小鼠胚胎操作分析
小鼠胚胎操作实验手册

小鼠胚胎操作实验手册小鼠胚胎操作实验手册目录1. 引言1.1 胚胎操作实验的意义1.2 实验前的准备工作2. 实验器材和试剂准备2.1 实验器材清单2.2 试剂准备和储存要点3. 小鼠胚胎操作步骤3.1 小鼠交配和胚胎收集3.2 胚胎培养和处理3.3 胚胎移植和植入3.4 胚胎标记和观察4. 数据记录和结果分析4.1 数据记录要点和格式4.2 结果分析和统计方法5. 安全注意事项和实验规范5.1 生物安全操作要求5.2 实验规范和伦理要求6. 实验故障排除和常见问题解决6.1 常见操作问题和解决方案6.2 实验故障排除建议7. 参考文献和扩展阅读7.1 相关研究文献推荐7.2 扩展阅读和资源推荐引言1.1 胚胎操作实验的意义胚胎操作实验是研究胚胎发育和基因功能的重要手段,通过对小鼠胚胎的操作和处理,可以揭示胚胎发育的机制和影响因素。
1.2 实验前的准备工作在进行胚胎操作实验之前,需要进行充分的准备工作,包括实验器材和试剂的准备、实验操作流程的熟悉、实验动物的选取和饲养等。
实验器材和试剂准备2.1 实验器材清单列举常用的器材和仪器,并说明其用途、规格和供应商信息,包括显微镜、离心机、培养皿、吸管、移液器等。
2.2 试剂准备和储存要点介绍常用的试剂,包括培养基、胚胎染色剂、抗体等,说明其配制方法、储存条件和稳定性要求。
小鼠胚胎操作步骤3.1 小鼠交配和胚胎收集阐述小鼠交配的方法和时间安排,以及胚胎的收集和处理步骤,包括解剖、体外培养和胚胎筛选等。
3.2 胚胎培养和处理详细描述胚胎的培养方法和处理步骤,如细胞培养、转染、基因敲除、基因表达等实验操作。
3.3 胚胎移植和植入介绍胚胎移植和植入的方法和注意事项,包括手术操作、不同器官的移植方式和移植成功率的评估等。
3.4 胚胎标记和观察说明如何对胚胎进行标记和观察,包括荧光染料标记、显微镜观察和胚胎发育阶段的划分等。
数据记录和结果分析4.1 数据记录要点和格式指导实验者如何记录实验过程中的数据和结果,包括实验条件、样本信息、实验数据和观察结果等,并规范化数据记录格式。
小鼠胚胎观察实验报告(3篇)

第1篇一、实验背景随着生物科学技术的不断发展,基因编辑技术、细胞培养技术等在胚胎研究中的应用日益广泛。
本研究旨在通过观察小鼠胚胎发育过程,了解胚胎的形态变化、细胞分裂、器官形成等关键阶段,为进一步研究胚胎发育机制提供实验依据。
二、实验目的1. 观察小鼠胚胎发育过程中的形态变化。
2. 研究胚胎细胞分裂、器官形成等关键阶段。
3. 探讨胚胎发育过程中基因表达和调控机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:小鼠胚胎、小鼠母体、培养皿、解剖显微镜、显微镜、载玻片、盖玻片、生理盐水、DAB染色剂、苏木精染色剂、酒精、盐酸、显微镜切片机等。
2. 实验仪器:解剖显微镜、显微镜、载玻片、盖玻片、显微镜切片机、恒温培养箱、显微镜切片机、图像采集系统等。
四、实验方法1. 实验分组:将实验分为对照组和实验组,对照组为正常小鼠胚胎,实验组为基因编辑小鼠胚胎。
2. 胚胎采集:在胚胎发育的第3天,采集对照组和实验组小鼠胚胎。
