神经干动作电位、传导速度和不应期测定
神经干传导速度的测定与神经干
实验四神经干传导速度的测定与神经干不应期的测定（一）神经冲动传导速度的测定【原理】神经干受到有效刺激发生兴奋后，产生的动作电位将以一定的速度沿神经传导。
对不同的神经纤维，其传导兴奋的速度也不同，一般来说直径大、有髓的神经纤维比直径小、无髓的神经纤维传导速度快。
蛙类的坐骨神经干属于混合型神经，其中直径最粗的有髓神经为A类纤维，正常室温下的传导速度约为35~40m/s。
测定神经纤维兴奋的传导速度v时，在远离刺激点的不同距离处分别用两组引导电极引导动作电位，测出两引导点之间的距离m和分别引导出的动作电位的时相差s，根据v = m / s即可计算出其传导速度。
图1：神经干兴奋传导速度的测定用尺子测量搭在前后两组引导电极之间的神经干长度m约为12mm，又由图6可测量得两个动作电位起始点的时间间隔s为0.40ms，故由公式v = m / s可计算实验用的神经干标本的兴奋传导速度约为：v = m / s = 12 / 0.40 = 30 mm/ms = 30 m/s。
【结果讨论】实验测得搭在两组引导电极之间的神经干长度m约为12mm，两个动作电位起始点的时间间隔s为0.40ms，由公式v = m / s计算得实验用的蛙坐骨神经干标本的兴奋传导速度约为30m/s，比理论值35-40m/s稍稍偏低。
估计计算结果比理论值偏低可能与剥制标本过程中的对神经干的损伤有关，也可能是仪器和信息处理系统的误差所致，另外在各数据测量中人眼读数也不可避免的存在误差。
（三）神经干不应期的测定神经纤维的主要功能是传导兴奋，即传导动作电位，而神经冲动是指延神经纤维传导的兴奋或动作电位。
神经细胞的电现象是生理学研究的重点之一，也是生理学学习的难点。
本次实验的动物材料为青蛙，我组所取的为两只雄性蛙，体重均为70g，体型较小。
进行实验前先用双毁髓法处死青蛙，剥制坐骨神经干标本，置于盛有任氏液的培养皿中备用。
神经在一次兴奋的过程中，其兴奋性也发生周期性变化，依次包括了绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期4个阶段。
牛蛙神经干实验报告
一、实验目的1. 观察牛蛙神经干的形态结构，了解神经干的基本组成。
2. 掌握神经干动作电位的观察方法，了解神经干兴奋传导的基本原理。
3. 学习测定神经干动作电位传导速度和不应期的方法。
二、实验材料1. 实验动物：牛蛙2. 实验药品和器材：任氏液、玻璃分针、蛙板、眼科剪、眼科镊、粗剪刀、神经屏蔽盒、刺激电极、引导电极、BL-420N系统三、实验方法与步骤1. 捣毁脑脊髓：将牛蛙放置于蛙板上，用眼科剪剪开颅骨，用眼科镊取出脑和脊髓。
2. 分离坐骨神经：用眼科剪和眼科镊分离出坐骨神经。
3. 安放引导电极：将引导电极插入坐骨神经，使其接触神经干表面。
4. 安放刺激电极：将刺激电极插入坐骨神经，使其接触神经干表面。
5. 启动试验系统：打开BL-420N系统，设置实验参数。
6. 观察记录：观察并记录神经干动作电位波形，测定最大刺激强度。
7. 测定传导速度：改变刺激电极位置，测定神经干动作电位传导速度。
8. 测定不应期：测定神经干动作电位绝对不应期和相对不应期。
四、实验结果与讨论1. 观察神经干形态结构：牛蛙坐骨神经干呈圆柱形，表面有神经膜覆盖，神经膜内为神经纤维。
2. 观察神经干动作电位波形：神经干动作电位波形呈双相，上升支代表去极化过程，下降支代表复极化过程。
3. 测定最大刺激强度：最大刺激强度为神经干动作电位波形上升支的峰值。
4. 测定传导速度：神经干动作电位传导速度为传导距离与传导时间的比值。
5. 测定不应期：绝对不应期为神经干动作电位波形上升支和下降支的持续时间，相对不应期为神经干动作电位波形上升支和下降支恢复至基线的时间。
讨论：1. 牛蛙神经干兴奋传导的基本原理：神经干兴奋传导是通过神经纤维上的动作电位实现的。
