实验样品采集运输保存方法
1.R N A实验样品采集、保存方法
使用范围及样品量
类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量：
样本样本量
1*107个
哺乳动物培养细胞样品（悬浮
细胞）
15cm2
哺乳动物培养细胞样品（贴壁
细胞）
植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组
织决定组织需要量，尽可能多些，但不必
超过1g
动物组织样品
新鲜组织样品
A. 使用RNAlater试剂
取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。
4度孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。
B. 使用Trizol试剂
取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg 组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。
匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。
冻存组织
生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。
细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液
反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全
-70保存
贴壁细胞
从培养容器中吸出并弃去培养液
培养瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。
反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。
-70度保存。
植物组织样品
准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。
立即投入液氮中保存。
2.血液类样品采集、保存方法
适用范围及样品量
全血/血细胞：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service
血清/血浆：Microarray Service；PCR Array& PCR Service
样本量
样本样本量
全血1-2ml （即每份样品2-4
管）
血浆1-2ml （即每份样品2-4
管）
血清1-2ml （即每份样品2-4
管）
在样品保存及转移过程中，应避免反复冻融样品
一般建议用新鲜的血液标本进行试验，如果标本已经保存较长时间，请先联系技术部门确认样本是否适合进行实验。
全血
采集好全血，转移至单独的冻存管中，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
血浆
使用抗凝管采集全血，并尽快进行血浆分离：1000g 离心10min，分离血浆和细胞组分（抗凝剂一定不能是肝素）
将采集好的血浆转移至单独的冻存管中，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
血清
使用凝血管采集全血，采血后两小时内分离血清；
采血后轻轻倒转采血管混合4-5次，直立置于室温待血液完全凝固，1000g 离心10min，分离血清。
将采集好的血清转移至单独的冻存管，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
从全血中提取白细胞
抗凝血收集
取无菌的15ml离心管一只，首先用EDTA或者柠檬酸钠溶液充分吹打管壁，使离心管壁完全接触到该溶液，而后在管底留下少许该溶液（200ul左右）收集5ml全血后迅速用枪混匀或用手指拨动离心管底部混匀。防止部分血液凝固。
全血白细胞分离（以3ml抗凝血为例说明）
向一只15ml离心管中加入3ml抗凝血，而后加入9ml红细胞裂解液。盖紧管盖，温柔的颠倒混匀数下，不要剧烈震荡
将离心管置于室温放置10min
将离心管以2500g 离心5min
弃上清，尽可能将上清吸净，勿吸到管底白色斑块细胞
弃去上清后在管底出现可见的白色斑块，此斑块为富集的白细胞。如果裂解不完全加入1mlPBS缓冲液重悬，然后重复第一步
充分裂解后，加入1mlPBS缓冲液清洗一次 2500g离心5min
弃上清，可获得血液样品中全部白细胞的80%以上，而后可加入适量的Trizol，用移液枪充分吹打，混匀，直至出现清亮不粘稠的液体。
而后可以将以上的Trizol试剂存在生物冰（0-4度）寄送，或者直接干冰寄送。
实验样品采集、保存方法
适用范围及样品量
适用范围：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Service
样品量
样本样本量
组织50-100mg
悬浮细胞
约1*107个细胞，低速离心收集，弃去培养液；
加入2-5ml PBS悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS；
放入-70度冰箱保存。
对于ChIP-chip实验为了获得理想结果，建议根据下述方法处理及保存悬浮细胞样品
取107个悬浮细胞低速离心，用10ml培养基将细胞沉淀重悬于50ml离心管中；
加入270ul 37%的甲醛，轻轻混匀，室温孵育10min；该步骤最好在通风橱完成
加入1ml 的甘氨酸，轻轻混匀，室温孵育5min，中和甲醛；
2000g离心5min，弃上清，用预冷的 PBS/EDTA 洗细胞两遍
2000g 离心5min，弃上清；
收集到的样品-80度冻存。
贴壁细胞
约1*107个贴壁细胞，胰酶消化；
加入PBS悬浮细胞，低速离心收集，弃去液体；
加入2-5 ml PBS 悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS
放入-70度冰箱保存。
对于ChIP-chip实验为了获得理想结果，建议根据下述方法处理及保存贴壁细胞样品
组织
采集新鲜组织（生物体死亡后10min内取材并保存好）
组织块以PBS或生理盐水清洗干净，切为小块
放入液氮或-70度冰箱保存
4.蛋白实验样品采集、保存方法
适用范围及样品量
适用范围：Microarray Service Other Service
样本量：
样本样本量
血清和血浆100-200ul
细胞107个
血清和血浆
采集新鲜血液，分离血清或血浆，放入-20度或者-70度冰箱保存
悬浮细胞
约1*107个细胞，低速离心收集，弃去培养液；
加入2-5ml PBS悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS；
放入-70度冰箱保存。
贴壁细胞
约1*107个贴壁细胞，胰酶消化；
