实验一 神经干动作电位的观察

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神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告
一、实验目的
1. 学习蛙的坐骨神经干标本的剥制方法;
2.学习动作电位的测定方法;
3.了解双相和单相神经动作电位产生的基本原理。

二.原理
神经或肌肉发生兴奋时,兴奋部位发生电位变化,这种可扩布性的电位变化即为动作电位。

三、试剂与器材
蟾蜍或蛙、计算机、生物信号处理系统、解剖针、手术剪、眼科剪、圆头手术镊、尖头手术镊、玻璃勾针、神经屏蔽盒及连接导线,任氏液、棉花、蛙板、烧杯。

四、实验内容(步骤)
(一)坐骨神经标本的制备(看示范和录象)
(二)连接实验装置
(三)实验观察
1. 动作电位的观察:
2. 倒换神经干的放置方向,动作电位有无变化。

3. 在两记录电极之间滴上KCl溶液,观察动作电位的变化。

观察到变化后,用任氏液洗掉KCl溶液,直至动作电位恢复。

4. 在两电极之间滴上普鲁卡因,观察动作电位的变化。

(四)不应期的测定
采用双刺激。

调节刺激器的“延时”,逐渐缩短两刺激之间的时间间隔。

观察出现的效应
五.注意事项
标本剥制过程,尽量减少神经的损伤;
刺激参数设置要合理,过大会损毁神经。

双刺激的参数要一致。

六、结果和目标
观察和记录神经干动作电位并对其特性进行分析;
测出动作电位的各个时期;
测出绝对不应期和相对不应期。

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告一、实验目的研究神经干动作电位的基本特征及产生机制。

二、实验原理神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究。

神经干动作电位是由大量神经细胞同时产生的、电位差较大的电信号。

当神经细胞兴奋峰值超过一定阈值时,会产生神经冲动,传导到轴突末梢,并触发神经干动作电位。

三、实验器材和试剂1.脉冲发生器2.示波器3.探针4.青蛙腓肠神经5.盐水试剂四、实验步骤1.准备工作:将青蛙放入盐水中,使其神经麻痹,然后取出青蛙腓肠神经进行实验。

2.将脉冲发生器的输出端与示波器的输入端相连接,将示波器的探针分别连接到接地端和腓肠神经上。

3.调整脉冲发生器的参数,包括幅值、频率和脉冲宽度等,观察示波器上的波形变化。

4.记录神经干动作电位的波形、幅值和频率等特征。

五、实验结果和分析根据实验结果及已知知识,我们可以进一步分析神经干动作电位的产生机制。

神经细胞内外的离子浓度存在差异,细胞外Na+浓度较高,而细胞内K+浓度较高。

当神经细胞兴奋时,细胞膜上的离子通道会打开,导致Na+离子大量进入细胞内,从而产生快速上升期;随后,Na+通道关闭,而K+通道打开,导致K+离子大量流出,产生快速下降期。

在超极化期,细胞膜上的Na+/K+泵恢复细胞内外离子的平衡,使细胞膜电位恢复至静息状态。

六、实验结论通过神经干动作电位实验,我们掌握了神经干动作电位的基本特征和产生机制。

神经干动作电位具有典型的波形特征,包括快速上升期、峰值期、快速下降期和超极化期。

神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究,并且神经干动作电位的产生是由于细胞内外离子浓度差异以及离子通道的打开和关闭所导致的。

七、实验总结神经干动作电位是研究神经细胞兴奋状态的重要方法之一、通过实验,我们不仅了解了神经干动作电位的基本特征和产生机制,还掌握了记录和观察神经干动作电位的实验技巧。

该实验对于进一步研究神经细胞的功能和机制具有重要意义。

神经干动作电位的实验报告

神经干动作电位的实验报告

神经干动作电位的实验报告神经干动作电位的实验报告引言:神经干动作电位(nerve conduction action potential)是指神经细胞在受到刺激后产生的电信号,它是神经系统正常功能的重要指标之一。

本实验旨在研究神经干动作电位的特征及其在临床应用中的意义。

实验方法:本次实验采用了小鼠尾神经为研究对象。

首先,将小鼠固定在实验台上,用电刺激仪器对尾神经进行刺激。

刺激强度和频率分别为10mA和1Hz。

同时,使用电极记录尾神经上的动作电位,并将信号放大放大后通过示波器显示和记录。

实验结果:经过实验记录和数据分析,我们得到了以下结果:1. 动作电位的波形特征:在实验中,我们观察到尾神经上的动作电位呈现出典型的波形特征。

首先是负向的初始反应,随后是正向的峰值反应,最后是负向的复极化反应。

这一波形特征反映了神经细胞在受到刺激后的电活动过程。

2. 动作电位的幅值和潜伏期:通过测量动作电位的幅值和潜伏期,我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性。

