原生质体制备和再生的影响因素
松茸原生质体制备与再生的研究

生 产 的溶 壁 酶 是 除去 真 菌 细 胞 壁 的 复合 酶 . 独 使 用 能 获 得 单
一
1 12 培 养基 D 体培养 基 ( )淀 粉 2 酒 石酸 锰 c2 .. 液 : . 1. _
KH PD 2.M g O{ ・ 7 O0 5 O S H .0 .Na CO . 】 e O ・ ? 0 .F S
维普资讯 http://www.cqvip.cபைடு நூலகம்m
E D lLE FUN G】 J
松 茸原 生质体制备与再生的研究
王j 扭珍 高 雁 范 俊
( 1 L海 师 范 大 学 命 与环 境 科 学 学 院 .0 2 4 E 20 3 ;
自 晨。
¨大 学 生 命 科 学 学 院
寰 2 酶 解 时间 对 橙 茸 原 生 质 体 制 蕾 事 与 再 生军 的影 响
7 0( 0 1 生 长 因 子 0 00 .H6O 圆 固 体 培 养 基 加 I2 H 1 0 . . .0 9 p : . 琼脂 ; - 鞠再生 固 体 培 养 基 加 相 应 诛 度 及种 类 的 渗 透 压 稳定 剂
l 】 3 醇 制 荆 一 溶 壁 酶 (.wa z me ( 东 } . ∞ 1 y [y ) 广 ] 彀生 物 研 究
直 々
所 ) t 溃酶 ( r eae ( l ; 崩 2 D & Js )F UKA 公 司 ) ; 1 】4 渗 透 压 稳 定 荆 甘 露 醇 ( 析 纯 ) 蔗 糖 . IMg O 。 .. 分 . KC , S
定基 础
1 5 ±I J 3 — l ±【 。 8 I 2
注 : l肚 在 3 表 0【.H6 p . 解 l { 纯 化 原 - 体 的 结 h井 厦
原生质体培养名词解释

原生质体培养名词解释原生质体培养是一种常用的植物组织培养技术,用于繁殖植物和研究植物基因转化等问题。
本文将介绍原生质体培养的定义、原理和应用等方面的名词解释。
下面是本店铺为大家精心编写的4篇《原生质体培养名词解释》,供大家借鉴与参考,希望对大家有所帮助。
《原生质体培养名词解释》篇11. 原生质体(Protoplast)原生质体是指从植物细胞中除去细胞壁后剩余的细胞质部分,包括细胞膜、质体、线粒体、质体小体、微管和微丝等细胞器。
原生质体是一个高度液态的细胞质体系,其形态和功能类似于一个微小的细胞。
原生质体可以通过融合实现远缘杂交,从而扩大植物遗传资源的利用范围。
2. 原生质体培养(Protoplast Culture)原生质体培养是指将离体的植物原生质体在适当的培养基上进行培养,以获得再生的植物组织或细胞。
原生质体培养的主要目的是通过原生质体的融合,克服远缘杂交障碍,实现植物遗传资源的利用和改良。
3. 原生质体融合(Protoplast Fusion)原生质体融合是指两个或多个原生质体合并成一个细胞的过程。
原生质体融合可以通过电激、化学处理或生物方法等手段诱导。
融合后的细胞称为杂种细胞,可以用于植物遗传资源的利用和改良。
4. 再生(Regeneration)再生是指通过培养技术,使离体的植物组织或细胞重新分化、再生为新的植株或组织。
再生是原生质体培养的重要应用之一,也是植物组织培养技术的基础。
5. 遗传转化(Genetic Transformation)遗传转化是指将外源基因或基因组导入植物细胞内,并使其表达的过程。
遗传转化是植物基因工程的重要组成部分,也是原生质体培养的应用之一。
通过原生质体培养技术,可以将目的基因导入植物细胞内,并实现植物的遗传转化。
6. 植物组织培养(Plant Tissue Culture)植物组织培养是指将离体的植物组织或细胞在适当的培养基上进行培养,以获得再生的植物组织或细胞。
植物原生质体的细胞壁再生

中国细胞生物学学报 Chinese Journal of Cell Biology2021,43(1): 134-143DOI: 10.11844/cjcb.2021.01.0017植物原生质体的细胞壁再生何其邹洪>,2鄂一岚K2王广超张贵芳1林金星李瑞丽G北京林业大学林木分子设计育种高精尖创新中心,北京100083;2北京林业大学生物科学与技术学院,林木育种国家工程实验室,北京100083)摘要 细胞壁作为植物细胞重要的组成部分,在决定细胞形状、维持机械支撑、吸收养分等方面发挥重要功能。
因此,揭示植物细胞壁合成的调控机制具有重大的生物学意义。
基于植物组织水平研究细胞壁的生物合成具有难以控制时间尺度、观察空间狭小等局限性。
原生质体作为去除细胞壁的单个细胞是研究细胞壁再生的理想系统。
在过去的几十年里报道了大量关于植物原生质体再生细胞壁的研究,但是关于细胞壁再生的机制尚不清楚。
该综述介绍了目前应用于植物原生质体再生细胞壁研究的主要技术和取得的研究进展,并且对该领域的后续发展进行了展望,为进一步阐明植物细胞壁生物合成的机制提供理论参考。
关键词植物;细胞壁再生;原生质体;细胞壁成像;原生质体培养Cell Wall Regeneration of Plant ProtoplastH E Q iz o u h o n g12, E Y ila n1,2, W A N G G u an gch ao12, Z H A N G G u ifa n g1, L IN J in x in g1,2, LI R u ili1,2**Beijing Advanced Innovation Center f or Tree Breeding by Molecular Design, Beijing J 00083, China; 2National Engineering Laboratory f or Tree Breeding, College o f B iological Sciences and Technology, Beijing Forestry University, Beijing 100083, China)Abstract C ell w all, as a significant com ponent o f plant cell, is essen tial for determ ining cell shape, m aintaining m echanical support, and absorbing nutrients o f plants. Thus, it is o f great b iological significance to reveal the regulatory m echan ism o f plant cell w all biosynth esis. Studying cell w all b iosyn th esis based on organizational lev els has great lim itations in term s o f controlling the tim e scale and narrow observation space. Protoplast is an ideal m odel sy stem for studying cell w all regeneration w ith cell w all rem oved. O ver the past few d ecad es, a large num ber o f studies o n cell w all regeneration from plant protoplast h ave been reported. H o w ev er the m echanism u nderlying this proce ss is yet unclear. T his rev iew introduces the primary techniques and research progresses applied to the study o f plant ce ll w all regeneration in protoplast and u n veils a p rospective advances o f this field, providing theoretical reference for further clarifyin g the m echan ism o f cell w all biosynthesis.K e y w o r d s plant; ce ll w all regeneration; protoplast; c e ll w a ll im agin g; protoplast culture植物的细胞壁是其区别于动物细胞所具有的 以及响应生物和非生物胁迫等方面发挥重要的生 特征结构之一,其组成和动态结构在决定细胞形物学功能[1]。
原生质体融合育种

(二)原生质体融合的影响因素 1、融合剂 电场融合的优点: 适于动植物、微生物细胞;融合频率高 可在显微镜下观察
(二)原生质体融合的影响因素
1、融合剂
2、温度 20~30℃
3、亲株的亲和力和原生质体的活性
4、无机离子
PEG介导融合 钙离子、镁离子
电场融合
糖或糖醇
四、融合体再生 复原: 再生培养基 细胞壁重建 形成菌落 P239 图9.8
第五节 酵母菌原生质体融合育种 一、酵母细胞壁结构和遗传标记 菌龄对原生质体形成影响大 亲本灭火的方法:紫外线
热 药物
第五节 酵母菌原生质体融合育种 一、酵母原生质体制备 p259 预处理:EDTA;巯基乙醇
蜗牛酶
第六节 霉菌原生质体融合育种 二、培养基及相关溶液 p262 (1)查氏培养基的作用:菌丝生长 (3)酶液的制备:
(2)菌体培养方式:
1.平板玻璃纸法:
丝状菌
2.振荡沉没培养法
细菌和酵母菌
酶法分离原生质体的影响因素?
(3)菌体年龄
丝状真菌
菌丝体尖端细胞
放线菌
对数期到静止期
细菌
对数期
酵母菌
菌体同步化
酶法分离原生质体的影响因素?
