植物组织培养的培养基配制实验设计
植物组织培养实验报告
植物组织培养实验一：培养基的配制学院：风景园林院学号：131001226 姓名：张晟菓一、实验目的1. 掌握植物组织培养实验室常用玻璃器皿的清洗及包扎方法。
2. 掌握培养基的配置方法。
3. 掌握高压蒸汽灭菌的操作方法。
二、实验原理鉴于微生物种类及代谢类型的多样性，用于培养微生物的培养基的种类也很多。
培养基的配置的程序有器皿的准备，培养基的配制与分装，棉塞的制作，培养基的灭菌，以及培养基的无菌检查等。
此次配制400mL MS培养基。
三、实验材料1.药品：激素：BA 1.0L（200mg/L）NAA 0.2L（200mg/L）母液：MS1（大量元素）20mL——浓缩20倍MS2（微量元素）2mL——浓缩200倍MS3（铁盐）2mL——浓缩200倍；MS4（维生素和氨基酸）2mL——浓缩200倍琼脂：2.2g蔗糖：12g（3%）无菌水2.玻璃器皿：移液管、试管、烧杯、量筒、玻璃棒、培养皿3.仪器设备：电子天平4.其他物品：药匙、滤纸、称量纸、pH计、记号笔、棉花等四、实验步骤1.玻璃器皿清洗：将试管、培养皿、量筒等浸入含有洗涤剂的水中，用毛刷刷洗，然后用自来水和蒸馏水冲净。
移液管先用含有洗涤剂的水浸泡，再用自来水及蒸馏水冲洗。
晾干后备用。
2.量取母液：MS1（20mL），MS2（2mL），MS3（2mL），MS4（2mL）；加激素：BA（1.0mL），NAA（0.2mL）；加蔗糖：12g。
3.加水定容至400mL。
4.搅匀后用pH计、烧碱溶液及硫酸溶液调pH值至5.8。
5.加琼脂2.2g，用电磁炉加热溶解并搅拌5-6分钟，冒泡即可拿出。
6.趁热分装，包扎，贴标签。
五、实验结果培养基配置完成。
培养基配制
（2）无机微量(100倍液，配制500ml） 无机微量(100倍液，配制500ml） 倍液 500ml 药品名称 MnSO4 ·4H2O 4H ZnSO4 ·7H2O 7H CuSO4 ·5H2O 5H H3BO3 Na2MoO4 ·2H2O 2 KI CoCl2· 6H2O 配方用量mg/L 扩大50倍称量mg 50倍称量 配方用量mg/L 扩大50倍称量mg 1150 22.3 8.6 0.025 6.2 0.25 0.83 0.025 430 1.25 310 12. 12.5 41. 41.5 1.25 定容于500ml 定容于500ml 蒸馏水中。 蒸馏水中。每 升培养基吸此 液10ml
四、实验步骤
1、接种前的准备：如实验一准备的培养基等； 接种室的准备（超净台的准备） 2 2、培养材料表面灭菌：洗涤、清理；（此处 开始在超净台上操作）75%酒精浸泡30秒， 倒出酒精；0.1%升汞5-8 min，倒出升汞； 无菌水洗涤3-5次，无菌水浸泡备用。
四、实验步骤
3、接种：取出叶片置于培养皿中的滤纸上， 吸取水分，剪去被升汞杀死的叶片边缘，将 叶片剪成适当大小（3-5mm见方），接种到 适当培养基中。重新包扎好瓶口，写好标签 （时间、材料等） 4、培养观察：置于培养室或培养箱中培养， 温度25度左右，光照16小时，照度20003000lux。第一周注意观察污染情况，随时 清理污染的培养瓶，记录污染率及生长情况。
实验三 月季的快繁
一、实验目的：对月季茎段进行快繁 ，掌握 利用茎段作为外植体进行无性繁殖的方法 二、实验用品： 1、仪器用具：超净工作台、接种器具（实验 一已灭菌）酒精灯、酒精棉球 2、试剂：实验一准备的培养基、0.1%升汞、 75%酒精、吐温、无菌水 三、实验材料：植物茎段（月季）
植物组织培养实验报告
植物组织培养实验报告学院：生命科学技术学院班级：11生物技术(制品)学号：**********姓名：**植物组织培养实验报告实验一植物组织培养母液的配制一、实验目的1.了解植物组织培养基本培养基的组分及其作用。
2.学习掌握植物组织培养MS培养基的配制方法。
二、实验原理培养基是植物组织培养中离体组织赖以生存和发育的条件。
大多数培养基的成分是有无机盐、有机化合物（碳源、维生素、肌醇、氨基酸等）、生长调节物质、水分和其他附加物等五大类物质组成。