3. 胚胎观察:将采集的胚胎放置于载玻片上,使用解剖显微镜观察胚胎的整体形态变化。
4. 细胞分裂观察:将胚胎切片,使用显微镜观察细胞分裂情况。
5. 器官形成观察:将胚胎切片,使用显微镜观察器官形成情况。
6. 基因表达分析:使用实时荧光定量PCR技术检测胚胎中关键基因的表达水平。
五、实验结果与分析1. 胚胎形态变化:与对照组相比,实验组小鼠胚胎形态变化不明显,整体发育状况良好。
2. 细胞分裂:实验组小鼠胚胎细胞分裂速度与对照组相似,无显著差异。
3. 器官形成:实验组小鼠胚胎器官形成情况与对照组相似,无显著差异。
4. 基因表达:实验组小鼠胚胎中关键基因的表达水平与对照组相似,无显著差异。
六、实验结论1. 本研究成功观察了小鼠胚胎发育过程中的形态变化、细胞分裂、器官形成等关键阶段。
2. 实验结果表明,基因编辑技术对小鼠胚胎发育无明显影响,为后续研究胚胎发育机制提供了实验依据。
七、实验讨论1. 本实验通过观察小鼠胚胎发育过程,揭示了胚胎发育过程中形态变化、细胞分裂、器官形成等关键阶段。
小鼠胚胎操作分析

2.卵子发生的过程
第四节 排卵
1.排卵的过程 • 少数卵泡在FSH的刺激下,积累液体,体积膨胀,向卵巢外周移动,为卵母细胞最后的成熟和排放做好准备
• 卵母细胞在LH的刺激下,发生核的成熟,即:细胞核失去核膜,染色体组装在纺锤体中 ,向细胞外周移动, 完成第一次减数分裂
. 第一次减数分裂后的阻滞时期,卵母细胞最终从卵泡中排放出来,知道受精以后,才能刺激第二次减数分裂
即将排除的卵子
第五节 受精
1.精子的获能:精子进入输卵管壶腹部以后,经过一段时间的成熟,获得了受精的能力。精子获能后将穿透卵丘 团和透明带,达到卵母细胞表面
2.顶体反应:顶体是覆盖于精子头部细胞核前方、介于核与质膜间的囊状细胞器。顶体与精子头部质膜融合,释 放出各种水解酶,称之为顶体反应
3.受精:精子头后区与卵母细胞膜的融合促进了一系列反映的级联发生,称之为受精 4.透明带反映:受精后,卵母细胞表面发生阻止后来精子入卵的变化,这有助于阻止多精受精的发生
15dpc
7~9mm,后肢 板
16dpc
12 17~20mm
18dpc 19.5~22.5mm
19dpc 23~27mm
第一节 生殖细胞系的起源
1
PGC起源于临近前原条期胚胎表胚层区域
2
在7.0dpc可以在原肠期的后羊膜褶区域检测到PGC
3 在10.5dpc-11.5dpc,PGC到达生殖嵴
1.神经嵴是起源于神经管背侧、神经上皮和表皮外胚层连接部的一个临时细胞群体。神经嵴细胞以单细胞形式进 行广泛的迁移,从神经管迁移到背部和腹部的很多部位,并同时分化为多种细胞类型
2.它们的衍生物包括肾上腺髓质细胞、骨和软骨、黑色素细胞、神经胶质细胞和雪旺细胞,以及不同类型的神经 元
小鼠胚胎获得实验报告

一、实验目的1. 掌握小鼠胚胎的采集方法。
2. 了解小鼠胚胎的发育过程。
3. 培养实验操作技能。
二、实验原理小鼠胚胎的获得是通过人工操作,将雌鼠的受精卵取出,进行体外培养,直至发育成胚胎。
该实验旨在研究小鼠胚胎的发育过程,为后续的胚胎移植、基因编辑等研究提供基础。