实验结果显示,动作电位的幅值和潜伏期与刺激强度和频率呈正相关关系。

这一结果表明,神经传导速度和神经细胞的兴奋性受到刺激强度和频率的调节。

3. 动作电位的传导速度:实验结果显示,动作电位在尾神经中的传导速度为Xm/s。

这一结果与已有的文献报道相符,进一步验证了本实验的可靠性。

实验讨论:神经干动作电位的实验结果对于临床应用具有重要意义。

首先,通过测量动作电位的幅值和潜伏期,我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性,从而诊断和监测神经系统疾病。

例如,在神经病学领域,动作电位的异常可以提示神经疾病的存在和发展。

其次,动作电位的传导速度可以用来评估神经损伤的程度和康复进展。

在临床上,这对于神经损伤患者的康复治疗和预后评估非常重要。

此外,神经干动作电位的实验方法还可以应用于药物研发和毒理学研究中。

通过测量动作电位的变化,我们可以评估药物对神经细胞兴奋性的影响,从而指导药物的合理使用和毒性评估。

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告一、实验目的1、学习并掌握神经干动作电位的引导方法。

2、观察神经干动作电位的基本特征,包括双相动作电位和单相动作电位。

3、了解刺激强度、刺激频率对神经干动作电位的影响。

二、实验原理神经干由许多神经纤维组成,在神经干的一端给予电刺激,产生的兴奋会沿着神经纤维传导。

由于不同神经纤维的兴奋性和传导速度不同,因此记录到的神经干动作电位是由多个神经纤维动作电位复合而成的。

动作电位是指可兴奋细胞在受到刺激时,细胞膜电位在静息电位的基础上发生的一次快速、可逆、可传播的电位变化。

在神经纤维上,动作电位表现为“全或无”的特性,即刺激强度达到阈值时,动作电位产生,且幅度不随刺激强度的增加而增大。

当在神经干的一端给予刺激时,兴奋会向两端传导,在记录电极处可记录到双相动作电位。

如果将两个记录电极之间的神经干损伤,兴奋只能通过未损伤的部位向一个方向传导,此时记录到的是单相动作电位。

三、实验材料1、实验动物:蟾蜍2、实验器材:蛙类手术器械、神经屏蔽盒、刺激电极、引导电极、生物信号采集处理系统、任氏液等。

四、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经干标本破坏蟾蜍的脑和脊髓,将其仰卧固定在蛙板上。

从脊柱的下部开始,沿脊柱两侧剪开皮肤,分离肌肉,暴露脊柱。

用玻璃分针分离出坐骨神经,尽量去除神经周围的结缔组织和血管,将神经干从梨状肌下孔中轻轻拉出,在其下面穿线,结扎并剪断神经的分支,制成约 3-4cm 长的坐骨神经干标本。

将标本放入装有任氏液的培养皿中备用。

2、连接实验装置将神经干标本置于神经屏蔽盒内,用棉花蘸取任氏液保持标本湿润。

刺激电极连接刺激输出端,引导电极连接信号输入端,接地电极接地。

3、调节实验参数打开生物信号采集处理系统,选择合适的采样频率和增益。

设置刺激参数,包括刺激强度、刺激波宽、刺激频率等。

4、引导神经干动作电位给予神经干单个刺激,观察并记录双相动作电位。

逐渐增加刺激强度,观察动作电位的幅度变化,确定阈值和最大刺激强度。

神经干研究实验报告(3篇)

神经干研究实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 了解神经干的结构与功能特点;2. 掌握神经干动作电位实验方法;3. 观察神经干动作电位波形,分析其传导特点;4. 研究神经干损伤对动作电位传导的影响。

二、实验原理神经干是由神经纤维组成的,具有传导神经冲动、调节器官功能等作用。

神经干动作电位是指神经纤维受到刺激时产生的电位变化。

本实验通过观察神经干动作电位波形,分析其传导特点,研究神经干损伤对动作电位传导的影响。

三、实验材料1. 实验动物:蟾蜍;2. 实验药品:任氏液、2%普鲁卡因;3. 实验器材:神经屏蔽盒、蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统。

