红曲霉生产洛伐他汀的技术发展
红曲

红曲酵素红曲酵素又称红曲米、中药红曲,是红曲霉菌在大米中培养发酵而成,能够降低血脂,降低血压,具有抗氧化和强化肝脏功能,促进细胞新成代谢,提高人体免疫力。
简介1970:红曲米提取6种他汀,制成降脂药世界第一红曲,是寄生在红曲米上,发酵提取的活性生物菌。
70年代日本科学家远藤根据《本草纲目》上记载红曲的“活血”功效的启示,从红曲营养液中分离出优良的6种含胆固醇抑制剂和甘油三酯分解剂的红曲菌,被命名为“莫纳可林”即“他汀类”,此后30多年来,红曲米提取的“他汀”被世界医学界公认为最好的降脂药,在临床上大量使用。
历史突破2002年,降压史上历史性突破----6种高纯度他汀+2种红曲调节素=“红曲酵素”2002年,震惊世界的生物领域重大发明,红曲中的降糖、降压、抗癌成分(GABA-GLUCOSAMINE)通过发酵提取,在原来6种高纯度他汀的基础上合成“红曲酵素(Monacolin-R),经大量的临床试验,这种复合酵素不仅保留了生物他丁的降脂功效,而且它的降血压效果堪比任何药物,《药日新闻》撰文品论,红曲酵素的出现,将开辟降压药新时代。
临床验证2008年,6年临床证实“红曲酵素”降血压、治心脑、防猝死、能停药随后的6年,5万名高血压患者临床运用证实:“红曲酵素”对调理器官微血循环、帮助血液进行重新分配,迅速降压,修复受损心脑肝肾作用显著。
而且“红曲酵素”降压同时、养心、护脑、清肝、活肾的功效,达到了降压药的顶峰。
“红曲酵素”也被世界医学界誉为“可以媲美青霉素的旷世发现”。
红曲酵素(Monacolin-R)不仅能彻底替代西药降压,而且无任何副作用,100%的一期高血压患者经过3个月治疗,就能做到终身不用服药;80%的二期高血压患者,经过半年的治疗,实现了血压平稳,治疗心脑疾病,防止心脑疾病恶化,5天服用1粒药;70%的三期高血压患者,经过1年的治疗,血压平稳,冠心病、心绞痛、心梗、脑梗、脑出血得到彻底康复,防止心脑猝死。
封口方式对红曲产洛伐他汀的影响

封口方式对红曲产洛伐他汀的影响
齐文武;陈晓云;郑世茂;庞欣
【期刊名称】《中国食物与营养》
【年(卷),期】2018(024)005
【摘要】目的:研究红曲发酵过程中通气性对洛伐他汀含量的影响.方法:通过对种子液培养基和固体培养基封口方式进行正交试验,利用HPLC方法测定发酵产物中洛伐他汀的含量,判断最适的封口组合方式.结果:当种子液培养基采用纱布或棉塞封口,固体培养基采用纱布封口,红曲中洛伐他汀的含量最高.所有处理条件下,无检出桔青霉素.结论:种子液培养基采用纱布或棉塞封口,固体培养基采用纱布封口时利于洛伐他汀的产生.
