侧脑室注射及脑内置管
胸腔、T型管、胸腔闭式、 颅内引流、尿管等常见外科术后引流管护理特点、目的、要点和注意事项
胸腔、T型管、胸腔闭式、颅内引流、尿管等常见外科术后引流管护理特点、目的、要点和注意事项腹部引流管和胃肠减压管是外科术后成功的必要保证。
引流管可将人体积血、积气、脓血、及胃内容物等引出体外，对引流物量、颜色及性质的观察，可判定术后又有无大出血及病人恢复情况。
对外科术后留置引流管或胃肠减压管的患者，应做好护理。
腹腔引流管1、通常腹引管安置在腹腔的低位，吻合口，或易发生出血渗出的部位，以便于腹腔内积存的液体减少。
2、血浆管有单根血浆管和双套管血浆管，采用双套管血浆引流管的目的在于防止由于负压的作用使血浆管管壁塌陷，阻碍了引流的通畅。
护理特点（1）根据病情需要，腹腔内可能安置几种引流管，病人转入病房后必须点清，根据名称或作用做好标志，并接好引流袋，要妥善的固定，防止扭曲，受压，折叠。
（2）接引流管时注意无菌技术操作，引流管应低于出口平面，防止逆行回流感染。
保持引流管的通畅，每30分钟挤捏管道一次，引流管如果无液体流出可能管道被堵塞，要根据实际情况，通知医生处理。
（3）分别观察引流液的量，色，质，正常色泽为淡红色，后期为黄色，清亮液，每日0-100ML，若每小时量大于50ML，持续3小时且呈红色则为异常，或血浆管引流液呈胆汁色，或颜色混浊均为异常，应立即告之医生。
（4）妥善固定导管，病人翻身、下床、排便时应防止引流管脱出或折断滑入腹腔。
滑出者应重新更换新管插入。
（5）需要负压引流者，应调整好所需负压压力，并注意维持负压状态。
用封闭式负压引流时，负压可达20kpa，可减少腹腔内腔隙和清除积液。
（6）纱布和凡士林纱布填塞止血者应密切观察全身情况，若已稳定应在24-72小时内拔除，或更换新的纱布再填塞，腹腔内引流管如2-3天不能拔除者则2-3天转动皮管一次，以防长期固定造成继发性损伤。
（7）如果需要外引流管注入抗生素等药物或作管腔冲洗，应严格执行无菌操作。
（8）若为双套管引流管，注意要保持排气管的通畅，不可将其折叠，外套一薄膜手套，留出孔不可扎紧，以利排气，防止管壁塌陷。
脑外科常见引流管的护理(超全)
适用于多种疾病，如颅内血肿术后、肿瘤术后、 颅骨修补术后等，预防出血及血肿的发生。
硬膜外引流管护理
硬膜外引流管的高度与血肿腔处于同一水平 或低于切口，引流瓶低于头部或使用低负压 引流。使头偏向患侧以引流彻底。 硬膜外引流排液通常在6～12小时停止，术 后24～48小时之内拔除硬膜外引流管
硬膜外引流管
1、基线定位； 2、管道定位； 3、床头高度定位（不能调）
（一）引流袋高度（重点）
• 如伴有脑积水、脑室肿瘤、颅后凹占位病变者， 术后早期可将引流袋挂高，待颅内压力趋于平衡 后，再放低引流袋于正常高度。（“先高后低”） e.g.注入尿激酶后早期开放引流管 →先提高（颅内压可能较前升高），再逐 渐降低（放液后颅内压下降） →“平稳”
• 蛛网膜：半透明膜，位于硬膜深面，与深面软膜
• 软膜：紧贴脑和脊髓表面的薄膜
脑脊液循环机制
流动于脑室、中央管、蛛网膜下隙内的无色、透明、无 沉淀、的液体为脑脊液。 该液的总量在正常成人为100～150ml（或70~160ml，约 50%在颅内，50%在脊髓），脑脊液产生速率为0.3ml/min， 日分泌量在400～500ml 。 要保持脑室系统和蛛网膜下腔150ml维持量的ＣＳＦ持续循 环，静脉系统吸收的ＣＳＦ量与分泌量相，大约450ml/d。 病理状态可影响ＣＳＦ的产生、分泌和循环。