当神经纤维受到适宜刺激时，会发生去极化过程，产生动作电位。
动作电位沿神经纤维传导，使相邻的神经纤维也产生动作电位，从而实现兴奋的传导。
2. 影响神经干兴奋传导的因素：神经干兴奋传导速度受神经纤维直径、髓鞘厚度、温度等因素的影响。
神经干的动作电位速度和不应期的测定计兴奋传导
神经干标本盒。
RM6240C微机生物信号处理系统
神经干标本盒两对引导电极分别接微机生物信号处理系统1、2 通道
采样频率
通道模式 扫描速度
灵敏度
时间常数 滤波频率
1. 刺激尾迹的前沿到动作电位的起始与转折 处的时间（即潜伏期）
2. 从动作电位的起始到结束全时程的时间
3. 移动神经干上的接地电极的位置，观察对 尾迹的影响
＋＋＋＋
局部电流
－ － － － －－－－－－－－－ － － － － － － －
＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋
＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋ －－－－－－－－－－－－－－－
－－－－－－－－－－－－－－－ ＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋＋
实验对象：蟾蜍
实验器材：任氏液、神经标本屏蔽盒、蛙 类手术器械一套、滤纸、棉花、滴管、生 物信号记录系统
如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面， 兴奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向 相反的电位波形，称双相动作电位
细胞外引导电极
检流计
兴奋区
细胞外引导电极
检流计
兴奋区
损伤区
＋ ＋ ＋ ＋ ＋－＋－＋－＋－＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ － － － － －＋－＋－＋－＋－ － － － － － － －
Hale Waihona Puke 1. 蟾蜍坐骨神经的标本的制备 a、毁脑脊髓 b、剪去躯干上部及内脏 c、剥皮 d、分离两腿 e、游离坐骨神经 f、完成坐骨神经的标本
剪除躯干上部及内脏
图4-1-4 剥去皮肤
蟾蜍毁脑脊髓，去上肢和内脏，下肢剥皮浸于任氏液中。
蟾蜍下肢背面向上置于蛙板上，剪去尾椎；标本腹面向上， 用玻璃分针分离脊柱两侧神经丛，用线在近脊柱处结扎， 剪断神经；将神经干从腹面移向背面。标本背面向上固定， 从大腿至跟腱分离坐骨神经。坐骨神经标本置任氏液中备 用。
神经干动作电位、传导速度和不应期测定教学实验中常见问题的探讨
神经干动作电位、传导速度和不应期测定教学实验中常见问题
的探讨
王丹妹;莫燕娜;何佟;吉丽敏
【期刊名称】《卫生职业教育》
【年(卷),期】2008(026)008
【摘要】神经干动作电位、传导速度和不应期测定是生理学实验内容中的一个经典实验项目，以前常见的仪器有二线示波器、生理实验多用仪、前置放大器等，实验中常发现刺激伪迹的后波与动作电位的上升支融合在一起，学生难以鉴别刺激伪迹与动作电位，而传统仪器鉴别比较烦琐，一般只能用理论知识加以说明鼬，而利用BL-420生物机能实验系统（由泰盟公司提供）可以方便、直观地区别两者，该实验应用微机做神经干动作电位引导，克服了示波器图像不能在屏幕上固定、不能储存和重放、不同实验结果不能在同一屏幕上显示和比较，动作电位的参数测量结果准确度不高等缺点。
【总页数】2页(P136-137)
【作者】王丹妹;莫燕娜;何佟;吉丽敏
【作者单位】海南医学院,海南,海口,570102;海南医学院,海南,海口,570102;海南医学院,海南,海口,570102;海南医学院,海南,海口,570102
【正文语种】中文
【中图分类】G424.31
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生理实验报告!
