常见微生物标本的采集

常见微生物标本的采集、处理与检测

标本采集的基本原则:尽早采集、根据可疑的病原体,选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎,标本不得污染容器的口和外壁。

1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。

一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集;持续性菌血症可随时采集;间歇性菌血症,应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次;多部位采集,如两侧肘静脉或动、静脉同时采取;对于已使用抗生素而无法停止的患者,也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血,可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml,婴幼儿1~2ml。

采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养,培养基和血液标本量的比例应>10:1,将血液中的各类杀(抑)菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等,常加入对氨基苯甲酸(PABA)50μg/ml中和磺胺类,青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类,硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠(sodium polyanethol sulfonate, SPS)可抑制血清中的抗菌物质,并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。

培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊;②血球层上面出现颗粒状的生长物,并且有自下而上的溶血;③有明显的凝块;④液体表面有菌膜,培养液清晰或浑浊等,表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力(色)平板,普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d,接种血平板、巧克力(色)平板,分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度,在培养的第2~3d时应移种一次。

有厌氧菌感染时,同时注入需氧瓶和厌氧瓶,厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等;培养液中有刃天青,无氧时无色,有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊,或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊,提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板,置需氧和厌氧环境中,如果都只生长1种细菌,则为兼性厌氧菌;如果仅在厌氧环境中生长,可以直接报告“有厌氧菌检出”。

若长期应用抗细胞壁类抗生素,应考虑细菌L型存在,将血液接种高渗培养基中,分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上,观察有无细菌L型菌落生长。

2.呼吸道标本

正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入

咽拭子直接涂片检查怀疑白喉的标本,应立即进行涂片革兰染色和异染颗粒染色。如发现有呈Y、V、T等排列的棒状杆菌,有异染颗粒时可报告“找到有异染颗粒的革兰阳性杆菌”。也可用特异性的荧光染色法检查A群溶血性链球菌和百日咳鲍特菌。

培养检查接种血平板,观察细菌的生长情况。有无特别的菌落生长,如为上呼吸道的正常菌群,比例大致正常,则报告“未检出致病菌”;如果某一种菌群明显占多数或接近纯培养,应考虑该菌与疾病有关,鉴定后报告。

呼吸道标本特殊菌的培养百日咳鲍特菌接种在鲍-金(Border-Gengou)平板;白喉棒状杆菌接种吕氏血清斜面或鸡蛋培养基,同时接种亚碲酸钾血平板;脑膜炎奈瑟菌带菌者的鼻咽拭子35℃保温运送,尽快接种在35℃预温的卵黄双抗平板上,置3~5%CO2环境中35℃孵育24h。流感嗜血杆菌用巧克力平板或选择性平板。化脓性A群链球菌的接种血平板,在接种原始区贴一张0.04U的杆菌肽纸片作为A群链球菌存在的指示。

痰液标本,采集晨痰为好。观察标本的性状,选取脓血性的部分,如发现有颗粒、菌块及干酪样物,可能是放线菌或真菌感染。有异常恶臭,与厌氧菌有关。

直接涂片染色检查发现,以柱状上皮细胞为主,有中性白细胞及细菌,则可根据形态和染色性直接报告,并且作为分离细菌时选择培养基的依据。如果以鳞状上皮细胞为主,很少发现白细胞,则为不合格标本。如有颗粒、菌块及干酪样物也应进行涂片检查,发现具有典型的真菌或放线菌样的菌落特点,可直接报告“找到真菌(放线菌)”。

痰液标本在分离接种前一般进行前处理,方法有均质化和洗净法。痰液标本至少同时接种血平板、巧克力平板和EMB(或Mac Conkey平板)。

3.尿液标本

正常人的尿液是无菌的,女性月经期间容易污染,不宜采集。

尿液的采集方法有:中段尿采集法、肾盂尿采集法、膀胱穿刺法,膀胱穿刺法一般用于厌氧菌培养的标本采集或不能正确留取中段尿而需确定诊断的儿童。

尿液标本检验采用定量培养的方法进行尿液菌落计数区别污染和病原菌。一般认为尿液中的菌落数>105/ml为病原菌,<104/ml为污染菌,<105/ml >104/ml为可疑需重新复查,重新复查后仍为同样结果,则应视为病原菌。会受到尿量、尿液在膀胱中停留的时间长短及使用利尿剂等影响。计数的方法有:平板涂布法、倾注培养法和标准接种环法。

一般接种血平板和EMB(或Mac Conkey平板),或CLED平板。尿液细菌L型较为常见,可同时接种L型平板。

尿液标本的快速检验用于尿液快速细菌检验的方法有硝酸盐还原法、氯化三苯四氮唑(TTC)还原法、尿中抗体包被细菌法和产色培养基法等。

4.脑脊液标本

正常人的脑脊液是无菌的。

脑脊液标本的采集以无菌手续通过腰椎穿刺采集脑脊液3~5ml,应立即送检或床边接种。应在35℃保温运送。

直接涂片检查由细菌引起的化脓性脑膜炎一般呈现混浊,在抗生素治疗后亦可不混浊。此外结核性脑膜炎、无菌性脑膜炎等也不混浊。

可直接涂片革兰染色检查,不混浊的可3000r/min离心10~15min后取沉淀涂片染色检查。如发现革兰阴性、凹面相对的双球菌,位于中性白细胞内外,则可报告“找到革兰阴性双球菌,位于细胞内(外),疑似脑膜炎奈瑟菌”;有革兰阳性矛头状的双球菌,菌体周围有明显的荚膜,可报告“找到革兰阳性双球菌,疑似肺炎链球菌”。用肺炎链球菌全价抗血清进行荚膜肿胀试验,阳性者可报告“荚膜肿胀试验检出肺炎链球菌”;发现其他形态的细菌,可根据形态和染色性进行报告。涂片阳性的标本最好进行标本的直接药敏试验。

应立即接种在35℃预保温的血平板和巧克力平板上,置5~10%CO2环境35℃培养18~24h。脑脊液标本一般经3d培养仍未见细菌生长,可报告“经3天培养无细菌生长”。

脑脊液标本特殊病原菌的检验

结核分枝杆菌将脑脊液4000r/min离心30min,取沉淀抗酸染色;或将脑脊液在室温下静置18~24h,待形成纤维网后,倾倒在洁净玻片上抗酸染色。或用金胺“O”进行荧光染色观察。取沉淀接种罗-琼培养基进行结核分枝杆菌的培养。

