现代生物学实验技术实验报告
细胞培养实验报告
细胞培养实验报告细胞培养是现代生物学研究中不可或缺的手段，其涉及到细胞的生长、分化、代谢以及各种分子和信号的相互作用等。
今天我将分享一份由我亲自进行的细胞培养实验报告，以介绍这一重要技术的原理、步骤和结果。
实验原理细胞培养指的是将体外的细胞，按照一定比例和条件，放置在培养基中进行生长和繁殖的一种方法，通常包含以下步骤：使用无菌操作要求的器材和条件进行细胞总和的计数、试管的制备、制备试验培养液、细胞处理、细胞复苏、细胞的种植等。
实验步骤在实验之前，需要先准备培养所需的器材和试剂，如细胞培养基、跳汞灯、无菌器皿、超净台、离心管、显微镜和培养皿等。
接下来，我们按照以下步骤进行细胞培养。
1. 细胞的收获和处理我们用脱离液将细胞从体内取出，再加入一个特定的培养基中。
我们需要用细胞水平计算细胞总量，并将其分为每个培养皿中的所需数量。
如我们所选的細胞因子等指标。
2. 细胞扩增和培养在试管中添加适当的培养基、生长因子、荷尔蒙和混合，将所有细胞加入并处理好，很快开始分裂形成足够的细胞密度。
3. 培养的观察和种植使用无菌操作的器材和技术检查细胞的状况和数量，然后将其通过无菌技术铺在特定的基质上，进行后续的观察和研究。
实验结果在本次细胞培养实验中，我们成功提取了人造血液中的白细胞，通过分裂和培养，检测到细胞数量的增加和改变，以及不同化学和物理刺激的作用。
我们也观察了细胞的状态、形态和细胞核的状态，以评估其是否处于正常状态。
此外，我们还测试了不同培养条件下的生长速度和丰度，比较了细胞的发育和生长。
结论和思考在本次实验中，我们成功进行了细胞培养，该技术不仅可用于证实细胞的正常生长和增殖，还可用于疾病的研究和治疗中。
在实验中，我们需要注意无菌操作、培养条件和细胞的状态，以保证实验的成功和准确性。
总之，本次细胞培养实验为我们提供了一个更深入地了解细胞生物学的机会。
不仅可以促进人类健康的治疗方法，还可以为制药、医疗和工业领域提供更好的方法和技术。
生物实习报告
生物实习报告实习时间，2021年7月1日-2021年7月30日。
实习地点，XX大学生物实验室。
实习内容：在本次生物实习中，我主要参与了实验室的日常工作和研究项目。
实验室的研究方向主要集中在细胞生物学和分子生物学领域，我有幸参与了一些有关细胞培养、PCR技术和蛋白质分离等方面的实验工作。
在细胞培养方面，我学习了细胞的处理、培养和观察技术。
通过观察细胞在培养皿中的生长和形态变化，我对细胞的生长特点有了更深入的了解，并学会了如何进行细胞的传代和冻存。
在PCR技术方面，我参与了DNA提取、PCR扩增和凝胶电泳等实验。
通过这些实验，我学会了如何从细胞中提取DNA，并且掌握了PCR技术的操作流程和原理。
在蛋白质分离方面，我学习了蛋白质的提取、纯化和鉴定技术。
通过实验，我了解了不同的蛋白质分离方法，掌握了SDS-PAGE凝胶电泳技术，并学会了如何使用Western blot技术检测目标蛋白质。
实习收获：通过这一个月的实习，我不仅学到了大量的实验操作技能，还深入了解了细胞生物学和分子生物学的理论知识。
在实验室的指导下，我学会了如何认真细致地进行实验操作，如何分析实验结果，以及如何与同事合作共同完成研究项目。
此外，实习还让我对生物科学研究有了更深入的了解，也增强了我对科学研究的兴趣。
在实习期间，我还参与了实验室的讨论和学术报告，与老师和同学们进行了深入的交流和讨论，这让我受益匪浅。
总结：这次生物实习是我大学生涯中非常宝贵的经历。
通过实习，我不仅学到了专业知识和实验技能，还培养了团队合作意识和科学研究的思维方式。
我将会把这次实习所学到的知识和经验，运用到今后的学习和科研中，为将来的发展打下坚实的基础。
感谢实验室的老师和同学们在我实习期间的悉心指导和帮助，让我收获颇丰。
重组DNA转化及筛选实验报告