无机盐类由大量元素和微量元素组成。
大量元素中，氮类化合物主要以硝酸类和铵类化合物的形式存在，但在培养基中多用硝酸类，也可以将硝酸类和铵类混合使用；磷和硫常用磷酸盐和硫酸盐来提供；钾是培养基中主要的阳离子；钙、钠、镁的需要量较少。
微量元素包括碘、锰、铜、锌、钴、铁。
培养基中的铁离子，大多数以螯合物的形式存在，即硫酸亚铁与乙二胺四乙酸二钠的混合。
有机化合物包括碳源、维生素、肌醇、氨基酸等。
培养中的植物组织和细胞的光合作用较弱，因此，需要在培养基中附加一些碳水化合物物来提供营养需要。
培养基中的碳水化合物通常为蔗糖。
蔗糖除了作为培养基的碳源和能源外，对维持培养基的渗透压也起着重要的作用。
在培养基中加入维生素有助于细胞的分裂和增长。
一般包括VB1、B6、烟酸、生物素、叶酸、泛酸钙、VC。
肌醇在糖类的相互转化、维生素和激素的利用等方面具有重要的催进作用。
常用的植物生长调节物质包括以下三类：①生长素类：吲哚乙酸（IAA）、萘乙酸（NAA）、二氯苯氧乙酸（2,4-D）②细胞分裂素：玉米素（ZT）6-苄基嘌呤（6-BA）和激动素（KT）。
③赤霉素：组织培养中使用的赤霉素只有一种，即赤霉酸（GA3）。
培养基中的其他附加物包括人工合成和天然的有机物附加物。
其中最为常见的为酵母提取物。
琼脂作为培养基的支持物，也是最常用的邮寄附加物，他可以是培养基呈固体状态，以利于组织和细胞的培养。
植物组织培养是否成功，在很大的程度上取决于培养基的选择之上。
实验二.培养基的配制及灭菌
实验二培养基的配制及灭菌一、实验目的：1. 掌握常用培养基的制备方法；2. 了解培养基的成分、类型及特点；3. 学会玻璃仪器的洗涤和灭菌前的准备工作。
4.了解培养基的配制原理和方法，掌握其配制过程和分装方法。
二、实验原理人工配制的培养基是植物组织培养的营养基础，不同材料对培养基的要求不尽相同，适当地设计和选用培养基对组织培养是至关重要的，一个完整的培养基配方应包含有无机盐、有机营养、水、植物生长调节剂、琼脂及其他成分。
培养基的主要成分的详细内容见课本p26~29。
为了省时和减少多次称量的误差，一般先将药品配制成浓缩一定倍数的母液，用时稀释，储存于冰箱低温（2~4摄氏度）中待用。
基本培养基有8中母液，即大量元素母液、微量元素母液、有机物母液、钙盐母液、铁盐母液、肌醇母液、镁元母液、生长调节物质母液，基本培养基的配制方法有两种：一是可以将培养基的每种成分配成单一化合物的母液，便于配制不同种类的基本培养基时使用；二是配成几种不同的混合液，这样在大量配制同一种培养基时更省时、省力。
在配制母液时应注意防止沉淀产生。
绝大多数生长调节物质不溶于水，可以加热并不断搅拌促使溶解，必要时加入稀酸或稀碱等物质促溶。
各类植物生长调节物质的用量极小,它们对外植体愈伤组织的诱导和根、芽等器官分化起着重要和明显的调节作用。
通常使用的浓度单位是mg/L。
配制好的培养基应在24h之内完成灭菌工作，以免造成杂菌大量繁殖。
灭菌方法有：高温高压灭菌、过滤除菌、射线除菌等方法。
培养基常采取高压灭菌的方法，灭菌时间一般是在0.105MPa压力下，温度121摄氏度时，灭菌时间应根据容积的体积确定，所需最少时间见课本P32表2ˉ2。
培养基必需保证绝对无菌，否则因其营养丰富细菌、真菌极易滋生而导致植物死亡。
灭菌后的培养基不宜马上使用，以免造成培养材料的损失。
（一）、组成培养基的五类成分目前，大多数培养基的成分是由无机营养物、碳源、维生素、生长调节物质和有机附加物等五类物质组成的。
第五章植物组织培养技术实验方案
第五章植物组织培养技术实验方案一、实验目的：1.了解植物组织培养的基本原理和方法。
2.掌握植物组织培养的实验操作技巧。
3.培养植物组织并观察其生长和发育情况。
二、实验材料和设备：材料：麦芽糖、琼脂、植物激素（如IAA、ABA、GA3等）、幼绿豆胚轴组织。
设备：平板培养器、显微镜、高压锅、移液器、无菌操作器具等。
三、实验步骤：1.制备琼脂培养基a）称取适量琼脂加入适量蒸馏水中，搅拌均匀。
b）高压锅加热至沸腾，放入琼脂溶液，保持沸腾10-15分钟，使琼脂充分溶解。
