动物不同给药方式的特点

如果我没记错的话大鼠静脉注射最大给药量是5mL/kg（貌似是错了）1、大鼠灌胃大鼠灌胃是最多见的给药方法之一。

灌胃所用的针头可以从市场上采办，操作方法和小鼠灌胃神肖酷似，只是因为大鼠体积较大，抓大鼠的伎俩和小鼠有所差别。

大鼠灌胃是在清醒状况下举行的，不需要麻醉。

大鼠的灌胃针长约6～8cm，直径约1.2mm。

大鼠灌胃时，右首持灌胃打针器，左手拇指和食中二指相对于，捉住大鼠颈部皮肤，使大鼠的头部和颈部及躯干呈一直线，不需要固定大鼠的尾巴，就可以实行灌胃操作了，其余的操作均和小鼠一样。

大鼠一般灌胃量为1ml/100g身体的重量，是以一般大鼠灌入2ml是可以的。

大鼠的灌胃给药体积通常是5～10ml/kg。

但是药物的液体浓度是需要自己按照动物实验方法学的方法举行换算：200g大鼠对应70kg人的折算系数为0.018。

二、大鼠腹腔打针腹腔打针是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。

常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔打针。

大鼠腹腔打针的方法和小鼠基本相同。

1.大鼠腹腔打针可以用5ml的打针器，配合5.5～7号针头。

2.腹腔打针时右首持打针器，左手的小拇哥儿和无名指捉住大鼠的尾巴，别的三个手指头捉住大鼠的颈部，使大鼠的头部向下。

如许腹腔中的器官就会天然倒向胸部，防止打针器刺时髦毁伤大肠、小肠等器官。

进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。

3.尤其是对身体的重量较小的大鼠，腹腔打针时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿行腹中线后在腹部的另外一侧步入腹腔，打针完药物后，徐徐拔出针头，并轻细扭转针头，防止漏液。

4.大鼠腹腔打针的给药容积通常是5～10ml/kg。

3、大鼠尾静脉打针这也是常见的操作，稍微有点难度，没有指导的话，一开始有可能会感觉有点惊惶失措。

但是可以肯定的说，只要掌握了方法，大鼠的尾静脉打针照旧很容易的。

总的来说，大小鼠的尾静脉打针难度至关，谙练后，大鼠应该比小鼠打针更易，因为大鼠的尾巴较粗，而且血管也较粗，进针的手感比较好找。

但是大鼠年龄增大后，尾部鳞片也较厚，此时尾静脉打针难度会加大，进针点宜选择两个鳞片的间隙，以利于针尖顺利刺入。

操作步骤：1. 起主要固定大鼠，最简略的固定方法就是把大鼠麻醉，然后大鼠躺在那里不动，就可以顺利操作了。

但是咱们往往需要多次给药，就是单次给药的话，每只都麻醉的话，也很贫苦，而且还要思量麻醉对实验结果和动物的影响，是以，有必要找别的的方法固定了。

再有的固定方法就和小鼠近似，做1个圆筒，最好是金属做的，（可以在当地的铁匠铺，或者买白铁铺内里定做）起首是金属比较健壮，而且可以用来固定在铁架台上，利便操作。

圆筒的一段有个盖子可以拿下来，盖子中间有个小孔，可让大鼠的尾巴伸出来（中间的小孔可以用胶布缠一下，防止锐利的边沿割伤大鼠尾巴）。

别的一段可以用金属网的结构，网的形状可以做成枪弹头的头端形状。

网状结构可让光线透迩来，利便大鼠钻进圆筒内里。

圆筒的长度约15～20cm，直径约5～8cm，可以做个系列长度和直径的圆筒，合适差别大小的大鼠。

操作的时候，可以把圆筒固定在铁架台上面，有铁丝网的一壁稍微向上，拔下别的一头的盖子，捉住大鼠的尾巴，悬在空中大鼠，让大鼠的头部接近圆筒，稍微指导一下，大鼠就会钻进圆筒，将大鼠的尾巴穿行盖子中间的小孔，盖上盖子，向外拉直大鼠尾巴，就可以举行下一步操作了。

也有直接利用大鼠笼盖的铁丝网固定大鼠，向上面小鼠固定的方法固定大鼠，那是高手所为，统共只消一次到两次的静脉打针时可以试用，不保举施用。

2.固定好大鼠后就是打针了，一般用一次性的5ml的打针器，去除针头，接上5.5号的头皮针，用头皮针穿刺，小我私家感觉比较利便，而且便于固定针头。

3.打针前起主要让大鼠的血管充盈。

可以接纳75%的酒精棉球擦拭的方法或者接纳温水浸泡的方法，（一般水浴温度45度左右），梗概2分钟就可让尾部左右二侧静脉充实扩张，用电吹风的热风吹大鼠尾部，这种使静脉扩张的方法不但快而且操作利便，但要控制好吹的方式，不要弄伤动物。

若大鼠的血管很不清楚，保举接纳温水浸泡的方法，水温以不烫手为好。

温水浸泡2～3分钟后，掏出大鼠尾巴，用干棉球擦拭。

等一会儿，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了。

若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡，切不成冒险打针，除非你伎俩很谙练，另当别论。

4.大鼠尾部共有四条血管，一般以为左右的两条静脉比较容易打针，多接纳这两条静脉进针。

一般要求进针部位接近大鼠的尾端，如许若打针掉败的话，还可以再向上选择进针点。

但是进针部位也不成以太靠下，因为越往下，静脉越细，操作越难，一般以大鼠尾巴下三分之一的位置比较好。

5.最关键的就是进针了。

进针时操笔者左手食指和拇指固定住大鼠的尾巴，让大鼠的尾巴在经过拇指后向下屈曲，进针点接近拇指指甲。

针头和血管呈约30°角，针尖斜面朝上，轻轻挑刺入皮肤后针头立即和血管平行，一般情况下一次就可以步入血管，可以将针头刺入血管一大半，轻轻回抽针栓，看到有较着的回血，就可以推注药液了，正常情况下，推注的历程应该没有较着阻力，血管也不会兴起。