(4)稳定剂
高渗溶液
无机盐:NaCl、KCl、MgSO4、CaCl 微生物原生质体育种 三、原生质体转化育种 何种形式DNA转化率高? 质粒
第一节 微生物原生质体育种
五、其他微生物原生质体育种 脂质体转移 原生质体转染等
第二节 微生物原生质体融合育种
微生物原生质体融合育种:
通过人为方法,使遗传性状不同的两细胞的原 生质体发生融合,并产生重组子的过程。
絮凝剂产生菌KJ-10原生质体的制备及再生条件研究

KH2 O 、 O 、 酸 亚 铁 铵 、 丁 烯 二 酸 、 氨 P K HP 硫 顺 甘 酸 、 菌酶 、 酸 铵 、 素 。 溶 硫 尿
1 2 方 法 .
1 2 1 原 生质体 的制备 ..
将 新 鲜 斜 面 菌 种 转 接 至 已 灭 菌 的 3 C 液 0mI M 体 培 养 基 中 ,8 摇 床 培 养 过 夜 , 以 1 的 接 种 量 转 2℃ 再
21, I 8 o3亿 亏 与 生 物 Z 程 01 o 2 N . v .
Ch m ity & Bie g n e ig e sr o n ie r n
d i l . 9 9 j is . 6 2 5 2 . 0 1 0 . 0 o : O 3 6 /.s n 1 7 — 4 5 2 1 . 3 0 7
取 5mL酶 解 过 的 原 生 质 体 液 ,0 0r・ i 离 60 r n a 心 1 n 弃 上 清 , 用 S M 液 离 心 洗 涤 2次 。最 后 0mi, 再 M 将 沉 淀 悬 浮 于 5mI 装 有 S M 液 的 小 锥 形 瓶 中 , ℃ M 4 下保存 , 用 。 备 1 2 2 原 生 质 体 的 再 生 .. 打 散 原 生 质 体 : 玻 璃 珠 加 入 原 生 质 体 液 中 ,8 将 2 ℃
・ 溶 菌 酶 ,2 水 浴 下 酶 解 , 不 时 振 荡 。 酶 解 mI 3℃ 并
幅提 高絮凝剂 的絮凝 效果 并 减少 絮凝 剂 的投 加量 , 降 低成 本[ ] 2 。
作 者 针 对 絮 凝 剂 产 生 菌 KJ1 一0原 生 质 体 的 制 备 及 再 生 条 件 进 行 了研 究 , 后 续 的 原 生 质 体 融 合 构 建 高 为
关 于微生物原 生质体 的研究发 展迅速 _ 。通过原 生质 l 体技 术制备 、 再生 出高产絮凝 剂菌株用 于水处 理 , 能大
卷枝毛霉孢子原生质体的制备与再生

中 图分 类 号 :9 Q3 文 献 标 志 码 : A 文 章 编 号 :6 2— 6 8 2 1 )2— 0 9—0 17 3 7 (0 10 0 4 4
Pr p r to nd r g n r to fpr t p a t fM u o ic n lo d s s r s e a a i n a e e e a i n o o o l ss o c r c r i e l i e po e
摘
要 : 了构 建 高 产 一 为 亚麻 酸 的卷 枝 毛 霉 稳 定 遗 传 转 化 体 系 , 用 酶 解 法 对卷 枝 毛 霉 ( cr i i lie s. 利 Muo r n l ds p ) cc eo
E M一1 的孢子进行原 生质体制备。研 究酶液组成 、 I 0 渗透压稳定剂 、 酶解温度 、 解时 间等 对卷枝毛 霉孢子原 生质 酶 体 形成和再 生的影响 , 建立 了制备卷枝毛霉孢子原生质体 的最适条件 :% 纤维素酶和 2 1 %溶壁 酶为酶 解体 系,. 05
m lLN C 作为渗透压稳定剂 5h 再 生培 养基 为 0 5mo LN C 高渗培 养基 。用双 . , . l a 1 /
层 平板培养 法进行原 生质体再生 , 在此条件 下原 生质体的形成量为 12×1 mL 再生率为 7 . %。 . 0 个/ , 05
A b t a t: o tu ta sa l e ei ta fr to y tm ,h r t p a t fM u o icnel ie p. sr c To c nsr c t b e g n tc r nso ma in s se t e p oo lss o c r cr i lod s s EI 一 0 s r swe e p e a e y u ig e z ma i eh d . e ifu n e fe z me s se , s oi r s M 1 poe r r p r d b sn n y tcm t o s Th n e c so n y y tm o m tc p e — l s r tb l e , n y lsst u e sa ii r e z moy i i z me,a d t mp r t e o h r p r t n a d r g n r t n o r t p a t f n e e aur n t e p e a a i n e e e a i ft p oo lsso o o he M u o icn l i e p El 一 0 s o e r t d e Th p i c rcri el d ss . M 1 p r swe e su id. e o tmum rpa ain c n iin r sa ls e o p e r to o d to s we e e t b ih d b sn n y e s se c mp s d o % c l l s n % lwaly e wih 0 5 m o/L Na en e y u i g e z m y tm o o e f1 el a e a d 2 u y lz m t . l C1b i g us d
基因组对芸苔属作物原生质体培养及植株再生的影响

基因组对芸苔属作物原生质体培养及植株再生的影响
李世君;孟征;李德葆
【期刊名称】《遗传学报:英文版》
【年(卷),期】1994(21)3
【摘要】本文以包心菜、芜菁油菜、浙油601的无菌苗叶肉原生质体为材料,经不同液体培养基浅层培养,细胞分裂并形成愈伤组织。
愈伤组织经增殖后,转到分化培养基上诱导分化,均获得了再生植株。
本文着重研究了植物基因组对原生质体分裂频率及植株再生的影响。
研究结果表明:(1)植物基因组对原生质体分裂频率的影响随原生质体培养基的不同而异;(2)植物基因组对原生质体再生植株影响显著,芜菁油菜的A基因组不利于原生质体再生植株,包心菜的C基因组有利于原生质体再生植株。
【总页数】5页(P222-226)
【关键词】基因组;芸苔属;原生质体培养
【作者】李世君;孟征;李德葆
【作者单位】浙江农业大学生物技术研究所
【正文语种】中文
【中图分类】S565.403.2
【相关文献】
1.原生质体培养在芸薹属蔬菜作物中的研究进展 [J], 张艳;李成琼;宋洪元;秦家顺
2.十字花科芸薹属作物小孢子胚植株再生体系的研究进展 [J], 谢景;李智军;卢文佳;
曾晶
3.芸苔属花粉—下胚轴原生质体融合再生杂种小植株 [J], 李昌功;周嫦
4.芸苔属植物幼嫩花粉原生质体分离、培养及花粉-体细胞原生质体的融合 [J], 李昌功;周嫦;杨弘远
5.不同供体原生质体前处理方法对甘蓝与萝卜属间原生质体融合植株再生的影响[J], 雷开荣;U.Ryschka;E.Klocke
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
不同冻存条件对甘蔗原生质体活力和再生能力的影响