三、实验材料1. 实验动物:雌性小鼠、雄性小鼠2. 实验仪器:显微镜、解剖显微镜、培养箱、离心机、培养皿、手术器械等3. 实验试剂:生理盐水、DEPC水、培养液、抗凝剂、消毒剂等四、实验步骤1. 实验动物处理(1)将雌性小鼠和雄性小鼠分别饲养于清洁、通风的动物房中,保持适宜的饲养条件。
(2)雌性小鼠和雄性小鼠分别进行交配,交配后观察雌性小鼠的阴道涂片,确认受精情况。
2. 胚胎采集(1)雌性小鼠交配后第2天,用解剖显微镜观察雌性小鼠的阴道涂片,确认受精情况。
(2)雌性小鼠交配后第3天,将雌性小鼠麻醉,固定于解剖显微镜下。
(3)用手术器械取出雌性小鼠的子宫,置于培养皿中。
(4)在解剖显微镜下,用镊子取出受精卵,置于培养皿中。
3. 胚胎培养(1)将受精卵放入培养箱中,在37℃、5%CO2、95%空气的条件下培养。
(2)观察受精卵的发育过程,记录胚胎的形态变化。
4. 实验结果分析(1)观察胚胎的发育过程,记录胚胎的形态变化。
(2)分析胚胎发育过程中各阶段的形态特征。
五、实验结果1. 胚胎发育过程(1)受精卵在培养箱中培养24小时后,可见胚胎开始分裂。
(2)培养24小时后,胚胎发育至桑椹胚阶段。
(3)培养48小时后,胚胎发育至囊胚阶段。
(4)培养72小时后,胚胎发育至原肠胚阶段。
2. 胚胎形态特征(1)受精卵:透明、圆形,直径约100μm。
(2)桑椹胚:细胞数目增多,排列紧密,形成桑椹状。
(3)囊胚:细胞分化明显,形成囊胚腔。
(4)原肠胚:细胞分化更加明显,形成原肠。
六、实验结论1. 通过人工操作,成功获得小鼠胚胎。
2. 小鼠胚胎在体外培养过程中,经历了受精卵、桑椹胚、囊胚、原肠胚等阶段。
组胚实验报告总结(3篇)

第1篇一、实验背景组胚学是研究生物体结构和发育规律的一门学科,通过观察和研究胚胎的发育过程,可以了解生物体的生长发育规律和细胞分化的机制。
本实验旨在通过观察小鼠胚胎的发育过程,了解胚胎的早期发育规律,掌握组胚学的基本实验操作。
二、实验目的1. 观察小鼠胚胎的发育过程,了解胚胎的早期发育规律。
2. 掌握组胚学的基本实验操作,包括取材、固定、染色、切片、观察等。
3. 熟悉显微镜的使用,提高观察和分析能力。
三、实验原理1. 胚胎发育过程中,细胞不断分裂、分化,形成各种组织和器官。
2. 通过观察胚胎的发育过程,可以了解细胞分化和组织形成的基本规律。
3. 实验过程中,通过取材、固定、染色、切片等操作,可以观察到胚胎的各个发育阶段。
四、实验材料1. 实验动物:小鼠2. 实验试剂:固定液、染色液、切片液等3. 实验仪器:显微镜、解剖镜、手术刀、镊子、剪刀等五、实验步骤1. 取材:在无菌条件下,取小鼠胚胎,放入固定液中固定。
2. 染色:将固定好的胚胎进行染色,常用的染色方法有HE染色、苏木精-伊红染色等。
3. 切片:将染色后的胚胎进行切片,切片厚度一般为5-10微米。
4. 观察:在显微镜下观察胚胎的各个发育阶段,包括卵裂期、囊胚期、原肠胚期等。
六、实验结果与分析1. 卵裂期:在卵裂期,胚胎细胞不断分裂,形成多个细胞。
此时,胚胎细胞形态相似,大小基本一致。
2. 囊胚期:在囊胚期,胚胎细胞开始分化,形成内细胞团和外细胞团。
内细胞团将发育成胚胎本身,外细胞团将发育成滋养层。
3. 原肠胚期:在原肠胚期,胚胎细胞进一步分化,形成三个胚层:外胚层、中胚层和内胚层。
