TK基因重组缺陷山羊痘病毒构建及其生物学特性鉴定
山羊痘病毒PCR检测方法的建立及应用

山羊痘病毒PCR检测方法的建立及应用白艳艳;张斌;郝玉青;高艳;刘万华;白崇生;刘健鹏;韩斌;杨德全【摘要】为了更快、更准确的诊断山羊痘(Goat pox),根据GenBank上已公布的山羊痘病毒(GTPV)的基因序列,针对p32基因的保守序列设计并合成一对能特异性扩增山羊痘病毒的引物,扩增产物大小约为983 bp.经过反应条件的优化,建立了山羊痘病毒PCR检测方法,对所建立的PCR反应体系的特异性和灵敏性进行了评价,并用此方法对9份临床样品进行了检测.结果显示,该诊断方法与3种非羊痘病毒不发生交叉反应.该方法最低浓度检测限为0.4 pg.在检测的临床样品中,GTPV阳性有3 份.结果表明,所建立的方法具有良好的特异性和敏感性,适合临床诊断应用.【期刊名称】《动物医学进展》【年(卷),期】2017(038)009【总页数】4页(P10-13)【关键词】山羊痘;聚合酶链反应;敏感性;特异性【作者】白艳艳;张斌;郝玉青;高艳;刘万华;白崇生;刘健鹏;韩斌;杨德全【作者单位】榆林市动物疫病预防控制中心,陕西榆林 719000;榆林市动物卫生监督所,陕西榆林 719000;榆林市动物疫病预防控制中心,陕西榆林 719000;榆林市动物疫病预防控制中心,陕西榆林 719000;榆林市动物疫病预防控制中心,陕西榆林719000;榆林市动物疫病预防控制中心,陕西榆林 719000;榆林市动物疫病预防控制中心,陕西榆林 719000;榆林市动物疫病预防控制中心,陕西榆林 719000;上海市动物疫病预防控制中心,上海 201103【正文语种】中文【中图分类】S852.659.1;S854.43山羊痘(Goat pox)是由山羊痘病毒(Goat pox virus,GTPV)引起的一种以发热、无毛或少毛部位皮肤出现痘疹为特征的急性、热性、高度接触性传染病,在世界许多国家和地区发生和流行,造成巨大的经济损失。
被世界动物卫生组织(OIE)列为必须报告的动物疫病,我国将其列为一类动物疫病[1-4]。
羊痘病毒及其疫苗研究进展

羊痘病毒及其疫苗研究进展赵志荀;吴国华;颜新敏;张强【摘要】国内外已对羊痘病毒及对羊痘的预防控制做了大量的研究工作.羊痘病毒的流行病学特征、分离及体外培养、体外检测已有了较快的发展,而其致病机制和基因组结构、分子表位、结构蛋白及非结构蛋白等分子生物学特征的研究尚待逐渐进入更加深入的研究.近年来的研究主要是针对结构基因如p32的各类载体的构建、表达和对非结构基因如TK基因的研究及其缺失载体的构建、IRT的功能研究等等.全面而深入的分子生物学和免疫学基础的研究,将为发展更为有效的检测诊断方法,并为安全有效的亚单位疫苗、重组疫苗及核酸疫苗的研制奠定基础.【期刊名称】《动物医学进展》【年(卷),期】2010(031)004【总页数】5页(P77-81)【关键词】羊痘病毒;毒力相关基因及蛋白;ITR基因及分子诊断;疫苗【作者】赵志荀;吴国华;颜新敏;张强【作者单位】中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州 730046;甘肃农业大学动物医学院,甘肃兰州,730070;中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州 730046;中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州 730046;中国农业科学院兰州兽医研究所,家畜疫病病原生物学国家重点实验室农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州 730046【正文语种】中文【中图分类】S852.654羊痘病毒(Capripox virus,CPV)是最重要的动物痘病毒,在分类地位上属于痘病毒科(Poxviridae)脊椎动物痘病毒亚科(Chordopoxrinae)中的羊痘病毒属(Capripoxvirus)成员,包括山羊痘病毒(Goat pox virus,GPV)、绵羊痘病毒(Sheep pox virus,SPV)和牛结节疹病毒(Lumpy skin disease virus,LSDV)[1]。
山羊痘病毒RPO30蛋白的原核表达及其单克隆抗体的制备

中-兽医科学2020,50(12): 153 卜 1536Chinese Veterinary Science网络首发时间:2020-10-16 D O I:10.16656/j.issn. 1673-4696.2020.0200 中图分类号:S852.659.1文献标志码:A文章编号:1673-4696 (2020)12-153卜06山羊痘病毒RPO30蛋白的原核表达及其单克隆抗体的制备陈冬杰,魏方,林祥梅,吴绍强*(中国检验检疫科学研究院动物检验与检疫研究所,北京100176)摘要:为了研究山羊痘病毒R N A聚合酶亚基R P O30蛋白功能,构建了其原核表达质粒p E T28a-R P O30 和p G E X-6p-卜R P O30,并进行了诱导表达和纯化。