新型隐球菌将脑脊液离心沉淀后,进行墨汁负染,可在黑色背景中观察到折光性很强的菌体和周围似晕轮样的透明荚膜,有时可见到生芽的新型隐球菌。

5.粪便标本的采集粪便标本于急性腹泻期及未使用抗生素之前采取自然排出的粪便,挑选粘液、脓血部分,置无菌容器、保存液或增菌培养基中。可用肛门拭子。不能立即送检的标本应放入Cary-Blair运送培养基中。

(1)直接涂片检查临床怀疑是霍乱弧菌、结核分枝杆菌感染或菌群失调需要大致估计菌群比例、二重感染(伪膜性肠炎、真菌性或葡萄球菌性肠炎)时进行直接涂片染色检查。

霍乱弧菌的涂片检查取“米泔水”样粪便或肛门拭子涂片2张,干燥后用乙醇或甲醇固定,分别进行革兰染色和1:10稀释石炭酸复红染色,用油镜观察有无革兰阴性、鱼群样排列的弧菌。另外也可进行悬滴法动力试验和制动试验。

菌群失调及菌交替症取粪便标本直接涂片,进行革兰染色油镜观察,根据菌群的形态和染色特征可大致描述菌群的情况。疑为伪膜性肠炎的患者标本中如发现大量革兰阳性呈葡萄状排列的球菌,则可报告“找到革兰阳性呈葡萄状排列的球菌”;如发现革兰阳性粗大杆菌、无荚膜,通常有位于菌体一端的卵圆形芽胞者,可报告“找到革兰阳性芽胞杆菌,疑似艰难梭菌”。

结核分枝杆菌取半个指甲大小粪便块,与饱和盐水10~15ml搅和,静置,1~2h后取最上层液体作涂片,进行抗酸染色检查。

(2)分离培养

沙门菌属和志贺菌属直接接种肠道强选择性培养基(SS琼脂、木糖赖氨酸去氧胆酸钠琼脂)和弱选择性培养基(如Mac Conkey、EMB、中国蓝琼脂)各1个;携带者的检查,可将粪便标本接种于GN增菌液(适用于沙门菌属和志贺菌属)和亚硒酸盐或四硫磺酸盐增菌液(适用于沙门菌属)增菌后转种于肠道强和弱选择性培养基上观察菌落特征。

霍乱弧菌可疑标本接种于碱性蛋白胨水中进行35℃增菌,同时接种含糖双洗平板、庆大霉素琼脂平板或TCBS琼脂平板。增菌培养6h后,取增菌液表层菌膜移种于上述平板中进行分离培养,同时取增菌液作革兰涂片染色和悬滴法动力试验和制动试验。

副溶血性弧菌取可疑粪便(或可疑食物)接种于副溶血性弧菌增菌液中,同时划线接种于副溶血性弧菌选择性平板和SS平板上。

肠致病性大肠埃希菌取可疑粪便标本接种在中国蓝平板(或Mac Conkey平板或EMB平板)。

小肠结肠炎耶尔森菌将可疑标本接种于新耶尔森菌选择培养基(NYE)、Mac Conkey及SS琼脂平板。带菌者可将标本接种于1/15mol/LpH7.4~7.8的PBS中,在4℃进行冷增菌。

空肠弯曲菌取可疑粪便或在Cary-Bair运送培养基中的粪便标本接种于Camp-BAP血琼脂或Skirrow血琼脂,或接种于CEM增菌液在微需氧环境下培养18~24小时后接种上述平板,在微需氧环境下培养42~48h。

菌群失调及菌交替症要对粪便中的所有菌群进行观察,将粪便定量接种在肠道选择性培养基、需氧和厌氧血平板,甘露醇盐琼脂,沙保弱培养基等,观察各菌群的生长情况,进行鉴定后报告各菌群比例。怀疑艰难梭菌的菌交替症时,如为黄色、夹有伪膜的粪便应立即接种CCFA平板,进行厌氧培养。如为绿色、海水样粪便,应怀疑为金黄色葡萄球菌感染,接种甘露醇盐琼脂,有黄色菌落按葡萄球菌鉴定。如为真菌性腹泻,常发生在抗生素使用之后,将标本接种在沙保弱培养基及血平板上,进行鉴定。

6.生殖道标本

男性尿道、生殖器分泌物用无菌棉签将脓液采集在无菌试管中。由临床医师从肛门进行前列腺按摩,收集前列腺液。

女性生殖道标本直视采集阴道后穹隆分泌物。盆腔脓肿的患者应消毒阴道后从后穹隆穿刺抽取脓液。子宫分泌物的采集采用双套管的方式插入子宫腔吸取分泌物。

外阴分泌物对外阴部位的硬下疳,从其溃疡底部挤出少许组织液,以洁净玻片直接沾取,加盖玻片后送检。

涂片检查对一般细菌和淋球菌的检查用革兰染色;梅毒螺旋体用暗视野显微镜或镀银染色法检查;结核分枝杆菌进行抗酸染色。

培养检查一般细菌培养用血平板和Mac Conkey平板各一个;培养淋病奈瑟菌需要巧克力平板或卵黄双抗平板.

7.脓液、胸腹水及分泌物等其它标本

封闭性脓肿直接穿刺;疑为厌氧菌感染者,应立即将注射器内的空气排空,将针头插入橡皮塞中隔绝空气;开放性脓肿或瘘管从深部采取标本。标本直接涂片革兰染色发现细菌可以直接报告,然后用血平板接种培养。胸、腹水通过胸腔或腹腔穿刺获得,注入无菌试管中送检。

来源:检验医学在线

微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求 引言 微生物标本的采集和保存是微生物学研究和诊断的基础。正确的采集和保存方法能够确保标本的质量和完整性,并提供可靠的结果。本文将介绍微生物标本采集和保存的要求,旨在帮助人们正确进行微生物标本的处理。 1. 标本采集前的准备 在进行微生物标本采集之前,准备工作是至关重要的。以下是一些需要注意的事项: •准备采集工具和材料: 预先准备好所需的采集工具和材料,如无菌容器、无菌拭子等。 •确保个人卫生: 采集标本前,采集人员应洗手,佩戴适当的个人防护设备,例如手套和口罩,以防止交叉感染。 •了解采集部位和要求: 在采集标本前,了解所要采集的部位和采集要求,以便采集人员能够正确操作。 2. 标本采集步骤 下面是一些常见微生物标本的采集步骤: 2.1 血液标本 血液标本是常见的微生物病原体检测标本之一。以下是血液标本的采集步骤: 1.选择合适的采集部位: 常用的采集部位有静脉内和 指尖采血。根据需要选择合适的采集部位。 2.消毒采集部位: 使用适当的消毒剂对采集部位进行 消毒,以减少细菌的污染。