这三个胚层将发育成各种组织和器官。
七、实验讨论1. 通过本实验,我们了解了小鼠胚胎的早期发育规律,掌握了组胚学的基本实验操作。
2. 在实验过程中,我们遇到了一些问题,如取材困难、染色不均匀等。
这些问题提示我们在实验过程中要细心操作,确保实验结果的准确性。
3. 实验结果表明,胚胎发育过程中,细胞不断分裂、分化,形成各种组织和器官。
小鼠胚胎干细胞培养实验步骤

小鼠胚胎干细胞培养实验步骤小鼠胚胎干细胞(Embryonic Stem Cells,ESCs)是一类在小鼠早期胚胎内分化产生的多能干细胞。
培养和研究ESC可以为了解细胞发育和分化提供重要的实验材料。
下面将为您介绍小鼠胚胎干细胞培养的一般步骤。
一、准备实验所需材料和器械:1.小鼠胚胎干细胞系(ES细胞系)。
2.ESC培养基:一般使用含有LIF(鼠胚性干细胞生长因子)的培养基,如DMEM/F12或DMEM培养基,添加血清、LIF等。
3.ESC传代培养基:与ESC培养基相同,但不含LIF。
4.ESC学习培养基:免LIF和血清的无血清培养基,可以用于学习ES细胞的分化能力。
5. ESC传递板(T25细胞培养板、10 cm细胞培养板等)。
6.培养皿:培养皿的选择可以根据不同的实验目的选用,如离体实验可以选择培养皿或培养碟等。
7.显微镜:用于观察和鉴定细胞形态。
8.细胞培养箱:用于多肽瓶、培养皿等细胞培养。
9.无菌注射器、移液器、离心管等常见实验器材,以及媒液和试剂。
二、实验步骤:1.将小鼠胚胎干细胞系解冻至细胞存储液解冻的方法,迅速转移到预先加热培养皿中。
添加完整的ESC培养基,将细胞孵育在37℃、5%CO2的培养箱中。
2.每两天更换一次ESC培养基,观察细胞的形态和生长情况。
当细胞接近80%的密度时,可以进行传代。
3.小鼠胚胎干细胞的传代通常采用机械法和酶解法两种方法。
机械法是直接使用离心管头吸吸细胞,然后用超声波吹散细胞,最后转入新的培养皿中。
酶解法则是先用胰酶等酶溶解细胞,形成单细胞悬液,然后接种入新的培养皿中。
4.传代完成后,继续在37℃、5%CO2的培养箱中培养细胞,并定期更换培养基。
5.ESC的分化实验通常采用去除LIF和血清的无血清培养基。
将小鼠胚胎干细胞移到含有学习培养基的培养皿中,观察和记录细胞的分化情况。
6.对于特定的实验要求,如体外器官培养、离体实验等,可以将小鼠胚胎干细胞移至特定的培养皿或装置中,进行相关实验。
小鼠胚胎干细胞的鉴定

小鼠胚胎干细胞的鉴定小鼠ES细胞的鉴定主要围绕ES细胞的形态、核型、分化潜能和特异性染色等方面进行。
一、形态学观察小鼠ES细胞的形态特点为圆形或扁圆形,表面平滑,体积较小,核质比大,有一个或多个凸起的核仁结构。
经培养后紧密聚集,细胞之间界限不清,形成岛状,巢状群体生长状态,集落边缘整齐,与滋养层细胞界限分明且色泽深亮,克隆的边缘可以看到比较清晰的单个细胞。
多次传代消化或改变培养基的成分,如降低血清浓度、去除LIF或碱性FGF等某些生长因子时,悬浮培养形成的细胞团开始出现松散,球形的边缘可以清楚地看到圆而大的细胞,细胞团开始自分化。
二、核型分析正常的二倍体核型特征是ES细胞全能性的基础,因此需要对所建立的ES细胞系的核型进行鉴定分析。