将纯化的His-R P O30蛋白免疫B A L B/c小鼠,并将免疫小鼠脾细胞与骨髓瘤细胞S P2/0融合,通过筛选得到了能够稳定分泌与R P O30蛋白特异性反应的单克隆抗体的杂交瘤细胞株7E5。
对该单克隆抗体的轻链和重链类型进行测定,发现其重链为I g G2b亚型,轻链为k 亚型。
经测定,单克隆抗体7E5的腹水效价可达1 : 128 000。
R P O30单克隆抗体的制备将为该蛋白功能的研究提供有力工具。
关键词:山羊痘病毒;R P O30蛋白;原核表达;单克隆抗体Prokaryotic expression and monoclonal antibody preparation ofgoatpox virus RPO30 proteinCHEN Dong-jie,WEI Fang,LIN Xiang-mei,WU Shao-qiang*(The Institute o f A nimal Quarantine , Chinese Academy o f Inspection and Quarantine .Beijing \ 00176, China)Abstract:To study the function of goatpox virus RNA polymerase subunit RP030,the prokaryotic expression plasmids pET28a-RP030 and pGEX-6p-l~RP030 were constructed for further expression and purification. The purified His-RP030 was then used to immunize BALB/c mice. Through cell fusion of SP2/0 and the immunized mice spleen cells,we got the hybridoma cell strain 7E5 which could stably secrete monoclonal antibody and specially react with RP030. The determination of monoclonal antibody 7E5 heavy chain and light chain types indicated that the heavy chain was IgG2b subtype and the light chain was k subtype. The titer of the ascitic fluid could reach to 1: 128 000. The preparation of RP030 monoclonal antibody provides a powerful tool for its further functional study.Key words:goatpox virus;RP030 protein;prokaryotic expression;monoclonal antibody* Corresponding author:WU Shao-qiang, E-mail :sqwu@sina. com山羊痘(g〇a t p o x,G T P)是由痘病毒科山羊痘病毒属的山羊痘病毒(goatpox virus,G T P V)感染山羊引起的一种急性、热性和高度接触性传染病。
山羊痘病毒p32基因原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立

山羊痘病毒p32基因原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立王芳;雷震;于力【期刊名称】《中国预防兽医学报》【年(卷),期】2009(031)012【摘要】为了建立山羊痘病毒(GPV)抗体快速检测方法,本研究通过人工合成密码子优化的GPV p32基因,并在大肠杆菌中进行截短表达(p32-opti).表达的重组p32-opti蛋白主要以包涵体形式存在,Western blot分析表明,p32-opti与GPV 标准阳性血清具有良好的抗原性.以纯化的重组p32-opti蛋白作为ELISA包被抗原,建立间接ELISA抗体检测方法.该方法检测小反刍兽疫、蓝舌病和口蹄疫阳性血清均无交叉反应;与中和试验(VNT)比较,两者的符合率为95.7%;ELISA批内和批间重复性试验显示,OD值的变异系数小于10%.上述结果表明.该ELISA检测方法具有良好的特异性、敏感性和重复性.对来自黑龙江、内蒙古和新疆自治区的390份山羊和绵羊血清进行检测,抗体阳性率为80.2%,表明这些地区的山羊和绵羊群普遍存在羊痘病毒抗体.本研究建立的间接ELISA方法可用于GPV感染的流行病学调查以及疫苗接种动物的抗体水平监测.