c）将高压锅冷却后取出，倒入洁净的培养器中，晾凉并凝固。
2.准备植物组织a）将绿豆种子浸泡于水中，待种子发芽至一定程度。
b）取出绿豆胚轴组织，用刀切割成适当大小的组织片段。
3.制备植物组织培养基a）取适量砂糖和植物激素（如IAA、ABA、GA3等），溶解于蒸馏水中。
b）加入适量制备好的琼脂培养基，搅拌均匀。
4.进行组织培养a）将准备好的植物组织片段放入培养器中，倒入制备好的植物组织培养基，使组织片段完全浸没其中。
b）盖上培养器盖子，用透明胶带密封，防止细菌浸入。
c）将培养器置于适当的温度和光照条件下，进行培养。
5.观察和记录a）每天观察组织的生长和发育情况，记录变化。
b）使用显微镜观察细胞结构和细胞分裂情况。
c）观察是否有细菌感染或其他异常情况。
d）记录实验数据，如生长速率、生长周期等。
四、实验要点：1.所有实验操作都要在无菌环境下进行，避免细菌和其他微生物的污染。
2.组织培养基的配方可以根据不同的植物种类和研究目的进行调整。
3.培养条件也根据不同植物种类的要求进行调整，如温度、光照等。
4.实验中要注意观察并记录实验数据，对结果进行分析和总结。
五、预期结果：通过植物组织培养技术，可以观察到植物组织的生长和发育情况，研究不同因素对植物生长的影响，培养出健康的植物组织，为其他相关研究提供基础数据和实验材料。
六、安全注意事项：1.操作时要小心使用实验器具，避免切伤或烫伤等事故发生。
植物组织培养培养基的配制与灭菌
★★★★★实验二植物组织培养培养基的配制与灭菌一、实验目的1.培养基能够提供植物生长、繁殖所必须的各类营养物质，以及生长因子，是开展植物组织培养研究的基础和前提。
植物的种类不同，研究的目的不同，所需要的培养基的种类也各不相同。
2.学习并掌握植物组织常用培养基的组成、配制与灭菌方法。
二、实验用具和药品1. 实验用具：电子天平（1/10、1/1000）、烧杯（100ml、1000ml）、量筒（50ml、100ml）三角瓶或培养瓶、移液管、药匙、玻棒、pH试纸、吸耳球、牛皮纸、皮筋等。
2. 药品：蔗糖、琼脂、0.1mol/L NaOH、 0.1mol/L HCl、各种培养基母液、激素母液三、实验内容与步骤（一）分组配制培养基。
各类培养基组成如下：1. 水琼培养基。
2. MS0培养基。
3. 1/2MS培养基。
4. MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.5mg/L。
5. MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 1.0mg/L。
6. MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 2.0mg/L。
7. MS+KT 0.5mg/L+6-BA0.5mg/L。
8. MS+NAA 1.0mg/L+2,4-D 1.0mg/L。
（二）湿热灭菌培养基1.称取规定数量的琼脂，加水到培养基最终容积的3/4，水浴或电炉使之加热溶解。
2.根据配方要求，把按顺序量取的各种母液以及称取的蔗糖，都加入煮好的琼脂中，然后加水定容。
3.用0.1mol/L的NaOH或者HCl调pH。
4.分装培养基，包好或盖好，标明编号。
5.121℃(103kPa)灭菌15-20min。
（三）作好植物组织培养的各项准备工作1. 制备无菌水：121℃(103kPa)灭菌40min 。
2. 配制 0.1%HgCl2溶液（放置棕色瓶中）。
3. 准备接种用培养皿、金属器械等用具。
四、注意事项1. 实验中所用的各种容器一定要洗净、烘干。
2. 用电子天平称量药品时，一定要用称量纸，对于有腐蚀性的药品，应将其放置在小烧杯中称量。
植物组织培养实验(2)
（二）实验原理
在一定的条件下，不同器官（根、茎、叶 等）来源的外植体均可以脱分化形成愈伤 组织。
（三）实验材料和用具
实验材料：黄瓜无菌苗 实验药品： MS、 1mg/ml NAA 、 1mg/ml 6-BA、