严密观察病人意识、瞳孔、生命体征变化，正确区分颅内高压与颅内低压性 头痛
预防引流感染
减少探视和人员流动。 做好床头交接班，防止管道脱落或意外拔管。 随时观察置管部位皮肤是否有红肿、渗出。 搬动病人时，先夹闭开关再搬动，防逆流。 严格遵照无菌操作原则。 观察引流液的性质 必要时送细菌培养，及时发 现并治疗颅内感染。
临床技术操作规程(颅内压监护穿刺置管术)
临床技术操作规程（颅内压监护穿刺置管术）颅内压监护方法较常用的有：脑室内法、硬脑膜外法、硬脑膜下法及脑组织内法。
其中测压最准确，使用较方便者为脑室内法。
【适应证】1．凡有颅内压增高，尤其是昏迷病人。
可持续颅内压监护。
2．急性闭合性颅脑损伤。
3．颅内肿瘤。
4．脑积水。
5．蛛网膜下腔出血。
【禁忌证】除穿刺部位感染不能行监护术外，无绝对禁忌证。
【准备工作】以脑室法为例，应准备下列用物：脑室穿刺包，脑室导管(内径以1.2mm为宜，一般为硅胶管)及导丝，脑脊液引流装置，快速颅钻，颅内压监护仪以及常规消毒、局部麻醉和伤口包扎用品。
【操作方法】1．脑室法：(1)侧脑室前角穿刺术：一般选用右侧脑室前角。
病人取仰卧位，先用甲紫标志出中线及钻孔部位。
穿刺点在发际后2cm，中线旁2.5cm。
进针方向与矢状面平行，指向外耳道连线。
正常深度为4～6cm。
(2)穿刺成功后，将脑室导管的出颅端与充满0.9％氯化钠注射液的高压连接管(聚氯乙烯管，长度以150cm左右为宜)相连，再通过三通接头与颅内压监护仪的传感器和脑脊液弓l流装置相连接。
(3)将传感器进行零点校正，并使其位于外听道水平。
正常成人平卧时颅内压为0.7～2.0kPa，婴幼儿为0.5～1.0kPa。
(4)测压时，应关闭脑脊液引流通路。
颅内压动力学可根据颅内容积压力关系、压力图像以及脑灌注压加以分析评估，并用以指导治疗及判断预后。
(5)根据病情需要，开放三通开关及调节夹，调节引流袋的高度，使颅内压维持在适当水平。
调节时动作宜轻缓，以防止颅内压急剧波动。
2．硬脑膜外法：在手术室，于右侧前额发际内2cm，矢状窦旁3cm作颅骨钻孔，孔约1cm×1．5cm，将硬膜下传感器置于颅骨与硬脑膜之间，缝合头皮，将传感器的另一端连接颅内压监护仪即可。
【注意事项】1．脑室导管插入脑室后，应用缝线固定于头皮，以免滑脱或导管摆动而损伤额叶脑组织。
2．安置好导管后，应用无菌纱布固定、包扎，防止颅内感染。
脑室穿刺术和持续引流术
脑室穿刺术和持续引流术脑室穿刺术是经颅骨专控或椎孔穿刺侧脑室，放置引流管，将脑脊液引流至体外，是对某些颅内压增高病人进行急救和诊断的措施之一。
目的1.对颅内占位性病变、颅内黏连或中脑水管梗阻等导致的侧脑室扩大、严重的颅内压增高征象或脑疝形成征象进行脑室减压，以抢救生命。
2.监测颅内压，可直接、客观、及时地反映颅内压变化的情况。
3.引流血性或炎性脑脊液，以促进病人康复。
4.经引流管注入抗生素，控制感染。
适应证1.肿瘤和其他颅内病变引起的脑积水。
2.自发性或外伤性脑室内出血，或脑内血肿破入脑室系统。
3.后颅凹手术前为防止在切开后颅凹硬脑膜后小脑急性膨出，造成脑组织裂伤和继发性脑干损伤及在术后持续引流出血性脑脊液，以避免脑室系统梗阻和调整颅内压力。
4.开颅术中和术后颅内压监测。
禁忌症1 穿刺部位有明显感染2.有明显出血倾向者。
3.脑室狭小者。
4.弥漫性脑肿胀或脑水肿病人。
方法：脑室穿刺引流的方法有额入法（穿刺侧脑室前角）、枕入法（穿刺侧脑室三角区）、侧入法（穿刺侧脑室下角或三角区）和经眶穿刺法（穿刺侧脑室前角底部），小儿采用经前囟侧角脑室穿刺，一般不置管。