【总页数】4页(P945-948)【作者】王芳;雷震;于力【作者单位】中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室/大动物传染病研究室,黑龙江,哈尔滨,150001;中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室/大动物传染病研究室,黑龙江,哈尔滨,150001;中国农业科学院哈尔滨兽医研究所兽医生物技术国家重点实验室/大动物传染病研究室,黑龙江,哈尔滨,150001【正文语种】中文【中图分类】S854.4【相关文献】1.非洲猪瘟病毒p54基因的原核表达及其抗体的间接ELISA检测方法的建立 [J], 曹琛福;梁云浩;陶虹;花群义;曾少灵;杨俊兴;陈兵;张桂红;吕建强2.山羊副流感病毒3型N蛋白原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立 [J], 王咪;李文良;郝飞;毛立;杨蕾蕾;张纹纹;江杰元3.牛白血病病毒env(gp51)基因的克隆和原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立 [J], 周毅;吴玉石;段宏安;张睿;周祖涛;毕丁仁;石德时4.非洲猪瘟病毒p30基因的原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立 [J], 吴竞;王西西;吴映彤;任肖;郭晓宇5.非洲猪瘟病毒p30基因的原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立 [J], 吴继阳因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
表达小反刍兽疫病毒H基因的山羊痘病毒通用转移载体的构建及鉴定

表达小反刍兽疫病毒H基因的山羊痘病毒通用转移载体的构建及鉴定邵长春;高世功;张强;吴国华;颜新敏;李健;王建科;卢晓丽;赵志荀;崔丽凡【期刊名称】《农业科学与技术(英文版)》【年(卷),期】2009(010)003【摘要】[目的]这项研究是开发Peste Des Povits反刍动物的山羊痘病毒的活载体疫苗(PPR)。
[方法]使用PCR扩增技术,得到PPR H基因,然后连接到PGEM-T易载体中;通过NHEⅠ和HINDⅢ消化重组剂,并将其连接到PEGFP-N1-P7.5中,得到重组载体PEGFP-N1-P7.5-H;接下来,首先通过双重消化后Ⅲ和NHEⅠ消化的重组载体PEGFP-N1-P7.5-H首先从重组载体PEGFP-N1-P7.5-H释放表达烧录盒。
产生转移载体PUC119-TK-EGFP-P7.5-H。
[结果]鉴定和双酶消化表明,正确构建转移载体PUC119-TK-EGFP-P7.5-H.根据感染GTPVAV41的转移载体转染的BHK-21细胞,在第48小时转染后观察到特异性荧光。
[结论]山羊蓬蒿现场矢量建设奠定了PPR疫苗活载体疫苗的基础。
【总页数】5页(P15-18,35)【作者】邵长春;高世功;张强;吴国华;颜新敏;李健;王建科;卢晓丽;赵志荀;崔丽凡【作者单位】中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046;中国农业科学院兰州兽医研究所家畜疫病病原生物学国家重点实验室,农业部畜禽病毒学重点开放实验室,甘肃兰州,730046【正文语种】中文【中图分类】S8因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
山羊痘病毒p32基因原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立

万方数据 万方数据第12期王芳,等.山羊痘病毒p32基因原核表达及间接ELISA抗体检测方法的建立947用PBST作l:100稀释,37℃作用1h;HRP—IgG抗体用PBST作1:5000稀释,每孔100肚加入酶标板后37℃作用1h;加入TMB底物室温避光显色15min测定oD4‰值。
M:ProteinMarker;1:Purifiedp32。
optiprotein;2:InducedpET一28-p32-opti/BL21byIPTG;3:UninducedpET一28-p32-opti/BL21图1p32-opti蛋白表达的SDS—PAGE和w韶terrlblot鉴定结果Fig.1TheSDS-PAGE(A)andwesteID.blot(B)malysisoftheexpl黜drecombinantp32-opti为确定ELISA方法的判断标准,选择中和试验检测为|!Ij性和阳性的血清各30份进行ELISA检测,结果阳性血清oD。
‰值的范围为0.39~1.22,阴性血清OD值的范围为0.23~0.36,阴性血清平均值为0.3l,标准差为0.026(图2)。
由此确定,该ELISA方法的Cut-off值(+2sD)为0.35,即血清样品0D。
加值≥o.35为抗体阳性,OD伽。
值<O.35为抗体阴性。
p32.optiELISA喜>。