㊀Guihaia㊀Apr.2019ꎬ39(4):427-436http://www.guihaia-journal.comDOI:10.11931/guihaia.gxzw201802023引文格式:李素丽ꎬ宋亚妮ꎬ李志刚ꎬ等.不同冻存条件对甘蔗原生质体活力和再生能力的影响[J].广西植物ꎬ2019ꎬ39(4):427-436.LISLꎬSONGYNꎬLIZGꎬetal.Effectsofdifferentfreezingconditionsonvitalityandregenerationabilityofsugarcaneprotoplast[J].Guihaiaꎬ2019ꎬ39(4):427-436.不同冻存条件对甘蔗原生质体活力和再生能力的影响李素丽ꎬ宋亚妮ꎬ李志刚∗ꎬ刘芳君ꎬ赖沛衡ꎬ覃潇怡ꎬ李嘉俊(广西大学农学院ꎬ南宁530005)摘㊀要:为了获得活力高和再生能力强的甘蔗原生质体ꎬ该文对甘蔗原生质体的冻存液浓度㊁冻存温度和冻存部位进行了研究ꎮ结果表明:(1)不同的冻存液㊁不同的冻存温度和不同的取材部位原生质体冻存后复苏对甘蔗原生质体的活力影响有显著差异性ꎬ三个冻存液组合比较ꎬ在组合2(70%培养基+20%血清+10%DMSO)ꎬ冻存30d后复苏活力最强ꎬ高达72%ꎻ冻存90d内复苏ꎬ-196ħ液氮和-80ħ冰箱冻存ꎬ甘蔗原生质体的活力差异不显著ꎬ活力均在75%以上ꎬ但90d冻存后复苏ꎬ-196ħ液氮冻存后复苏比-80ħ冰箱冻存冻存后复苏原生质活力强ꎻ不同取材部位比较ꎬ幼叶冻存30d后复苏所得原生质体活力较高(达79 2%)ꎬ茎尖冻存30d后复苏所得原生质体活力仅为42.7%ꎮ(2)不同的冻存液和不同的冻存温度ꎬ细胞第一次启动分裂和形成细胞团的时间差异不显著ꎬ一般培养5~6dꎬ细胞壁基本形成完整ꎬ培养6d后ꎬ细胞启动分裂ꎬ培养15d后形成细胞团ꎮ不同的材料部位相比较ꎬ茎尖酶解所得原生质体再生能力最强ꎬ较幼叶酶解原生质体ꎬ形成细胞壁的时间早3dꎬ第一次分裂时间早2dꎮ关键词:甘蔗ꎬ原生质体ꎬ冻存ꎬ活力ꎬ再生中图分类号:Q945㊀㊀文献标识码:A㊀㊀文章编号:1000 ̄3142(2019)04 ̄0427 ̄10EffectsofdifferentfreezingconditionsonvitalityandregenerationabilityofsugarcaneprotoplastLISuliꎬSONGYaniꎬLIZhigang∗ꎬLIUFangjunꎬLAIPeihengꎬQINXiaoyiꎬLIJiajun(AgricultureCollegeꎬGuangxiUniversityꎬNanning530005ꎬChina)Abstract:Inordertoobtainhighvitalityandregenerationabilityofsugarcaneprotoplastꎬthisexperimentwasdonetostudytheprotoplastoffrozenstorageliquidcombinationꎬfrozenstoragetemperatureꎬfrozenstoragetimeandrecoverytemperature.Theresultswereasfollows:(1)Differentcryopreservationsꎬdifferentcryopreservationtemperaturesanddifferentprotoplastsourcesofdifferentmaterialshadsignificantdifferencesonthevitalityoftheprotoplastofsugarcane.ComparedwiththecombinationofthreefrozenliquiddepositsꎬinCombination2(70%medium+20%serum+收稿日期:2018-05-25基金项目:国家科技支撑计划项目(2008BADB8B00)ꎻ国家自然科学基金(31460373ꎬ31871689)ꎻ广西自然科学基金(2011GXNSFA01806)ꎻ广西科技攻关重点项目(桂科攻1222014 ̄2B)[SupportedbytheNationalScienceandTechnologySupportProgramofChina(2008BADB8B00)ꎻtheNationalNaturalScienceFoundationofChina(31460373ꎬ31871689)ꎻNaturalScienceFounda ̄tionofGuangxi(2011GXNSFA01806)ꎻGuangxiKeyProgramofScienceandTechnology(1222014 ̄2B)]ꎮ作者简介:李素丽(1972-)ꎬ女ꎬ广西上林人ꎬ博士ꎬ副教授ꎬ主要从事作物学研究ꎬ(E ̄mail)lisuli88@163.comꎮ∗通信作者:李志刚ꎬ博士ꎬ教授ꎬ主要从事植物逆境生理研究ꎬ(E ̄mail)lizhigangnn@163.comꎮ10%DMSO)ꎬtherecoveryactivitywasthestrongestafter30dꎬashighas72%.Cryopreservedrecoverywithin90dꎬliquidnitrogen-80ħand-196ħfreezerꎬsugarcaneprotoplastenergydifferencewasnotsignificantꎬandthevigorwasabove75%.Butafter90doffrozen ̄storageꎬtheprotoplastdynamicat-196ħwasstrongerthan-80ħafterre ̄covery.Fordifferentmaterialsꎬtheprotoplastdynamicoftheyoungleavesfrozenstoredfor30dwasupto79.2%ꎬandtheprotoplastdynamicofstemtipfrozenfor30dwasonly42.7%.(2)Therewasnosignificantdifferenceinthetimebetweenthefirstinitiationofdivisionandtheformationofcellmassinthetreatmentswithdifferentcryopreservationliq ̄uidsanddifferentcryopreservationtemperatures.Aftertheprotoplastswereculturedforabout5-6dꎬthecellwallwasbasicallycompleteꎬandthecellsbegantodivideafter6dꎬandthecellmassesformedafter15dofculture.Fordifferentmaterialsꎬthestrongestregenerationabilitywasfoundintheprotoplastsfromstemtipbyenzymatichydrolysisꎬwhichcellwallformationshowed3dearlierꎬand2dearlierinthefirstcelldivisionthanthosefromthejuvenileleaves.Keywords:sugarcaneꎬprotoplastꎬfrozenstorageꎬvatalityꎬregeneration㊀㊀植物体细胞融合育种ꎬ是根据细胞的全能性和细胞膜的流动性原理ꎬ用酶解法去除细胞壁ꎬ先将植物不同种㊁属ꎬ甚至科间的原生质体通过人工方法诱导融合ꎬ然后进行离体培养ꎬ使其再生杂合体植株的技术ꎮ其打破了有性杂交不亲和性的界限ꎬ广泛地组合各种基因型ꎬ从而形成有性杂交方法所无法获得的新型杂合体植株ꎬ而且细胞融合技术避免了分离㊁提纯㊁剪切㊁拼接等基因操作ꎬ转移的基因基本不存在基因安全性问题ꎬ因为被转移的基因本身存在于甘蔗中ꎬ在技术和仪器设备上的要求不像基因工程那样复杂ꎬ投资少ꎬ有利于广泛开展研究和推广(李志勇ꎬ2003)ꎬ加之体细胞杂交来自双亲的遗传物质并非简单的堆积ꎬ而是发生了复杂的遗传重组ꎬ这正是改良作物所期望的ꎮ植物体细胞融合育种是改造细胞遗传物质的有力手段ꎬ有着重大的实践意义ꎮ原生质体是体细胞融合的必需材料ꎬ同时还可以用于突变体筛选和遗传转化等研究ꎬ是科学研究的理想材料ꎮ由于植物材料的获得受季节和植物生长发育阶段的影响ꎬ导致原生质体融合育种等实验也会受到以上因素的限制ꎬ实验不能随时随地进行ꎮ当前国内对原生质体的获得ꎬ大多数是及时采样并且及时酶解ꎮ这样做的缺点是:酶解耗时长ꎻ未用完的原生质体只能培养或者丢弃ꎬ效率低ꎻ材料的季节性导致有些季节实验因没有材料而搁置(庄春慧ꎬ2015)ꎮ原生质体冻存技术可以很好地解决这些问题ꎮ超低温条件能够较好保存种质资源ꎮ随着原生质体再生植株种类的不断增多ꎬ玉米㊁水稻㊁小麦等禾谷类的主要农作物的原生质体也成为种质保存的重要材料(Takeuchietal.