【实验材料】1.材料载玻片、镊子、离心管、移液管、吸管、35mm 培养皿(Corning,430165)。
2.试剂Demecolcine(Sigma,D6165)、Giemsa(Sigma,G4507)、NaH2 PO4(Sigma,S6566)、Na2HPO4(Sigma,S5136)、甲醇、冰醋酸。
配制类试剂:①磷酸缓冲液:0.2mol/L NaH2PO4+0.2mol/L Na2 HPO4;②Giemsa染液:8ml磷酸缓冲液+2ml Giemsa贮存液,吹吸混匀;③固定液:甲醇∶冰醋酸=3∶1(现用现配)。
【实验步骤】1.将需要做核型分析的ES传代,通常用一个35mm皿的细胞做核型,在传代后25~40小时向培养皿中加入0.2µg/ml democolcin,继续培养1~2小时。
2.取出培养皿,用标准传代的消化方法将其消化成单细胞悬液,1200r/min离心10分钟,弃上清,注意:上清要吸得彻底些。
3.加入事先预热至37℃的0.56%KCl低渗液4ml,用滴管吹打成单细胞悬液(较剧烈),37℃低渗处理15~20分钟。
4.配10ml固定液,4℃冰箱预冷。
小鼠胚胎干细胞培养实验步骤

细胞的原代培养点击次数:540 作者:佚名发表于:2009-03-06 16:26转载请注明来自丁香园一、原代细胞培养原理原代细胞培养是将机体内的某组织取出,分散成单细胞,在人工条件下培养使其生存并不断生长、繁殖的方法。
借助这种方法可以观察细胞的分裂繁殖、细胞的接触抑制以及细胞的衰老、死亡等生命现象。
• 幼稚状态的组织和细胞,如:动物的胚胎、幼仔的脏器等更容易进行原代培养• 掌握无菌操作技术• 了解小鼠解剖操作技术• 了解原代细胞培养的一般方法与步骤•了解培养细胞的消化分散• 了解倒置显微镜的使用二、实验材料• 实验动物:孕鼠或新生小鼠• 液体:细胞生长液(内含20%小牛血清)0.25%胰蛋白酶平衡盐溶液70%乙醇•器材:灭菌镊子、剪刀若干把灭菌培养皿、细胞培养瓶、小瓶、烧杯若干个吸管若干支酒精灯原代细胞培养方法三、胰酶消化法(1)胰酶消化法操作步骤——取材a. 用颈椎脱位法使孕鼠迅速死亡。
b. 把整个孕鼠浸入盛有75%乙醇的烧杯中数秒钟消毒,取出后放在大平皿中携入超净台。
c. 用无菌的镊子和剪子在前腿下作一腹部水平切口,用无菌镊子将皮肤扯向后腿。
d. 用另一无菌的剪刀和镊子切开腹部,取出含有胚胎的子宫,置于无菌的培养皿上。
e. 剔除胚胎周围的包膜(若胚胎较大,应剪去头、爪),将胚胎放于无菌的含有平衡盐溶液的培养皿中。
f. 漂洗胚胎,去掉平衡盐溶液。
继续用平衡盐溶液漂洗胚胎直至清洗液清亮为止。
(2)胰酶消化法操作步骤——切割a. 将部分胚胎转移至一个无菌小瓶中,用平衡盐溶液漂洗。
b. 然后用眼科手术剪刀小心地绞碎胚胎,直到成1mm3左右的小块,再用平衡盐溶液清洗,洗到组织块发白为止。
c. 静置,使组织块自然沉淀到管底,弃去上清。
(3)胰酶消化法操作步骤——消化、接种培养a. 视组织块量加入5-6倍的0.25%胰酶液,37℃中消化20-40分钟,每隔5分钟振荡一次,或用吸管吹打一次,使细胞分离。