重组DNA转化及筛选实验报告引言DNA重组技术是现代生物学研究中不可或缺的工具之一，它可以将外源基因片段插入到宿主细胞的染色体中，从而实现特定基因的表达。
DNA转化是重组技术的关键步骤之一，通过电刺激或化学方法将外源DNA引入宿主细胞中。
本实验旨在通过DNA转化及筛选，构建宿主细胞中的重组DNA，并对成功转化的细胞进行筛选。
实验材料和方法材料：1. E. coli DH5α细胞2.外源质粒DNA3.LB琼脂培养基4.青霉素/链霉素抗生素5.离心管6.PCR仪7.恒温摇床方法：1.准备转化液：将50 mL LB琼脂培养基加入含有适量抗生素的离心管中，混匀。
2.取出青霉素/链霉素抗生素的冻存液，解冻后加入LB培养基中，使其浓度为最佳浓度。
3.取出冻存的E. coli DH5α细胞，放在冰上解冻。
4.加入转化液中的合适量DNA，比例为1:10（DNA:转化液）。
5.放入37℃恒温培养箱中孵育30分钟。
6.取出孵育后的细胞转化液，通过离心将细胞沉淀。
7.倒掉上清液，用适量的无菌去离子水悬浮细胞。
8.取一小部分悬浮液涂抹在含有抗生素的琼脂平板上。
9.将琼脂平板放置在37℃恒温培养箱中培养过夜。
10.检查平板上是否有菌落生长，记录结果。
11.选取生长菌落较大、菌落形态规则的菌落进行进一步筛选。
12.取一小部分菌落涂抹在新的琼脂平板上进行单克隆分离。
13.重复步骤12，直至获得纯合阳性克隆菌落。
14.提取纯合阳性菌落中的质粒DNA，进行PCR验证。
结果与讨论经过上述实验操作，我们成功地进行了重组DNA的转化和筛选。
在配制转化液时，选择适量的抗生素浓度非常重要，它可以帮助筛选出成功转化的细胞。
通过在琼脂平板上培养过夜后，我们可以观察到菌落的生长情况。
有菌落生长的平板可以说明转化成功，而没有菌落生长的平板则说明转化失败。
选取生长较大、形态规则的菌落进行进一步筛选是为了确保筛选出的细胞是单克隆的。
通过单克隆分离，我们获得了纯合阳性克隆菌落。
生物类实习报告范文
生物类实习报告范文一、实习目的和背景按照学校课程设置的要求，我自愿选择了进行生物类实习，以加深对生物学知识的理解，并培养自己的实际操作能力。
通过本次实习，我希望对生物学实验模拟操作有更加全面的认知，并提高自己在实验环境中的应对能力。
二、实习过程及方法本次实习选择了植物生长与繁殖实验作为主题，利用实验室提供的设备和材料，针对植物生长和繁殖的相关研究内容进行了一系列的模拟操作。
首先，我们需要准备相应的实验材料，包括种子、土壤、养份溶液等等。
然后，根据实验要求，将种子培养在一定的温度、湿度和光照条件下。
在培养过程中，需要不断检测土壤湿度和养份溶液的浓度，并做出相应的调整。
为了观察植物生长的过程，我们还进行了定期的采样和测量，并记录了对应的数据。
最后，根据实验数据，我们进行了数据分析，并得出相应的结论。
三、实习结果和分析通过实验操作和数据分析，我们观察到了植物在不同环境条件下的生长和繁殖变化。
实验结果显示，植物在适宜的温度、湿度和光照条件下，生长速度较快，叶片颜色鲜艳，根系发达。
而在不适宜的环境条件下，植物生长受到抑制，根系生长不良，叶片逐渐变黄。
通过统计和分析实验数据，我们还发现了植物生长和繁殖与环境因素之间的关系。
光照、温度和湿度对植物生长具有重要影响，光合作用和呼吸作用是植物生长的关键过程。
植物在充足的光照条件下，能够进行充分的光合作用，获得足够的能量进行生长；而温度和湿度过高或过低，都会对植物的光合作用及其他生命活动产生负面影响，导致植物生长发育异常。
四、实习体会和收获通过本次实习，我对生物学的实际操作有了更深刻的理解和认识。
在实验操作中，我学会了使用实验室常用的仪器和设备，掌握了种子的培养技术、土壤湿度调控技巧以及养份溶液的配制方法。
同时，在数据分析过程中，我也提高了自己的数据处理能力和统计分析能力。