ꎬ1982)ꎮ冻存过程对原生质体的主要伤害是冰晶刺破的伤害ꎬ二甲基亚砜(DMSO)是一种高效的渗透性保护剂ꎬ可迅速渗透细胞ꎬ降低细胞内细胞液冰点是低温保护剂ꎬ它易于透入细胞内部ꎬ使之不至于在细胞冻融时因强烈脱水而损伤(黄玲ꎬ2011)ꎮ目前ꎬ许多实验室广泛采用DMSO作冻存保护剂ꎬ除了价格低廉㊁保护效果良好外ꎬDMSO另一特点是很容易洗脱干净(吕维敏等ꎬ2014)ꎮ但不同浓度DMSO会触发冻存细胞复苏后大量细胞凋亡ꎬ对细胞有一定的毒害作用(李中文等ꎬ2016)ꎮ如何优化植物原生质体冻存条件ꎬ降低冻存试剂的毒性作用ꎬ改善冻存效果ꎬ最大程度保留原生质体的生物学特性是体细胞融合育种顺利进行的重要环节之一ꎮ甘蔗是我国食糖工业的重要支柱ꎬ也是能源㊁纤维㊁糖基化工和饲料的原料ꎬ作为再生能源作物ꎬ甘蔗有很大的潜力ꎮ然而蔗糖生产中存在着糖料蔗品种单一ꎬ选育的新品种不能满足甘蔗生产需求等问题ꎬ严重影响了蔗糖业健康稳定发展和竞争能力的进一步提高ꎮ因此ꎬ增强甘蔗育种的创新力度ꎬ提供更多优良的甘蔗品种已成为糖业发展ꎬ乃至经济发展急需解决的问题ꎮ由于甘蔗的生长受季节和地域性的限制ꎬ如果缺乏合适的甘蔗原生质体冻存方法ꎬ会导致甘蔗原生质体融合育种研究不在甘蔗生长季节和亚热带地区时ꎬ找不到研究材料ꎬ而在生长季节时大量的实验824广㊀西㊀植㊀物39卷材料因无法得到及时利用和长期保存而被浪费ꎬ极大地限制了甘蔗体融合育种研究顺利进行ꎮ本研究针对以上问题ꎬ研究了不同的冻存液㊁不同的冻存温度和不同的取材部位甘蔗原生质体冻存后复苏对活力和再生能力的影响ꎬ为后期甘蔗原生质体的融合育种以及以甘蔗原生质体为受体进行遗传转化等研究提供储备材料ꎮ旨在为甘蔗原生质体的超低温保存提供科学依据ꎬ为体细胞融合育种㊁遗传学和转基因提供材料和技术支撑ꎮ1㊀材料与方法1.1材料采取黄玲(2011)所用幼叶分离原生质体的方法获得新台糖22号甘蔗原生质体ꎮ甘蔗材料来自广西大学农学院甘蔗实验基地ꎮ所用酶液组合为2%纤维素酶+0.5%果胶酶+0.1%离析酶+0.3%半纤维素酶ꎮ所用洗液为CPW(含9%甘露醇)ꎮ酶液和洗液的pH均为5.8ꎮ1.2方法1.2.1不同甘蔗材料部位及其酶解方法㊀选取甘蔗ROC22号伸长初期的茎尖和幼叶作为研究材料ꎮ1.2.1.1甘蔗幼叶的酶解方法㊀参考黄玲(2011)所用幼叶分离原生质体的方法ꎬ稍有改动ꎮ以健壮甘蔗尾鞘作为幼叶酶解材料ꎬ先剥去外面2~3层叶鞘ꎬ然后用75%酒精灭菌30sꎬ无菌水清洗3次后ꎬ再切除外层和两端叶鞘ꎬ漏出淡黄色心叶ꎬ并留下生长点以上1~5cm嫩叶ꎬ切成厚度为1mm左右的薄片ꎬ收集幼叶0.5gꎬ加入5mLCPW(含13%甘露醇)溶液ꎬ使材料质壁分离0.5~1h后ꎬ除去CPW(含13%甘露醇)溶液ꎬ加入5mL组合酶液常温酶解4hꎬ然后分别过100目㊁200目细胞筛ꎬ收集原生质体悬浮液ꎬ梯度离心纯化原生质体ꎬ所得原生质体为幼叶原生质体ꎮ1.2.1.2甘蔗茎尖的酶解方法㊀参考洪翠(2000)所用甘蔗茎尖分离原生质体的方法ꎬ稍有改动ꎮ取伸长初期的甘蔗茎尖ꎬ剥去幼叶ꎬ然后用75%酒精灭菌30sꎬ无菌水清洗3次后ꎬ再切除外层和两端叶鞘ꎬ将包裹生长锥的几片大的幼叶剥去ꎬ仅保留生长锥附近的第3天至第6片幼叶或叶原基ꎮ将甘蔗茎尖修成1cmˑ1cmˑ2cm的组织块ꎬ其中包括幼叶原基㊁生长锥㊁伸长区的初生增粗分生组织和部分成熟区ꎬ将茎尖切成1mm左右的薄片ꎬ加入5mLCPW(含13%甘露醇)溶液ꎬ使材料质壁分离0.5~1h后ꎬ除去CPW(含13%甘露醇)溶液ꎬ加入5mL组合酶液常温酶解4hꎬ分别过100目㊁200目细胞筛ꎬ收集原生质体悬浮液ꎬ梯度离心纯化原生质体ꎬ所得原生质体为茎尖原生质体ꎮ1.2.2不同冻存液组合设计和冻存方法㊀用KM8P培养基㊁BSA(小牛血清蛋白)以及不同浓度的DMSO(二甲基亚砜)组合成不同的冻存液ꎬ所做设计为组合1(75%培养基+20%BSA+5%DMSO)㊁组合2(70%培养基+20%BSA+10%DMSO)㊁组合3(65%培养基+20%BSA+15%DMSO)ꎮ将酶解的原生质体用细胞计数板调密度至每mL为1ˑ106个ꎬ设3个处理温度(4ħꎬ-80ħꎬ-196ħ)ꎬ每个处理3个重复ꎮ每只冻存管内放细胞悬液200μLꎬ分别冻存7㊁30㊁60㊁90d后复苏ꎬ观察原生质体的活力和培养观察再生能力ꎮ采用缓慢冻存的方法ꎬ将装有细胞悬液的冻存管首先放入4ħꎬ约40minꎻ之后置于-20ħꎬ30~60minꎻ再置于-80ħ放置过夜ꎻ最后置于液氮罐-196ħ中长期保存ꎮ1.2.3甘蔗原生质体的复苏方法㊀采用快速化冻的方法ꎬ从液氮罐或-80ħ冰箱中取出冻存管快速放入37ħ的恒温水浴锅中不断摇晃ꎬ使其快速解冻ꎬ然后离心弃掉冻存液ꎬCPW(含9%甘露醇)清洗三遍ꎬ加KM8P培养基培养ꎮ1.2.4甘蔗原生质体的活力测定㊀参考李玉珠(2012)的方法制备4%台盼蓝母液:称取4g台盼蓝ꎬ加少量蒸馏水研磨ꎬ加双蒸水至100mLꎬ用滤纸过滤ꎬ4ħ保存ꎮ使用时ꎬ用PBS稀释至0.4%(Widholmꎬ1972)ꎮ测定时ꎬ被染蓝色即为死细胞ꎮ原生质体活力=(有活力的原生质体/数原生质体总数)ˑ100%ꎮ1.2.5甘蔗原生质体细胞壁的观察㊀参考柳琳等(2014)的方法ꎬ将荧光增白剂VBL溶于用无离子水配制的pH5.8的9%CPW中ꎬ使成0.1%浓度ꎬ待完全溶解后ꎬ于85ˑg离心10minꎬ去沉淀杂质ꎬ用9244期李素丽等:不同冻存条件对甘蔗原生质体活力和再生能力的影响上清液(黄祥辉和颜季琼ꎬ1980)ꎮ向原生质体悬浮液中加入等体积的VBL染色液ꎬ温下静置染色5minꎬ9%CPW溶液清洗3~4次ꎬ浮于9%CPW溶液中ꎮ吸取适量染色后的悬浮液滴于载玻片上ꎬ于波长345nm㊁倍数100倍的荧光显微镜下观察细胞壁的生长情况ꎮ2㊀结果与分析2.1不同处理对原生质体活力的影响2.1.1不同的冻存液组合对甘蔗原生体活力的影响㊀从表1和图版I可以看出ꎬ在用缓慢冻存的方式冻存不同时间段后ꎬ在三种冻存液组合中冻存的甘蔗原生质体和冻存前比活力都会有所降低ꎬ降低幅度总体表现为组合1(75%培养基+20%小牛血清蛋白+5%DMSO)>组合3(65%培养基+20%小牛血清蛋白+15%DMSO)>组合2(70%培养基+20%小牛血清蛋白+10%DMSO)ꎬ不同组合之间原生质体活力差异显著ꎮ最佳的冻存液为组合2(70%培养基+20%小牛血清蛋白+10%DMSO)ꎬ冻存后7d复苏ꎬ组合2原生质体活力比组合1高27.69%ꎬ比组合3高18.43%ꎻ冻存后30d复苏ꎬ组合2原生质体活力比组合1高27.13%ꎬ比组合3高16.17%ꎻ冻存后90d复苏ꎬ组合2原生质体活力比组合1高28.45%ꎬ比组合3高18.36%ꎮ表1㊀冻存保护剂对甘蔗原生质体活力的影响Table1㊀Effectsofcryopreservedprotectantonprotoplastvitalityofsurgarcane冻存液组合Combinationoffrozenstoredliquid原生质体活力Protoplastvitality(%)冻存0dCryopreservedfor0d冻存7dCryopreservedfor7d冻存30dCryopreservedfor30d冻存90dCryopreservedfor90d组合1Combination191.37a45.49c44.96c43.87c组合2Combination291.37a73.18a72.09a72.32a组合3Combination391.37a54.75b55.92b53.96b㊀注:同列相同字母表示经Ducan s新复极差测验在5%水平上差异不显著ꎮ下同ꎮ㊀Note:Thesameletterswithinthesamecolumnmeannosignificantdifferenceat5%levelinDuncan stest.Thesamebelow.