1mol/L HCl、1mol/L NaOH、蒸馏水、灯 用酒精、70％酒精、无菌水 。 灭菌培养基：MS1 （MS+1.0mg/LBA+0.5mg/L NAA）
实验用具：
天平、烧杯、玻璃棒、量筒、移液枪、三 角瓶、pH试纸、电炉、高压灭菌锅。
无菌室、无菌滤纸、无菌培养皿、烧杯、 解剖刀、镊子、剪刀、酒精灯、酒精棉花、 滴管、记号实验步骤
1. 配制以下培养基各100ml ： MS2：MS+2.0mg/LBA+0.1mg/L NAA MS3：MS+2.0mg/LBA+0.5mg/L NAA MS4：MS+2.0mg/LBA+2.0mg/L NAA ① 取200ml烧杯3只，标记，各加入4g MS培养基和
4. 接种 ① 进入无菌室，用70％乙醇擦洗双手和工作台面，点燃酒
精灯。 ② 解开三角瓶的绳子，将三角瓶按使用先后顺序排好。 ③ 再次消毒双手和工作台面，取出无菌滤纸，用无菌水润
湿。 ④ 在火焰边打开三角瓶的封口纸，烧灼瓶口和镊子，待镊
子冷却后取出无菌苗，放置在无菌滤纸上。 ⑤ 剪成5～10mm小段（根部去掉部分根尖，叶片去叶缘后
剪成50mm2左右的小片），每平皿接种3～5段（片）。 每组接种8瓶，根、茎段、茎尖、叶各2瓶。 ⑥ 光照培养箱25℃暗培养。
作业
1. 1周后观察培养体系有无污染，计算每一个平皿 内染菌外植体数和外植体外的菌落数，分析染 菌原因。
菊花的组织培养实验设计
菊花的组织培养实验设计引言概述菊花是一种常见的欣赏植物，其花朵色采丰富，形态优美，深受人们爱慕。
为了研究菊花的生长发育规律以及促进其繁殖，进行菊花的组织培养实验是一种有效的方法。
本文将详细介绍菊花组织培养实验的设计。
一、实验材料准备1.1 选择适宜的菊花组织在进行菊花组织培养实验时，需要选择健康、无病虫害的菊花植株作为实验材料。
可以选择嫩芽、叶片或者花蕾等组织进行培养。
1.2 准备无菌工作环境在进行组织培养实验时，需要准备无菌工作环境，包括无菌培养室、无菌操作台、无菌培养器具等，以确保实验的无菌条件。
1.3 配制培养基根据菊花组织培养的需要，可以选择适宜的培养基，如MS培养基、B5培养基等，并添加适当的植物生长调节剂，如激素等。
二、组织切割和接种2.1 组织切割将选取的菊花组织进行切割，保持组织的完整性，避免受损，以提高组织培养的成功率。
2.2 组织接种将切割好的菊花组织放入含有培养基的培养器具中，进行组织接种，确保组织与培养基充分接触，促进组织生长。
2.3 培养条件控制在组织接种后，需要控制培养条件，如光照、温度、湿度等，以促进组织生长和分化。
三、培养过程管理3.1 培养器具清洁在培养过程中，需要定期清洁培养器具，避免细菌和真菌的污染，影响组织的生长。
3.2 培养基更换随着培养时间的推移，培养基中的营养物质会逐渐耗尽，需要定期更换新的培养基，以维持组织生长所需的营养。
3.3 组织生长监测在培养过程中，需要定期观察和记录组织的生长情况，包括组织的形态、颜色、生长速度等，以及时调整培养条件。
四、组织分化和再生4.1 组织分化诱导通过调节培养基中植物生长调节剂的浓度和种类，可以诱导菊花组织进行分化，形成新的器官或者植株。
4.2 再生植株培养对分化成功的组织进行再生培养，培养出新的植株，为菊花的繁殖提供新的途径。
4.3 植株移栽将再生的植株移栽到适宜的生长环境中，进行后续的生长观察和繁殖。
五、实验结果分析5.1 记录实验数据在实验过程中，需要详细记录实验数据，包括组织的生长情况、分化情况、再生植株数量等，以便后续的结果分析。
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化合物 CuSO4.5H2O CoCl2.6H2O H3BO3 KI MnSO4.4H2O ZnSO4.7H2O Na2MoO4.2H2O
培养基 浓度 (mg/L)
0.025 0.025 6.2 0.83 22.3 8.6 0.25
微 II 量 元 素
1升母液 每升培 母液扩 中药品 养基取 大倍数 称取量 母液的 (mg) 量(ml) 25 25 6200 1000倍 830 1 22300 8600 250