此外，通过与其他同学和实验室老师的合作，我体会到了团队合作的重要性。
在实验过程中，大家相互配合，交流合作，共同解决实验中的问题，取得了良好的实验结果。
生化实验报告
生化实验报告引言：生化实验是现代生物科学研究中不可或缺的一部分。
通过生化实验，可以深入了解生物体的分子组成和功能，揭示生物体的生理过程和相关疾病的发生机制。
本报告将就我们进行的一系列生化实验结果进行总结和分析。
实验一：蛋白质浓度测定实验蛋白质是生物体的重要组成部分，也是许多生理过程的关键调节因子。
通过本实验，我们采用比色法测定了不同样本中的蛋白质含量，并得出以下结论：1. 样本A的蛋白质浓度明显高于样本B，表明样本A可能含有更多的蛋白质。
2. 样本C的蛋白质浓度最低，可能是由于样本C中存在其他干扰物质，影响了测定结果。
实验二：酶活性测定实验酶是生物体内参与代谢反应的重要分子，其活性的变化可以反映生物体的生理状态。
本实验中，我们通过测定不同条件下酶的活性，得出以下结论：1. 酶活性随着温度的升高呈先增加后下降的趋势，说明酶在适宜温度下具有最高的活性。
2. pH值的变化对酶活性也有一定影响，酶活性在酸性和碱性条件下均降低，表明酶对于特定pH值有一定的适应性。
3. 离子浓度的改变可以显著影响酶的活性，高浓度的阳离子对酶活性的抑制效果较大。
实验三：DNA提取实验DNA是生物体内存储遗传信息的重要分子，在基因研究和生物技术中应用广泛。
本实验中，我们采用了几种常见的DNA提取方法，得出以下结论：1. 不同提取方法对于不同样本的DNA提取效果有所差异，需要根据实际情况选择合适的方法。
2. 样本中其他杂质的存在会干扰DNA的提取，需要进行适当的纯化步骤以提高提取纯度。
3. 所得到的DNA质量可以通过比色法或荧光法进行检测，得出相对准确的结果。
实验四：酸碱滴定实验酸碱滴定是一种常用的分析方法，在酸碱度测定和沉淀反应等方面有广泛应用。
本实验中，我们进行了一系列的酸碱滴定实验，得出以下结论：1. 强酸和强碱的滴定过程呈现出明显的酸碱中和点，通过计算可以得到溶液中目标物质的浓度。
2. 在滴定过程中，我们需要通过指示剂的颜色变化来判断滴定终点，需注意颜色的变化程度和持续时间。
无菌技术实验报告
无菌技术实验报告无菌技术实验报告一、引言无菌技术是现代生物学和医学领域中至关重要的一项技术。
通过无菌技术，可以有效地避免细菌、真菌和其他微生物的污染，保证实验结果的准确性和可靠性。
本实验旨在探究无菌技术的原理、方法和应用。
二、无菌技术的原理无菌技术的核心原理是通过物理或化学方法杀灭或去除存在于实验环境中的微生物，以确保实验操作的无菌状态。
常用的无菌技术包括高温灭菌、化学消毒和过滤法。
1. 高温灭菌：高温灭菌是最常用的无菌技术之一。
通过将实验器具置于高温环境中，如高压蒸汽灭菌器中，可迅速杀灭细菌、真菌和病毒。
高温灭菌的优点是简单易行，且适用于多种实验器具。
然而，某些热敏性物质可能会受到破坏。
2. 化学消毒：化学消毒是利用化学物质杀灭微生物的方法。
例如，常用的消毒剂如酒精、过氧化氢和氯化物等，可以有效地灭活微生物。
化学消毒的优点是速度快、范围广，但某些化学物质可能对实验物质产生不良影响，且有些微生物可能对化学消毒剂产生耐药性。
3. 过滤法：过滤法是通过使用微孔过滤器将微生物过滤掉，从而实现无菌状态。
过滤法适用于液体和气体的无菌处理，可以有效地去除微生物，但需要注意过滤器的选择和更换。
三、无菌技术的实验方法本实验采用高温灭菌和化学消毒两种无菌技术进行实验操作。
1. 高温灭菌方法：首先，将待处理的实验器具放入高压蒸汽灭菌器中，设置适当的温度和时间。
待灭菌结束后，使用无菌吸管或无菌镊子将器具取出，放置在无菌培养基上进行培养。
2. 化学消毒方法：将待处理的实验器具浸泡在适当浓度的消毒液中，根据消毒液的说明书确定浸泡时间。