》oVNpositiveVNnegaave叶..·r..’..—‘...-’+·..一Numberof图2p32-optiELISA方法Cut.off值的确定Fig.2Cut-offvalueofp32-optibasedELISA2.3敏感性试验对70份山羊血清分别进行ELISA和微量中和试验检测,中和试验程序参照OIE标准方法,结果中和试验检出50份阳性和20份阴性血清,而p32.optiELISA方法检出47份阳性和23份阴性血清,二者符合率为95.7%(表1)。
山羊痘病毒P32蛋白的原核表达及其免疫原性研究
山羊痘病毒P32蛋白的原核表达及其免疫原性研究成伟伟,陈伯祥,杨 明,李 杰(甘肃省畜牧兽医研究所,甘肃平凉 744000)摘 要:为表达山羊痘病毒P32蛋白并研究其免疫原性,构建了含有P32基因的重组表达质粒pET-P32,诱导表达和纯化了P32蛋白;分别运用SDS-PAGE和Western blot,对该蛋白进行了分析和生物活性鉴定;用分析鉴定后的P32蛋白免疫BALB/c小鼠,然后采集小鼠血清,用间接ELISA进行抗体检测;用小鼠脾淋巴细胞增殖试验,检测该蛋白对机体的细胞免疫活性。
结果显示:表达纯化的含有GST标签的P32重组蛋白,大小约39 kDa;Western blot显示 P32重组蛋白具有较好的特异性;间接ELISA抗体检测和小鼠脾淋巴细胞增殖试验表明P32重组蛋白具有良好的免疫原性。
本试验结果为深入研究P32蛋白的生物学功能以及对山羊痘的诊断与防治奠定了基础。
关键词:山羊痘病毒;P32蛋白;免疫原性中图分类号:S851.3 文献标识码:A 文章编号:1005-944X(2017)11-0094-05DOI:10.3969/j.issn.1005-944X.2017.11.025Prokaryotic Expression and Immunogenicity Research on P32 Protein of Goatpox VirusCheng Weiwei,Chen Boxiang,Yang Ming,Li Jie(Gansu Institute of Animal and Veterinary Science,Pingliang,Gansu 744000)Abstract:To study the immunogenicity and expression of P32 protein from goatpox virus,a recombinant plasmids was constructed and named as pET-P32.The P32 protein was induced expression and purified,and was analyzed by SDA-PAGE,its biological activity was determined by Western blot. BALB/c mice were immunized with the purified and determined the recombinant P32 protein to produce immune serum. Polyclonal antibody from immune serum was detected by enzyme linked immunosorbent assay(ELISA),cellular immune function of P32 protein induced organic immune system was detected by experiment of spleen lymphocyte proliferation of mice. The results indicated that the expressed P32 protein,with about 39 KDa molecular weight,showed a good antibody specificity by Western blot,the P32 protein showed a good immunogenicity by enzyme linked immunosorbent assay(ELISA)and experiment of spleen lymphocyte proliferation of mice. The results laid the solid foundation for the further study on biological function of P32 protein and diagnosis and prevention of Goatpox virus.Key words:Goatpox virus;P32 protein;immunogenicity山羊痘是由痘病毒科羊痘病毒属山羊痘病毒(Goatpox virus,GTPV)引起山羊及绵羊的一种急性、热性、高度接触性传染病[1]。
1例山羊痘的诊治
养殖与饲料2016年第1期图1PCR 扩增电泳结果M :DL1000bp ;-:阴性对照;+:阳性对照;1、2:病料摘要山羊痘是由山羊痘病毒引起的一种高度接触性传染病,本文结合临床症状和实验室检测确诊1例山羊痘,提出诊断及防治建议,供广大同行参考。