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植物细胞工程学——郑传益制作
母液配制
母液配制准备 托盘天平、电子分析天平、烧杯、玻璃棒、容量瓶、 标签纸、记号笔、胶头滴管、蒸馏水、0.1mol/L NaOH[aq]、 0.1mol/L HCl[aq] 、 PH试纸
标签纸格式示例：
母液类型编号 浓度 配制人 详细日期
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母液配制
表4
1升母液 每升培 母液 培养基浓 母液扩 中药品 养基取 化合物 类别 度(mg/L) 大倍数 称取量 母液的 (mg) 量(ml) 甘氨酸 2 400 有 盐酸硫胺素 0.4 80 VI 机 盐酸吡哆素 0.5 200倍 100 5 物 烟酸 0.5 100 肌醇 100 20000
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母液配制
母液配制中注意： (1)NH4NO3、KNO3此两种药品为易爆品，取用 时一定要轻拿轻放，保存在阴凉处。 (2)EDTA-Na2、CoC12、2，4-D此三种药品为致 癌物，配制时要带胶皮手套，或两层塑料手套 。 (3) 定容原则：在母液配制时部分需要加热促 进溶解，定容一定要等到常温下进行。
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母液配制
微量元素母液II配制
各成分按照表2用适量蒸馏水分别溶解，按顺序逐步 混合。后用蒸馏水定容到 1000ml的容量瓶中，即为 1000倍的微量元素母液。倒入细口瓶，贴好标签保存 于冰箱中。
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母液配制
表2
母液 类别
植物组织培养的培养基配制
实验设计
姓名：郑传益 学号：1101410722 Q Q：1410928287
概要
MS培养基营养成分较多，而且一些成分用 量很小。为便于配制，可以分类扩倍制备浓缩母 液，使得配制MS时快捷方便、成分需求量更为准 确。
• 母液配制及注意事项 • 培养基配制及注意事项
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培养基配制
操作步骤 1.根据配方要求，用量筒或移液管从各母液中分别 取出所需用量，放入同一烧杯中并将称取好的蔗糖 和琼脂放在一边备用； 2.将称取好的琼脂加入盛有加热后的（沸腾后停止 加热）蒸馏水约300ml的搪瓷杯中溶解，并不断搅 拌，直至溶液呈透明状； 3.将1.烧杯中的试剂和蔗糖加入至溶解好的琼脂溶 液中，边加热边搅拌，定容至1000mL； 4.调节PH； 5.分装标记后封装灭菌。
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结语
参考资料来源于： 小木虫 /bbs/viewthread.php?tid=4172764 中国知网空间 （1）/Article/CJFDTOTAL-AHNY200804031.htm （2）/Article/CJFDTOTAL-ZWSL199701001.htm 溶解性表、溶解度表、各成分物质性质——维基百科 /wiki/Wikipedia:%E9%A6%96%E9%A1%B5 图片引用声明： 所有图片均援引自淘图网——生物科学，并做出相关ps处理 /search.php?keyword=%C9%FA%CE%EF%BF% C6%D1%A7
*如果需要添加相关激素，为方便实验 操作，同样可以扩倍配制激素母液使用
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培养基配制
培养基配制准备： 量筒、移液管、烧杯、蔗糖、琼脂、天平、电热炉、 玻璃棒、铁架台、锥形漏斗（带橡胶管）、搪瓷杯、 PH试纸、培养皿