加入PBS悬浮细胞，低速离心收集，弃去液体；
加入2-5 ml PBS 悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS
放入-70度冰箱保存。
组织
采集新鲜组织（生物体死亡后10min内取材并保存好）
组织块以PBS或生理盐水清洗干净，切为小块
放入液氮或-70度冰箱保存
5. 样品保存和运输
注意事项
将收集的各类样品用冻存管或离心管装好，保存在低温冰箱或者液氮中。
所使用的冻存管或离心管、枪头等必须高温灭菌处理，装好样品后管口需要以封口膜封好。
注意已保存的样品不要反复冻融。
干冰运输
根据干冰量准备大小适当的泡沫盒，在其中放入干冰（需要10公斤，至少为8公斤）和标本（用塑料袋或者塑胶手套装好），盒子内的空隙用旧报纸塞满，以防干冰挥发后有液体流出。
泡沫盒须选择较厚的，以免在运输过程中破碎导致样品丢失，分别用封箱带密封。最后在外面套上一个纸盒子，也要用胶带密封。
冰袋运输
保存在RNAlater中的组织样本；
保存于Trizol中的细胞样本或经过匀浆的组织样本在短期（5 day）可使用冰袋运输。
液氮运输
冻存组织需要干冰或液氮运输。液氮无法快递，适合市内运输。
常温运输
本市内细胞样品也可以直接常温运送，运送时在培养瓶中装满培养液并以封口膜封口，然而某些实验条件中包含时间限制，建议冻存后运输。
样品运输注意事项
打包好的样品交于快递公司，不提及干冰等字样
快递寄出，将快递单号告知销售，以便跟踪快递进程
务必在周日、周一、周二寄出快递，以免到达上海的时间是周末，公司无法查收。
食品微生物检验样品采集和保存的注意事项及其检验技术
食品微生物检验样品采集和保存的注意事项 及其检验技术 食品微生物检验是食品安全领域的重要内容之一，为了得到准确可靠的检验结果，样品采集和保存是非常重要的。本文将就食品微生物检验样品的采集和保存以及检验技术进行分析，以帮助大家更好地开展食品微生物检验。 一、样品采集注意事项 1.根据不同的检验项目选择合适的采样地点和采样方法。针对不同的食品性质和检验项目，应选择有代表性的采样地点和采样方法，避免样品污染，同时获取可靠的检验结果。 2.采集样品前应进行充分的消毒。在采集样品前应对采样工具、采样器具等进行充分的消毒，以防止样品受到污染，因此选择适合样品的消毒剂，避免化学残留影响检测结果。 3.避免空气污染。在采样过程中应避免口吐在采样器具或者食品样品表面，避免因口部细菌的污染，导致食品微生物检验结果失真。 二、样品保存注意事项 1.正确选择检测方法和保存温度。不同的食品微生物检测方法，样品保存的温度也有所不同，对于常规检测方法，一般建议样品储存于4℃以下，而对于极低温度保存的样品，应在检测前确保样品完全解冻，以避免样品由于冰冻遭受损坏。 2.为避免样品变质，应及时采取冷冻或干燥处理。也可使用适当的添加剂或处理方法，如添加20%的甘油或70%的乙醇进行保存，以避免微生物由于种种原因失活。 3.在样品保存过程中防止二次污染。保护样品，避免用手触摸，以防止空气中的微生物和人体细胞等进入样品，影响检验结果。 三、检测技术 1.无菌操作技术。在样品采集、保存、培养和检测等过程中，应
掌握无菌操作技术，防止外源细菌污染样品，影响检测的可靠性和准确性。 2.常规检测技术。常规检测技术包括菌落计数、PCR等，这些技术均有自己的优缺点，在选择检测方法时应充分考虑。 3.快速检测技术。快速检测技术是近年来发展起来的一种检测方法，包括光学、电化学、免疫学等多种技术，具有检测速度快、灵敏度高、可重复性好等优点，但仍需注意其所需的设备、人员及复杂度等问题。 以上便是本文对于食品微生物检验样品采集和保存的注意事项及其检验技术的分析，希望对这一领域的工作者们有所帮助，提升其检测效率和准确性。
样品的运输及保存
样品的运输及保存 1采样结束后应尽快将样品检验或送往留样室，需要复检的应送往实验室。 2疑似急性细菌性食物中毒样品应无菌采样后立即送检，一般不超过四小时；气温高时应将备检样品置冷藏设备内冷藏运送，不得加入防腐剂。 3需要冷藏的食品，应采用冷藏设备在0℃～5℃冷藏运输和保存，不具备冷藏条件时，食品可放在常温冷暗处，样品保存一般不超过36h。（微生物项目常温不得超过4h） 4采集的冷冻和易腐食品，应置冰箱或在包装容器内加适量的冷却剂或冷冻剂保存和运送，为保证途中样品不升温或不融化，必要时可于途中补加冷却剂或冷冻剂。 5食品标签标明存放、运输条件的食品，采集的样品存放、运输条件要与之相符，如酸奶标识说明要冷藏，样品的运送及复检样品的保存都要做到冷藏。 6需做微生物检测的样品，保存和运送的原则是应保证样品中微生物状态不发生变化。微生物检测用的样本及不能冷藏保存的样本原则上不复检、不留样。采用快速检测方法检测出的超标样品，应随即采用国标方法进行确认。检测不合格的样品，要及时通知被采样单位和生产企业。处理样品时，禁止将有毒有害液体样本直接倒入下水道。 7采集的样品注意应在保质期内，尽量抽取保质期于3个月以上的产品（保质期限不足3个月的除外）。留样和需要确证的样品，按
产品说明书要求存放，期限为检测结果出示后三个月。对餐饮业要求凉菜48h留样。 8样本保存要保持样本原有状态，样本应尽量从原包装中采集，不要从已开启的包装内采集。从散装或大包装内采集的样本如果是干燥的，应保存在干燥清洁的容器内，不要同有异味的样本一同保存。 9根据检验样本的性状及检验的目的不同而选择不同的容器保存样本，一个容器装量不可过多，尤其液态样本不可超过容量的80%，以防冻结时容器破裂。装入样本后必须加盖，然后用胶布或封箱胶带固封，如是液态样本，在胶布或封箱胶带外还须用融化的石蜡加封，以防液体外泄。如果选用塑料袋，则应用两层袋，分别封口，防止液体流出。 10特殊样本要在现场进行处理，如作霉菌检验的样本，要保持湿润，可放在1%甲醛溶液中保存，也可储存在5%乙醇溶液或稀乙酸溶液里。
样品采集保存和运输
基因芯片样品的采集、保存和运输 基因芯片实验、microRNA芯片实验、 PCR芯片实验和实时定量PCR实验的样品准备 一、动物组织样品保存与运输（每张芯片需50-100mg组织） 1、新鲜组织样品的保存与运输 A、使用RNA later试剂 →取新鲜组织（注：生物体死亡后尽快在10分钟内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在 0.5 cm以下（长宽不限），然后放入装有5倍体积RNA later的离心管（或冻存管）中。 →4℃孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNA later，然后转入- 20℃中保存。样品在- 20℃不会冻结，但是溶液中可能有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。冻存样品也可以反复冻溶，其RNA含量和完整性不受影响。 →RNAlater处理的标本可用常规冰袋4℃低温运输（无需使用干冰- 70℃运输）。 