生理实验报告!蟾蜍坐骨神经干动作电位的引导、传导速度和兴奋不应期的测定【实验目的】1. 观察蟾蜍坐骨神经动作电位的基本波形，加深理解兴奋传导的概念，理解可兴奋性在兴奋过程中的变化过程;2. 进一步掌握坐骨神经—腓神经标本的制备方法与引导动作电位的方法;3. 进一步熟悉实验室里仪器设备的操作。
【实验原理】1. 神经干动作电位是神经兴奋的客观标志。
当神经受到有效刺激时，处于兴奋部位的膜外电位负于静息部位，当动作电位通过后，兴奋处的膜外电位又恢复到静息时的水平。
神经干兴奋过程所发生的这种膜电位变化称神经复合动作单位。
如果将两个引导电极置于神经干表面时(双极引导)，动作电位将先后通过两个引导电极，可记录到两个相反的电位偏转波形，称为双向动作电位;2. 神经纤维兴奋的标志是产生一个可传播的动作电位。
测定神经干上的神经冲动的传导速度，可以了解神经的兴奋状态。
在示波器上测量动作电位传导一定距离所耗费的时间，便可计算出兴奋的传导速度;3. 神经与肌肉等可兴奋组织的兴奋性在一次兴奋过程中可发生一系列变化，及绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，组织的兴奋性才可恢复。
为了测定神经干在兴奋过程中的兴奋性变化，可用双刺激法检查刺激引起的兴奋阙值和电位变化，即可观察到神经组织兴奋性的变化过程。
【实验对象】蟾蜍【实验器材】蛙类手术器械，BL-410生物信号记录分析系统，神经屏蔽盒，任氏液(林格液)等。
【实验步骤】制备蟾蜍坐骨神经-腓神经标本，并放入神经屏蔽盒内;(一)双相动作电位1.打开BL-410?实验项目?神经肌肉实验?神经干动作电位引导?记录出双相动作电位;2.由小到大改变刺激强度，记录阈强度和最大刺激强度;3.观察双相动作电位波形，测量最适刺激强度时的潜伏期、时程和波幅; (二)引导出最大刺激强度时的动作电位波形1.BL-410仪器操作:实验项目?神经肌肉实验?神经干动作电位传导速度测定?输入两电极之间的距离分别用潜伏期法和潜峰法测量其传导速度;2.潜伏期法:测量第一个通道动作电位潜伏期的时间(t)，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离(S)，屏幕右上角显示传导速度和根据速度的公式计算传导速度:v=S/t;3.潜峰法:测量两个通道电位的动作电位的波峰间的时间差，为(t2-t1),测量并输入两对引导电极间的距离为(S2-S1),屏幕右上角显示传导速度和用公式计算传导速度:v=(S2-S1)/(t2-t1)。
神经干AP引导及其传导速度和不应期的测定
注意事项
• 神经尽可能分离得长一些 • 注意保持标本湿润
• 制备标本时尽量避免用尖锐器械，以免损伤神经
• 刺激强度由弱至强，避免过强刺激损伤神经 • 神经表面液体不可过多形成积液，以免发生短路
实验报告书写：
日期—— 班级—— 实验号—— 指导教师 李晶 实验名称 1、实验目的 2、实验动物 3、实验器材和药品 4、实验方法 5、实验结果 6、讨论 7、结论
实验方法、上部及内脏 3.剥皮（剥皮后将用过器械及手洗净） 4.分离两腿 5.游离坐骨神经并制成坐骨神经标本。
㈡标本、仪器的连接
神经干屏蔽盒
S+ SE R1 - R1+ R2- R2+
RM6240 生物信号处理系统
㈢观察项目
1.神经干双相动作电位的引导
神经干动作电位的引导及其传导速度 和不应期的测定
实验目的
• 学习神经干标本的制备方法
• 观察坐骨神经干的动作电位波形
• 了解测定神经兴奋传导速度和不应期的原理、 方法
• 实验对象：蟾蜍或蛙 • 器材药品：蛙手术器械（蛙板、玻璃板、 粗剪刀、组织剪、有齿镊、探针、玻璃分 针、图钉），生物信号采集处理系统及相 关电极、计算机、神经屏蔽盒、烧杯、滴 管、培养皿、铁架台、任氏液等。
思考题
• 神经干为何产生双相AP？ • 在一定范围内神经干AP幅度随刺激强度增大而 增大，这与单根神经纤维AP的“全或无”特点 是否矛盾？为什么？ • 为何神经在一次兴奋后会出现不应期？
检流计
兴奋区
打印结果 逐渐增加刺激强度，观 察动作电位变化，测定 阈值。
2.动作电位传导速度的测定
刺激器
输入通道
+
－
R1
生物实验报告-神经传导速度测定
生物实验报告姓名：班级：日期：同组者：实验序号：实验题目：神经干动作电位及其速度测定坐骨神经干不应期测定实验目的：1.学习神经干标本的制备。
2.观察坐骨神经干的单相、双相动作电位、双向性传导并测定其传导速度。
3.观察机械损伤对神经兴奋和传导的影响4.学习绝对不应期和相对不应期的测定方法5.了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化实验原理：神经或肌肉发生兴奋时，兴奋部位发生电位变化，这种可扩布性的电位变化即为动作电位。