【总页数】3页(P35-37)
【作者】齐文武;陈晓云;郑世茂;庞欣
【作者单位】北京东方红航天生物技术股份有限公司空间诱变研究中心,北京101400;北京东方红航天生物技术股份有限公司空间诱变研究中心,北京101400;北京东方红航天生物技术股份有限公司空间诱变研究中心,北京101400;北京东方红航天生物技术股份有限公司空间诱变研究中心,北京101400
【正文语种】中文
【相关文献】
1.微量营养源对红曲霉产洛伐他汀开闭环组分的影响 [J], 黄颖颖;陆东和;杨成龙;陈慎
2.产洛伐他汀红曲菌的筛选及中药对其固态发酵的影响 [J], 车鑫;毛健;刘双平;周
志磊;薛景波
3.外加营养源对红曲霉固态发酵产莫纳可林K和洛伐他汀的影响 [J], 陈慎;黄颖颖;陆东和;杨成龙
4.发酵条件对红曲产洛伐他汀的影响 [J], 张江宁;丁卫英;杨春
5.米饭制作方式影响红曲菌产红曲色素 [J], 梅璐;郑春明;
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洛伐他汀颗粒生产工艺规程

洛伐他汀颗粒生产工艺规程洛伐他汀颗粒生产工艺规程一、工艺流程1. 原料准备:按照配方比例准备洛伐他汀的原料,包括洛伐他汀活性成分、载体和辅助材料。
2. 混合:将洛伐他汀活性成分、载体和辅助材料按照一定比例加入混合机中,并进行混合搅拌,以获得均匀的颗粒预混物。
3. 制粒:将颗粒预混物通过制粒机进行颗粒化处理,以获得所需的洛伐他汀颗粒。
4. 干燥:将制得的洛伐他汀颗粒进行干燥处理,除去水分,以提高颗粒的稳定性和保存性。
5. 筛分:将干燥的洛伐他汀颗粒进行筛分,去除不合格的颗粒,以保证产品的质量。
6. 包装:将合格的洛伐他汀颗粒按照一定的包装规格进行包装,以便于储存和销售。
二、操作规程1. 原料检验:进货的原料必须进行检验,包括洛伐他汀活性成分的纯度检测、辅助材料的质量检验等。
2. 设备准备:清洁生产设备,确保各种设备处于良好的工作状态,以保证生产的顺利进行。
3. 配料:按照配方比例,将洛伐他汀活性成分、载体和辅助材料准确称量,避免误差。
4. 混合搅拌:将称量好的原料放入混合机中,根据设定的工艺参数进行搅拌,搅拌时间和转速等需要严格控制。
5. 制粒:将搅拌好的预混物通过制粒机制粒,控制制粒速度、制粒温度和制粒时间,以确保颗粒的大小和形状符合要求。
6. 干燥处理:将制得的颗粒放入干燥设备中进行干燥处理,控制干燥温度和干燥时间,以保持颗粒的稳定性和湿度。
7. 筛分:将干燥好的颗粒进行筛分,去除不合格的颗粒,确保产品的质量合格。
8. 包装:将合格的洛伐他汀颗粒按规定的包装规格进行包装,充填充足,密封良好,标识清晰。
三、质量控制1. 原料检验:严格按照标准要求对洛伐他汀活性成分、载体和辅助材料进行检验,确保质量符合要求。
2. 工艺控制:严格控制各个工艺环节的参数,如混合搅拌时间、制粒速度、干燥温度等,以确保产品的质量稳定。
3. 检测检验:对生产过程中的关键环节进行抽样检测,如颗粒大小、颗粒形状、活性成分含量等,确保产品符合规格要求。
以红曲为原料保健食品中洛伐他汀的含量测定

以红曲为原料保健食品中洛伐他汀的含量测定目的建立以红曲为原料的保健食品中总洛伐他汀含量测定的方法。
方法用高效液相色谱法一次测定保健食品中两种结构形式洛伐他汀的总含量,色谱条件为:色谱柱(zorbax C18,4.6×250 mm,5 μm);流动相:甲醇-水-磷酸(385∶115∶0.14);检测波长:238 nm;流速:1.0 mL/min。
结果洛伐他汀在2.0~300 μg/mL范围内线性关系良好,r = 0.999 9;平均回收率为99.5%,RSD为0.57%(n = 9)。
结论该高效液相色谱法简单、灵敏、快速、准确,适用于以红曲为原料的保健食品中总洛伐他汀的含量测定。