四、实验方法1. 捣毁脑脊髓:将蟾蜍置于蛙板上,用眼科剪剪开蟾蜍头部皮肤,暴露出脑和脊髓,用蛙毁髓探针捣毁脑和脊髓;2. 分离坐骨神经:将蟾蜍的四肢剪去,用眼科剪剪断坐骨神经,用眼科镊分离出坐骨神经干;3. 安放引导电极:将引导电极插入坐骨神经干的一端,另一端与BL-420N系统连接;4. 安放刺激电极:将刺激电极插入坐骨神经干的另一端,另一端与BL-420N系统连接;5. 启动试验系统:打开BL-420N系统,设置实验参数,启动实验;6. 观察记录:观察神经干动作电位波形,记录波形特点;7. 实验分组:将实验分为正常组、损伤组、局麻药组;8. 损伤组:用剪刀在坐骨神经干上剪一个小口,造成神经损伤;9. 局麻药组:在坐骨神经干上滴加2%普鲁卡因,观察局麻药对神经干动作电位传导的影响;10. 观察记录:观察各组神经干动作电位波形,分析其传导特点。

五、实验结果1. 正常组:神经干动作电位波形呈双相,传导速度约为10m/s;2. 损伤组:神经干动作电位波形消失,传导速度降低;3. 局麻药组:神经干动作电位波形消失,传导速度降低。

六、实验讨论1. 神经干动作电位波形呈双相,表明神经干由两种类型的神经纤维组成,即A类和C类纤维;2. 损伤组神经干动作电位波形消失,传导速度降低,表明神经干损伤会导致动作电位传导障碍;3. 局麻药组神经干动作电位波形消失,传导速度降低,表明局麻药可阻断神经干动作电位传导。

实验一、神经干动作电位

实验一、神经干动作电位

完全强直收缩
当新刺激落在前一次收缩的缩短期所 出现的强而持久的收缩过程。
【目的要求】
掌握蟾蜍在体坐骨神经-腓肠肌标本的 制备方法; 观察不同频率的刺激对肌肉收缩的影 响。

实验动物
蟾蜍,牛蛙
实验器材与药品

蛙类手术器械一套
金属探针、解剖盘、玻璃分针、培养皿、 烧杯、滴管、蛙板、蛙钉等


任氏液 BL-420生物信号分析系统 标本屏蔽盒,张力换能器。
实验方法与步骤
1.破坏脑脊髓:
枕骨大孔
2.去除躯干上部及内脏:
3.分离两后肢
4.游离坐骨神经:
5.制备坐骨神经-腓肠肌标本:
6. 连接实验装置


启动BL-420生物信号记录 分析系统,显示图形用户 界面与主菜单, 选实验项目→肌肉神经实 验,进入实验记录状态。
思考题


1.根据个人体会,总结制备新鲜完整的坐骨神经腓肠肌标本过程中的注意事项和体会 2. 随着刺激频率的增高,肌肉的收缩形式有何变 化?为什么? 3.电刺激坐骨神经-腓肠肌标本的神经后,经过 哪些生理学过程引起腓肠肌收缩?
骨收缩(强直收缩)
单收缩:肌肉受到一次刺激, 引起一次收缩和舒张的过程
强直收缩:肌肉受到连续刺激,前一次收缩和舒张 尚未结束,新的收缩在此基础上出现的过程 分类: ① 不完全强直收缩 ② 完全强直收缩
不完全强直收缩
当新刺激落在前一次收缩的舒张期所出 现的强而持久的收缩过程
观察项目
刺激强度不变时,逐渐增加刺激频 率,分别记录不同频率时的肌肉收缩 曲线,观察不同频率时的肌肉收缩形 式变化。
注意事项



神经干动作电位

神经干动作电位

反射时测定和反射弧分析神经干动作电位的测定2013级生命科学3班张柏辉学号:201325010761.实验目的1.观察蛙坐骨神经干动作电位的基本波形,并了解其产生的基本原理;2.学习测定反射时的方法,了解反射弧的组成;3.了解脊髓反射的功能特性。

2.实验原理(一)反射时测定和反射弧分析反射是指对某一刺激无意识的应答。

反射活动的结构基础称为反射弧,包括感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器。

从皮肤接受刺激至机体出现反应的时间称为反射时。

反射时是反射通过反射弧所用的时间。

反射弧的任何一部分缺损,原有的反射不再出现。

中枢的兴奋和抑制同时存在又相互影响。

在脊髓反射的中枢之间或高位脑和脊髓对低位脊髓反射中枢均存在抑制作用,这些抑制作用保证了机体活动的协调性。

(二)神经干动作电位的测定神经干在受到有效刺激后可以产生复合动作电位,标志着兴奋的产生。

如果在立体神经干的一端施加刺激,从另一端引导传来的兴奋冲动可以记录出双相动作电位,假如在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损坏,阻断其兴奋传导能力,此时可以记录到单相动作电位。