待消毒结束后，用无菌去纤维棉球擦拭器具表面，然后将其放置在无菌培养基上进行培养。
四、无菌技术的应用无菌技术在生物学和医学领域有广泛的应用。
以下是几个常见的应用领域：1. 细胞培养：在细胞培养实验中，无菌技术被广泛应用于培养基、培养器具和培养环境的无菌处理，以避免外源性微生物的污染。
2. 医疗器械：在医疗器械的生产和使用过程中，无菌技术被用于灭活细菌和病毒，确保医疗器械的无菌状态，以避免感染风险。
生物实验报告【三篇】
生物实验报告【三篇】篇1实验名称:用高倍显微镜观察叶绿体和细胞质流动一、实验目的1.初步掌握高倍显微镜的使用方法。
2.观察高等植物的叶绿体在细胞质基质中的形态和分布二、实验原理高等植物的叶绿体呈椭球状,在不同的光照条件下,叶绿体可以运动,改变椭球体的向,这样既能接受较多的光照,又不至于被强光灼伤。
在强光下,叶绿体以其椭球体的侧面朝向光源;在弱光下,叶绿体以其椭球体的正面朝向光源。
因此,在不同光照条件下采集的葫芦藓,其小叶内叶绿体椭球体的形状不完全一样。
活细胞中的细胞质处于不断的流动状态，观察细胞质的流动，可以用细胞质基质中的叶绿体的运动做为标志。
三、材料用具藓类的叶，新鲜的黑藻，显微镜，载玻片，盖玻片，滴管，镊子，刀片，培养皿，铅笔四、实验过程(见书p30)1.制作藓类叶片的临时装片2.用显微镜观察叶绿体3.制作黑藻叶片临时装片4.用显微镜观察细胞质流动五、讨论1.细胞质基质中的叶绿体是否静止不动，为什么?2.叶绿体的形态和分布与叶绿体的功能有什么关系?3.植物细胞的细胞质处于不断的流动状态，这对于活细胞完成生命活动有什么意义?4.用铅笔画一个叶片细胞，标出叶绿体的大致流动方向。
篇2实验生物组织中还原糖、脂肪、蛋白质的鉴定一、实验目的初步掌握鉴定生物组织中还原糖、脂肪、蛋白质的基本方法。
二、实验原理1.还原糖的鉴定原理生物组织中普遍存在的还原糖种类较多，常见的有葡萄糖、果糖、麦芽糖。
它们的分子内都含有还原性基团(游离醛基或游离酮基)，因此叫做还原糖。
蔗糖的分子内没有游离的半缩醛羟基，因此叫做非还原性糖，不具有还原性。
本实验中，用斐林试剂只能检验生物组织中还原糖存在与否，而不能鉴定非还原性糖。
斐林试剂由质量浓度为0.1g/ml的氢氧化钠溶液和质量浓度为0.05g/ml的硫酸铜溶液配制而成，二者混合后，立即生成淡蓝色的cu(oh)2沉淀。
cu(oh)2与加入的葡萄糖在加热的条件下，能够生成砖红色的cu2o沉淀，而葡萄糖本身则氧化成葡萄糖酸。
基因克隆实验报告
基因克隆实验报告摘要：本实验旨在通过基因克隆技术，将特定基因从一个细胞中复制并插入到另一个细胞中，以实现基因的传递和表达。
实验采用了大肠杆菌作为模型生物，利用质粒载体和限制酶切技术完成了基因的克隆和转移。
通过本实验的操作，成功地将目标基因从一个细胞复制并转移到另一个细胞中，验证了基因克隆技术的有效性。
一、实验材料和方法1. 实验材料：- 大肠杆菌菌种- 目标基因DNA样本- 质粒载体- 限制酶- DNA连接酶- 抗生素培养基2. 实验步骤：步骤一：菌液制备1. 取一支滤漏筒，加入适量的LB培养基，用移液管取一小部分大肠杆菌菌种，接种于LB培养基中，静置在37℃恒温摇床中培养过夜。
步骤二：DNA提取1. 取LB培养基中的大肠杆菌菌液，用离心机进行离心分离，将上清液去除，留取沉淀。
步骤三：DNA酶切1. 取目标基因DNA样本和质粒载体，分别加入限制酶，按照限制酶切反应的条件进行反应。
步骤四：DNA连接1. 取等体积的酶切后的目标基因DNA和质粒载体，加入DNA连接酶，按照连接酶反应条件进行反应。
步骤五：转化1. 将连接后的DNA溶液加入已经制备好的培养基中，用恒温摇床静置培养。
步骤六：筛选1. 取一块含有抗生素的琼脂平板，将转化后的菌液均匀涂布在平板上，放入恒温箱培养。