3.利用无菌注射器或放血针采集血液: 选择合适的采 血设备,按照正确的技术和步骤采集适量的血液。 4.将血液转移到无菌容器中: 将采集到的血液转移到 适当的无菌容器中,如血培养瓶或离心管。 2.2 呼吸道标本 呼吸道标本用于检测呼吸道感染。以下是常见的呼吸道标本采集步骤: 1.依照需要选择合适的采集方法: 常见的呼吸道标本 采集方法包括咽拭子、鼻拭子、喉拭子等,根据需要选择合适的采集方法。 2.使用无菌拭子采集标本: 使用无菌拭子轻轻刮取相 应部位的分泌物,注意避免刮伤黏膜。 3.将拭子转移到无菌容器中: 将采集到的标本拭子放 入无菌容器中,并确保容器密封。 2.3 尿液标本 尿液标本常用于病原体的检测和诊断。以下是尿液标本的采集步骤: 1.准备容器和适当的采集方法: 准备无菌容器和适当 的采集方法,如尿杯或导尿管。 2.进行尿液采集: 采集尿液时应注意保持个人卫生, 避免污染。 3.将尿液转移到无菌容器中: 将采集到的尿液转移到 无菌容器中,并尽快送至实验室进行分析。 2.4 粪便标本 粪便标本常用于检测肠道感染和胃肠道疾病。以下是粪便标本的采集步骤:

常见微生物标本的采集

常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则:尽早采集、根据可疑的病原体,选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎,标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集;持续性菌血症可随时采集;间歇性菌血症,应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次;多部位采集,如两侧肘静脉或动、静脉同时采取;对于已使用抗生素而无法停止的患者,也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血,可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml,婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养,培养基和血液标本量的比例应>10:1,将血液中的各类杀(抑)菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等,常加入对氨基苯甲酸(PABA)50μg/ml中和磺胺类,青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类,硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠(sodium polyanethol sulfonate, SPS)可抑制血清中的抗菌物质,并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊;②血球层上面出现颗粒状的生长物,并且有自下而上的溶血;③有明显的凝块;④液体表面有菌膜,培养液清晰或浑浊等,表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力(色)平板,普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d,接种血平板、巧克力(色)平板,分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度,在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时,同时注入需氧瓶和厌氧瓶,厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等;培养液中有刃天青,无氧时无色,有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊,或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊,提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板,置需氧和厌氧环境中,如果都只生长1种细菌,则为兼性厌氧菌;如果仅在厌氧环境中生长,可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素,应考虑细菌L型存在,将血液接种高渗培养基中,分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上,观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入

临床微生物学检验的标本采集

临床微生物学检验的标本采集 一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集 (一)适应症 菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。 (二)病人准备 1.凡怀疑菌血症和败血症的患者,采血培养时,应尽量在未使用抗菌素前采血,如已使用过抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血,或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。 2.应在病人发热期或寒颤时采集 (三)标本采集 1.血培养瓶领取:凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。按照实际情况选择相应类型的血培养瓶:如灰色瓶盖为普通成人培养瓶;粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶;紫色盖为厌氧菌培养瓶。 2.将患者信息录入相应的血培养瓶条码中,并在作好病人姓名、科别、床号等标识。2.采集方法:严格消毒病人采血部位和血培养瓶口,抽一定量血液或骨髓后,无菌注入血培养瓶内,轻轻摇匀。 3.标本量:成人每次采血5~10ml,小儿采血3~5ml,骨髓2~3ml,采血量足够则阳性率高,反之阳性率减低。 (四)注意事项 1.抽血、抽骨髓和接种时,须严格注意无菌操作,避免污染杂菌。 2.从抽血、抽骨髓到接种入瓶,动作要快,防止血液凝固。 3.成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套,每套2瓶(需氧、厌氧各一瓶)。 4.怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等,一般一日抽血三次培养,必要时需追加次数。 (五)标本送检和保存 1.标本采集后应及时送检,一般不超过1h送交细菌室。 2.送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。

二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集 (一)适应症 肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。 (二)病人准备 1.尽量在未使用抗菌素前留取标本。准备好无菌标本容器,贴上条码、标明标识。 2.住院病人应留取清晨起床第一口痰。为减少正常菌群的污染,嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口,不要刷牙,除去鼻咽分泌物。 (三)标本采集 1.一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液,留于无菌标本容器内。 2.对无痰、少痰或痰不易咳出时,可用加温45℃的生理盐水雾化吸入,以使痰液易于咯出。 3.幼儿痰液收集困难时,可用清毒棉拭子刺激喉部引起咳嗽反射,用棉拭子采集标本。4.通过气管穿刺获得痰液,即环状软骨下穿刺取肺分泌物,主要用于厌氧菌培养。采集后立即排出注射器内空气,插入无菌的橡皮塞或直接注入厌氧培养瓶内送检。 6.浓缩法找抗酸杆菌应留取24小时痰(不少于5ml)。 7.痰标本直接染色找抗酸杆菌,应送检三份痰标本,最好连续3日。 (四)注意事项 1.痰液标本应为气管深处或肺部咳出的真正呼吸道分泌物,切忌简单地将口水当成痰液送检。 2.痰液标本采集时不得混入唾液、鼻分泌物、食物和漱口水。 3.用不吸水的无菌容器盛留标本,所用容器须加盖,避免污染。 4.怀疑为嗜血杆菌感染时,应随留即送。 (五)标本送检和保存 标本采集后应立即送检,如欲保存可置冰箱中,防止标本在运送中被污染。 三、尿液细菌学检验标本采集 (一)适应症 泌尿系统感染细菌的培养鉴定和药物敏感试验。 (二)患者准备

微生物标本采集大全

微生物标本采集大全 日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次 正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 (1)75%酒精清洁局部皮肤。 (2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm(直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 (3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。(4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 (1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。 (2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 (3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 (4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。 (5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 (6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。 (7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 (8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、骨髓的采集