关键词山羊痘;诊断;防治1例山羊痘的诊治杜海燕1韩俊伟21.河南省新乡市动物疫病预防控制中心,河南新乡453000;2.河南省新乡市动物卫生监督所,河南新乡453000收稿日期:2015-11-10杜海燕,女,1983年生,硕士,助理兽医师。
山羊痘是由山羊痘病毒引起的一种高度接触性传染病,以无毛或少毛皮肤和黏膜处发生痘疹为特征。
某养殖场2015年9月份从外地引进山羊,3周左右羊群中有山羊发病,且有羊只陆续死亡。
使用抗病毒和抗菌药物效果均不明显。
结合临床症状和实验室检测确诊为山羊痘病毒引起的山羊痘病。
1发病情况引进山羊85只,有26只羊发病,发病率30.59%(26/85),死亡5只,死亡率19.23%(5/26),发病率较高。
发病前未进行山羊痘疫苗免疫。
临床症状表现为患羊精神颓废,咳嗽,叫声嘶哑,眼脸肿胀,眼结膜充血,流脓性眼泪,鼻腔中有脓性分泌物,淋巴结肿大,特别是耳朵、嘴唇、眼眶、腹部等无毛或少毛处有大小不一的痘疹,严重的全身痘疹。
2病理变化剖检病死羊,主要舌面、气管和肺部等处有蚕豆大小样痘疹。
气管中有脓性分泌物,脾脏边缘有突起,肺脏可见出血和水肿,有痘疹出现,心脏包膜下有结节,心肌出血。
3血清学检查采用山羊痘ELISA 抗体检测试剂盒,对发病羊群的20份羊血清样本进行山羊痘病毒血清抗体检测。
结果判定:样品孔OD 值-空白对照孔平均OD 值/阴性对照孔平均OD 值-空白对照孔平均OD 值≥2.1判为阳性;样品孔平均OD 值-空白对照孔平均OD 值/阴性对照孔平均OD 值-空白对照孔平均OD 值<2.1判为阴性。
结果显示羊群山羊痘病毒血清抗体阳性检出率为65%(13/20)。
SARS-CoV-2重组痘苗病毒疫苗rVTT△TK-RBD的构建、筛选及免疫原性研究
SARS-CoV-2重组痘苗病毒疫苗rVTT△TK-RBD的构建、筛选及免疫原性研究赵仁双;朱羿龙;尚超;韩继成;刘子睿;修志儒;李善智;李雅茹;杨霞;李霄;金宁一;金鑫;李一权【期刊名称】《细胞与分子免疫学杂志》【年(卷),期】2024(40)1【摘要】目的构建重组痘苗病毒载体疫苗rVTT△TK-RBD,并评价其安全性和免疫原性。
方法参考严重急性呼吸综合征冠状病毒2(SARS-CoV-2)基因序列合成受体结合域(RBD)基因,并将其插入自主构建的重组质粒pSTKE的多克隆位点上,构建重组痘苗病毒穿梭载体pSTKE-RBD,并转染到预先感染天坛株痘苗病毒(VTT)的BHK-21细胞内,经多轮的荧光噬斑筛选成功获得重组痘苗病毒rVTT△TK-RBD;通过滴鼻方式免疫小鼠后,检测rVTT△TK-RBD对BALB/c小鼠体质量的影响;通过肌肉免疫小鼠后,分析rVTT△TK-RBD对BALB/c小鼠产生的特异性抗体和中和抗体的水平;通过流式细胞术检测rVTT△TK-RBD对BALB/c小鼠T细胞亚群的影响。
结果利用同源重组、增强型绿色荧光蛋白(EGFP)筛选标记和多次荧光噬斑筛选,成功筛选获得了表达RBD的胸腺激酶(TK)基因缺失型重组痘苗病毒rVTT△TK-RBD,且PCR验证成功。
BALB/c小鼠体内实验表明rVTT△TK-RBD具有较好的抗SARS-CoV-2的免疫原性且相比于亲本株VTT明显降低了对机体的毒性作用。
结论成功构建并获得SARS-CoV-2重组痘苗病毒疫苗rVTT△TK-RBD并通过各项试验证明其安全性和免疫原性。
【总页数】7页(P19-25)【作者】赵仁双;朱羿龙;尚超;韩继成;刘子睿;修志儒;李善智;李雅茹;杨霞;李霄;金宁一;金鑫;李一权【作者单位】延边大学农学院预防兽医学实验室;长春中医药大学院士工作站;中国农业科学院长春兽医研究所【正文语种】中文【中图分类】Q784;R373.1;S942.5【相关文献】1.用免疫蚀斑方法筛选重组痘苗病毒疫苗株2.同时表达麻疹病毒L4株HA和F蛋白及人白细胞介素2(IL2)的重组痘苗病毒疫苗株的构建3.表达人乳头瘤病毒58型L1、L2壳蛋白的非复制型重组痘苗病毒疫苗株的构建4.人癌胚抗原重组痘苗病毒在动物体内免疫原性的研究5.表达乙型肝炎病毒表面抗原的非复制型重组痘苗病毒疫苗株RVJ123ΔCK的构建及其生物学性状鉴定因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
山羊ATF6基因重组慢病毒干扰载体的构建及鉴定
山羊ATF6基因重组慢病毒干扰载体的构建及鉴定付饶;李会玲;王磊;杨迪琦;温鑫;靳亚平【摘要】为了研究ATF6通路介导的山羊胎盘滋养层细胞(goat trophoblast cell,GTC)凋亡的作用机制,需要构建激活转录因子6(ATF6)基因慢病毒干扰载体用于试验.采用RNA干扰技术,设计合成以山羊ATF6基因CDS区为靶点的shRNA,构建重组慢病毒载体、慢病毒包装、慢病毒转染、RT-qPCR和Western blot等方法,筛选出干扰效率达60%的shRNA干扰片段,构建出可用于今后ATF6通路相关研究的重组慢病病毒干扰载体,为山羊妊娠相关研究提供材料.