标签:红曲;洛伐他汀;保健食品;高效液相色谱法红曲古称丹曲,最早发现于中国,已有一千多年的生产、应用历史,为红曲霉属真菌接种于蒸熟的大米上发酵而成的一种紫红色米曲,是纯天然的药食两种物质,被广泛用作食品着色剂、调味剂、红腐乳制造原料、肉类保存剂和药物。
红曲具有较好的降血脂[1-3]、降血压[4-5]作用,近年来成为保健食品的常用原料,其功效成分为洛伐他汀[6]。
国食药监许[2010]2号文件要求以红曲为原料的保健食品中的总洛伐他汀推荐量每日暂定不超过10 mg。
因红曲中洛伐他汀常以内酯(闭环)和酸式(开环)两种形式同时存在[7],而且在生产过程中温度不同,其比例有所不同,在检测过程中溶液的pH值和贮存时间对其比例也有明显的影响,此外洛伐他汀在体内以开环型与HMG-COA还原酶结合发挥药效,而内酯型洛伐他汀可在体内水解转化为开环型发挥药效,因而仅仅测定和控制产品中内酯型或开环型洛伐他汀成分不足以有效保证含红曲类产品的质量,为保证产品安全[8],本文报道了含红曲保健食品中总洛伐他汀的含量测定方法和条件。
1 仪器与试药1.1 仪器Agilent 1260液相色谱仪-泵(安捷伦);Agilent 1260DAD检测器(安捷伦);Agilent B.04.02化学工作站(安捷伦);KQ3200DB超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);QL-901涡旋混匀器(海门其林贝尔仪器制造有限公司);DT5-1离心机(北京时代北利有限公司)。
产洛伐他汀红曲菌的筛选及中药对其固态发酵的影响

产洛伐他汀红曲菌的筛选及中药对其固态发酵的影响车鑫;毛健;刘双平;周志磊;薛景波【期刊名称】《食品科学》【年(卷),期】2016(037)013【摘要】经洛伐他汀(Monacolin K)抗性平板筛选和固态发酵实验验证,从红曲分离源中得到一株产洛伐他汀能力最强的菌株,并命名为M2-1,发酵12 d后其洛伐他汀产量可达1.472 mg/g(以干基计)。
结合形态学特征和核糖体DNA内转录间隔区序列分析,将其鉴定为红色红曲菌(Monascus ruber)。
考察15种药食同源中药及其添加形式(药粉、药汁)对菌株M2-1固态发酵产洛伐他汀、色价等指标的影响,结果显示:陈皮粉、山楂粉、山楂汁、桑叶粉、丁香汁、黑胡椒汁、白芷粉制备药红曲效果最佳(P<0.05),其中陈皮粉红曲和山楂汁红曲的洛伐他汀和色价最高,分别为2.118 mg/g和320.12 U/g,分别较普通红曲提高43.89%和71.79%。
本研究发现多种中药能够促进红曲菌产洛伐他汀和红曲色素,为进一步提升传统红曲的药食两用功能提供了新的思路。
【总页数】6页(P114-119)【作者】车鑫;毛健;刘双平;周志磊;薛景波【作者单位】江南大学食品学院,江苏无锡 214122; 江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡 214122;江南大学食品学院,江苏无锡 214122; 江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡 214122; 国家黄酒工程技术研究中心,浙江绍兴 312000;江南大学食品学院,江苏无锡 214122; 江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡 214122; 国家黄酒工程技术研究中心,浙江绍兴 312000;江南大学食品学院,江苏无锡 214122; 江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡 214122; 国家黄酒工程技术研究中心,浙江绍兴 312000;江南大学食品学院,江苏无锡 214122; 江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡 214122【正文语种】中文【中图分类】TS201.3【相关文献】1.