微生物送检标本的采集指南

微生物送检标本的采集指南 微生物学检验标本的正确采集、运送及处理,与细菌的培养;鉴定结果有十分密切的关系,对可疑烈性呼吸道传染病如SARS、炭疽、肺鼠疫等患者采集标本时,必须按国家规范化要求严格注意生物安全;医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题,并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导; 一微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项 1.标本采集 1申请单标记必须清楚姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本采集、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等,以便实验室能够合理选择培养环境和培养基; 2尽量在抗生素应用前采集标本,以提高阳性检出率和避免漏检;3标本采集应严格执行无菌操作; 4咽拭、肛拭、伤口拭等拭子标本,应插入运送培养基送检; 5痰、尿液伤口拭子等混有正常菌群的标本,不可放入肉汤培养基内送检; 6采集标本的容器必须经灭菌处理,但不可用消毒剂; 2.标本运送 1标本采集后应尽快送到微生物实验室; 2标本采集后在室温下超过2h未送达实验室,可视为不合格标本; 3.标本验收 1实验室只能接受和处理合格标本; 2实验室对不合格标本退回必须说明原因,并应及时与临床联系; 4.注意事项 1微生物检验样本必须按要求采集转运,否则将影响检查结果,并给评价其意义带来麻烦甚至误导; 2微生物样本极易被污染,污染的样本杂菌大量繁殖抑制病菌生长,条件致病菌也是致病菌,如污染条件致病菌将误导临床,造成对患者的损害以及经济和时间的浪费; 3某些标本离体极易死亡,应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验;室温放置或延迟送检,可使检出的阳性率降低,不能使用冷藏的标本检验; 4厌氧菌样本采取必须隔绝空气,混入空气的样本影响检验结果,不能使用;

常见微生物标本采集方法

常见微生物标本采集方法 一、基本原则 1、发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查,二、三级医院微生物标本送检率不应低 于70%。 2、尽量在抗菌药物使用前采集标本。 3、标本采集时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。 4、标本采集后应立即送至实验室。床边接种可提高病原菌检出率。 5、以棉拭子采集的标本如咽拭、肛拭或伤口拭子,宜采用插入运送培养基送检。 6、混有正常菌群的标本如咳痰、尿液、伤口拭子,不可置肉汤培养基内送检。 7、盛标本容器须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。 8、送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环 境。 二、常见感染标本采集与送检方法 (一)、血液及骨髓 1、通常采血部位为肘静脉。疑似细菌性心内膜炎时,以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。 2、采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养基前,应列换针头或过火消毒针头。 3、每次采血量成人5-10ml,婴幼儿1-2ml,培养基与血液之比以10∶1为宜,以稀释血液中的抗生素、抗体等杀菌物质。 4、怀疑菌血症庆尽早采血,体温上升阶段采血可提高阳性率,但要防止因等待而延误时机。对已用抗菌药物而不能停药者,可在下次用药前采血。 5、对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人,在病灶或者髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓1 ml 作增菌培养。 (二)、尿液 1、中段尿:女性采样前应先用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗外阴部及阴部及尿道口;男性翻转包皮冲洗,用0.1%新洁尔灭消毒尿道口,灭菌纱布擦干后,收集标本。 2、导尿管导尿采样可减少污染。对留置导尿者,可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用联空针筒的细针斜穿管壁抽吸尿液;或拔去闭式引流的集尿袋,弃去导尿管前段尿液,留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。不可从集尿袋的下端管口留取标本。 3、尿厌氧菌培养,或婴幼儿中段尿采集困难,或培养结果与病情不符时,可经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。 4、送检标本以晨起第一次尿液为佳。 5、室温下尿标本担搁稍久可致尿内细菌浓度明显增加而影响病原菌与污染菌的区分。不能立即送检者,可暂存4℃冰箱。 (三)痰液 1、咳痰:清水反复漱口后用力咳嗽,从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。痰量极少者可用45℃ 10%氯化钠溶液雾化吸入导痰。 2、对咳嗽乏力或昏迷病人,可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管腔内吸引痰液。用纤维支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌,但不能完全避免咽喉部正常菌群污染。 3、双侧肺部感染伴人工气道如气管切开或气管插管患者,可用吸痰管经人工气道估插至叶支气管水平吸引痰液。 4、对重症、难治,或伴免疫抑制,或疑似厌氧菌引起的医院内肺部感染,可采用环甲膜穿

(完整版)微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求 一、总则:用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检,检测后标本应妥善保存。 二、临床标本的采集 (一)下呼吸道分泌物(痰液) 令患者早上起床后用清水濑口,不要刷牙,立即从下部呼吸道咳出第一口痰,吐在无菌塑料痰盒中,及时送检。 (二)、尿液(中段尿) 护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中,及时送检。 (三)、粪便:取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中,如为稀水便,可直接收集于玻璃管中,及时送检。 (四)、眼、耳、鼻、喉拭子:将棉拭子沾取少许无菌生理盐水(如沾取的太多,可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份),然后采取可疑部位的分泌物,倒悬于无菌试管内,及时送检。 (五)、脓液:用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液,要尽量多取一些,然后将棉拭置于无菌试管中,及时送检。 (六)、: 1、凡怀疑菌血症和败血病的患者,采血培养时,应尽量在未使用抗菌素前采血,如已使用抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血,应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人发热或寒颤时采集也可。 2、成人每次采血5—10ml,小儿采血2—3ml; 3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口,抽一定量血液后,无菌注入血培养瓶内,轻轻摇匀, 4、从抽血到接种入瓶,动作要快,防止血液凝固,同时要及时送检。 (七)、穿刺液:胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液: 严格无菌抽取后,注入含肝素抗凝的无菌试管中,轻轻颠倒试管10余次,使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的,或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。 (八)、胆汁:由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。 (九)、脑脊液:以无菌方法取脑脊液3-5ml,置无菌试管内,常温保存送检,如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内,及时送检。 (十)、生殖器官标本:阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集,收集于无菌试管内送检。如疑为淋病奈瑟菌感染,做培养检查时,采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。(十一)、烧伤标本:以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. (十二)、支原体(解脲、人型)培养+药敏的标本采集 1、支原体对干、热抵抗力差,标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。 2、男性:用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。 三、临床标本的保存 细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理,不得保存。

微生物标本采集与送检

微生物标本的采集与送检 一、血液培养 1、血液培养的送检指征: ⑴症状指征:发热(≥38℃)、皮疹、肝脾肿大、关节疼痛、神志不清、昏迷或休克。 ⑵疾病指征:化脓性病灶或损害、粘膜损伤性疾病、肝脏疾病、糖尿病、血液疾病及恶性肿瘤、艾滋病、呼吸道感染或呼吸衰竭、长期输液或导管介入疾病、血液透析患者。 2、采集流程: ⑴培养瓶消毒程序:75%酒精擦拭橡皮塞,作用60秒后,用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精; ⑵皮肤消毒程序:75%酒精擦拭静脉穿刺部位,从穿刺点向外花圈消毒,至消毒区域直径3cm以上,作用60秒,待酒精挥发干燥后采血; ⑵静脉穿刺和培养瓶接种程序:用注射器无菌穿刺取血(成人:5-10ml,婴幼儿1-2ml),直接注入血培养瓶后,轻轻颠倒混匀并立即送检。 3、注意事项: ⑴血培养采血最好不要和其他检验项目采血同时进行,否则应先采血培养标本; ⑵切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血; ⑶不宜从静脉导管或静脉留置口取血; ⑷建议在患者出现寒战、体温升高前采血。如患者有明显的发热前期症状,在患者寒战前或寒战后1h内采血可提高阳性率; ⑸应同时在不同部位或在不同时间段内采集2次以上标本,只采集一瓶的血培养标本是不允许的,因为一瓶血培养标本的培养结果很难解释是致病菌还是污染菌。 ⑹一般情况下(怀疑为持续性菌血症者除外),在采血后的2-5天内,无需重复采血培养标本。 二、脑脊液培养 1、脑脊液培养的送检指征: ⑴症状指征:发热等感染性全身性症状、颅内压升高症状、脑膜刺激症状等。 ⑵疾病指征:化脓性、非化脓性脑膜炎。 2、采集方法:

检查和细胞计数、 ⑵经脑室导管采集:无菌操作采集脑部脓肿或活检标本的抽吸物,立即送检。 3、注意事项:⑴如果只采集了一管脑脊液,应首先送到细菌室;⑵做脑脊液培养的同时,建议同时做血培养。 三、胸腹水培养 1、胸水培养的送检指征: ⑴症状指征:多伴有胸痛、发热、胸腔积液。 ⑵疾病指征:细菌性肺炎引起的胸膜炎、真菌感染引起的胸腔积液。 2、腹水培养的送检指征: ⑴症状指征:腹部有积液伴腹痛、呕吐、肌紧张、肠鸣音弱或消失等。 ⑵疾病指征:原发性、继发性腹膜炎。 3、胸腹水标本采集流程:无菌操作穿刺抽取标本5-10ml,直接注入血培养瓶后,立即送检。 四、痰培养 1、痰培养的送检指征:凡是发热、咳嗽、咳痰,痰呈脓性、粘稠或血性,并伴有胸痛、气急,肺部闻及湿啰音,外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高,X线检查提示肺部有炎症性浸润或胸腔积液,甚至出现感染性休克和呼吸衰竭患者,应采集痰液或下呼吸道标本。 2、采集方法: ⑴自然咳痰法:留取前刷牙,用清水漱口3次后,用力咳出呼吸道深部的痰液至无菌痰杯中,把盖子盖紧后尽快送检;患者痰液较深不易咳出时,可捶背协助排痰,采集痰液不应少于1ml。 ⑵经支气管镜抽吸法:纤维支气管镜检查可直接从肺部感染病灶获取支气管分泌物,操作较为安全。 ⑶小儿取痰法:用弯压舌板向后压舌,用棉拭子伸入咽部,小儿因压舌刺激咳嗽时,可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上,从而取得标本。 ⑶雾化蒸汽吸入法:无痰或痰量极少时可用3%-5%的NACL溶液5ml先雾化吸入5分钟,进行导痰。 3、注意事项:⑴最好在清晨采集痰标本;⑵痰标本采集前应进行口腔清洁。

临床常见微生物标本采集手册

规范化标本采集是微生物检验分析前质量控制的重要内容 微生物标本采集的基本原则 1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.收集真正感染的病灶处之样本,且不受邻近区域微生物的污染; 3.收集样本时应执行严格的无菌操作技术,将污染情形降至最低; 4.尽量在抗菌药物使用前采集标本 5.采样后立即送检以保持微生物的生物活性,床旁接种可提高病原菌检出率 6.使用无菌、密闭容器,但不得含有消毒剂、防腐剂 7.送检标本应注明来源和检验目的 一、血培养标本的采集 1.血培养的临床指征: 患者出现以下一种或同时具备几种临床表现时可作为血培养的重要指征: ①发热(≥38 ℃)或低温(≤36 ℃),以间歇驰张型多见,革兰阴性杆菌,如大肠埃希菌引起的感染可见双峰热; ②寒战; ③白细胞增多(>10.0×109/ L,特别是有“核左移”时); ④粒细胞减少(<1.0 ×109/ L); ⑤血小板减少; ⑥皮肤、黏膜出血,常见于溶血性链球菌感染的菌血症,伤寒病人第4-10天可出现玫瑰疹,斑疹伤寒第4-6天可出现暗红色斑丘血疹; ⑦昏迷;

⑧多器官衰竭; ⑨血压降低; ⑩呼吸加快(呼吸率>20/分或CO2分压<32mmHg);以及肝脾肿大;关节疼痛;C反应蛋白、内毒素、降钙素原升高等; 2.血培养的采集时间 ①对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。 ②研究表明细菌通常在寒战或发热前1h入血,此时为采血的最佳时机。 ③发热后细菌很快会从血液中清除,超过发热峰值后,病原菌的检出率会随之降低。 3.血培养的采集部位 ①对怀疑菌血症、真菌血症的患者,应同时或短时间间隔(10分钟内)从不同部位(如双臂)采集2~3套血培养标本,做到“双瓶双侧”。 ②推荐从外周静脉采集血液标本。 ③不推荐动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大。 ④不推荐静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血,也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以助于对比和结果解释。 4.血培养的采血量 ①成年患者:推荐采血量为每套不少于10ml,每瓶不少于5ml。 ②婴幼儿患者:推荐采血量每瓶不少于2ml。 ③血标本采集的量是影响检出率的重要因素。成人血培养采血量在2-30ml之间,病原菌检出率与采血量成正比例增长,每增加1ml的血液,病原菌的检出率就会相应3%。 ④数据显示儿童患者血液中病原菌浓度较高,血培养采血量无须等同于成人。 5.注意事项 ①以一个需氧瓶和一个厌氧瓶为一套血培养,作为常规血培养组合。所谓“双瓶双侧”, 是指从一个部位采血接种一套培养瓶,再从另一部位采血接种另一套培养瓶。一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单个血培养。 ②采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室。 ③血培养瓶在采血接种后在室温放置不超过2小时。 ④血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。