表2㊀取材部位对甘蔗原生质体活力的影响Table2㊀Effectsofplantpartsonprotoplastvitalityofsurgarcane原生质体来源Protoplastsource冻存时间对应成活率Survivalratefordifferentfrozenstoragetime(%)0d7d15d30d茎尖Stemtip55.43b45.64b43.75b42.70b幼叶Youngleaf90.62a82.22a81.31a79.20a2.1.2不同的取材部位对甘蔗原生质体活力的影响㊀由表2和图版Ⅱ可知ꎬ在对幼叶和茎尖酶解后ꎬ分别冻存7㊁15㊁30d后复苏ꎬ幼叶的活力均显著高于茎尖ꎬ分别比茎尖高35.91%㊁37.56%和36.5%ꎮ冻存7d后复苏ꎬ幼叶和茎尖活力降低10%左右ꎬ差异显著ꎮ分别冻存7㊁15㊁30d后复苏ꎬ幼叶和茎尖活力降低差异不显著ꎮ2.1.3不同的冻存温度对甘蔗原生质体活力的影响㊀由图1可知ꎬ冻存7d后复苏ꎬ不同冻存温度(4㊁-80㊁-196ħ)之间ꎬ原生质体活力差异不显著ꎻ冻存30d和60d后复苏ꎬ-80ħ和-196ħ中复苏的原生质体活力差异不显著ꎬ但显著高于4ħ处理ꎬ分别高40%和60%ꎬ达到显著性差异ꎻ冻存90d后复苏ꎬ-196ħ原生质体活力最高ꎬ4ħ034广㊀西㊀植㊀物39卷注:同一柱形内相同字母表示经Ducan s新复极差测验在5%水平上差异不显著ꎮNote:Thesameletterswithinthesamecylindricitymeannosignificantdifferenceꎬat5%levelinDuncan stest.图1㊀冻存温度对甘蔗原生质体活力的影响Fig.1㊀Effectsoffrozenstoragetemperatureonsugarcaneprotoplastvitality处理最低ꎬ-196ħ中复苏的原生质体活力较-80ħ处理高22.81%ꎬ较4ħ处理高71.37%ꎬ差异显著ꎮ处理时间对在液氮-196ħ中冻存的原生质体活力影响不显著ꎮ2.2不同处理对甘蔗原生质体细胞壁再生的影响2.2.1不同冻存液组合对甘蔗原生体细胞壁形成的影响㊀细胞壁的形成是一个逐渐形成的过程ꎬ整个再生过程中ꎬ随着培养时间的增加ꎬ荧光强度由弱变强ꎮ冻存30d后复苏培养ꎬ不同冻存液组合对细胞壁形成的影响差异不显著ꎬ原生质体培养1d于荧光显微镜下观察ꎬ细胞周围均无蓝色荧光ꎬ说明培养1d没有形成细胞壁(图版Ⅲ:A)ꎻ培养2~3d之后ꎬ在荧光显微镜下可看到由于VBL和细胞壁的纤维素结合而在细胞周围开始发出淡蓝色的荧光(图版Ⅲ:B)ꎻ培养5~6dꎬ在荧光显注:A.冻存0d的原生质体ꎻB.组合2冻存90d的原生质体ꎬ箭头示死细胞ꎻC.组合1冻存90d的原生质体ꎮ箭头示死细胞(Bar=20μm)Note:A.Protoplastofcryopreservedfor0dꎻB.Combination2ꎬcryopreservedprotoplastfor90dꎻC.Combination1ꎬcryopreservedprotoplastfor90d.Arrowspointtothedeadcells(Bar=20μm)图版Ⅰ㊀不同冻存液组合对甘蔗原生体活力的影响PlateⅠ㊀Effectsofcryopreservedprotectantcombinationsonprotoplastvitalityofsugarcane微镜下观察到整个细胞边缘蓝色荧光均匀㊁强烈且明显(图版Ⅲ:C)ꎬ表明细胞壁在逐渐形成ꎬ5d左右基本形成完整ꎮ2.2.2不同取材部位对甘蔗细胞壁再生的影响㊀冻存30d后复苏培养ꎬ在第3天至第4天的时候ꎬ茎尖细胞壁形成完整ꎬ而幼叶在第5天至第6天的时候才观察到细胞壁形成ꎬ茎尖细胞壁早形成幼叶ꎮ但是形成细胞壁的过程并无差异(图版IV)ꎮ2.2.3不同冻存温度对甘蔗原生体细胞壁形成的影响㊀在后期的细胞壁形成过程中ꎬ冻存于4㊁-80㊁-196ħ的原生质体形成细胞壁的时间上无显著差异ꎬ培养1d没有形成细胞壁(图版Ⅴ:A)ꎬ培养2~3d之后ꎬ在荧光显微镜下可看到细胞周围开始发出淡蓝色的荧光(图版Ⅴ:B)ꎬ培养5~6d左右可以在荧光显微镜下观察整个细胞边缘蓝色荧光均匀㊁强烈且明显(图版Ⅴ:C)ꎮ1344期李素丽等:不同冻存条件对甘蔗原生质体活力和再生能力的影响注:A.幼叶原生质体冻存30d复苏ꎻB.茎尖原生质体冻存30d复苏ꎮ箭头示死细胞(Bar=10μm)Note:A.Cryopreservedrecoveryoftheprotoplastfromyoungleavesafter30doffrozenstorageꎻB.Cryopreservedrecoveryoftheprotoplastfromstemtipafter30doffrozenstorage.Arrowspointtothedeadcells(Bar=10μm)图版Ⅱ㊀甘蔗不同部位冻存后活力PlateⅡ㊀Vitalityofdifferentpartsofsugarcaneafterfrozenstorage注:A.培养1d的原生质体ꎻB.培养2~3d的原生质体ꎻC.培养5~6d左右的原生质体ꎮ箭头示荧光蓝色区域(Bar=10μm)ꎮ下同ꎮNote:A.Protoplastcultivatedfor1dꎻB.Protoplastcultivatedfor2-3dꎻC.Protoplastcultivatedfor5-6d.Arrowspointtothefluorescentbluearea(Bar=10μm).Thesamebelow.图版Ⅲ㊀冻存后甘蔗细胞的细胞壁形成PlateⅢ㊀Cellwallformationinthecryopreservedsugarcanecellsafterfrozenstorage图版IV㊀不同取材部位甘蔗细胞的细胞壁形成PlateⅣ㊀Wallformationfromthecellsindifferentpartsofsugarcane234广㊀西㊀植㊀物39卷图版Ⅴ㊀不同冻存温度下细胞壁的形成PlateⅤ㊀Cellwallformationunderdifferentfrozenstoragetemperatures注:A.培养0d的原生质体ꎻB.培养6d的原生质体ꎻC.培养15d左右的原生质体ꎮ(Bar=10μm)Note:A.Protoplastcultivatedfor1dꎻB.Protoplastcultivatedfor6dꎻC.Protoplastcultivatedforabout15d.(Bar=10μm)图版Ⅵ㊀冻存后甘蔗细胞的分裂PlateⅥ㊀Aftercryopreservedsugarcanecelldivision2.3不同处理对甘蔗原生质体细胞分裂的影响2.3.1不同冻存液组合对甘蔗细胞分裂的影响㊀冻存90d后ꎬ复苏观察ꎮ结果表明不同的冻存液组合冻存90d后ꎬ原生质体复苏启动分裂的时间并无差别ꎬ培养0d三个组合的原生质体都未观察到细胞分裂相ꎬ原生质体呈圆球形ꎬ细胞膜边缘清晰(图版Ⅵ:A)ꎮ培养6d后ꎬ细胞分裂相增多ꎬ出现较多的第一次细胞分裂(图版Ⅵ:B)培养第15天左右ꎬ视野中出现少量细胞团ꎬ细胞排列紧密(图版Ⅵ:C)ꎮ2.3.2不同取材部位对甘蔗原生体细胞分裂的影响㊀由表3和图版Ⅶ可知ꎬ茎尖比幼叶更早启动分裂ꎬ且差异显著ꎮ第一次分裂ꎬ茎尖比幼叶早2dꎬ第二次分裂ꎬ茎尖比幼叶早3dꎬ形成小细胞团所需时间比幼叶早5dꎬ形成小愈伤所需时间比幼叶早10dꎬ但分裂过程并无差异ꎮ2.3.3不同冻存温度对甘蔗原生质体细胞分裂的影响㊀不同冻存温度对第一次分裂启动时间都是7d左右ꎬ差异不显著ꎬ培养一周后可观察到原生质体第一次分裂(图版Ⅷ:AꎬBꎬC)ꎮ3㊀讨论DMSO(二甲基亚砜)是超低温保存中常用的一种高效的渗透性低温保护剂ꎬ在常温下DMSO对细胞有轻度药害ꎬ但随着温度的降低ꎬ药害作用3344期李素丽等:不同冻存条件对甘蔗原生质体活力和再生能力的影响注:A-D.