B、使用Trizol试剂 Trizol试剂可抑制RNA酶活性，破坏细胞膜结构以裂解细胞释放出RNA。 →取新鲜组织（注：生物体死亡后1分钟内取材料并保存好），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50~100 mg组织加1 ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，操作最好在冰上进行。 →匀浆的裂解液4℃短期保存（1个月），-20度或- 70℃长期保存。干冰运输，短期（5天以内）冷藏（4℃）运输亦可。 2、冻存组织的保存与运输 生物体死亡后尽快（最好在10分钟内）切取新鲜组织，以PBS或生理盐水清洗干净切为小块，立刻放入液氮中冷冻2-3小时后可转入-70℃冰箱保存或着一直保存在液氮中。冻存组织可放入干冰中直接运输，或者以Trizol 4℃下匀浆：冻存的组织块以液氮研磨后加Trizol或直接加Trizol以电动匀浆器匀浆，匀浆的裂解液干冰运输或短期（5天以内）冷藏（4℃）运输。 二、哺乳动物培养细胞样品采集、保存与运输——使用Trizol试剂（不建议使用RNAlater） 1、悬浮细胞 →悬浮细胞培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 →细胞沉淀（1×107个细胞）中加入1 ml的Trizol裂解液。 →反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注：Trizol处理的标本冷藏（4℃）运输，短期（5天以内）亦可。 2、贴壁细胞 →从培养容器中吸出并弃去培养液。 →培养瓶中直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，约15 cm2细胞贴壁面积加入1 ml Trizol。 →反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注：Trizol处理的标本冷藏（4℃）运输，短期（5天以内）亦可。 注： 1、上海市内细胞样品也可以直接常温运送，运送时在培养瓶中装满培养液并以封口膜封口，然而某些实验条件中包含时间限制，建议以Trizol处理。 2、所使用的1.5 ml冻存管或离心管、枪头等必须高温灭菌，装好样品后管口需要以封口膜封好。 3、如需干冰，快递运输所用干冰量至少为8公斤，且运输用泡沫箱需用封箱带密封。
《样品采集、保存和管理作业指导书》
样品采集和保存 一样品采集和保存 ①氨氮：水样采集在聚乙烯瓶或玻璃瓶内,要尽快分析。如需保存，每升样品中应加1ml 浓硫酸，并在4下贮存，用酸保存的样品，测定时用氢氧化钠将PH值调至7左右。 ②溶解氧：样品应采集在细口瓶中，测定就在瓶内进行.试样充满全部细口瓶。不得有气泡。 ③化学需氧量：水样采集于玻璃瓶中，应尽快分析.如不能立即分析时，应加入硫酸至PH ＜2，置4℃保存,时间不能多余5天。采集水样的体积不得少于100ml。 ④悬浮物：所用聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶要用洗涤剂洗净。在采样之前,再用即将采集的水样 清洗三次.然后采集水样500—1000ml，盖严瓶塞。 ⑤总磷:采集500ml水样后加入1ml硫酸调节样品的PH值，使之低于或等于1，或不加任 何试剂于冷处保存。 ⑥PH值：最好现场测定。否则应在采样后把样品保持在0—4℃，并在采样后6小时内进 行测定。 ⑦水温：最好现场测定。否则，应在采样后把样品保持在0～4，并在采样后6h之内进行 测定 ⑧氯化物:采集代表性水样，放在干净且化学性质稳定的玻璃瓶或聚乙烯瓶内。保存时不必 加入特别的防腐剂 ⑨色度：所用于样品接触的玻璃器皿都要用盐酸或表面活性剂溶液加以清洗，最后用蒸馏 水或去离子水洗净、沥干。样品采集在容积至少为1L的玻璃瓶内，在采样后尽快进行测定。 ⑩总氮：将采集好的样品储存在聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶中，用浓硫酸调节PH值至1～2,常温下可保存7天。储存在聚乙烯瓶中,—20℃冷冻，可保存一个月。 ⑾五日生化需氧量：采集的样品应充满并密封于棕色玻璃瓶中，样品量不小于1000ml，在0~4℃的暗处运输和保存，并与24小时内尽快分析。24小时不能分析可冷冻保存。 ⑿粪大肠菌群:采样瓶使用500ml已灭菌的磨口玻璃塞广口瓶,采集水样时应避免瓶盖及瓶子颈部受杂菌污染。灭菌后的采样瓶2周内未使用需重新灭菌 采集好的水样需放置约4℃冷藏设备内保存运输，一般要求在采集4小时内测定。 ⒀硝酸盐：水样采集后应及时进行测定.必要时，应加硫酸使pH〈2，保存在4℃以下，在
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、脑脊液标本采集、运输、保存 三、浆膜腔积液标本采集、运输、保存 四、阴道分泌物标本采集、运输 五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本采集、运输 六、精液标本采集、运输、保存 七、前列腺液标本采集、运输、保存 八、粪便采集、运输、保存 第二章血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章生化检验标本采集、运输、保存操作规程 第四章免疫学检验标本采集、运输、保存操作规程 第五章化学发光免疫分析项目标本采集、运输、保存操作规程 第六章血气分析标本采集、运输、保存操作规程 第七章凝血功能四项检测标本采集、运输、保存操作规程 第八章微量元素检测标本采集、运输、保存操作规程 第九章临床微生物学检验标本采集、运输、保存操作规程 第一节尿液标本的采集、运输和保存 第二节粪便标本的采集、运输和保存 第三节上呼吸道标本的采集、运输和保存 第四节痰标本的采集、运输和保存 第五节化脓和创伤标本的采集、运输和保存 第六节脑脊液标本的采集、运输和保存 第七节胆汁标本的采集、运输和保存
第八节胸水标本的采集、运输和保存 第九节腹水标本的采集、运输和保存 第十节生殖道标本的采集、运输和保存 第十一节血液及骨髓标本的采集、运输和保存 第十章液基薄层细胞学检查标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作.为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程,要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一)检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测:包括红细胞及白细胞形态等。 3．24小时尿总蛋白、尿肌酐、尿尿酸等。 4．其它：尿HCG、微量白蛋白、转铁蛋白、免疫球蛋白IgG、α1—微球蛋白、尿淀粉酶、尿蛋白酶原-2、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20—30ml。 住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内,量约5—10ml。 24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿
标本采集运输指南
标本采集运输指南 一、病人准备 1．病人状态 一般需在安静状态下采集标本，因运动能影响许多项目的测定结果。活动的影响可分暂时和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少；丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响，如激烈运动后使CK、LDH、ALT、AST和GLU等的测定值升高，有些恢复较慢，如ALT在停止运动1h后测定，其值仍可偏高30％～50％。 2．饮食 多数试验要求在采血前禁食12h，因为饮食中的不同成分可直接影响实验结 果。 (1)餐后血液中ALT、GLU、BNU、Na等均可升高，但空腹达24h以上，可出现低血糖，血中TG、游离甘油及脂肪酸可增高。 (2)高脂餐后2～4h采血，多数人ALP含量增高，主要来自肠源性同工酶，且与血型有密切关系，O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。
(3)高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加，但不影响肌酐含量。 (4)高比例不饱脂肪酸食物，可减低胆固醇含量；香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍。 (5)含咖啡因饮料，可使血浆游离脂肪酸增加，并使肾上腺和脑构造开释儿茶酚胺。 （6）食物如含有动物血液，可引起粪隐血假阳性。 (7)饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、乙醛、乙酸等增加，历久饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶亦较不饮酒的病人为高，以至可以将这三项作为嗜酒者的挑选检查。 吸烟：瘾大者血液一氧化碳血红蛋白含量可达8％，而不吸烟者含量在1％以下。此外，儿茶酚胺、血清可的松亦较不吸烟者为高，血液学方面亦有变化，白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、血红蛋白偏高、平均红细胞体积偏高。吸烟组血浆硫氰酸盐浓度明显高于非吸烟组。 3．药物 药物对检验的影响十分庞大，在采样检查之前，以暂停各种药物为宜，如某种药物不可停用，则应相识可能对检验结果产生的影响。
样品保存规程
样品保存规程 1.引言 样品保存是科学研究与实验的基础，保证样品的完整性和可靠性对于研究结果的准确性至关重要。本文将介绍样品保存的基本规程与注意事项。 2.样品分类 根据样品的性质和特点，样品可以分为生物样品、化学样品和环境样品。针对不同类型的样品，有相应的保存规程。 3.生物样品保存规程 3.1 血液样品 - 必须在采集时遵循严格的无菌操作规范。 - 样品应及时送至实验室进行处理，如无法立即处理，应冷藏于4摄氏度以下。 - 血浆和血清应在离心后分装为适量的小样品，使用无菌冻存管密封保存于-80摄氏度以下。 3.2 细胞样品 - 细胞样品的保存应在无菌条件下进行。 - 使用培养基或琼脂糖溶液悬浮细胞，并保存于液氮罐中，温度为-196摄氏度。
4.化学样品保存规程 4.1 溶液样品 - 溶液样品应尽量避免长时间暴露在空气中，以防受到氧化或污染。 - 使用无菌容器密封保存，存放于阴凉、干燥、不受阳光直射的地方。 - 需要避光保存的样品应放置在防光瓶中。 4.2 固体样品 - 固体样品应保存于干燥、密闭的容器中，以免吸湿、变质或受到外界污染。 - 避免摩擦、震动或暴露在高温环境下，防止样品的形状和性质发生变化。 5.环境样品保存规程 5.1 土壤样品 - 采集土壤样品时，应使用无菌容器或干净的袋子。 - 样品应尽快送至实验室进行处理，如无法立即处理，应在避光、干燥和通风良好的地方保存。 5.2 水样 - 水样采集后应放入无菌容器中，尽快送至实验室。
- 如需长时间保存，应在4摄氏度以下冷藏保存，避免细菌和藻类的生长。 6.样品标识和记录 - 每个样品必须标注唯一的编号，并详细记录样品的相关信息，如采样时间、采样地点、保存温度等。 - 样品记录和标识的准确性有助于后续的数据分析和结果解读。 7.结论 样品保存规程是科学研究中的重要环节，合理的保存方法能够保证 样品的完整性和可靠性，从而确保研究结果的准确性。科研人员在进 行实验前应了解不同类型样品的保存规程，并严格按照规程进行操作，以确保样品的品质和实验结果的可靠性。 （以上内容仅做示范，具体规程请根据实际需求进行调整）
实验样品采集运输保存方法
实验样品采集运输保存方法 1. RNA实验样品采集、保存方法 1.1 使用范围及样品量 类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量： 样本样本量 动物组织样品50-100mg 哺乳动物培养细胞样品（悬浮细胞）1*107个 哺乳动物培养细胞样品（贴壁细胞）15cm2 植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织决定组 织需要量，尽可能多些，但不必超过1g 1.2 动物组织样品 1.2.1 新鲜组织样品 A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在0.5cm一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。 4度孵育过夜，此时样品管需要横臵以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。 匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。 1.2.2 冻存组织 生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生
理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全 -70保存 1.3 贴壁细胞 从培养容器中吸出并弃去培养液 培养瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。 -70度保存。 1.4 植物组织样品 准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。 立即投入液氮中保存。 2.血液类样品采集、保存方法 2.1 适用范围及样品量 全血/血细胞：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 血清/血浆：Microarray Service；PCR Array& PCR Service 样本量 样本样本量 全血1-2ml （即每份样品2-4管） 血浆1-2ml （即每份样品2-4管） 血清1-2ml （即每份样品2-4管） 在样品保存及转移过程中，应避免反复冻融样品 一般建议用新鲜的血液标本进行试验，如果标本已经保存较长时间，请先联系技术部门确认样本是否适合进行实验。 2.2 全血 采集好全血，转移至单独的冻存管中，按照每400-500ul/管分装。