外加营养源对红曲霉固态发酵产莫纳可林K和洛伐他汀的影响 [J], 陈慎;黄颖颖;陆东和;杨成龙2.高产洛伐他汀红曲菌的筛选及菌种共酵对红曲固态发酵的影响 [J], 朱蕊;彭林;刘双平;韩笑;毛健3.温度对红曲菌以荞麦为基质固态发酵产色素的影响 [J], 熊小倩; 谌雪; 高梦祥4.丛毛红曲菌固态发酵山药产莫纳可林K的影响因素研究 [J], 覃学领;吴佩芝;余伊鑫;余翔;冯艳丽5.1株产洛伐他汀红曲菌的筛选和鉴定 [J], 黑利生;周红杰;秘鸣;卓婧;李亚莉因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
红曲霉接种获得他汀普洱茶的实验研究

红曲霉接种获得他汀普洱茶的实验研究谢知音;谢春生【摘要】目的:检测经红曲霉发酵的普洱茶中洛伐他汀、辛伐他汀的含量.方法:固体通风发酵法获得红曲霉后,接种于不同发酵阶段的普洱茶中,将制备得到普洱茶送交江南大学生物工程学院生物技术教育部重点实验室通过高效液相色谱法对有效物质的含量进行检测.结果:本实验的送检样品中含有较高含量的辛伐他汀.结论:红曲霉可以成功接种于普洱熟茶固态发酵过程中,并产生降脂的他汀类物质.【期刊名称】《河北医学》【年(卷),期】2013(019)010【总页数】2页(P1541-1542)【关键词】红曲霉;普洱茶;辛伐他汀;他汀类物质;降血脂【作者】谢知音;谢春生【作者单位】北京市昌平区中医医院皮肤科,北京,昌平,102200;北京利康绿色医药生物技术研究所,北京,昌平,102200【正文语种】中文云南普洱茶是中国特有茶类,以其降血脂、减肥、抗动脉硬化、防癌、抗癌等多种保健功能畅销国内外市场。
近年来国内外学者对其降脂功能在不同角度进行了研究。
2003年本研究所在普洱茶中检测出他汀类物质[1],并逐渐认识到他汀类物质的产生可能同参与普洱茶发酵的霉菌类微生物有关。
本实验将固体通风发酵法获得的红曲霉接种于普洱茶中。
在接种获得的普洱茶中检测出了辛伐他汀,并且研究发现其辛伐他汀的含量高于市售普洱茶。
1 材料与方法1.1 实验材料:本实验所采集普洱熟茶发酵阶段样均为云南大叶种晒青毛茶。
检测的普洱熟茶样品为市售普洱枣香砖10年样品。
实验菌红曲霉,来自北京利康绿色医药生物技术研究所。
1.2 研究方法1.2.1 制备他汀普洱茶:选择干净清洁的渥堆场所,无异味,无日光直射,室温保持在25℃左右,相对湿度在85%左右。
大叶种晒青毛茶1000kg,初揉后解散团块,堆在篾垫上,上盖湿布,并加覆盖物,以保湿保温,控制茶坯的含水量为55%左右,控制发酵堆温在60℃左右,促进化学变化。
在普洱茶渥堆发酵的第15天,将红曲霉冻干菌粉用蒸馏水稀释为其原重量的100倍后,按照菌液与干茶叶重量比约为1:1430的比例取出稀释后的菌液约0.7kg喷洒在茶坯上,翻堆使喷洒均匀,归堆,盖上覆盖物,此为第一次人工接种。
辛伐他汀酶法合成路线
辛伐他汀酶法合成路线辛伐他汀是一种广泛应用的抗高血脂药物,其合成路线经过辛巴法定律和酶法合成的两个关键步骤。
以下将为您详细介绍辛伐他汀酶法合成路线。
辛伐他汀(Simvastatin)是一种HMG-CoA Reductase抑制剂,可有效降低人体内的胆固醇合成量,从而对高血脂症和动脉粥样硬化等疾病有良好的治疗效果。
在辛伐他汀的酶法合成路线中,我们首先需要合成辛伐他汀的前体分子洛伐他汀(Lovastatin)。
洛伐他汀可以通过天然来源获取,例如通过霉菌Monascus purpureus发酵产生的红曲霉素。
然后,洛伐他汀经过一系列化学反应,包括醇提取和酸水解等步骤得到辛伐他汀。
在合成洛伐他汀的过程中,辛巴法定律发挥了重要作用。
辛巴法定律是辛伐他汀发酵产物洛伐他汀合酶提纯的关键原理,该定律表示当辛伐他汀合酶作用于洛伐他汀时,生成的诸多代谢物产生的平衡浓度与洛伐他汀的初始浓度成比例。
