般接种后 20d 可顺利生根。
各个多肉植物品种组培苗的生根都很容易。
瓶外生根： 将增殖瓶苗中原本可切下诱根培养的壮苗， 取出瓶并在苗基部切一新鲜切口直
接插于苗床的基质中，大约经过 25~35d，便开始长根。
组培苗移栽及管理：取出瓶苗→洗净根系附着的培养基，晾干→假植于专门的基质中，稍遮
荫，并注意通风。 通过试验比较，以河砂、泥炭土、珍珠岩 2∶1∶1 相混合的基质最适宜
组培苗的过渡栽培。 移栽的季节全年均可进行，但以春、秋二季更为适宜。 移栽后要注意
移栽苗的水肥管理，当第一次栽下苗床后切一新鲜切口直接插于苗床的基质中，大约经
过 25~35d，便开始长根。
组培苗移栽及管理：取出瓶苗→洗净根系附着的培养基，晾干→假植于专门的基质中，稍遮
荫，并注意通风。 通过试验比较，以河砂、泥炭土、珍珠岩 2∶1∶1 相混合的基质最适宜
组培苗的过渡栽培。 移栽的季节全年均可进行，但以春、秋二季更为适宜。 移栽后要注意
移栽苗的水肥管理，当第一次栽下苗床后必须浇透水，以后掌握不干不浇的原则，因为肉质
植物多数叶片肥厚，体内贮水多，耐干不耐湿。施肥掌握薄肥勤施的原则。