标本采集和运送指南
标本采集和运送指南 一、概述 标本采集和运送是医学实验室诊断与研究中不可或缺的环节。为了保证标本质量和测试结果的准确性，了解正确的标本采集和运送方法至关重要。本指南旨在为医护人员、实验室技术人员以及相关研究人员提供有关标本采集和运送的实用指导。 二、标本采集 1、准备工作：在进行标本采集前，确保患者已被告医生告知相意事项，并签署同意书。同时，确保实验室技术人员已准备好相应的器材和试剂。 2、采集时间：根据不同的检测项目，选择合适的采集时间。例如，血常规检测通常在早晨空腹时进行，而尿常规检测则可以在任意时间进行。 3、采集方法：根据采集的标本类型，选择合适的采集方法。例如，血液标本可以通过静脉采血或毛细血管采血等方法采集，而尿液标本则可以通过自然排尿或导尿等方法采集。
4、标本标识：采集的标本应附有唯一的标识，包括患者姓名、性别、年龄、住院号等信息，以确保标本的准确性和可追溯性。 三、标本运送 1、保温措施：在运送过程中，应保持标本的温度稳定。对于需要冷藏的标本，应使用冰盒或保温箱进行保存。对于需要保温的标本，可采用加温袋等措施保持温度。 2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。 3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。 4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。 四、常见问题及处理方法 1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，
样品采样的保存方法
样品采样的保存方法 引言 在科学研究、实验室工作等领域中，样品采样是一个非常重要的环节。正确的样品采样及其保存方法可以确保样品的完整性和可靠性，从而保证实验结果的准确性。本文将介绍一些常用的样品采样的保存方法，并说明其重要性和操作注意事项。 样品采样的重要性 样品采样是一个关键的环节，对于后续实验的结果具有直接影响。正确的样品采样可以尽可能减少误差，保证实验数据的可靠性和真实性。样品采样的不当可能导致样品污染、氧化、变质等问题，影响实验结果的准确性。因此，科研工作者在进行样品采样时需要遵循一定的规范和方法。样品采样的保存方法 1. 现场采样 现场采样是指在样品来源地点进行采样的方法。具体操作步骤如下：- 准备采样设备：根据不同的样品类型和要求，选择合适的采样容器（如玻璃瓶、塑料袋等）、采样工具、标签等。 - 现场处理：根据采样目的和样品特性，进行现场处理。例如，对于水样品，可以在采样前用滤膜过滤或添加适量的抑制剂。
- 采样过程：进行样品采集，并严格控制样品的接触和受到外界污染的可能性。避免样品接触到空气、降落灰尘等污染物。 - 样品封存：将采样容器密封，并在标签上清晰地注明样品的采样时间、地点、采样人员等信息。 2. 传统保存方法 传统保存方法主要适用于一些较为稳定的样品，如不易变质的固体样品。具体操作如下： - 清洁容器：使用干净、无残留物的容器进行样品储存。对于液体样品，可以选择玻璃瓶或塑料瓶；对于固体样品，可以选择密封塑料袋或玻璃瓶。 - 干燥保存：将样品保存在阴凉、干燥的环境中，避免暴露在阳光直射下。对于一些易吸湿的样品，可以在容器中放置干燥剂。 - 标签记录：每个样品容器都需要贴上清晰的标签，标明样品名称、采样时间、保存人员等信息。 3. 低温保存方法 低温保存方法适用于一些需要冷藏或冷冻的样品，如食品、血液等。具体操作如下： - 冷藏保存：将样品保存在2-8摄氏度的冰箱中。保持冷藏设备的干
食品微生物学检验样品采集、运输与保存标准
食品微生物学检验样品采集、运输与保存标准 1. 引言 食品微生物学检验是保障食品安全的重要手段之一，而样品的采集、 运输与保存是确保检验结果真实准确的关键环节。本文将从采集、运 输和保存三个方面，探讨食品微生物学检验样品的标准要求，以便我 们更深入地理解这一重要主题。 2. 样品采集标准 在进行食品微生物学检验时，样品的采集要符合一定的标准，保证样 品的代表性和真实性。要选取新鲜、无污染的样品，并且在采集过程 中避免手部接触，以免污染样品。对于液体食品，应该遵循国家相关 标准进行取样，避免用不干净的容器盛装。需要根据不同食品的特性，选择合适的采样方法，比如表面抽样、深层抽样等等。 3. 样品运输标准 样品在运输过程中，要避免样品发生变质或受到外界污染。在运输过 程中，应该选择合适的包装材料，保证样品的密封性和稳定性。另外，要避免温度过高或过低对样品造成影响，保证在适宜的温度条件下进 行运输。还需注意避免样品之间的相互交叉污染，保持样品的独立性。 4. 样品保存标准 为了保证样品检验的真实性和准确性，样品在保存过程中也需要符合
一定的标准。在保存过程中，样品应该避免受到阳光直射，防止温度 过高或过低造成样品变质。另外，还需要避免样品与空气接触，保持 样品的新鲜性和原始状态。需要注意不同食品样品的保存期限，保证 在规定的有效期内进行检验。 5. 个人观点和理解 食品微生物学检验样品的采集、运输和保存标准对保障食品安全和保 证检验结果的真实性至关重要。在实际操作过程中，我们需要严格遵 守相关标准要求，确保每一个环节都能做到位。只有这样，我们才能 更好地保障食品安全，有效预防食品安全问题的发生。 6. 总结与回顾 通过本文的探讨，我们对食品微生物学检验样品采集、运输与保存的 标准要求有了更深入的了解。在未来的工作中，我们需要严格遵守相 关标准要求，加强对食品微生物学检验工作的监督与管理，不断提升 我国食品安全检验水平，为食品安全保驾护航。 总字数：3387 希望这篇文章对你有所帮助，如果有任何问题，欢迎随时与我联系。7. 样品采集的具体要求 食品微生物学检验样品的采集是确保检验结果准确的重要步骤。具体 来说，对于固体食品，应该从不同部位采集样品，比如表面、内部等，
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 临床检验标本采集、运输和保存操作规程 第一章体液标本的采集、运输和保存操作规程 一、尿液标本的采集、运输和保存 尿液标本的采集、运输和保存是临床检验中非常重要的一环。尿液干化学测定的检查项目包括尿液比重、pH值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖和抗坏血酸等。同时也需要检测尿液有形成份，如红细胞和白细胞形态等。此外，还需要检测24小时尿总蛋白、尿肌酐和尿尿酸等。 二、脑脊液标本的采集、运输和保存 脑脊液标本的采集、运输和保存也是非常重要的。在采集脑脊液标本时，需要注意消毒和无菌操作。运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