利用辛巴法定律,我们可以有效地提高辛伐他汀的产量和纯度。
另一个关键步骤是利用工程细菌表达革兰氏阳性菌双酮酸还原酶(KR)和麦芽糖酸取代酶(MAS)这两种辅酶A依赖性的酶。
这两种酶能够催化洛伐他汀和NADPH之间的还原反应,产生辛伐他汀。
辛伐他汀酶法合成路线的主要特点是利用酶催化反应,以替代传统的化学合成方法。
这不仅提高了产率和纯度,还减少了环境污染和废弃物排放。
此外,酶法合成还可以通过调控酶的表达水平和反应条件来实现对产物的选择性控制。
总之,辛伐他汀酶法合成路线是一种具有生动、全面和指导意义的方法。
它将合成药物的过程与微生物、酶学以及有机合成化学等学科紧密结合,为我们制备高效、高纯度的辛伐他汀提供了关键技术和方法。
未来,我们可以进一步探索和优化这种路线,以实现更加可持续和环保的制药工艺。
江南大学科技成果——微生物转化生产洛伐他汀中间体R-J6的关键技术
江南大学科技成果——微生物转化生产洛伐他汀中间体R-J6的关键技术成果简介他汀类药物(statins)是一类羟甲基戊二酰辅酶A(HMG-CoA)还原酶选择性抑制剂,能够降低血浆胆固醇和脂蛋白水平,是防治冠心病、脑中风、高血脂、动脉粥样硬化的首选用药。
目前工业化生产他汀类药物侧链关键中间体主要途径为化学合成法,此法反应步聚复杂,条件不易控制,所需手性试剂价格昂贵,污染严重,收率低。
而酶法催化生产他汀类药物侧链关键中间体具有工艺简单、周期短、耗能低、专一性强、收率高、提取方便等优点,因而受到越来越多的关注。
采用酶法合成瑞舒伐他汀钙侧链关键中间体,体现降耗环保的时代需求;采用非水相体系进行酶催化反应,解决了底物难溶的瓶颈问题。
技术指标添加60g/L的底物,转化60h,3-TBDMSO戊二酸单甲酯产量为51.3g/L,产品得率为85.5%,eeR为98.3%。
产品性能无副产物,纯度高。
创新要点构建可实现辅酶再生的双酶基因共表达重组菌株,对底物进行不对称还原,以实现手性催化。
效益分析根据目前技术水平,初步估算生产综合成本约20万元/吨,目前市场定价约为30万元/吨。
以100吨生产规模计算,毛利润可达1000万元/年。
应用情况他汀类药物(Statins)是一类羟甲基戊二酰辅酶A(HMG-CoA)还原酶选择性抑制剂,能够降低血浆胆固醇和脂蛋白水平,是防治冠心病、脑中风、高血脂、动脉粥样硬化的首选用药。
授权专利一种非水相催化制备(R)-3-取代戊二酸单烷基酯类化合物的CALB突变体,201510179543.9;一种酶法非水相催化合成(R)-3-TBDMSO戊二酸甲单酯及其衍生物,201410746816.9。
红曲米中洛伐他汀的提取与测定
广 东 化 工 2018年 第17期· 70 · 第45卷总第379期红曲米中洛伐他汀的提取与测定陈丽洁(巴音郭楞职业技术学院,新疆 库尔勒 841000)Extraction and Determination of Lovastatin in Red Kojic RiceChen Lijie(Bayingolin V ocational and Technical College ,Korla ,Xinjiang 841000, China )Abstract: Using the single-factor experiment, the process parameters of the extraction of lovastatin in red koji were optimized, and the optimal process conditions for the extraction of lovastatin were established: the material/liquid ratio was 1:50, 72% ethanol was used as the extraction solvent, the extraction time was 2.5h, and the extraction rate was over 85.9%.Keywords: Red kojic rice ;Lovastatin ;extract红曲既是中药,又是食品,被称为出色的“调脂降压师”。