下面介绍通常使用的床旁经额侧脑室穿刺法（额入法）。
1.剃光头发。
2.仰卧位，选定穿刺点（前额部，发际上 2cm，矢状线旁开 2cm)，头皮常规消毒，2%利多卡因局麻。
3.颅骨钻孔，用脑室穿刺针穿刺，穿刺方向与矢状线平行，针尖对准两侧外耳道连线，一般进针 3~5cm 可进入侧脑室前角，见脑脊液流出时，表明穿刺成功，则置管作脑脊液持续引流或颅内压监测。
【护理】1.术前护理（1)病人准备：评估病人的文化水平、合作程度以及是否进行过脑室穿刺，指导病人及家属了解脑室穿刺引流的目的、方法和术中、术后可能出现的意外与并发症，消除思想顾虑，征得家属同意并签字确认；躁动病人遵医嘱使用镇静药。
（2）用物准备：消毒剂、麻醉药、颅骨钻、脑室穿刺引流包、无菌引流袋、硅胶导管及抢救药品等，按需要备颅内压监测装置。
大鼠侧脑室穿刺步骤
中枢神经系统是神经生物学研究中常用的实验手段，多用于观察目的核团或脑区对某些药物刺激的反应。
优点：将药物直接注入脑内可以直接作用于载体状态下感兴趣的神经元及胶质细胞，比其他途径更直接。
得出的结果较体外实验，如细胞培养等更接近生理状态下的反应。
目前国际上公认的脑内给药方法为：在立体定位仪的引导下，将一合适直径和长度的带内芯的管道埋置于需要的位置，用牙托粉将管道的外露部分固定于颅骨表面。
术后5到10天，手术应激已经基本消失，血脑屏障基本恢复。
此时，可以在动物清醒状态下把内芯抽出，将一内针插入管道达目的部位注射给药后将内针抽出，再插入内芯封闭管道以再次给药。
手术步骤
1用10%的水合氯醛麻醉大鼠（SD，250-350克）后，动物呈俯卧姿势，将大鼠头部固定于脑立体定位仪上，门齿杆-3.3mm，三个标准检测是否固定成功，鼻对正中，头部不动，提尾不掉。
2 头顶皮肤剃毛，消毒，在头部正中做一长约0.5-1cm切口，分开头骨上附着的骨膜及肌肉，撕开颅顶筋膜，以棉球蘸少量双氧水涂擦颅骨表面，清楚暴露前囟点，并用墨水标记。
3 以前囟点为0点寻找进针点，其坐标为：AP:1.0mm，L:1.5mm，H:4.5mm，墨水标记。
4 用牙科钻将标记点钻开至硬脑膜，用针尖刺破硬脑膜，用消毒棉签止血，干燥术野。
5 将穿刺导管垂直插入约4.5mm，用95%的酒精涂搽，使颅骨表面干燥。
6 将牙托粉粉剂和水剂按比例混合调匀后涂到导管周围，等待牙托粉完全凝固。
7 缝合大鼠头皮切口，保证头皮完整，同时更好地固定导管。
8 术毕，单笼饲养，青霉素8万单位肌肉注射连续3天。
各种管道护理
常见各种管道的护理一、颈内静脉置管的护理及中心静脉压测定1、妥善固定导管，做好标记。
每四小时检查一次，防止导管移位。
2、避免导管扭曲、折叠、受压，告知病人翻身避免积压。
3、每天消毒静脉穿刺部位、更换敷料，观察、记录插管局部有无红肿热痛等感染征象，一旦发生，应及时拔出导管。
4、保持通畅，输液结束时，可用肝素稀释液封管，以防导管内血栓形成，长期输液者每日用肝素稀释液冲管。
注意：1、排尽管道内气体，防止气泡进入体内形成气拴。
2、体位改变，应重新测定零点（零点测定：将零点测量器放在床旁，指针对准患者右侧腋中线第四肋间，然后根据这一高度调整）。
3、静脉压测量管道内不得输入血管活性药物。
4、注意保持管道通畅。
每次测压后倒流入导管的血迹，应冲洗干净。
二、气管插管的护理：1、病人的头部稍后仰，协助其每1～2小时转动变换头部位置，避免导管压迫咽喉部及头皮压伤。
2、妥善固定导管，避免导管随呼吸运动上、下滑动而损伤气管粘膜；标明导管插入深度，随时检查导管位置，以及时发现导管有无滑入一侧支气管或滑出。