可通过引导电极在仪器上进行记录。
用电刺激神经，在刺激电极的负极下神经纤维膜内产生去极化，当去极化达到阈电位，膜上产生一次可传导的快速电位反转，即动作电位。
神经干由许多神经纤维组成。
其动作电位是以膜外记录方式记录到的复合动作电位。
如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面，兴奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向相反的电位波形，称双相动作电位。
通常实验室常用的是方波电刺激，固定波宽，即刺激持续时间与强度/时间变化率二个参数不变，只改变刺激强度，观察不同刺激强度作用于组织时，组织的反应。
在安静状态下神经干中的神经纤维处于膜外为正，膜内为负的极化状态。
当神经纤维受刺激兴奋时，受刺激部位的膜去极化产生动作电位，与邻近未兴奋部位的膜形成局部电流，并以局部电流的方式传导。
当局部电流传到电极4时，电极4处的膜去极化（膜内变为正，膜外变为负），而电极5处的膜尚未兴奋，故电极5处电位相对于电极4处高，此电位变化过程即形成双向动作电位波形的AB 段。
当兴奋传至电极5处时，该处的膜去极化，膜外电位相对于电极4处逐渐降为0，此电位变化过程即双向动作电位波形的BC段。
当电极5尚处于去极化状态，而电极4处膜逐渐复极化时，电极5处膜电位相对于电极4处的膜电位逐渐降低为负值，此电位变化过程即双向动作电位波形的CD段。
当电极5处的膜复极化时，电极5处的膜电位逐渐恢复至电极4处电位水平，此电位变化过程即双向动作电位波形的DE段。
神经干动作实验报告
一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。
二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。
当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。
本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。
四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。
五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。
六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。
神经干动作电位的引导和传导速度的测定
神经干
标本屏蔽盒
S1 S2
R1 R1’ R2 R2’
Medlab-U生物信号放大器、刺激器
神经干动作电位及其传导速度测定装置示意图
表6-2 蛙神经干动作电位的引导及其传导速度测定实验结果
项目
结果
阈刺激 最大刺激强度 1通道上下相幅值 1通道上相时程 AP潜伏期(t1、t2) AP间隔时间(t) AP传导速度 1通道单相AP幅值 1通道单相AP时程 绝对不应期
t1 t2
实验后处理
两引导电极相隔较远，上、下相动作电位完全分离
上相动作电位复极完成，下相除极同时开始
上相动作电位复极未完成，下相除极已开始
神经干动作电位的引导和传 导速度的测定
实验目的
1. 掌握蛙坐骨神经-胫腓神经标本的制备方法 2. 掌握引导神经干复合动作电位和测定其传导
速度、兴奋不应期的基本原理和方法
实验原理
兴奋和兴奋性(excitability) 动作电位(action potential) 阈刺激(threshold stimulus) 最大刺激强度
神经干动作电位及其传导速度测定装置示意图
t
Байду номын сангаас通道1
R1 R2
t1
通道2
R3 R4
t2
V=s/(t2-t1) =s/t
实验步骤
制备蛙坐骨神经-胫腓神经标本 连接实验装置 实验参数设置 启动刺激器，记录1、2通道动作电位 寻找阈刺激和最大刺激强度 夹伤1通道两电极之间的神经，记录1通道动作电 位变化, 将脉冲数改为2，逐渐缩短间隔，测量绝对不应期 将保存的数据打开,测量各指标及传导速度，打印
20~50 3000Hz DC
X轴压缩比 Y轴压缩比
动作电位
（2）刺激强度与动作电位大小的关系 ）
同样方法，点击“阈强度与动作电位的关系”，把系 统对话的参数的“起始刺激强度”改为10mv，然后点 击“开始”和“保存”，即可观察到刺激强度与神经 干动作电位幅度大小关系的图形，同时可观察到神经 干兴奋的“阈强度”。当刺激强度小于0.1mv时，几 乎看不到神经干动作电位，随刺激强度↑，神经干动 作电位↑，当刺激强度在2V以上或更大时，刺激强度↑， 神经干动作电位几乎不增大。这就是“最大刺激强 度”。