b. 加入3-5ml细胞生长液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制剂)。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
14dpc
11~12m m
15dpc
12~14m m
16dpc
14~17m m
17dpc
17~20m m
18dpc
19.5~22. 5mm
19dpc
23~27m m
第一节 生殖细胞系的起源
1 PGC起源于临近前原条期胚胎表胚层区域 2 在7.0dpc 可以在原肠期的后羊膜褶区域检测到 PGC 3 在10.5dpc-11.5dpc ,PGC到达生殖嵴 4 13.0dpc ,每个生殖嵴原基中约有25000个PGC
最后,一些滋养外胚层细胞继续穿入子宫内膜,形成胎盘 的主体,一些胎盘细胞和绒毛膜细胞也变为多倍体
极滋养外胚层
原始内胚层 壁滋养外胚层
4.5dpc时的胚胎
第九节 原始内胚层和外胚层的分化
1. 原始内胚层首先出现在无极性的内细胞团表面, 而剩下的内细胞团核心细胞形成原始外胚层细胞
2. 原始内胚层细胞并不形成胚胎的内胚层组织,而 是只形成卵黄囊的胚外侧壁内胚层和脏内胚层
9dpc
13~20体 节
7.5dpc
晚原条 期
8dpc
1~7体节
9.5dpc
21~29体 节
10dpc
30~34体 节;后肢 芽在第 23~28体 节段出现
10.5dpc
35~39体 节,尾
基
13dpc
9~10mm, 毛基
11.0dpc
11.5dpc
12dpc
40~44体 节
6~7mm, 前肢板
7~9mm, 后肢板
? 少数卵泡在FSH的刺激下,积累液体,体积膨胀,向卵巢外 周移动,为卵母细胞最后的成熟和排放做好准备
? 卵母细胞在LH的刺激下,发生核的成熟,即:细胞核失去 核膜,染色体组装在纺锤体中 ,向细胞外周移动,完成第 一次减数分裂
. 第一次减数分裂后的阻滞时期,卵母细胞最终从卵泡中
排放出来,知道受精以后,才能刺激第二次减数分裂
2.精子发生的过程
第三节 卵子发生
1. 卵子发生的特点 (1) 在第一次减数分裂前,卵母细胞会在双线
期停滞很长时间
(2) 11.5dpc的卵母细胞中,只有一条染色体是
有活性的,但是到了12.5dpc,两条都变得活跃
(3) 卵母细胞的基因组去甲基化程度高
2.卵子发生的过程
第四节 排卵
1.排卵的过程
4.透明带反映:受精后,卵母细胞表面发生阻止后 来精子入卵的变化,这有助于阻止多精受精的发 生
第六节 胚胎的早期发育
1.卵裂:卵子受精后形成受精卵,受精卵发生核膜 解 体,染色体重组等变化后,开始发生卵裂。 卵裂所产生的细胞称为卵裂球,每个卵裂秋都具 有全能性
2.桑葚胚: 3次卵裂后的胚胎,各卵裂球相互靠近, 形成一个紧密的细胞球,这样的细胞球称为桑葚 胚。桑葚胚内部的细胞与外界环境隔开,可以起 到稳定细胞球的作用
第八节 滋养外胚层及其衍生物
1. 滋养外胚层:胚胎在植入子宫后,滋养外胚层不 再维持单层上皮状态,而是在形态学和生长潜能 上发生区域性的分化
2. 壁滋养外胚层:起源于围绕胚泡腔的细胞,这些 细胞停止分裂,体积变大,形成含有 1000 倍于单 倍体DNA 的多线染色体,他们也被称为初级滋养 层巨细胞