红曲中所含的有效成分被认为是当前有发展潜力的降脂物质[1]。
本章将对唐人医药购买红曲中的洛伐他汀进行提取测定。
1 主要仪器与试剂1.1 主要试剂红曲样品,唐人医药,无水乙醇:分析纯,天津市福晨化学试剂厂。
1.2 实验仪器UV765紫外-可见分光光度计;DF-101S 恒温加热磁力搅拌器;DGG-101-1电热鼓风干燥箱;SBH-III 循环水式多用真空泵。
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红曲霉发酵生产Monacolin K的工程技术研究进展摘要:红曲的药用价值和保健功效日益引人关注,其中洛伐他汀作为红曲主要的调脂因子成为科研热点和红曲产业发展的重点。
概述红曲洛伐他汀的发现、用途、生产方法、提纯、检测方法、毒性物质问题以及生产现状进行综述。
关键词:红曲霉、洛伐他汀、检测、提取、桔霉素1.前言1.1 Monacolin K的发现及结构式Monacolin K是目前较好的降低人体血液中胆固醇的药剂,具有降胆醇、降血脂的作用,又叫洛伐他汀(lovastatin) ,存在于红曲霉及其它真菌如Pleurotus,Phoma,penicillium中。
生产所使用的菌种主要有两类:红曲霉和土曲霉,东方国家如日本及我国多采用红曲霉,欧美等国的研究多采用土曲霉川,最近几年,美国也开始意识到中国食品红曲中的药用价值。
其结构式为:分子式为C24H36O5,Mr为404。
1979年,日本学者远藤章首先从红色红曲霉菌Monascus ruber中发现某些能产生强力抑制胆固醇合成的活性物质,命名为Monacolin K, Monacolin K 类物质不仅可以降低胆固醇,而且对重症胆固醇血症患者也极为有效,特别是对导致动脉硬化最严重的低密度蛋白胆固醇有优先降低的作用,其中以Monacolin K抑制HMG一COA还原酶的活性最高川。
1980年,美国Albert等从土曲霉中发现了与Monacolin K相同的物质侧,命名为mevinolin,现称作洛伐他汀(Lovastatin)。
但是采用土曲霉发酵,菌株的安全性对下游工程的技术要求较高,因此提取收率较低。
由药用红曲霉制成的制剂具有较强的降血脂能力,副作用较低于Lovastatin制剂。
近些年来,我国开展了红曲霉降血脂生理活性物质的研究。
1.2 Monacolin K的基本性状见表1。
1.3Monacolin K抑制胆固醇合成的作用机理生物化学的研究表明,胆固醇合成的关键步骤是甲经戊酸的合成(见结构式)。
其中影响最大的是3一羟基一3甲基一戊二酰CoA〔HMG一CoA〕还原酶,它是胆固醇合成代谢中的限速酶,各种因素对胆固醇合成的调节主要是通过对HMCCoA还原酶活性的影响来实现的。
Monacolin K的空间结构与HMG一CoA的结构非常相似,且对HMG一CoA还原酶的亲和力比HMG一CoA强1万倍,所以它能竟争性地与IIMG一CoA还原酶结合,从而抑制胆固醇合成。
这类物质的浓度只要达到0.001一0.005μg/ml,胆固醇的合成就会受阻,即人体血液中含有MOnacolin K在1一5μg/L时会产生降低胆固醇功效阁。
成年人血液量为20L,所需Monacolin K有效剂量为100μg,若菌株MonacolinK发酵液含量为47.1μg/ml,服用3而发酵液即可满足要求[1]。
2.功能红曲的生产方法2.1固态发酵传统红曲生产工艺主要是以大米为固态培养基,接种红曲菌菌种后通过发酵生产红曲。