【期刊名称】《动物医学进展》【年(卷),期】2019(040)005【总页数】6页(P22-27)【关键词】激活转录因子6(ATF6);内质网应激;短发夹RNA(shRNA);慢病毒【作者】付饶;李会玲;王磊;杨迪琦;温鑫;靳亚平【作者单位】西北农林科技大学动物医学院,陕西杨凌 712100;陕西省畜牧技术推广总站,陕西西安 710016;西北农林科技大学动物医学院,陕西杨凌 712100;西北农林科技大学动物医学院,陕西杨凌 712100;西北农林科技大学动物医学院,陕西杨凌712100;【正文语种】中文【中图分类】S852.65细胞凋亡途径有线粒体、死亡受体以及内质网三种途径,病理条件引起内质网应激(endoplasmic reticulum stress,ERS)时,可由未折叠蛋白反应(unfolded protein response,UPR)缓解、恢复内质网(ER)稳态,但当ERS过于严重而不能逆转时就会诱导细胞的凋亡[1]。
激活转录因子6(ATF6)蛋白是Ⅱ型跨膜蛋白,具有ATF6α(90 ku)和ATF6β(110 ku)两种亚型,是UPR的三条主要通路的关键蛋白之一。
当细胞出现ERS时,ATF6就会与Grp78分离并由COPⅡ囊泡转运至高尔基体,被site-1蛋白酶和site-2蛋白酶剪切成为活性形式p50ATF6(50 ku),进入细胞核内与内质网应激反应元件(ER stress-response elements,ERSE)、UPR元件(UPR element,UPRE)等基因结合并激活其转录表达,从而改善ER的状态,促进细胞生存。
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南方农业学报JOURNAL OF SOUTHERN AGRICULTURE 2013.44(9):1552—1557 ISSN 2095—1 191;CODEN NNXAAB http://www.n ̄yxb.cn
DOI:10.3969 ̄:issn.2095—1191.2013.9.1552
基因重组缺陷山羊痘病毒构建 及其生物学特性鉴定
郑 敏 ,梁 晟 ,郑彦梓 ,兰 彬 ,韦显凯 ,苏娇秀・,郑列丰 ,李常挺, ( 广西动物疫病预防控制中心,南宁530001; 钦州市动物疫病预防控制中心,广西钦 Ji 535000 。隆安县动物疫病预防控制中心,广西隆安532700)
摘要:【目的】利用同源重组技术构建聪因缺陷的山羊痘病毒(GTPV)毒株,为研制出更安全、高效的GTPV, ̄j 毒疫苗和病毒载体提供备选毒株。【方法】采用PCR克隆GTPV Av41株订(基因(ORF56)及其侧翼基因组片段,在TK 基因内部插入报告基因EGFP和抗性基因 £表达盒,构建GTPV重组转移载体pTK—Eg。将重组转移载体pTK.Eg与 GTPV AV41株共转染Vero细胞,通过空斑纯化筛选阳性重组病毒,鉴定其生长特性和遗传稳定性,并接种山羊评价 其安全性和免疫原性。【结果】成功构建获得一株 基因缺陷的重组病毒vTK-Eg。与亲本毒株GTPV AV41相比, vTK-Eg的生长特性及其形成的细胞病变均未发生显著改变,只是毒价略微下降l0“ 个数量级;在原代牛睾丸(BT)细 胞上连续传代,至少在1O代内保持遗传性状和病毒滴度稳定。接种vTK—Eg的山羊精神和食欲均正常,接种后体温升 高和局部反应的严重程度均较接种亲本毒株GTPV Av4l的山羊有所降低;vTK.Eg与GTPV Av41株诱导山羊产生 的GTPV中和抗体水平无明显差异(P>0.05)。【结论】构建的丁K基因重组缺陷病毒vTK—Eg具有良好的遗传稳定性和 免疫原性,较亲本毒株其安全性也有所提高,可作为研r ̄JGTPV基因工程弱毒疫苗和活载体疫苗的备选毒株。 关键词:山羊痘病毒; 基因;重组病毒;基因缺陷;生物学特眭 中图分类号:¥852.654 文献标志码:A 文章编号:2095—1191(2013)09—1552—06
Construction and bio-characteristic of the recombinant goatpox virus with thymidine kinase gene(TK)deletion
ZHENG Min ,LIANG Sheng ,ZHENG Yan—zhi ,LAN Bin ,WEI Xian—kai , SU Jiao-xu ,ZHENG Lie-feng ,LI Chang-ring
( Guangxi CenterforAnimal Disease Control and Prevention,Nanning 530001,China; Qinzhou CenterforAnimal Disease Control and Prevention,Qinzhou,Guangxi 535000,China; Long’an Center for Animal Disease Control and Prevention, Longan Guangxi 532700,China)