推液时动作宜轻柔，若发明血管兴起，那是针头没有刺入血管，需立即拔出针头，重新打针。

（正常情况下，都可以看到回血，若没有回血，9成是没有步入血管，不要推药，拔出针头，重新穿刺，以防推注药液引起大鼠尾巴皮下水肿，加大穿刺的难度，若是带有颜色的液体，如伊文斯兰，就更要注意）6.打针竣事后，轻轻拔出针头，可以用干燥的棉球压一下进针点，防止液体回漏。

4、大鼠舌静脉打针大鼠的舌静脉给药比较少见，因为他需要在麻醉状况下方可以操作。

不麻醉的情况下也不是不成以，但是若不麻醉的话，既不切合动物福利，也很容易掉败，而且操作职员也容易负伤。

一般在做垂体后叶素致大鼠心肌缺血的实验中，垂体后叶素的静脉打针接纳舌静脉打针。

1.舌静脉打针一般接纳1ml打针器，配4号针头。

2.大鼠麻醉后，仰卧位固定在鼠板上，牙齿也固定好。

右首持眼科镊，轻轻拉出大鼠舌头，左手拇指和食指轻轻捏住舌尖，可见大鼠舌头双侧均有一条很清楚的静脉，一般右侧的比较顺手（我是右撇子），左手稍微绷紧大鼠舌头，不要绷的太紧，如许静脉会看的不清楚，以能拉直大鼠舌头，且能清楚看到血管为好。

3.右首持打针器，针尖斜面朝上，和舌头血管呈15°角，挑刺入血管。

（舌静脉非常浅，针尖挑刺舌面皮肤后就步入血管了），轻轻推注药液，若发明舌头有兴起，则是打针掉败。

如许打针点很容易出很多学，形成血肿，这侧静脉想再次打针就很坚苦了，那么最好就选用别的一侧静脉了。

4.舌静脉血流很富厚，拔针时必患上用干棉球压迫打针点，帮忙止血。

5.正常的舌静脉打针不影响大鼠的进餐。

五、大鼠经皮肤给药起首需要脱毛可以配制8%的硫化钠溶液，也可以自配脱毛剂，配方：硫化钠：番笕粉：小粉为3：1：7，加水混淆成糊状软膏。

用棉签将脱毛剂涂在要脱毛的部位，观察看到地区范围内鼠毛发粘用干净棉签沾洁净的水将脱毛部位洗濯干净，大鼠一般用腹部皮肤，小鼠可用违部皮肤。

6、大鼠鞘内给药鞘内给药有两种方式：一是急性给药，二是持久慢性给药。

慢性给药，具体的说应该是在暴露出寰枕膜后将PE10管插进去蛛网膜下隙，至有清澈脑脊液反流后可确定位置正确，然后将PE10管插进去7.5cm达腰体积增大水平，固定并缝合便可。

打针反意寡核苷酸，以是直接在L4～5椎间隙进针就可以对持久给药宜选慢性套管给药，选做好插进去深度标记的PE-10导管，按照动物大小和所需埋置的脊髓节段，决议好插进去深度，一般270～320g的大白鼠腰骶部约7.5cm，胸段约5～5.5cm。

给药：将4号打针针头锯断，并磨尖，插在PE-10导管上，导管另外一端接在另外一接又打针器的4号针头上，给药时只需将钢管另外一端与动物身上埋植好的PE-10导管相接便可。

七、大鼠阴道给药大鼠阴道给药方法近似于小鼠，而且大鼠的生殖道比小鼠要长一些，会比小鼠操作相对于容易一些。

小鼠阴道内感染，是往小鼠阴道内打针感染菌液，开始感染时接纳的是用小儿科的头皮针改做的软管向小鼠生殖道内打针，但因为小鼠生殖道很浅，而且软管本身据有小鼠生殖道的一部分体积，引起主入的菌液易漏，后来尝试用50ul的加样器每次取20ul，采纳多次打针的措施。

做此类实验主如果注意感染的药物或液体不要漏出来，可以采纳多次打针的措施。

8、大鼠鼻腔给药1.有滴鼻和喷雾两种常见方式喷雾其实就是雾化吸入。

滴鼻给药没有措施到达雾化吸入的成效。

雾化吸入需要有雾化装备，一般医院的都有，但是医院的如果借不出来，自己家里的加湿器也可以拼集。

雾化给药的时候，要把大鼠放在1个相对于比较严密封闭的的器皿中（固然要有透气眼），让大鼠尽有可能多地接触药物，但是好象没有专门的这种器皿，一般都是便宜的，材料最好是有机玻璃。

如果需要一只一只给药的话，那么大鼠固定器也可以着用。

雾化的时间如果没有特殊要求，一般来说是半个小时。

从药物步入体内漫衍的部位来看，滴鼻应该作用于局部为主，而喷雾/雾化吸入等给药方式可使药物步入气嗓，肺等部位，吸收情况应该有比较大的差别。

2.鼻内接种动物进步前辈行麻醉后，以左手食指和拇指捉住动物双耳部，翻滚转动动物身板置于左手掌内，使其鼻尖朝向操笔者；右首持打针器，将接种药物，逐滴滴入动物鼻内。

接种量不宜过多：大鼠为0.05～0.1ml（小鼠为0.03～0.05ml；天竺鼠与兔可为2ml）。