该方法工艺落后,劳动强度大,红曲产量低,质量不稳定,并且易受杂菌污染。
80 年代后,通风池法应用于红曲的生产,红曲产量和质量相对提高。
圆盘制曲机的应用实现了红曲的自动化生产,并提高了红曲质量,在一定程度上减少了杂菌污染。
传统红曲发酵工艺由于未能有效控制通风、温度、湿度等重要发酵条件,因此,所得红曲的色价和活性成分较低,且桔霉素污染严重。
刘昕[2]提出在固态发酵中,代谢产物Monacolin K 在红曲菌菌丝体生长后期的积累达到最大。
同时,由于淀粉质固态培养基料被红曲菌分泌的淀粉酶和糖化酶液化而出现基料通气环境恶化,菌丝体细胞壁被高渗透压葡萄糖液浸润,从而使其生长代谢出现变态反应,促使桔霉素的生成以抑制其它杂菌的生长。
因此他提出了一种通过调控红曲菌培养过程中的培养温度、湿度及通风量来抑制桔霉素生成的方法,所获得的功能性红曲中Monacolin K 含量高且未检测出桔霉素。
王立新等[3]认为固态发酵法较液体发酵法具有明显的优势。
在确定的实验条件下,固态发酵法所得的Monacolin K 产率为液体发酵法的20 倍以上。
因此在掌握固态发酵规律的基础上,设计合理的固态发酵反应系统,实现高效低耗的固态发酵生产,是功能性红曲产业化生产的有效途径。
同时,该研究表明固态发酵过程中物料的初始含水量以50%为宜。
含水量较高时,糖化酶活性增强,从而提高培养基料的糖化速率,不利于红曲中Monacolin K 的积累。
培养温度对促进红曲菌发酵过程中Monacolin K的生成十分重要。
恒温培养可获得比变温培养更高收率的菌体量和色素,而变温培养的Monacolin K 产量更高。
实验研究表明,在32°C 温度下培养9 d 后,将温度降至25°C 下培养14 d,则更有利于Monacolin K的积累[4]。
红曲为好气性菌,其菌丝体的生长和Monacolin K等次生代谢产物的产生都需要有足够的氧气。
因此,适宜的溶解氧水平是一个非常重要的参数,它直接影响红曲中Monacolin K 和桔霉素的含量。
提高通风量有利于菌体生成和Monacolin K 的产生,但同时桔霉素的含量也增加。
因此,在满足溶氧需求的情况下,可采用低通风量[5]。
固态发酵法是目前红曲生产中广泛采用的方法,具有投资少,产量大,生产经验丰富等优点。
现代固态发酵工艺的关键是控制发酵过程中菌种质量及物料含水量、通风量、培养温度及湿度等参数,通过现代技术优化和改造发酵工艺,可望有效生产富含活性成分Monacolin K 且不含桔霉素的功能性红曲。
2.2液态发酵液态发酵法发酵红曲主要以淀粉、葡萄糖、甘油、黄豆粉、玉米浆和蛋白胨等为培养基,采用常规标准深层发酵设备,如机械搅拌发酵罐等。
近年来开发的适宜于高粘度发酵体系的气升式反应器,将更加有利于发酵过程的进行。
液态发酵法培养基的碳源、氮源、初始pH 值及溶氧量等是关键的工艺控制参数。
碳源以甘油最好,葡萄糖次之。
有机氮源中肉膏和蛋白胨优于酵母膏,无机氮源则以NaNO3较好。
C/N 比值是十分重要的控制因素,它不仅影响前期菌丝体的生长,而且对后期代谢产物的形成和积累也非常重要。
实验结果表明,当C/N 比为5:33 时,Monacolin K 的产量较高[6]。
赵树欣等[4]认为培养基的初始pH值对Monacolin K的生成也有明显影响,当pH 为6.0~6.5 时最为适宜。
许赣荣等[7]对经过筛选低产桔霉素的一株红曲菌菌种进行液态发酵法培养,选用玉米淀粉和谷氨酸单钠盐为主要成分的培养液,所获得的红曲菌发酵液中桔霉素浓度低于1mg/ml。
此外,溶氧条件对红曲菌产生桔霉素的影响的研究结果表明,高溶氧对桔霉素的产生有促进作用。
Blanc 等[8]研究发现,在液态深层培养红曲的过程中添加6至18碳脂肪酸和甲基酮会影响红曲中桔霉素的生成,尤其是辛酸和2-三十碳酮可使桔霉素的生成量减少75%。