Abstract:【Objective】This experiment was conducted to construct a recombinant goatpox virus(GTPV)with inactivat- ing thymidine kinase gene(TK)in order to develop a safe and high effective live attenuated GrrPV vaccine and viral vector. 【Method】Genome fragments of GTPV AV41 strain containing TK gene(0RF56)were cloned by PCR as flanking sequences for homologous recombinant.The trans;fer shuttle plasmid pTK—Eg was constructed by inserting the expression cassettes of EGFP gene and gpt gene.The pTK—Eg and GTPV AV41 were co—transfected into Vero cel1.and recombinant viruses were selected and screened by fluorescence.Then,recombinant viruses were examined by fluorescence and tittering during seri al passaging.Finally,the goats were in_jected with vTK-Eg in order to evaluate its safety and immunogenicity.【ResultlA recombinant GTPV with TK gene deleted was obtained and named as vTK—Eg.vTK—Eg remained almost the same growth pattern and specific CPE of its parental virus fAV41)in cell culture.The differentee between the titers of vTK—Eg and that of AV41 was only 10 fold.It kept genetic and titer stable in at least 10 generation in BT cel1.Furthermore.it had lower virulence in goats.causing less skin lesions and fever than those of its parental virus.However.there was no significant different(P>0.05)between the neutralizing antibody levels of goats injected by vTK—Eg and those of goats injected by AV41.I Conclusion】vTK—Eg had good genetic stability and immunogenicity,as well as better bio—safety.Therefore,it has the potential to be further developed as a genetic engineering attenuate vaccine strain. Key words:Goatpox virus(GTPV);TK gene;recombinant virus;gene deletion;bio—characteristic
0引言 【研究意义】山羊痘是由山羊痘病毒(Goatpox virus,GTPV) ̄I起的一种高度接触性传染病,以发热、
全身痘疮、结节和死亡为特征。山羊痘的发病率和死 亡率极高,是危害最为严重的家畜痘病毒病,现已被 世界动物卫生组织(OIE)和我国农业部分别列为需要
收稿日期:2012—12—30 基金项目:广西青年科学基金项目(2013GXNSFBB053006,桂科青0991042) 作者简介:郑敏(1975一),博士,副研究员,主要从事动物疫病诊断与防控技术研究工作,E—mail:zhgmn26@hotmai1.com 郑敏等:TK基因重组缺陷山羊痘病毒构建及其生物学特性鉴定 ・1553・ 报告的疫病和一类动物疫病。【前人研究进展】GTPV 隶属痘病毒科(PoXViridae)羊痘病毒属(Capripoxvirus), 具有充当病毒载体的潜力(郑敏等,2olo)。将裂谷热 病毒、蓝舌病病毒等病原体的免疫保护性抗原基因插 入GTPV复制非必需区构建重组病毒,其细胞内复制 能力和免疫原性均维持不变,但能实现一针预防多种 疫病的目的(Wallace and Viljoen,2005;Perrin et a1., 2007)。由于GTPV只能感染羊和小反刍兽,宿主特异 性很强,在研制活载体疫苗时具有生物安全性的天然 优势,因而受到广大科研工作者的日益重视(Shen et a1.,2011)。