茎尖冻存30dꎬ复苏后的培养原生质体细胞分裂和形成细胞团的过程㊀A.培养6d后第一次分裂ꎻB.培养8d后第二次分裂ꎻC.培养12d形成的小细胞团ꎻD.培养20d形成的小愈伤ꎮA1-D1.幼叶冻存30dꎬ复苏后的培养原生质体细胞分裂和形成细胞团的过程㊀A1.复苏后的幼叶原生质体培养8d后第一次分裂ꎻB1.复苏后的幼叶原生质体培养11d后第二次分裂ꎻC1.复苏后的幼叶原生质体培养17d形成的小细胞团ꎻD1.复苏后的幼叶原生质体培养30d形成的小愈伤ꎮ标尺=20μmꎮNote:A-D.Processofthecelldivisionandmassformationoftheculturedprotoplastsofstemtipplasmidcellsafterrecoveryafter30d㊀A.Thefirstdivisionafterculturingfor6dꎻB.Theseconddivisionafterculturingfor8dꎻC.Formationofsmallcellmassafterculturingfor12dꎻD.Smallcallusformedafterculturingfor20d.A1-D1.Theprocessofthecelldivisionandmassformationfromculturedprotoplastsofyoungleavesafterrecoveryfromfrozenstorage㊀A1.Thefirstdivisionat8dafterculturingtherecoveredprotoplastꎻB1.Theseconddivisionafterculturingfor11dtherecoveredprotoplastꎻC1.Formationofsmallcellmass17dafterculturingtherecoveredprotoplastꎻD1.Smallcallusformed30dafterculturingtherecoveredprotoplast.Bar=20μm.图版Ⅶ㊀不同取材部位甘蔗细胞的分裂PlateⅦ㊀Celldevisionforexplantsfromdifferentpartsofsugarcane注:A.4ħ冻存原生质体复苏后培养7d的原生质体第一次分裂ꎻB.-80ħ冻存原生质体复苏后培养7d的原生质体第一次分裂ꎻC.-196ħ冻存原生质体复苏后培养7d的原生质体第一次分裂ꎮ标尺=10μmꎮNote:A.Thefirstdivisionofprotoplastsat7dafterculturingtherecoveredprotoplaststoredat4ħꎻB.Thefirstdivisionofprotoplastsat7dafterculturingtherecoveredprotoplaststoredat-80ħꎻC.Thefirstdivisionofprotoplastsat7dafterculturingtherecoveredprotoplaststoredat-196ħ.Bar=10μm.图版Ⅷ㊀不同冻存温度下原生质体的分裂PlateⅧ㊀Protoplastdivisionunderdifferentfrozenstoragetemperatures434广㊀西㊀植㊀物39卷表3 取材部位对分裂的影响Table3㊀Effectsofplantpartsoncelldivision原生质体来源Protoplastsource第一次分裂所需时间Timeforthefirstdivision(d)第二次分裂所需时间Timefortheseconddivision(d)形成小细胞团所需时间Timeforsmallcellmassformation(d)形成小愈伤所需时间Timeforsmallcallusformation(d)茎尖Stemtip6b8b12b20b幼叶Youngleaf8a11a17a30a也随之减小(吕维敏等ꎬ2014)ꎮ在冻存时不同植物最适合DMSO浓度的不同ꎬ林小园(2014)发现DMSO浓度为15%时ꎬ小球藻活力最高ꎮ薛建平(2004)在地黄试管块根诱导及茎尖玻瑞化法超低温保存的研究表明DMSO浓度为5%ꎬ复苏后活力最高ꎬ达65%ꎮ本研究发现不同的冻存液组合对甘蔗原生质体活力影响差异显著ꎬ最适合甘蔗原生质体的冻存液组合是组合2(70%培养基+20%BSA+10%DMSO)ꎬ在此冻存液中原生质体的活力最高ꎮ组合2优于组合1和组合3ꎬ可能原因是5%DMSO浓度过低ꎬ起不到充分保护的作用ꎬ造成细胞细胞被冰晶刺破ꎬ而15%DMSO浓度又过高ꎬ可能对细胞产生了毒害作用ꎬ造成细胞的活力下降ꎮ程斐(2009)对二桥槐的冻存液研究结果为10%DMSO+0.5mo1 L ̄1蔗糖+10%(w/v)聚乙二醇ꎬ与本研究结果相近ꎮ不同取材部位冻存后复苏细胞活性㊁细胞分裂和再生能力也不一样ꎮ近年来植物冻存技术的研究主要集中在茎尖(李享等ꎬ2018)㊁组织(洪森荣等ꎬ2018)等ꎮ陈勇(2000)对铁皮石斛原生质的冻存研究过程中ꎬ对铁皮石斛的叶㊁茎㊁愈伤组织的研究结果表明ꎬ取材以刚展开的幼嫩叶片ꎬ愈伤组织较理想ꎮ简令成等(1987)对甘蔗的愈伤组织冻存后复苏ꎬ研究表明愈伤组织恢复再生能力ꎬ长出新植株ꎮ本研究结果发现幼叶原生质体冻存后复苏较茎尖原生质体冻存后复苏获得更高活力的原生质体ꎬ但是茎尖酶解所得原生质体冻存后复苏更早进行分裂ꎮ植物茎尖细胞具有持续㊁周期性分裂的能力ꎬ茎尖原生质体冻存后复苏更早分裂的原因可能是茎尖细胞小ꎬ细胞壁薄ꎬ细胞核大ꎬ细胞质浓ꎬ具有很强且持续的分裂能力ꎬ导致其更早进行分裂ꎮ不同的冻存温度复苏后对原生质体活力有一定的差异性ꎮ刘红泉(2004)在条斑紫菜的转基因研究中发现ꎬ紫菜原生质体冻存于-196ħ液氮中活力最高ꎬ可达66.5%ꎬ且能再生成叶状体ꎮ董晋江和夏镇澳(1996)对谷子胚性细胞系的超低温冰冻保存研究发现ꎬ谷子胚性细胞冻存在-40ħ的不如在-196ħ的ꎬ可能的原因是-40ħ时细胞内仍然能形成冰晶从而影响细胞的恢复生长率ꎬ而在-196ħ下不能形成冰晶所以影响较小ꎮ本研究结果表明ꎬ如果是短时间(90d内)冻存ꎬ-80ħ冰箱和-196ħ液氮冻存后复苏原生质体的活力差异不显著ꎮ如果长期保存ꎬ-80ħ冰箱冻存后复苏ꎬ原生质体活力有下降趋势ꎮ4ħ保存30d后原生质体活力显著下降ꎬ不能用来长期存放细胞ꎬ结果与前人研究结果一致ꎮ本研究还发现冻存温度对细胞的再生能力无明显影响ꎬ原生质体可以在第5天左右形成完整的细胞壁ꎬ第7天左右可进行第一次分裂ꎮ马锋旺和李嘉瑞(1998)对杏原生质体的冻存研究中发现ꎬ冻存于-196ħ的杏原生质体复苏后5~6d开始第一次分裂ꎬ植板率2.2%ꎬ冻存不影响其再生能力ꎬ本研究与此研究结果基本一致ꎮ本研究成功地优化了甘蔗原生质体的冻存条件ꎬ并得出以下结论:幼叶原生质体冻存后复苏活力显著高与茎尖原生质体ꎻ冻存剂DMSO组合为(70%培养基+20%血清+10%DMSO)保护原生质体冻存90d后复苏活力高达72.3%ꎻ冻存幼叶原生质体3个月内复苏ꎬ-80ħ和液氮-196ħ冻存效果差异不显著ꎬ超过3个月后ꎬ-196ħ冻存温度显著高于-80ħꎬ甘蔗原生质体经超低温保存后ꎬ其再生能力并无太大变化ꎮ以上研究结果为5344期李素丽等:不同冻存条件对甘蔗原生质体活力和再生能力的影响甘蔗原生质体的超低温保存提供科学依据ꎬ为体细胞融合育种㊁遗传学和转基因研究提供了材料和技术支撑ꎮ参考文献:CHENYꎬ2000.ProtoplasmofDendrobiumcandidumcryopre ̄servedbyvitrification[J].JWenzhouTeachColl(NatSciEd)ꎬ(3):40-41.[陈勇ꎬ2000.铁皮石斛原生质体的玻璃化法超低温保存[J].温州师范学院学报(自然科学版)ꎬ(3):40-41.]CHENGFꎬ2009.CryopreservationofcallusofRobiniaidahoandinvitroplantregeneration[D].Zhengzhou:HenanAg ̄ricultureUniversity.