注意事项： 1.培养基熔化后要趁热定容，否则培养基低温琼脂 将凝固，造成营养成分浓度不均。 2.对PH要求较严的目标培养物，调解pH时最好用 电子pH计，以保证精确度。pH试纸的误差较大，要 小心调节。可以将pH调到比最适值小约0.2，因为培 养基在灭菌后，pH将变大。
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母液配制
母液配置要求 1.按照《MS培养基成分表》中成分准备试剂。 2.母液划分分组依据： a.根据元素需求量划分并配制等倍浓缩液混匀便 于取用 b.母液中各物质不能因反应而产生沉淀。其中， Ca2+与SO42-混合会产生CaSO4沉淀；在钼酸盐中， 铵、碱金属、镁和铊盐溶于水,其他都不溶于水。 3.母液扩大倍数依据：由于所配制母液在未使用情 况下需要放置在4℃下保存，所以要求在该温度下不 能饱和析出，以免影响使用。各物质的溶解度详细 参考各物质的溶解度曲线。
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母液配制
大量元素母液I配制
各成分按照表1培养基浓度含量扩大10倍用天平称取，各 种化学药品必须先以少量重蒸馏水使其充分溶解后才能混 合，混合时应注意先后顺序。后用蒸馏水定容到 1000ml 的容量瓶中，即为10倍的大量元素母液。倒入细口瓶，贴 好标签保存于冰箱中。 *母液配制时要用纯度高的重蒸馏水溶解，药品采用等级较 高的分析纯。
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母液配制
有机物母液IV配制
培养基中的有机成分原则上应分别单独配制。配制直接用 蒸馏水溶解，定容至1000mL，注意称量时用电子分析天 平。 注意事项： 由于维生素母液营养丰富，因此贮藏时极易染菌。被菌类 污染的维生素母液，有效浓度降低，并且易给后期培养造 成伤害，不宜再用。避免此现象发生的方法是:配制母液时 用无菌重蒸馏水溶解维生素，并贮存在棕色无菌瓶中，或 缩短贮藏时间。
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母液配制
表1
母液 类别
大 量 I 元 素
培养基 1升母液中药 每升培养 母液扩 化合物 浓度 品称取量 基取母液 大倍数 (mg/L) (mg) 的量(ml) MgSO4.7H2O 370 3700 KNO3 1900 19000 KH2 PO4 170 10倍 1700 100 NH4.NO3 1650 16500 CaCl2.2H2O 440 4400 注意事项： 在溶解CaCl2· 2H2O 时，蒸馏水需加热沸腾，除去 水中的CO2，以防沉淀。另外，CaCl2· 2H2O放入 沸水中易暴沸，操作时要先等水温温和后加入
注意事项： 依照次序添加试剂，防止发生沉淀反应
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母液配制
Fe元素母液III配制
目前常用的铁盐是硫酸亚铁和乙二胺四乙酸二钠的螯 合物，必须单独配成母液。这种螯合物使用起来方便，又 比较稳定，不易发生沉淀。各成分按照表3分别用适量蒸 馏水将FeSO4和Na2-EDTA 加热溶解后混合，再一边加热一 边不断搅拌至溶液呈金黄色(约加热20 - 30 min)，调pH值 至5 .5，室温放置冷却后，用蒸馏水定容到 1000ml的容量 瓶中，即为200倍的Fe元素母液。倒入棕色细口瓶，贴好 标签后再冷藏。
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母液配制
表3
பைடு நூலகம்
母液 类别
化合物
培养基浓 度(mg/L)
III铁 Na2.EDTA 盐 FeSO4.7H2O
37.3 27.8
1升母液 每升培 母液扩 中药品 养基取 大倍数 称取量 母液的 (mg) 量(ml) 7460 200倍 5 5560
注意事项： 在配制铁盐时，如果加热搅拌时间过短，会造成FeS04 和Na2-EDTA 鳌合不彻底，此时若将其冷藏，FeSO4会 结晶析出。