三、浆膜腔积液标本的采集、运输和保存 浆膜腔积液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。采集时需要避免污染和空气污染。运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。 四、分泌物标本的采集、运输 分泌物标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。采集时需要避免污染和空气污染。运输时需要保持标本的低温。 五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输 分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。采集时需要避免污染和空气污染。运输时需要保持标本的低温。 六、标本的采集、运输和保存
标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。采集时需要避免污染和空气污染。运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。 七、前列腺液标本的采集、运输和保存 前列腺液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。采集时需要避免污染和空气污染。运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。 八、粪便采集、运输和保存 粪便采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。采集时需要避免污染和空气污染。运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。 第二章血液一般检验的标本采集、运输和保存操作规程 一、未梢血标本采集
检验标本采集、保存及送运的基本要求
检验标本采集、保存及送运的基本要求 标本采集是直接关系检验结果的基本要素，如果标本采集不当，即使最好的仪器设备、 高水平的检验人员也难以弥补采集标本时引入的误差、甚至错误。 标本保存和运送是检验质量保证的重要环节之一。由于采集的标本受各种外界因素的影响，可能使检验结果受或大或小的误差，因此必须正确掌握标本保存和运送。 1.血液标本 或采血管分普通管、抗凝管和促凝管三类。常用抗凝剂有草酸钾、草酸钠、枸橼酸钠、EDTA-K 2 、肝素、氟化物等。根据不同的检验项目，选用合适的抗凝剂十分重要。 EDTA-Na 2 1.1.选择抗凝剂注意事项： 1.1.1.含有K+、Na+的抗凝剂不能用于测定 K+、Na+的标本。 1.1. 2.EDTA、氟化物、草酸盐等不能用于测定 Ca2+的标本，因为 Ca2+可与它们形成不溶性物质。1.1. 3.草酸盐、氟化物不能用于测定酶和用酶法测定的标本，因为它们有激活或抑制某些酶活 性的作用，如草酸盐可抑制 AMY、ACP、LDH 的活性，氟化物则有激活尿素酶、AMY 的作用。 1.1.4.草酸钾：钙离子螯合剂，常用量为 1～2mg/ml 血液。草酸钾虽仍可应用，但使红细胞缩小， 水分从红细胞渗入血浆，使血浆成分浓度相应偏低。 1.1.5.草酸钾氟化钠混合抗凝剂：专供葡萄糖测定用，氟化钠 1g，草酸钾3g 混合，混合剂4mg 抗 凝1ml 血。(暂未使用) 1.1.6.肝素：是一种粘多糖体，可抑制凝血酶原转化为凝血酶，使纤维蛋白原不能转化为纤维 蛋白。以15±2.5IU抗凝血液1ml。肝素抗凝血不影响红细胞体积，可用于生化及血液学检验标本， 但不可用于筛选 DIC 的3P 和TT 试验，因肝素与鱼精蛋白作用，发生沉淀，使 3P 出现假阳性以及肝 素的抗凝血酶作用出现产生干扰。 或EDTA-K2 。1.1.7.EDTA：与钙离子络合而抗凝，通常血液学常规检验应用其钾盐 EDTA-K 2 亦可作为抗凝剂，且可用于大多数生化检验。 EDTA-Li 2 1.1.8.使用抗凝剂要注意血与抗凝剂的比例，如血沉、血常规用 EDTA 抗凝管抽2ml 血；血生 化用红帽黑心普通管抽血2-3ml 等。 1.2.标本采集注意事项： 1.2.1.末梢采血时，务必清洁消毒，待干燥后穿刺，用一次性采血器。婴儿可取自脚后跟两侧处，一般不取手指，采血中不可用力挤压，以免组织液混入血液，使血液易于凝固和稀释， 出现误差。
采样及样品保存方法
采样及样品保存方法 水质采样的保存方法是保证水质分析准确性的关键。采样前需要明确测定项目，包括水温、浊度、溶解氧、石油类和动植物油类、化学需氧量、电导率、硬度、PH和色度等。采样 需要根据不同项目选择不同的，如P或G、溶解氧瓶、棕色G 瓶等。保存时间也需要根据不同项目进行区分，最低采样量也需要按照标准进行选择。 采样前需要了解相关依据，如GB/T-1991、GB/T-1991、HJ506-2009、HJ637-2012、HJ/T399-2007、HJ/T828-2017、 HJ6920-66、GB-2011等。尽量现场测定可以保证数据的准确性，但在不冷藏12小时内需要进行测定的项目需要特别注意 保存方法。 在保存方法上，需要注意尽量现场测定、单独采样、注满、避免接触空气、避光、热、剧烈振动等。对于某些项目，如化学需氧量、BOD5等需要加入一定试剂进行固定。同时，如样 品酸性，需要加大量碱保证PH值。对于一些特殊项目，如二 乙烯三胺的采样需要在水面下20-30cm进行取样。
The following is a XXX: 1.XXX: XXX and stored at 4°C for up to 7 days before XXX. 2.Acetonitrile: XXX. 3.Nitrobenzene compounds: XXX. 4.Pesticides and herbicides: XXX and stored at 4°C for up to 40 days。Avoid storing near XXX. 5.Copper and lead: Samples should be pre-washed three times for 3 days。then collected in bottles and stored at 4°C. 6.XXX: Samples should be treated with an XXX. 7.XXX hydrocarbons: XXX and stored at 2-5°C for up to 7 days. 8.Chlorobenzenes: XXX.