3、选择合适的牙垫，应比导管略粗，避免病人咬扁导管，影响气道通畅。
4、保持导管通畅，及时吸出导管、口腔及鼻腔内的分泌物；定时雾化吸入，防止痰液粘稠不易吸出。
5、保持口腔清洁，定时做好口腔护理。
6、气管套囊每隔3～4小时放气3～5分钟，防止套囊对气管粘膜的长时间压迫。
放气前，吸净口腔和咽部的分泌物。
放气后，套囊以上的分泌物可流入气管，应经导管吸出。
重新充气时应避免压力过高。
7、若气道阻力大或导管过细、无效腔气量大，将留在口腔外的过长导管剪掉。
8、拔除气管插管后，密切观察病人的反应，注意有无会厌炎、喉水肿、喉痉挛等并发症发生，并经鼻导管或开放式面罩给予吸氧，以防低氧血症。
三、气管切开的护理：1、固定导管的纱带要松紧适当，以容纳一手指为宜。
2、支撑与呼吸机管道相连处的管道，以免重力作用于导管，引起气管受压而造成气管粘膜坏死。
3、导管套囊适当充气，防止漏气或因压力过高而影响气管粘膜血液供应。
侧脑室注射及脑内置管
我给幼年（5周）SD大鼠侧脑室注射药物，有两个问题请教：1.因为我想增加造模的成功率，想尽可能往侧脑室注射更多的药物。
我想注射50ul，行吗？2.注射后如何验证注射的部位就是侧脑室呢？还仍然是用染色液注射后，多聚甲醛灌流，固定，然后做冰冻切片吗？那样的话，注射液会不会随脑脊液流动而无法辨认呢？能否给一个详细解答，谢谢1.脑室内注射液体量并没有绝对的上限,要看注射的时间,如果是微电泳注射,注射量应该大于压力注射法2.直接注射染液,随即断头,速冻,以刀片切至注射位置,观察染液是否在脑室内鉴于侧脑室的容积有限，不推荐注射50ul这么大的量，尤其是一次注射50ul。
个人推荐sd大鼠侧脑室注射药物控制在3－10ul之间，如果注射体积较大，应控制注射速度，不易过快，以免引起脑室压力过大。
我给幼年（5周）SD大鼠侧脑室注射药物，有两个问题请教：1.因为我想增加造模的成功率，想尽可能往侧脑室注射更多的药物。
我想注射50ul，行吗？2.注射后如何验证注射的部位就是侧脑室呢？还仍然是用染色液注射后，多聚甲醛灌流，固定，然后做冰冻切片吗？那样的话，注射液会不会随脑脊液流动而无法辨认呢？能否给一个详细解答，谢谢-----------------------------------------------------------------------------------------------------------你的实验可能较难做，首先侧脑室的定位是个大问题，估计你可能需要摸索较长时间。
一次注射50ul量太大，建议量控制在5---7ul最好。
我做过SD大鼠的侧脑室注射。
1.牙钻钻开颅骨，按照Paxinox& Watson 大鼠脑立体坐标，取AP＝－1.0mm ，ML＝2.0mm，DV＝4.5mm（250g体重）坐标注射药物，即可进入脑室。
在做实验前先预试验，用胎盘蓝代替药物，注射后半小时取脑观察胎盘蓝的分部。
《常见引流管的护理》
颅内感染：引流量可适当增多，注意补充电解质。 体位：床头抬高15-30度。
整理课件
脑室引流管的护理
保持引流管通畅及宣教 1.引流管：翻身活动不可受压、扭曲、折叠、
成角。 2.病人头部：活动范围适当受限。 3.治疗护理：动作轻柔，避免牵拉引流管。 4.引流液：随病人呼吸、脉搏等上下波动
整理课件
胸腔闭式引流的护理
意外拔管的处理： 1）水封瓶打破或接头滑脱时，立即夹闭或反折近胸端 引流管，然后常规更换引流瓶。 2）引流管自胸壁伤口脱出，立即用手顺皮肤纹理方向 捏紧引流口周围皮肤，不要直接接触伤口，并立即 通知医生处理。