在我国山羊痘疫苗研究方面,主要是使用 温度敏感弱毒疫苗毒株AV41,其具有良好的免疫原 性,但制备的弱毒疫苗在接种某些地方山羊品种时偶 尔会引起不良反应,严重者可引起腹泻、全身发痘和 孕羊流产(黄国敏和韦春葵,2004;刘兴和,2007)。因 此,有必要借助基因工程手段研制出更加安全的新型 疫苗。 基因是痘病毒复制的非必需基因之一,多用 作构建重组病毒的外源基因插入位点。Balinsky等 (2007)研究报道,将属于强毒株的绵羊痘病毒SA株 基因缺陷后所获得的重组毒株毒力显著下降,仅 引起短暂的体温变化,未引起绵羊发病,甚至在接种 部位也不出现痘症。【本研究切入点】目前尚无通过缺 陷AV41株丁K基因获得毒力进一步降低GTPV毒株的 相关研究报道。【拟解决的关键问题】利用同源重组 技术构建丁K基因缺陷GTPV毒株,评价其生物学特性 及其在山羊体内的安全性和免疫原性,旨在为研制 出更安全、高效的GTPV弱毒疫苗和病毒载体提供备 选毒株。
1材料与方法 1.1试验材料 GTPV弱毒株(AV41)由广西动物疫病预防控制 中心保存,在原代牛睾丸(BT)细胞中培养;Vero细胞、 携带绿色荧光蛋白基因(EGFP)表达盒的质粒pMD. PEL—EGFP及携带大肠杆菌黄嘌呤~鸟嘌呤磷酸核糖 转移酶基因(apt)表达盒的质粒pKS—P75一gpt均由广 西动物疫病预防控制中心提供。Ex Taq DNA聚合酶、 dNTP、DNA Marker入一EcoRT14 I digest、DL2000 DNA Marker、DNA连接酶、限制性内切酶、pMD18.T载体及 病毒DNA/RNA提取试剂盒等均购自宝生物工程(大连) 有限公司;霉酚酸、黄嘌呤、次黄嘌呤购自Sigma ̄司。 1.2同源重组臂的扩增 按照病毒DNA/RNA提取试剂盒说明提取病毒 DNA,根据GenBank中GTPV AV41株的丁K基因序列 (AY773087.1),设计两对引物用于扩增长度约430 bp 的基因组片段,包含完整的丁K基因。TKL1:5'-TGGG CAAATAACTG TAAATAAAGGGTAC一3’(引入 apa I位点)和TKL2:5’一C Q !! △ ! TATAATGTCGAAATTCA一3’(引入Sal I、Hind III位点 及T5NT痘病毒早期转录终止信号序列)。TKR1:5'-T GGGCCCAAGCTTGAGCTCTTTTTGTAGGTATAG ATGAAGGGCAA.3’(引入Apa I、Hind III、Sac I位点 及T5NT痘病毒早期转录终止信号序列)和TKR2: 5’.GAGTTAGATATTTTGcTTGTTTcT.3’。PCR扩增 程序为:94℃预变性3 min;94℃1 min,57℃1 min, 72 1 min,进行10个循环;94℃1 min,55℃1 min, 72℃1 min,进行20个循环;72℃延伸10 min。扩增产 物经回收纯化后与pMD18.T连接,经测序正确的阳性 克隆分别命名为pMD—TKL和pMD.TKR。然后用Apa I 和Hind III消化pMD—TKL获得TKL片段,再与pMD— TKR载体连接获得质粒pTK。 1.3重组转移载体pTK—Eg的构建 用Hind III和Sac I消化pMD—PEL—EGFP获得 PEL.EGFP表达盒,然后克隆到同样消化的骨架质粒 pTK上获得pTK-EGFP。用BamI-I I消化pKS.P75一apt, 补平,再用Sal I消化获得表达盒P75.gpt;同时用Hind III消化pTK-EGFP,补平,用Sal I消化获得载体pTK. EGFP;将表达盒P75.gP内载体pTK-EGFP相连获得重 组转移载体pTK.Eg。 1.4重组病毒vTK—Eg的制备、筛选及纯化 当Vero ̄胞长满90%时,按0.05的感染复数(M.O. I值)感染GTPV 2 h,然后用脂质体Lipofectamine 2000 进行转染,当80%细胞出现细胞病变(CPE)时(约在第 7 d)收集病毒液。将收获的病毒液作10。、10铘10。51音稀 释,接种Vero细胞,培养基中加入霉酚酸(25 txg/mL)、 黄嘌呤(250 Ixg/mL)、次黄嘌呤(15 Ixg/mL),在37℃、 5%CO 的条件下培养7 d出现CPE后,荧光显微镜检 查是否出现荧光斑。用含胰酶的无菌滤纸片挑出荧 光蚀斑,并转至12孔板继续进行筛选和蚀斑纯化。 1.5重组病毒的细胞生长特性鉴定 将100 TCID50的重组病毒vTK.Eg与GTPV Av41株 分别接种BT细胞,分别培养24、48、72、96、120和144 h后 收获病毒并测定其半数组织培养感染剂量(TCID∞), 绘制病毒生长动力学曲线。 1.6重组病毒遗传稳定性 将纯化的重组病毒vTK.Eg在BT细胞上连续传 代,定期检查细胞状态,记录80%以上细胞出现CPE的 时间。如此连续培养10代,每5代提取病毒DNA进行 PCR检测,测定重组病毒TCID蚰。 1.7山羊接种试验 选取1岁龄健康杂交都安山羊12只,随机分为3 组,每组4只。第1组尾内侧皮内接种10 s TCID go.2