检验科学中的常见样本处理与保存方法
检验科学中的常见样本处理与保存方法 在检验科学领域，样本处理与保存是非常重要的步骤，直接关系到 检验结果的准确性和可靠性。本文将介绍一些常见的样本处理与保存 方法，以帮助读者更好地进行实验和数据分析。 一、血液样本处理与保存方法 1. 血清和血浆的制备与保存 血清和血浆是血液中的两种重要样本，在实验中常用于生化指标的 检测。制备血清和血浆的方法一般是将采集的全血样本置于离心管中，使用离心机离心一定时间，分离出血清或血浆。为了保存血清和血浆 的完整性，应冷藏于-20℃或更低温度下，避免多次冻融。 2. 血细胞的分离与保存 在某些实验中，需要研究血液中的特定细胞类型，如白细胞或血小板。分离血细胞的方法可以采用密度梯度离心或磁珠分离等技术。分 离后的血细胞应置于低温条件下保存，通常将其冷冻在液氮中或者使 用专用的冷冻保存液。 二、组织样本处理与保存方法 1. 组织切片与染色 在病理学研究中，常需要对组织样本进行切片和染色，以观察组织 的结构和病理变化。对于新鲜组织样本，应尽快进行固定、包埋和切
片处理。常用的固定剂包括福尔马林和乙醛，固定时间一般为24小时 以上。切片后，可以选择不同的染色方法，如血液标本中的染色方法。 2. 组织样本冷冻与石蜡包埋 有些实验需要使用冷冻切片技术，以保持组织的活性和形态。冷冻 切片前，将组织样本置于冷冻盒中，使用丙酮或乙醚进行固定，然后 迅速冷冻。另外，石蜡包埋是常用于常规组织病理学的方法，使组织 样本固定在切片中，提高切片的质量和稳定性。 三、生物样本处理与保存方法 1. DNA样本的提取与保存 DNA是生物学研究中常用的样本类型，如基因测序、PCR分析等。DNA样本的提取方法有多种，可根据具体实验的要求选择相应的提取 试剂盒进行操作。提取后的DNA应保存在低温、干燥和避光的条件下，避免降解和污染。 2. RNA样本的提取与保存 RNA在分子生物学和基因表达研究中具有重要作用。提取RNA的 方法一般采用异硫氰酸盐（TRIzol）试剂或柱式提取试剂盒。提取后的RNA应立即保存在-70℃的冰箱中，或者使用专用的RNA保存液进行 保存。 四、其他常见样本处理与保存方法 1. 微生物样本的培养与保存
水样采集、运输和保存方法和注意事项
水样采集、运输和保存方法及注意事项 一、水样的采集 （一）盛水容器的选择 1、容器不能是新的污染源。 2、对测金属的水样多选用聚乙烯瓶，测有机物的水样一般只能用玻璃瓶。 3、容器壁不应吸收或吸附某些待测组分。 4、容器不应和待测组分发生反应。 5、微生物采样瓶能耐高温，无菌采样袋除外。 （二）盛水容器的清洗 按水样待测定组分的要求来确定清洗容器的方法。 1、一般理化指标采样容器的洗涤：洗净后－10%硝酸或（盐酸）浸泡－自来水－蒸馏水（纯水） 2、有机物指标采样容器的洗涤：洗净后－蒸馏水－180烘干。 3、微生物学采样容器的洗涤和灭菌：洗净后－10%盐酸浸泡－自来水－蒸馏水－热力灭菌和高压灭菌。灭菌后2周内使用。 （三）采集水样体积： 1、水样的体积取决于分析项目的多少以及选用的测定方法。 2、采集的水样量应满足分析的需要并应该考虑重复测试所需的水样量和留作备份测试的水样用量。 3、现场采样的质量保证除规范采样步骤外，还需采集空白样和平行样。占总采样量的10%--20%。
（四）采集水样注意事项 1、各类监测点水样采样位置： • 出厂水应当位于水处理完成后进入输送管道前的取水口处； • 末梢水一般应当为用户水龙头处； • 二次供水的采集应为蓄水池或水箱出水口处等； • 学校自建设施供水应当为用户取水口处； •分散式供水应为家庭储水器内。 2、采样前放水3-5分钟，消毒后先采微生物，后化学性指标,采样时水流速平稳。 3、微生物指标，用灭菌瓶直接采集，不能用水样涮洗已灭菌的采样瓶，并避免手指和其他物品对瓶口的玷污。 4、理化指标采样前，先用水样荡洗2~3次采样器、容器、塞子。 5、测定有机污染物等项目的水样必须充满容器。 6、测定pH、余氯、放射性、微生物等项目需要单独采样;其中, pH、电导率等项目宜在现场测定。 7、采样时必须认真填写采样登记表;每个水样瓶都应贴上标签;要塞紧瓶塞,必要时还要密封。 8、水样尽快送达实验室。 9、水样采集应保持手的清洁、工作时严禁吸烟。 二、水样的运输 采集的各种水样从采集地到分析实验室之间有一定距离，运送样品的这段时间里，由于环境作用，水质可能会发生物理、化学和生物
样品采集运输指南