神经冲动的传导速度（ ） 神经冲动的传导速度（v）是指动作电位在单位时间 ），可根据神经干上动作电 （t）内传导的距离（s），可根据神经干上动作电 ）内传导的距离（ ）， 位从一点传导到另一点所需要的时间来计算。 位从一点传导到另一点所需要的时间来计算。
刺激器
输入通道
+
－
R1-
Rr1+ R2-
R2+
S
∆t
传导速度测定 υ=
SAC ∆t
实验原理-3 兴奋不应期的测定
神经组织在接受一次刺激产生兴奋后， 神经组织在接受一次刺激产生兴奋后，其兴奋性将 会发生规律性的变化，依次经过绝对不应期、 会发生规律性的变化，依次经过绝对不应期、相对 不应期、超常期和低常期，然后回到正常水平。 不应期、超常期和低常期，然后回到正常水平。采 用两次脉冲，通过调节两次脉冲间隔， 用两次脉冲，通过调节两次脉冲间隔，可测得坐骨 神经的绝对不应期和相对不应期。 神经的绝对不应期和相对不应期。
3. 动作电位的观察
（1）双相动作电位
在“实验模块” 菜单下的“肌肉神经实验”菜单点 击“神经干动作电位的引导”，点击“保存”。然后 点击“刺激”，若标本兴奋性好，坐骨神经与电极接 触良好，则可记录到双相动作电位。若实验结果理想， 可停止实验。在“打开文件”的文件夹找到保存的文 件，打开该文件，找到最好的图形，最后打印。
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【实验原理与目的】
可兴奋组织如神经纤维在受刺激而兴奋时，细胞膜电位将发生一系列短暂的变化。
由安静状态下的膜外正膜内负的静息电位变为兴奋状态下的膜外负膜内正的去极化状态。
因此，在膜外兴奋区相对于未兴奋区来说电位为负。
这种电位差所产生的局部电流又引起邻近未兴奋区的去极化，使兴奋沿细胞膜传向整个细胞，而原来的兴奋区的膜电位又恢复到膜外正膜内负的静息水平。
这种可传播的、短暂的膜电位变化称之为动作电位。
可兴奋组织在一次兴奋之后，其兴奋性要经历一个规律的时相变化，依次是绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，然后才恢复到正常的兴奋性水平。
本实验目的在于观察动作电位的基本波形、潜伏期、幅值及时程，观察不同刺激强度对神经干动作电位波形的影响。
了解神经兴奋传导速度测定的基本原理和方法，以及神经兴奋后兴奋性变化的规律。
【实验对象】
蟾蜍或青蛙。
【实验器材和药品】
1．仪器生物机能实验系统（生物信号记录分析系统）或二道生理记录仪。
2．器械蛙类手术器械一套、神经标本屏蔽盒。
3．药品任氏液。
4．其它滴管、滤纸片和棉球。
【实验步骤和观察指标】
1．仪器装置准备好生物信号记录分析系统及相关电极。
（参见《常用实验仪器》）
2．手术操作制作坐骨神经腓肠肌标本，将其浸泡在任氏液中数分钟，待其兴奋性稳定。
然后，将神经标本屏蔽盒内所有的电极用任氏液棉球擦拭，用镊子夹住神经标本两端扎线，将标本横搭在神经标本屏蔽盒的电极上，盖好标本盒盖，并将刺激电极、引导电极及地线等接线连好（神经干粗端置于刺激电极处，细端置于记录电极）。
3．观察与纪录
（1）寻找阈刺激和最大刺激先将刺激强度设为零，再逐渐增大，直至出现动作电位时（此时的刺激强度即为阈强度）；逐渐增大至动作电位幅度达到最大值为止，该强度的刺激为最大刺激（记下该强度值）。
（2）测定传导速度测量两记录电极之间的距离s（mm）和传导所用时间t（ms），然后，根据公式v=s/t，
计算出传导速度。
（3）观察不应期给神经干最大刺激强度使之出现两个大小相等的动作电位，如果出现则用改变刺激间隔的时间，逐渐缩短两刺激间隔时间至第2个动作电位刚好变小，此时的刺激间隔时间即为动作电位的恢复周期。
如再逐渐缩短刺激间隔时间，第2个动作电位刚好消失，则该不应期为绝对不应期。
记下绝对不应期，动作电位恢复周期减去绝对不应期就等于出相对不应期。
（4）观察双相动作电位及单相动作电位以上观察到的都是双相动作电位，用小镊子将两根引导电极（Υ1至Υ2）间的神经干夹伤，可见动作电位的第二相消失，变为单相动作电位。
【注意事项】
1．神经干标本分离越长越好且要剥离干净，但又不能损伤神经主干。
分离时应用眼科剪小心剪去神经分支及周围结缔组织，切忌撕拉。
2．神经干标本应与记录电极紧密接触，特别要注意与中间接地电极的接触。
神经干不能打折，并经常保持湿润，又要注意防止电极间短路。
3．刺激强度应要从最小的强度开始，逐步增加刺激强度，且持续刺激时间不宜过长，防止损伤神经干。
【思考题】
1.为什么记录到的双相动作电位的第一相和第二相的波形、幅值不对称？
2．简述双相动作电位和单相动作电位的产生原理。
两者在时程和幅度上有何不同？
3．为什么在一定范围内，神经干动作电位的幅度随着刺激强度增大而增大？这与动作电位产生的“全或无”现象有无矛盾？。