[程斐ꎬ2009.二乔刺槐愈伤组织超低温保存及植株再生[D].郑州:河南农业大学.]DONGJJꎬXIAZAꎬ1996.Ultralowtemperaturecryopreservationofembryogeniecelllinesoffoxtailmillet(SetariaitalicaL.Beauv)[J].ChinJBiotechnolꎬ12(4):400-403.[董晋江ꎬ夏镇澳ꎬ1996.谷子胚性细胞系的超低温冰冻保存[J].生物工程学报ꎬ12(4):400-403.]HONGCꎬ2000.Thestudyonprimaryfactorsinfluencingtheprotoplastcultureandisolationinsugareane[D].Fuzhou:FujianAgricultureandForestryUniversity.[洪翠ꎬ2000.影响甘蔗原生质体分离㊁培养因素的研究[D].福州:福建农林大学.]HONGSRꎬNINGBSꎬYESYꎬetal.ꎬ2018.Thedarkcultureandsemi ̄thinsectionoftheregeneratedplantswereobservedafterthecallus[J].JZhejiangAgricSciꎬ30(1):65-70.[洪森荣ꎬ宁本松ꎬ叶思雨ꎬ等ꎬ2018.黄独胚性愈伤组织冻后黑暗培养及其再生植株半薄切片观察[J].浙江农业学报ꎬ30(1):65-70.]HUANGLꎬ2011.Theprotoplastculrureandplantregenerationofheadcabbage[D].Jinhua:ZhejiangNormalUniversity.[黄玲ꎬ2011.结球甘蓝原生质体培养及植株再生[D].金华:浙江师范大学.]HUANGXHꎬYANJQꎬ1980.TheapplicationofcalcofluorwhiteVBLstudyingtheregenerationofcellwallprotoplast[J].ActaPhytophysiolSciꎬ6(2):207-211.[黄祥辉ꎬ颜季琼ꎬ1980.应用荧光增白剂VBL研究原生质体细胞壁的再生[J].植物生理学报ꎬ6(2):207-211.]JIANLCꎬ1988.Lowtemperaturebiologyandlong ̄termpreser ̄vationofplantgermplasm[J].ChinBullBotꎬ(2):65-68.[简令成ꎬ1988.低温生物学与植物种质的长期保存[J].植物学通报ꎬ(2):65-68.]JIANLCꎬSUNDLꎬSUNHLꎬ1987.Somefactorsinthesugar ̄canecallustissuecryopreservation[J].JIntegrPlantBiolꎬ(2):123-131.[简令成ꎬ孙德兰ꎬ孙龙华ꎬ1987.甘蔗愈伤组织超低温保存中一些因素的研究[J].植物学报ꎬ(2):123-131.]LIXꎬSUQꎬSONGHꎬ2018.Preservationandregenerationofstemtipofpeachleaf[J].JiangsuAgricSciꎬ46(5):140-143.[李享ꎬ苏晴ꎬ宋红ꎬ2018.桃叶卫矛茎尖超低温保存及再生[J].江苏农业科学ꎬ46(5):140-143.]LIYZꎬ2012.Thestudyofprotoplastcultureandsomaticcellhybridizationbetweenalfalfaandbaimai[D].Lanzhou:GansuAgricultureUniversity.[李玉珠ꎬ2012.苜蓿与百脉根原生质体培养及体细胞杂交的研究[D].兰州:甘肃农业大学.]LIZWꎬWUTꎬFUYXꎬetal.ꎬ2016.LowconcentrationofDM ̄SOprotectsSSMC7721cellviabilityaftercryopreservation[J].ChinJHistochemCytochemꎬ(1):70-74.[李中文ꎬ吴涛ꎬ付应霄ꎬ等ꎬ2016.低浓度二甲基亚砜保护SSMC7721细胞冻存后活力[J].中国组织化学与细胞化学杂志ꎬ25(1):70-74.]LIZYꎬ2003.Cellengineering[M].Beijing:SciencePress:3-21.[李志勇ꎬ2003.细胞工程[M].北京:科学出版社:3-21.]LINXYꎬ2014.CryopreservationandmutagenesisbreedingofhighyieldEPAmarinemicroalgae[D].Nanning:GuangxiUniver ̄sityforNationalities.[林小园ꎬ2014.海洋微藻的玻璃化冻存及高产EPA藻株的选育[D].南宁:广西民族大学.]LIUHQꎬ2004.Thetransgenicstudyofporphyryseaweed[D].Qingdao:OceanUniversityofChina.[刘红全ꎬ2004.条斑紫菜的转基因研究[D].青岛:中国海洋大学.]LIUHQꎬYUSꎬLINXYꎬetal.ꎬ2017.Studyonthevitrificationoftwogreenalgae[J].JiangsuAgricSciꎬ45(21):183-186.[刘红全ꎬ袁莎ꎬ林小园ꎬ等ꎬ2017.2种绿藻的玻璃化冻存研究[J].江苏农业科学ꎬ45(21):183-186.]LIULꎬCHENYꎬCHENLꎬetal.ꎬ2014.Detectionofricepro ̄toplastcellwallstainedwithfluorescentwhiteningagentVBL[J].GuizhouAgricSciꎬ42(11):70-72.[柳琳ꎬ陈越ꎬ陈玲ꎬ等ꎬ2014.VBL增白剂细胞染色的水稻原生质体细胞壁变化检测[J].贵州农业科学ꎬ42(11):70-72.]LÜWMꎬHUANGGMꎬZENGYꎬetal.ꎬ2014.Theoperationmechanismofcryoprotective ̄agentandexperimentalstudyoncryopreservationofbiologicalmaterial[J].CryoSupꎬ42(5):12-16.[吕维敏ꎬ黄钢妹ꎬ曾叶ꎬ等ꎬ2014.生物材料冻存中低温保护剂的作用机理及实验研究[J].低温与超导ꎬ42(5):12-16.]MAFWꎬLIJRꎬ1998.Cryopreservationofapricotprotoplast[J].JHorticꎬ(4):18-21.[马锋旺ꎬ李嘉瑞ꎬ1998.杏原生质体的超低温保存[J].园艺学报ꎬ(4):18-21.]TAKEUCHIMꎬMATSUSHIMAHꎬANDSUGAWARAYꎬ1982.Totipotencyandviabilityofprotoplastsafterlong ̄termfreezepreservation[M]. PlantTissueCulture :797-798.PublishedbyTheJapaneseAssociationForPlantTissueCultureꎬJapan.WIDHOLMJMꎬ1972.Theuseoffluoresceindiacetateandphe ̄nosafraninefordeterminingviabilityofculturedplantcells[J].StainTechnolꎬ47(4):189–194.XUEJPꎬ2004.Inductionoftuberousrootsandeyropresevrationofshoot ̄tipsbyvitriifcationinRehmanniaglutionsainvitor[D].Wuhan:HuazhongAgricultureUniversity.[薛建平ꎬ2004.地黄试管块根诱导及茎尖玻璃化法超低温保存[D].武汉:华中农业大学.]ZHUANGCHꎬ2015.Thepreservationofgermplasmresourcesandtheestablishmentofseedembryoregenerationsystem[D].Harbin:NortheastForestryUniversity.[庄春慧ꎬ2015.玉蝉花种质资源超低温保存和种子胚再生体系的建立[D].哈尔滨:东北林业大学.]634广㊀西㊀植㊀物39卷。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