5 进入生殖嵴后,PGC继续发育,最终形成精子和卵子
PGC的大致迁移路径
起源
7.0dpc
接下来
8.0dpc
表
羊
胚
膜
层
褶
尿 囊 基 部
后 肠 上 皮
11.0dpc
生 殖 嵴
12.5dpc
雄性
睾 丸
雌性 卵 巢
第二节 精子发生
1. 精子发生的特点
(1) 精子发生是连续同步和空间有序分化的 (2) 精子发生依赖干细胞群体,这种干细胞群体 具有自我更新和产生后代为精子的能力 (3) Y 染色体在精子发生过程中,对性别决定起 着 十分重要的作用
3. 极滋养外胚层:胚胎植入子宫后,极滋养外层向 着多个方向扩展
首先,一些细胞围绕胚胎迁移,取代初级壁滋养层巨细胞, 并且它们也成为多倍体
然后,极滋养外胚层形成一个指状突起,穿入胚泡腔,形 成原肠期以前的胚外外胚层,并把ICM衍生物推向它的前 方,这个突起发育成中心腔并形成上皮。胚外中胚层形成 以后,胚外外胚层向胎盘退缩,在那里形成绒毛膜
小鼠发育须知的数据
实验室用的一些欧洲家养小鼠的一些重要的统计数据
妊娠时间 19~20d
断奶时间 3周
性成熟时间 约6周
大约的体重
实验室的寿 命 平均的窝仔 数 每个繁殖雌 鼠所产的窝 仔数
出生时:1g 雌性) 1.5~2.5年
约6~8
4~8
断奶时:8—12g
成熟时:30—40g(雄性﹥
0~1dpc
即将排除的卵子
第五节 受精
1. 精子的获能:精子进入输卵管壶腹部以后,经过 一段时间的成熟,获得了受精的能力。精子获能 后将穿透卵丘团和透明带,达到卵母细胞表面
2.顶体反应:顶体是覆盖于精子头部细胞核前方、 介于核与质膜间的囊状细胞器。顶体与精子头部 质膜融合,释放出各种水解酶,称之为顶体反应
3.受精:精子头后区与卵母细胞膜的融合促进了一 系列反映的级联发生,称之为受精
3.囊胚的形成:桑葚胚形成后,卵裂球分泌的液体 聚集在细胞间隙,最后在胚胎的中央形成一个充 满液体的腔,这个腔称为囊胚腔。随着囊胚腔的 扩张,细胞的分化逐渐明显:小而分裂活跃的细 胞聚集在外周,形成胚胎外层,继而成为滋养层 ;大而分裂慢的细胞聚集在内侧,称为内细胞团 。此时的胚胎称为囊胚
胚胎的早期发育
卵裂开始 卵 裂 球
8细胞期以后 桑 葚 胚
16细胞期以后
滋外侧养 外来自胚囊层
胚
内侧
内
细
胞
团
第七节 胚胎植入子宫
1. 在5.0dpc 时,滋养层细胞合成的蛋白酶消化透明 带,使胚泡从透明带中孵化出来,为附植做好准 备
2.在胚胎植入时,子宫壁紧密闭合,使子宫腔密闭 ,子宫上皮表面也发生变化,使之接受胚泡的附 植。胚泡通过胚胎对侧极附着到子宫系膜对侧的 子宫壁上。胚泡植入子宫大致的分布受到子宫蠕 动的影响
3 原始外胚层细胞系形成胚胎的外胚层,中胚层,内 胚层组织,生殖细胞以及胚外膜和胚胎的中胚层 成分
第一章 小鼠发育概要
1dpc
2dpc
1-细胞 合子
2-细胞 胚胎
桑葚胚 4~16细
胞
4dpc
4.5dpc
5dpc
孵化胚 胎,无 透明带
植入胚 胎
前原条 期
3dpc
桑葚胚 ~胚泡
6dpc
原始外 胚层中 形成前 羊膜腔
6.5dpc
形成形 态明显 的胚胎
轴
8.5dpc
8~12体 节,胚 胎旋转
7dpc
早-中原 条期