杨胜利等[9]研究发现,应用超声波技术可提高红曲菌发酵过程中Monacolin K 的产量。
正常情况下红曲菌落呈团状,氧和营养物质不易吸收,也不利于代谢产物的生成。
采用超声波处理可使菌丝体分散,甚至成为游离的单菌体,从而有利于菌体的代谢和活性物质的分泌。
同时,超声波处理还可降低发酵液的粘度,有利于氧气和营养物质的传递。
实验结果显示,当超声处理时间为 2 min 左右时其效果最佳,既不引起细胞死亡,又能显著提高Monacolin K 的产量。
液态发酵法所用基质的混合和扩散较为均匀,有利于氧气和其它营养成分的传递与扩散,且易于添加某些特定成分以抑制桔霉素的生成。
但目前国内采用液态深层发酵法生产的红曲发酵液中,Monacolin K含量较低且不稳定,甚至出现依靠添加由土霉素发酵获得的Monacolin K 或直接添加合成药物洛伐他丁来控制产量的现象。
因此,红曲的液态发酵工艺及产品质量控制需进一步加以规范。
3提取工艺国际上对洛伐他汀的首次报道来自A.Endo. 1976年,东京大学酵实验室的Akira Endo从泰国食品中分离出来Monascus菌株(Monascus-rubberNo.1005),经发酵产生洛伐他汀.其培养基组成为:6%葡萄糖、2.5%蛋白胨、0.5%玉米油、0.5%氯化氨.经28e需氧培养10 d,所得发酵液经处理可得到无色的洛伐他汀晶体.其提取工艺见图1.图1 最早的洛伐他汀提取工艺但该工艺多次采取溶媒萃取法,并大量使用有害溶媒,对劳动者及环境都会造成极大危害。
王健[10]等通过实验研究确定了从洛伐他汀发酵液中提取洛伐他汀的最佳工艺条件。
实验表明乙醇作为溶剂时,其最佳工艺条件: 浸提温度45℃,物料比5∶1(乙醇/mL∶菌丝/g),浸提时间4h,闭环温度80℃,闭环时间5h。
本工艺简便、收率高,适用于工业化生产。
周慧[11]等提出了采用超临界CO2流体萃取,95%乙醇超声洗涤纯化的方法。
通过实验确定优化萃取工艺为萃取压力25 MPa、萃取温度55 ℃、夹带剂用量2.0 mL·g-1、萃取时间100 min;优化纯化工艺为95%乙醇为洗涤溶剂,洗涤4次,每次用量2 mL·g-1,所得洛伐他汀纯度>98%。
该方法的优势在于摒弃了大量有机溶媒,仅使用乙醇一种溶剂,不会对人体及环境造成危害;工艺简便,省去了结晶与重结晶步骤;降低了成本,适合工业化生产的需求。
4洛伐他汀分析检测方法4.1 硅胶薄层层析法测定(TLC)毛宁等[12]通过实验发现,若用发酵滤液粗提浓缩物,最终提取结晶以及结晶剩下的滤液点样,用薄层层析检测结果几乎一致,因此只需对发酵滤液粗提的浓缩物进行薄层层析定量或定性检测。
TLC定性试验:取硅胶GH25420g,加0.5%CMC Na50ml,用铺板器铺成1mm厚,20cm×20cm的薄层板,室温晾干,105℃活化1h,置干燥器中备用。
展开剂:二氯甲烷:丙酮(9:1),称取固态样品5g,用100ml乙酸乙酯在索氏提取器上回流提取1h,提取液浓缩至5ml,取50μl点样,或直接取发酵滤液粗提浓缩物50μl点样,同时用Monacolin K 标准品(美国Merch公司)点样作对照,展开15cm,取出晾干,紫外灯下观察斑点位置。
Monacolin KRf值应为0.47,分别挖取与标准品相同Rf值的斑点和相同面积的空白硅胶作参照,置10ml具塞试管中,加乙酸乙酯5ml,剧烈振荡2min,2000r/min离心15min,取上清液低温蒸干,加5ml环已烷重新溶解,观察在200~300nm范围内的紫外吸收图谱,Monacolin K在231nm,238nm及247nm下有特征吸收峰。
TLC定量分析:精密称取标样适量,加乙酸乙酯配成1ml含10mg的溶液,精密吸取该液5,10,15,20,25μl点于薄层板上,展开,分别刮取Monacolin K斑点和相同面积的空白硅胶,按以上制成环乙烷溶液,在247nm下测定光密度。