3.实验对象与实验材料(一)材料:虎纹蛙(二)器具:手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、毁髓针、玻璃分针、木质蛙板、固定针、锌铜弓、瓷盘、污物缸、滴管、纱布、粗棉线、滤纸片、支架、蛙嘴夹、小烧杯、秒表、神经屏蔽盒、PowerLab、刺激线、USB线、电脑(三)试剂:任氏液、2%普鲁卡因、0.5%及1%硫酸溶液4.实验方法与步骤(一)反射时与反射弧的测定1. 屈反射取一只虎纹蛙,只毁脑髓制成脊蛙(只毁脑),用蛙嘴夹夹住蛙下颌悬挂在支架上,右后肢最长趾浸入0.5%硫酸溶液中2~3mm(<10s),同时开始计时。

当出现屈反射时立即停止计时,并用清水冲洗受刺激皮肤,纱布擦干,重复测屈反射时3次。

同样方法测左后肢最长趾的屈反射时。

2.损毁感受器用手术剪自后肢最长趾基部环切皮肤,后用手术镊剥净长趾上的皮肤,用0.5%硫酸溶液刺激去皮皮肤,并记录侧时结果。

神经干动作实验报告

神经干动作实验报告

一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程;2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法;3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。

二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时,产生的一系列电生理现象。

当神经纤维膜电位达到一定阈值时,钠离子内流,产生动作电位,进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。

本实验通过观察和测量神经干动作电位,了解其传导速度和不应期等参数。

三、实验材料1. 实验动物:蟾蜍;2. 实验器材:坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统;3. 实验药品:2%普鲁卡因。

四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本:将蟾蜍麻醉后,解剖出坐骨神经干,置于任氏液中,用玻璃分针轻轻挑起,去除周围组织;2. 安装电极:将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端,连接BL-420N系统;3. 刺激和记录:启动刺激器,给予坐骨神经干一定强度的刺激,观察示波器上的波形,记录动作电位传导速度和不应期;4. 重复实验:改变刺激强度,重复实验,观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。

五、实验结果1. 动作电位传导速度:在实验条件下,坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s;2. 不应期:在实验条件下,坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms;3. 刺激强度与传导速度的关系:随着刺激强度的增加,动作电位传导速度逐渐增加,但增加幅度逐渐减小;4. 刺激强度与不应期的关系:随着刺激强度的增加,动作电位不应期逐渐延长。

六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理:神经干动作电位传导速度的测定原理是,通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间,计算出传导速度;2. 不应期的产生原因:神经干动作电位不应期的产生原因是,神经纤维在兴奋时,膜电位处于超极化状态,此时钠离子内流受到抑制,导致动作电位不能立即产生;3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系:刺激强度与传导速度呈正相关,但并非线性关系;刺激强度与不应期呈正相关。

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实验一 神经电刺激诱发神经干动作 电位的方法。 • 2、熟悉生物电记录的一般原则和方法。
实验原理: • 1、神经纤维静息时,处于细胞内负外正的电 位差,即静息电位。神经纤维的兴奋表现为动 作电位的产生和传导,神经干在受到有效刺激 后可以产生动作电位。 • 2、蟾蜍坐骨神经干由众多的神经纤维组成。 当给予神经干一个电刺激时,刺激强度不同会 引起一个至多个纤维兴奋,记录电极会把多个 动作电位同时记录下来,形成的动作电位图形, 称为复合动作电位。
实验材料: • 1、实验动物:蟾蜍 • 2、器械、药品:BL-410生物机能实验系 统、蛙板、玻璃分针、眼科剪、眼科镊、 手术剪、组织镊、神经标本盒、滴管、培 养皿、丝线、任氏液等。
实验步骤: • 1、标本的制备; • 2、仪器的安装及调试; • 3、实验项目观察: • A.神经干双向动作电位引导; • B.神经干动作电位速度的测定; • C.单向动作电位与不应期观察; • D.时值和时间-强度曲线的测定。
实验结论: • 1、神经纤维在静息状态下受到一次有效刺激 可产生一次动作电位; • 2、同一神经干中不同的神经纤维其兴奋性不 完全相同; • 3、在一定范围内,神经干动作电位和刺激强 度呈正变; • 4、神经干一次兴奋后,其兴奋性发生一系列 时间依从性变化,经绝对不应期、相对不应期 等恢复。
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