临床微生物标本采集须知1

临床微生物标本采集须知 临床微生物标本的采集应在抗生素应用前或停药一周后进行,如不能停用抗生素,应于下次抗生素应用前采集。各种标本采集后应立即送检;无菌部位的标本采集应严格无菌操作。 一下呼吸道标本 【标本送检指征】 1 咳嗽、咳痰:痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨样痰。 2 咯血:肺结核病人常痰中带血。 3 呼吸困难 4 发热 5 胸痛:当炎症病变累及壁层胸膜时,会发生胸痛。 肺部感染的患者有25~50%可能发生菌血症,应同时作血培养。 【标本采集方法】 1 自然咳痰法:晨痰为佳,用温开水漱口数次(为减少口腔正常菌群污染标本),深咳呼吸道深部痰(非后鼻部分泌物、非唾液)留于无菌容器内。对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入45℃10%NaCL水溶液,使痰液易于排出。对咳痰少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,使其咳嗽。 2 支气管镜采集法:用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取。 3 胃内采痰法:无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽,有时将痰误咽入胃中,可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。 4 气管穿刺法:主要用于厌氧菌培养 5 小儿取痰法:用弯压舌板向后压舌,将拭子伸入咽部,小儿经压舌刺激咳嗽,

可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方,以诱发咳痰。 【注意事项】 1 晨痰为好。多数病人清晨痰较多,易于采集。且清晨痰含有的病理成分较多,会增加培养的阳性率。 2 有1/4-1/2肺部感染患者可能发生菌血症,应同时作血培养。 3 能在抗菌药物应用之前采集标本,标本采集后应立即送检,否则可暂存于4℃冰箱。 二上呼吸道标本 【标本送检指征】 1 病毒性普通感冒伴有明显咽痛时,怀疑为咽部链球菌感染,应做细菌培养。 2 细菌性咽-扁桃体炎:明显咽痛、畏寒、发热,体温可达39℃以上。 3 上呼吸道感染易并发鼻窦炎、中耳炎、气管-支气管炎,需送相应部位分泌物或痰液进行细菌培养。 【标本的采集方法】 嘱患者先用清水漱口,由检查者将其舌外拉使悬雍垂尽可能向外牵引, 用压舌板将舌向下向外压,用无菌棉拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧,反复擦拭数次然后送检,拭子应避免触及舌、口腔粘膜和唾液。 【标本采集注意事项】 1 采集时间:应于抗生素应用之前。时间上可无严格限制,但咽部是呼吸 和食物的通路,也应晨起后采集为佳。 2 送检:应立即送检。 三尿液标本 【标本送检指征】

常见细菌培养标本的采集方法及注意事项

常见细菌培养标本的采集方法及注意事项 所有标本应在未使用抗生素之前,或在抗生素停药三天后留取,留取标本后应记录留取时间,保证在留取标本后1小时内送至检验科。 粪便标本:自然排便后,取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺.液体粪便则取絮状物,一般取1~3ml,直接装入粪便容器中送检。 清洁中段尿标本:应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上.最好留取早晨清洁中段尿标本。注意:容器内是无菌的,所以打开容器盖后,应拿在手中,不要随意乱放。留取方法:(1)患者睡前少饮水;(2)清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部,女性应用手分开大阴唇,男性应翻上包皮,仔细清洗,再用清水冲洗尿道口周围;(3)开始排尿,将前段尿排出,弃去,不要停顿,直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中,立即送检。 自然咳痰标本:患者清晨起床后,用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙.先轻咳,咳出口腔中的痰液弃去,再用力深咳,从气管咳出呼吸道深部的痰,直接吐入清洁、无菌的容器中。 常见细菌培养标本的采集方法及注意事项 所有标本应在未使用抗生素之前,或在抗生素停药三天后留取,留取标本后应记录留取时间,保证在留取标本后1小时内送至检验科。 粪便标本:自然排便后,取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺.液体粪便则取絮状物,一般取1~3ml,直接装入粪便容器中送检。 清洁中段尿标本:应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上。最好留取早晨清洁中段尿标本。注意:容器内是无菌的,所以打开容器盖后,应拿在手中,不要随意乱放.留取方法:(1)患者睡前少饮水;(2)清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部,女性应用手分开大阴唇,男性应翻上包皮,仔细清洗,再用清水冲洗尿道口周围;(3)开始排尿,将前段尿排出,弃去,不要停顿,直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中,立即送检。 自然咳痰标本:患者清晨起床后,用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙。先轻咳,咳出口腔中的痰液弃去,再用力深咳,从气管咳出呼吸道深部的痰,直接吐入清洁、无菌的容器中。

微生物标本采集的一般原则

微生物标本采集的一般原则 以微生物标本采集的一般原则为题,我们将从以下几个方面进行介绍。 一、采集时间和地点 微生物标本的采集时间和地点非常重要,采集应尽可能在病情发生后的早期进行,以确保标本的准确性。同时,标本的采集地点也应根据病情进行选择,例如:血液标本应从患者的静脉中采集,尿液标本应从患者的膀胱中采集等。 二、采集器具和保护 标本的采集需要使用专门的采集器具和保护措施,以避免标本被污染或受到损害。例如:血液标本应使用无菌采血器具进行采集,尿液标本应使用无菌尿采集器具进行采集等。同时,采集后的标本应放置在适当的容器中,并妥善保存以避免温度过高或过低等情况导致标本失效。 三、采集前的准备工作 标本采集前,采集者应进行适当的准备工作,例如:洗手、穿戴无菌手套等。同时,采集者还应向患者详细介绍标本采集的过程和注意事项,以避免患者的紧张和担忧情绪对标本采集造成影响。

四、标本采集的技巧和操作 标本采集的技巧和操作非常关键,采集者应具备专业知识和操作技巧,以确保标本的准确性和安全性。例如:血液标本的采集应注意采血管的位置和深度、采血时的速度和压力等。尿液标本的采集应注意尿液的收集量和时间、采集器具的无菌性等。 五、标本采集后的处理 标本采集后,应及时进行处理,以确保标本的质量和可靠性。例如:血液标本应在采集后立即进行标本处理,以避免血液凝固或血细胞破裂等情况导致标本失效。尿液标本应尽快送至实验室进行检测,以避免细菌的生长和繁殖导致标本失效。 微生物标本采集的一般原则包括采集时间和地点、采集器具和保护、采集前的准备工作、标本采集的技巧和操作以及标本采集后的处理等方面。遵循这些原则,能够确保标本的准确性和可靠性,为临床治疗和疾病诊断提供有力支持。

微生物标本采集方法及注意事项

微生物标本采集方法及注意事项 微生物标本采集方法及注意事项 微生物学检验标本的正确采集、运送及处理,与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系。医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题,并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。下面是yjbys店铺为大家带来的微生物标本采集方法及注意事项,欢迎阅读。 一、粪便标本采集和处理 (1)采集方法 1.自然排便法:取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分,2~3g或 1~2 m1,盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。 2. 直肠拭子法:难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法,将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约4~5cm(幼儿2~3cm),轻轻在直肠内旋转。擦取直肠表面粘液后取出,盛于无菌试管中或保存液中送检。 (2) 注意事项 1.尽可能在抗生素使用之前采集标本。 2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆),粪便样本中不应混入尿液及其他异物,采集过程应尽量无菌操作。 3.不应用厕纸收集粪便。 4.对同一病人在同一天不宜重复送检。 5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。 6.下列腹泻患者应连续3d送检标本 --社区获得性腹泻(入院前或72h内出现症状) --医院腹泻(入院72h后出现症状),且至少有下列情况之一:大于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。 --怀疑肠道感染的非腹泻性表现。