宣教与指导： 1）住患者不要拔除引流管以保持密闭性。 2）嘱患者带管活动时，引流管要低于伤口位置，防止 逆行感染。翻身活动避免牵拉、打折、脱出。 3）鼓励深呼吸、有效咳嗽、吹气球训练，禁烟、锻炼肺功能。 4）拔管时嘱患者深吸气，然后屏住气，以免拔出引流 管时管端损伤肺脏。
整理课件
胸腔闭式引流的护理
严格无菌操作，防止逆行感染： 1）引流装置应保持无菌 2）保持胸壁引流口处敷料清洁干燥，一 旦渗湿，及时更换。 3）引流瓶内无菌生理盐水每天更换，引 流瓶每周更换，更换时严格遵守无菌操作。 4）若体温升高、畏寒、胸部剧痛，常提示发 生感染，及时报告医生。
整理课件
胸腔闭式引流的护理
9》宣教指导： 1）告知患者及家属不要牵拉、压迫、折叠引 流管，不可随意调节负压。 2）告知患者引流的目的和注意事项。
整理课件
胃管的护理
目的： 胃肠减压 鼻饲饮食
适应症: 胃肠减压： 1.术前准备 2.肠梗阻 3.减轻腹胀 4.协助诊断 鼻饲饮食： 1.昏迷 2.口腔疾患或口腔手术后 3.不能张口患者 4.其他：早产儿、病情危重、拒绝进食
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我给幼年（5周）SD大鼠侧脑室注射药物，有两个问题请教：
1.因为我想增加造模的成功率，想尽可能往侧脑室注射更多的药物。
我想注射50ul，行吗？
2.注射后如何验证注射的部位就是侧脑室呢？还仍然是用染色液注射后，多聚甲醛灌流，固
定，然后做冰冻切片吗？那样的话，注射液会不会随脑脊液流动而无法辨认呢？
能否给一个详细解答，谢谢
1.脑室内注射液体量并没有绝对的上限,要看注射的时间,如果是微电泳注射,注射量应该大
于压力注射法
2.直接注射染液,随即断头,速冻,以刀片切至注射位置,观察染液是否在脑室内
鉴于侧脑室的容积有限，不推荐注射50ul这么大的量，尤其是一次注射50ul。
个人推荐sd大鼠侧脑室注射药物控制在3－10ul之间，如果注射体积较大，应控制注射速
度，不易过快，以免引起脑室压力过大。
我给幼年（5周）SD大鼠侧脑室注射药物，有两个问题请教：
1.因为我想增加造模的成功率，想尽可能往侧脑室注射更多的药物。
我想注射50ul，行吗？
2.注射后如何验证注射的部位就是侧脑室呢？还仍然是用染色液注射后，多聚甲醛灌流，固
定，然后做冰冻切片吗？那样的话，注射液会不会随脑脊液流动而无法辨认呢？
能否给一个详细解答，谢谢
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你的实验可能较难做，首先侧脑室的定位是个大问题，估计你可能需要摸索较长时间。
一次注射50ul量太大，建议量控制在5---7ul最好。
我做过SD大鼠的侧脑室注射。
1.牙钻钻开颅骨，按照Paxinox& Watson 大鼠脑立体坐标，
取AP＝－1.0mm ，ML＝2.0mm，DV＝4.5mm（250g体重）坐标注射药物，即可进
入脑室。
在做实验前先预试验，用胎盘蓝代替药物，注射后半小时取脑观察胎盘蓝的分部。
2.注射的药物总体积数最好不超过10uL，缓慢注射（5－10min），留针5min后拔出。
祝你好运！
我在园子里搜索了一下，看到有人做小鼠(30g)都用过20ul的注射量，还说国外文献最多注射30ul。
这样我想大鼠应该至少30ul不成问题，只要注射慢一点。
我是想增加造模的成功率，所以想尽可能增加注射的药物量。