原生质体制备和再生的影响因素
【摘要】以酿酒酵母YS5为出发菌株,经蜗牛酶酶解获得原生质体后,用紫外线进行诱变处理,通过一级筛选得到了61株诱变菌株,将这些诱变株直接进行发酵,利用气相色谱对发酵液酒精产量进行分析。
结果表明,经过紫外线照射30s后,通过筛选获得了一株酒精发酵较高产菌株,酒精产率达到了10.36%(v/v),比出发菌株提高了3.6%。
【关键词】酿酒酵母;原生质体;紫外诱变;甘蔗汁发酵
酵母细胞的融合及酵母原生质体的诱变的一个重要前提就是如何制备大量的原生质体,原生质体制备率受到各种条件的影响,如菌龄、酶浓度、温度、预处理等的影响,因此确定不同因素对酵母原生质体的影响及优化不同因素,可以大大提高产率。
1.菌体菌龄对原生质体制备的影响
微生物的生理状态是决定原生质体产量的主要因素之一,特别是菌龄,明显影响原生质体释放的频率。
不同时期的菌体,对各种溶壁酶的敏感性不同,原生质体的形成率与再生率也有很大差异。
较年轻的菌体细胞制备原生质体较为容易,而且此阶段的原生质体再生率也较高。
处于对数生长期的菌体代谢活性高而稳定、细胞壁对酶的作用较为敏感,且大小比较一致,生长适应能力强,故通常取处于对数生长期的菌体制备原生质体。
有研究表明对数生长早期形成率最高,对数生长中期时再生率最高,对数生长晚期的再生率也比对数生长中期的低。
这是由于细胞壁越稚嫩,越易被酶破坏,对数生长早期菌体幼小,代谢活性高而稳定、细胞壁对酶的作用较为敏感,且大小比较一致,故生活适应能力强;对数生长中期幼小菌体对不利因素抵抗能力差,一旦失去细胞壁,较难恢复;对数生长晚期的原生质体存在着很大比例的非活性个体。
菌体如果进入稳定期,细胞壁结构趋于稳定和老化,不易去壁形成原生质体,原生质体形成率显著降低,而且再生率也有所下降。
微生物的菌龄是随着菌种和培养条件而异,酵母菌菌液中加入β-巯基乙醇可以破坏细胞壁组分中的二巯基,处于对数生长期的酵母菌菌体代谢极为旺盛,细胞壁易被瓦解,其细胞壁对蜗牛酶较为敏感,易于酶解脱壁,且酵母菌制备原生质体时,要使菌体同步化才能大幅度的提高制备率。
2.稳定剂对原生质体制备的影响
原生质体由于剥除了细胞壁,失去其特有的保护作用,细胞对外界环境变的十分敏感,尤其对渗透压。
如果把它悬浮在蒸馏水或等渗溶液中,会吸水膨胀并破裂,所以必须在一定浓度的高渗溶液中进行酶解、破壁、才能形成和保持稳定的原生质体。
作为稳定剂的有无机盐和有机物,无机盐稳定剂包括NaCl、KCl、MgSO4、CaCl2等;有机物中有糖和糖醇,如蔗糖、甘露醇、山梨醇等。
无机盐利于原生质体制备,糖类更适于其再生,可能糖溶液黏度大,不利于酶和细胞的分散与作用,而盐对细胞壁降解有促进作用,故能提高制备率却不利于再生。
酵母菌原生质体制备和再生时的稳定剂可选用无机盐或糖醇类化合物,无机盐类在促进原生质体再生方面不及糖和糖醇。
其原因是:糖及糖醇是大分子物质,阻碍酶与细胞壁充分接触或者防碍原生质体释放,同时,其对原生质体又有保护作用。
各种稳定剂的pH值应保持在一定范围之内,这需要适宜的缓冲液配合使用,以保证酶活性和菌体本身活性维持在一个叫高的水平。
稳定剂是一种高渗溶液,但是浓度也不能过高,否则会使原生质体皱缩,一般在0.3-1.0mol/L之间。
概言之,稳定剂的作用,不仅能防止原生质体的破裂,控制并达到最大的数量,而且对提高酶的活性,促进酶和底物的结合都具有相当的优越性。
不同的稳定剂对原生质体的释放和保护作用是不同的,一般认为易于渗入质膜和易于被原生质体及菌体分解的物质不宜作为稳定剂。
3.酶解前的预处理对原生质体制备的影响
用酶类来水解细胞壁,首先要使得酶溶液渗透到细胞壁中,但是生物体都具有保护自身的一套严密的结构,不是任何物质都可以随意进入的。
为此,在用酶类处理之前,最好根据细胞壁的不同结构和组成加入某些物质先行预处理,以抑制或阻止某一种细胞壁成分的合成,从而使酶易于渗入,提高酶对细胞壁的酶解效果。
适当预处理可在一定程度上破坏酵母菌细胞壁外层大分子高级结构,改善通透能力,促进细胞壁水解酶向内壁层扩散,提高原生质体制备效率,并缩短酶作用时间,降低酶液对形成的原生质体损伤,保持高活性,提高再生率和融合率。
其作用主要是这些化合物能还原细胞壁中蛋白质的二硫键后,使分子链切开,酶分子易于渗入,促进细胞壁的水解,易于释放原生质体。
SH-化合物(如β-巯基乙醇)广泛运用于酵母菌中,效果很好。
可是,酵母细胞脱壁前,做一些预处理可使原生质化率大大提高,但原生质体再生率会有所降低,这是因为其作用于膜蛋白,造成细胞损伤。
酵母菌细胞壁外层由一蛋白鞘构成,预处理剂EDTA 或EDTA加巯基乙醇能破坏这一结构,利于水解酶渗透进入内壁层并促进其对细胞壁的降解,因此适度预处理后能显著提高原生质体制备率;用EDTA处理细胞,一方面将细胞壁中部分不溶性蛋白质抽提出来,另一方面又通过EDTA与多种金属离子形成络合物,避免金属离子对酶的抑制作用而提高酶的脱壁效果;用巯基乙醇处理对数期的细胞,以促进蛋白质中的二硫键断裂,松动细胞壁结构,使菌体的细胞壁对酶的敏感性增加,同时抑制细胞壁的重新合成。
至于经预处理后原生质体再生率略低于非处理,但从形成率和再生率双重因素考虑,使用预处理再生总数高于非预处理。
4.酶系和酶的浓度对原生质体制备的影响
各种微生物由于细胞壁组成不同用于水解细胞壁的酶的种类也不同。
而酵母菌的细胞壁组成主要为葡萄糖和几丁质。
用于水解的酶类主要有蜗牛酶、纤维素酶、β-葡聚糖酶等。
最常用的是蜗牛酶,它是一种以纤维素酶为主的混合酶,适合水解酵母细胞壁中的多种组分。
制备酿酒酵母原生质体时,一般采用50μl EDTA和5μl巯基乙醇及1%纤维素酶高渗磷酸—甘露醇缓冲液预处理,原生质体的获得率达99%。
但在蜗牛酶中复合加入纤维素酶能得到更理想的效果,加快细胞壁水解进程,缩短处理时间,增强所得原生质体活性,并提高再生率。
不同的微生物在制备原生质体时所需酶的种类和酶量均不同,适宜的酶浓度是影响原生质体形成与再生的重要因素,因为酶中往往含有对原生质体有害的酶类(如过氧化物酶、核糖核酸酶等),随着酶量的增加,杂酶的浓度也会随之增加,当达到一定程度时,必然会影响原生质体的活性,降低原生质体的再生率。
总之用于水解细胞壁的酶浓度要适当,酶量过低,作用不彻底,不利于原生质体形成,浓度过高,处理时间过长,会影响原生质体的数量和活性,致使再生率下降。
5.酶的作用温度、时间和作用pH值
同样的培养时间,不同的温度下生长的细胞,其生理状况是有差异的,会影响到原生质体的形成。
如酶解温度过高或过低,都会影响酶的活性,使原生质体形成率下降。
不同的酶具有各自不同的最适温度,这在水解细胞壁的时候是要首先考虑的。
还要注意菌株生长的最适温度,以避免因温度不当而导致原生质体的活性降低,甚至破坏。
确定酶解温度的时候以上两者均要兼顾。
总的说来,酵母菌的温度要低些,多在38-30℃。
随着时间的增加,原生质体的形成率增加,可能是因为随着时间的增加,细胞壁的水解更为充分的原因。
酶解时的最适pH值也随着酶的特性和菌种的特性而异。
6.总结
可见,影响原生质体制备和再生的因素很多,不同酶系统及酶浓度、渗透压稳定剂、酶解温度、时间、不同前处理方法都有较大的影响,选择合适的条件,以期大幅度提高原生质体的形成率,从而为原生质体的诱变育种及融合实验创造更为充分的条件。