7.肠炎和发热病人建议做血培养。 8.伤寒沙门菌感染时骨髓培养高出血培养。 9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检,不应超过2h。 (3)标本拒收 干燥的拭子、含钡粪便、黄软成形便、干便、明显污染的粪便、一日内重复送检的标本,应设法与临床医师联系,可要求重新留取标本,并做好记录,在没有与医师沟通之前标本不应丢弃,仍按实验室标本保存原则存放。 二、尿液标本采集和处理 (1)采集方法 1. 中段尿采集法:清晨起床后用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用清水冲洗尿道口周围,然后排尿弃去前段尿液,收集中段尿5~10ml盛于带盖的无菌容器内立即送检,采集后于0.5h内进行接种。 2. 耻骨上膀胱穿刺法:评估膀胱内细菌感染的“金标准”。培养结果与临床病情矛盾时可采用此法,一般较少应用。 3. 导尿法:采用无菌技术用注射器经导尿管抽取尿液,导取 10~15ml 尿液,置无菌容器中送检,尿液标本不能通过收集袋引流管口流出的方式采集。长期留置导尿管的患者进行常规尿培养意义不大,这些患者通常会培养出大量定植菌。 (2)注意事项 正常人的尿液是无菌的,除外尿道有正常菌群外,还有条件致病菌,而这些细菌又是尿路感染中常见的致病菌,故应该注意无菌采集。 (3)标本拒收 1.标本取自导尿患者尿袋。 2.标本送检时容器有渗漏。 3.未用无菌容器采集标本。 4.除耻骨上膀胱穿刺法外,采用其他方法采集标本申请做厌氧菌培养 三、痰及下呼吸道标本采集和处理 (1)采集方法

微生物学标本采集与处理程序

微生物学标本采集与处理程序 1. 引言 微生物学标本的采集和处理是微生物学研究中至关重要的一环。正确的采集和处理程序能够保证标本的质量和准确性,从而确保后 续的实验和分析的可靠性。本文档旨在介绍一套标准的微生物学标 本采集与处理程序,以帮助研究人员在实验室中进行规范的操作。 2. 标本采集 2.1 选择合适的采集 根据所研究的微生物类型和标本特点,选择合适的采集。常用 的采集包括离心管、培养皿、尿液收集等。确保采集清洁无污染, 并在使用前进行灭菌处理。 2.2 标本采集技巧 在采集标本前,确保双手清洁并穿戴好防护手套。根据标本类型,采取适当的采集方法,例如: - 血液标本:通过静脉采血或采用穿刺器采集足跟血。

- 粪便标本:采用干燥的收集新鲜便样,并确保不混入尿液、水或其他污染物。 - 尿液标本:清洁外阴部,使用无菌尿杯收集中段尿液。 - 喉拭子标本:使用标本采集棒轻轻刮取喉部后壁表面。 - 污水标本:根据采样点不同,采用合适的和采集方法。 2.3 标本标识 标本采集完成后,将标本上贴上标识标签,标明采集日期、采集者姓名、标本类型等关键信息。确保标识清晰、不易脱落。 3. 标本处理 3.1 标本转运 采集完成后,及时将标本转运至实验室。对于需要特殊处理的标本,应按照相应的要求进行转运,确保样本稳定和安全。 3.2 标本处理前的准备 在处理标本前,仔细阅读实验操作指南,准备必要的试剂和材料。同时,确保实验室工作台面清洁无菌。 3.3 标本处理步骤

根据实验要求,进行标本处理的步骤。可能的步骤包括标本培养、PCR扩增、生物化学检测等。根据具体情况,确保每一步骤的 操作规范和无菌。 3.4 标本处理后的处理 标本处理完成后,将废弃物正确处理,如进行灭菌消毒或遵守 实验室废物管理规定。 4. 结论 微生物学标本采集和处理程序的规范操作对于研究可靠性和实 验结果的准确性至关重要。研究人员应遵循本文档中的程序和指南,确保标本采集和处理的质量和准确性,从而提升微生物学研究的可 信度和可靠性。 注意:本文档旨在提供标准的采集与处理程序,具体实验操作 应根据具体实验要求和相关法规进行调整。

微生物标本采集与常见的问题 图文

微生物标本采集与常见的问题 一、引言 微生物学研究中,标本采集是最基本和重要的环节之一。正确采集和保存标本,不仅对于微生物病原的检测和诊断有直接的影响,同时对于临床诊断和治疗也十分重要。本文将简要介绍微生物标本采集的一般原则和常见问题及解决方法。 二、基本原则 1.标本采集时需要采用无菌技术,避免标本受到污染,影响检测结果。 2.标本采集前应仔细阅读检测项目的要求,指导标本的采集、处理和运 输。 3.标本采集采用适当的方法和标本容器,确保标本的完整性和保存。 三、常见问题 1. 标本采集时间不当 微生物学标本采集的时间非常重要。有些标本必须在发病的早期采集,否则检 测结果将受到影响。实践中,很多标本的采集时间不当,或者标本运送时间过长,导致检测结果不准确。因此,在标本采集时,应仔细阅读检测项目的要求,确定相应的采集时间和方法,以保障检测结果的准确性。 2. 标本采集地点选择不当 不同微生物病原的定植部位不同。因此,在进行标本采集时,选择合适的部位 很重要。例如,脑脊液标本必须从腰椎区进行采集,血液标本必须从合适的血管采集,如动脉血和静脉血采集需要根据检测项目的要求来选择合适的部位。 3. 标本采集方法不正确 微生物标本采集方法的正确性直接影响到检测结果的准确性。标本采集方法不同,采集的标本量也有所不同。一些标本的采集方法需要有经验的专业人员来操作,例如从肠道中采集标本,需要医学技术人员进行操作。因此,在采集时,要仔细阅读标本采集的要求和操作方法。 4. 标本采集容器选择不当 不同的标本应采用不同的容器,否则会影响标本的质量。例如,常用的尿液容 器内内壁含有一定的杀菌剂,如果使用该容器采集血液标本,会产生干扰。因此,要根据采集标本的性质,选择合适的容器。