样品采集运输指南 1. 引言 本指南旨在提供样品采集和运输的基本指导，确保样品的质量和完整性在整个过程中得到维护。样品采集和运输是科学研究和实验的重要环节，正确的操作和合理的运输方式可以减少样品损坏和污染的风险。 2. 样品采集 在开始样品采集前，请确保以下事项已被考虑和准备好： - 审查并遵守所在地的法律法规和伦理要求，以确保样品采集的合法性和道德性。 - 准备适当的采集工具和，确保其清洁和无污染。 - 使用合适的采集方法和技术，以获得准确和可靠的样品。 - 调查采样点位的背景信息，包括环境条件和可能的污染源。 - 遵循标准操作程序和安全措施，以避免个人和环境的潜在危害。 3. 样品运输
在样品采集后，需按照以下步骤进行样品运输： 1. 样品包装： - 使用适当的包装材料和，确保样品在运输过程中的稳定性和 安全性。 - 如果涉及生物样品或其他特殊样品，确保采用合适的冷藏或 冷冻方式进行包装。 - 在包装上标明有关样品的必要信息，如采样日期、采样地点、样品类型等。 2. 运输方式： - 根据样品特性选择适当的运输方式，如快递、冷链运输等。 - 在选择快递公司或运输服务提供商时，考虑其信誉和专业性，并确保其具备运输特殊样品的能力。 - 如有需要，提前通知快递公司或运输服务提供商有关样品的 特殊要求和注意事项。 3. 运输安全： - 确保样品在运输过程中不受到污染、破损或泄漏的风险。 - 避免将不同类型的样品混在一起运输，防止相互污染。
- 如需遵守特殊运输规定或限制，如化学品运输规定等，确保合规性并遵循相应规定进行操作。 4. 监控和跟踪： - 如有可能，使用运输追踪系统跟踪样品的运输进程，确保及时监控和处理潜在问题。 - 在样品到达目的地后，确认收货并及时进行后续处理，如样品储存、分析等。 4. 结论 样品采集和运输是科学研究和实验中至关重要的环节。本指南提供了基本的指导原则和步骤，以确保样品的质量和完整性得到维护。在进行样品采集和运输时，请始终遵循相关法律法规和伦理要求，并选择合适的操作方法和运输方式。如有需要，请咨询专业人士以获得更详细和专业的建议。
现场样品采集,保存,运输
现场样品采集、保存和运输 在现场调查中，很重要的—项工作是正确采集、妥善保存、和尽快送检样品，以及随后对样品检测结果进行正确的判读和分析。 （一）样品采集的目的、作用和原则 现场调查的目的主要可分为两大类：一是查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因，二是进行卫生质量监测和评价。应该遵循如下总原则： 1.注意生物安全：需要采取的具体措施包括如下两方面：①个人防护：采样时要戴手套，接触不同患者时不能重复使用一副手套，以免交叉感染，并注意手套是否有小的破损；采样中尽可能穿防护服；采样后消毒要穿戴防护服和厚橡胶手套，对污染区表面和溢出物进行消毒；如怀疑有高度传染力的病原，需使用护目镜、呼吸面罩等；为了防止意外，确保安全，采样应备有急救包。②恰当处理污染废弃物：污染的可废弃设备和材料应先消毒后废弃；用过的针头妥善收集消毒，并按规定销毁或损毁；在暴发疫点使用过的防护服、设备、材料等使用化学消毒剂消毒后再清洗，特殊情况也可在现场建简易焚烧炉焚烧。 2.注意采样的代表性或针对性：以卫生质量评价为目的的样品采集，影响采样代表性的因素包括采样量、采样部位、采样时间、采样的随机性和均匀性，以及按批号抽样。以查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因为目的的样品采集，不要求样品的代表性，强调针对性，尽可能采集病原微生物含量最多的部位和足够检测用的样本。 3.注意采样时间和种类：以分离培养细菌为目的，则应尽量在急性发病期和使用抗生素之前采集标本，如果已使用抗生素，采样和分离培养最好加入相应的中和剂（中和样品中残存的抑菌物质）或进行其他处理。作病毒分离和病毒抗原检测的标本，应在发病初期和急性期采样，最好在发病1～2天内采取。 4.注意避免采样引入新的污染或者对微生物的杀灭因子：所有采样用具、容器需严格灭菌，并以无菌操作采样。对微生物样品，应避免采样时对微生物的杀灭作用和引入新的抑菌物质，如容器是否有消毒剂的残留，或使用刚烧灼未冷却的采样工具。 5.注意对样品的详细标记：用于卫生质量评价的样品，应标明样品名称、编号、采样时间、采样量、采样者、检测项目等。 （二）样品采集的方法和注意事项 1.用于微生物分离培养或抗原检测的生物性样品 （1）咽拭子、洗漱液或痰液标本： ①咽拭子的采集：让患者仰头张口，用压舌板压舌，用无菌棉拭子在咽部涂抹数次后，放入含2ml Hank液的试管中，棉拭子接触手的部分应及时折断或剪断去掉，然后盖紧试管。 ②洗漱液的采集：用生理盐水或自配淡盐水约15ml作为洗漱液，让患者咳嗽后，倒入灭菌生理盐水或自配淡盐水约15ml，反复洗漱咽部1分钟，直接将洗漱液吐入灭菌容器