微生物标本的正确采集

微生物标本的正确采集正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤,因为只有采集到合适的标本,才能够准确、客观地检测出病原菌,为诊断和治疗提供科学依据。以下是一些采集微生物标本的正确方法: 一、注意清洁和消毒 在采集标本前,必须对手部进行清洁和消毒,以减少污染的可能性。使用肥皂和水清洁手部,或者使用酒精消毒剂消毒手部。同时,还需要对采集标本所使用的器械进行消毒,确保无菌操作。 二、选择正确的标本类型 不同的微生物感染会有不同的症状和体征,因此需要根据患者的具体情况选择正确的标本类型。例如,对于呼吸道感染,可以使用鼻咽拭子、痰液等;对于胃肠道感染,可以使用大便标本等。 三、正确采集标本 1.采集前准备:了解患者的病史和症状,确定需要采集的标本类型,准备好采 集所需的器械和消毒用品。 2.采集方法:根据不同的标本类型,采用正确的采集方法。例如,对于痰液标 本,需要让患者用力咳嗽,将痰液咳出并放入收集器中;对于大便标本,需要让患者取适量的大便放入收集器中。 3.采集量:采集的标本量应该足够,以便进行实验室检测和分析。一般来说, 采集的标本量应该不少于检测所需量的两倍。 4.采集时间:采集标本的时间也有讲究。例如,对于呼吸道病毒的检测,最好 在患者发病的早期采集标本;对于肠道病毒的检测,最好在患者发病后一周内采集标本。

5.保存方式:采集完标本后,需要妥善保存。一般来说,应该将标本保存在适 当的介质中,如保存液或培养基中,以保持标本的活性和完整性。同时,还需要注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。 四、避免污染和交叉感染 在采集标本的过程中,必须严格遵守无菌操作原则,避免污染和交叉感染。例如,在采集痰液标本时,应该让患者先用清水漱口,再用无菌棉签擦拭咽部,以减少口腔和咽部的细菌污染。同时,还需要注意实验室内的清洁卫生和消毒工作,确保实验室内的空气和环境符合要求。 五、及时送检 采集完标本后,需要及时送检。一般来说,应该将标本尽快送到实验室进行检测和分析。如果不能及时送检,应该将标本保存在适当的条件下,并注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。在送检过程中,还需要注意安全和防护措施,避免标本受到外界因素的污染和交叉感染。 总之,正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤。在采集标本的过程中,必须注意清洁和消毒、选择正确的标本类型、正确采集标本、避免污染和交叉感染以及及时送检等方面的工作。只有这样才能够获得准确、客观的检测结果,为诊断和治疗提供科学依据。

临床常见微生物标本的采集与运送

临床常见微生物标本的采集与运送 唐玉英 正确的标本采集,运送,保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要,为了准确检出病原菌,避免漏检与误诊,临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择,采集,运送,保存及处理的一般原则。 一标本采集的一般原则 1.早期采集采集时间最好在病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药 物之前采集,确保病原菌的检出。 2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正 常菌群的污染,使病原菌与正常菌群混淆,造成临床误诊。采集的标本 应存放在无菌容器内,容器不能使用消毒剂处理,标本中也不能添加防 腐剂,以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法对于厌氧菌,需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不 同的,用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物,室温保存, 不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌,防漏,应带有螺旋盖的容 器内。 二标本的运送 1.标本采集后立即送检,若有延迟也应在2小时内送到实验室,否则会 影响病原菌的检出,一般性的细菌培养标本若需延迟送检时,应置于4 度冰箱保存,且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量,少量液体(小于1ml)或组织

(小于1cm3)应在15~30分钟内送到实验室,较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时,厌氧培养标本原则上是床边接种,如延迟送检,需保存在厌氧运送培养基中,室温保存,不得超过24小时。 三不同标本的采集,运送 (一)血液标本采集,运送 1.血培养指针当患者出现:发热(大于38度)或低温(小于36度),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血,休克,多器官衰竭,血压降低,c反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,具备上述一种或几种体征时,临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养,对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前,及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集2套以上血培养标本。成年患者:推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养标本(即双瓶双臂同时采集血培养标本),采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者:推荐同时采集2次(不同部位)血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。(少于病人总血容量的1%).在采取血培养后的2—5天内,无需重复采取血培养。两个例外:细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3. 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。检出率与采血量成比例增长,每增加1ml的血液,病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高,血培养量无需等同于成人。采用一对(需氧瓶+厌氧瓶)组合,比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时,应首先满足需氧瓶的

医院微生物标本采集规范及注意事项

XXXX医院 微生物标本采集规范及注意事项 一、尿液标本的采集 二、粪便培养标本 三、痰及下呼吸道标本采集 四、脑脊液培养标本 五、血培养标本 六、穿刺液培养标本 七、脓汁和病灶分泌物培养标本 八、泌尿生殖道培养标本 微生物学检验标本的正确采集、运送及处理,与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系;细菌培养应尽量争取在抗生素使用前采集标本;临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者,需做血液细菌培养,采血宜在患者发冷、发热期间,越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷、发热时或发冷、发热前半小时为宜。 一、尿液标本的采集 通常留取晨起第一次尿液(此时尿液在膀胱内储存4h以上);尿液采集后要及时送检,并保证2h内接种; 二、粪便培养标本 检查粪便中的致病菌,应无菌操作收集。 三、痰及下呼吸道标本采集 1)自然咳痰法:① 晨痰为佳;②先冷开水漱口清洁口腔和牙齿; ③ 再用力咳出呼吸道深部的痰;④ 痰量不得少于1ml;⑤ 痰咳出困难

时可先雾化吸入NaCl溶液(100g/L,加温到45)使痰容易咳出。 四、脑脊液培养标本 1)采集时间:怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液,最是在应用抗生素之前采集脑脊液。 2) 采集方法:无菌腰穿采集脑脊液3~5ml,分装到3个无菌小瓶中(各1~2m1)。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml;用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。 五、血培养标本 1)抗生素治疗前,严格无菌静脉采血5~10ml(儿童1~4ml); 2)无菌注入专用培养瓶(成人、儿童、需氧菌、厌氧菌和L型菌)中送检; 3)如已用抗生素不能停用时,可于48h内分别于下次用抗生素之前,采取6份血液标本送检; 4)必要时可需氧菌、厌氧菌(占10%)和L型菌同时培养; 5)疑为心内膜炎时,为提高阳性检出率,可酌情不同部位、不同时间,多次采血或动脉采血进行培养; 六、穿刺液培养标本 1)采集时间:一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前,或在停止使用抗菌药物之 后2-3d采集标本。 2)采集方法: ①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本;

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