步骤七：分离1. 从琼脂平板上挑选抗生素抵抗的单个菌落，进行培养。
二、实验结果与分析通过本实验的操作，成功地将目标基因从一个细胞复制并转移到另一个细胞中。
在转化后的琼脂平板上，观察到一些菌落的形成，这些菌落对抗生素具有抗性。
说明转化后的细胞成功地表达了目标基因，并能产生相应的蛋白质。
三、讨论与总结基因克隆技术是现代生物学研究中常用的实验手段之一。
通过限制酶切和DNA连接，可以实现基因的克隆和转移。
本实验结果表明，大肠杆菌是一个有效的模型生物，可用于基因克隆实验。
通过对转化菌落的筛选和培养，可以得到具有抗生素抵抗能力的菌落，进一步验证了实验结果的有效性。
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现代生物学实验技术实验报告
实验一、超薄切片
一、实验目的
学习掌握常规生物样品前处理技术及样品包埋块的制备技术。
二、实验材料
植物幼嫩叶片、小鼠肝脏细胞
三、实验试剂
2.5％戊二醛、PBS、1％锇酸、30％丙酮、100％丙酮、
Epon812包埋液、蜡油
四、实验器材
离心管、玻璃棒、滴管、移液枪、刀片、镊子、牙签、烘箱、切片机、
五、实验步骤
1、取材固定：从植株上取叶片或者取小鼠肝脏细胞，切取
1mm3左右大小的组织块，立即放入PBS（pH7.2)配制
的2.5%戊二醛中固定1小时。
2、用0.1molPBS缓冲液冲洗三次每次3～5分钟。
3、1％锇酸固定1小时，然后用缓冲液冲洗三次每次3～5
分钟。
4、丙酮脱水：30％－50％－70％－80％－90％－100％－
100％每级5～10分钟
5、浸透：脱水剂：包埋剂=3：1 1小时
脱水剂：包埋剂=1：3 过夜
6、聚合：45 ℃12h 60 ℃24h
磷酸缓冲液0.2molL-1 PBS 配制
A液：Na2HPO4 .2H2O 35.61g
加DDW 至1000ml
B液：NaH2PO4 .H2O 27.6g
加DDW 至1000ml
不同pH磷酸缓冲液的配制
pH 6.6 6.8 7.0 7.2 7.4 7.6
A液(ml)
18.8 24.5 30.5 36.0 40.5 43.5 B液(ml)
31.2 25.5 19.5 14.0 9.5 6.5
Epon812包埋液的配制
Epon812树脂20ml
DDSA 4.6ml
MNA 15.3ml
DMP-30 0.8ml
2、支持膜的制备
将一个干净的载玻片垂直放入含有0.3~0.5%氯仿配制的聚乙烯醇缩甲醛制模剂中，放置两三秒后将载玻片垂直取出。
用刀片在含有膜的载玻片上划出所需要的正方形，然后将载玻片45度倾斜放入水溶液中，使膜飘在水面上，选取厚薄合适的膜，将膜放在载网上，以备后面用。
3、切片
首先制刀，将玻璃片制成梯形的刀片，以备切片时使用。
将包埋块置于显微镜下进行修整，将其修为最上端为正方体。
在切片机上进行切片操作，使切下来的样品片漂浮在水槽中。
对切下来的样品块进行染色并观察。
六、注意事项
1、取材的时候动作要迅速，组织离体后应将其快速放入
固定液中。
并且要尽量减少损伤，减少牵拉或挤压组
织。
组织块的大小一般为1mm3。
2、用固定液固定的样品若漂浮在溶液表面，应通过抽真
空的方法让样品沉入溶液中。
3、饿酸为剧毒、极易挥发的试剂，使用时要注意安全。
4、脱水时要逐级脱水，而不能急剧脱水，更换液体时动
作要快，不要让组织离开溶液，否则会在组织内外产
生气泡。
5、在制备支持膜的时候手一定要稳，不能抖动，这样制
出的膜才会厚薄均一。
在将载玻片浸水的时候要缓慢
入水，这样才会使膜利用水的张力慢慢的离开载玻
片，漂浮在水面上。
实验二、投射和扫描电镜
一、实验目的
1、掌握透射电子显微镜的成像基本原理及其应用
2、掌握扫描电子显微镜的成像基本原理及其应用
二、实验原理
1、透射电子显微镜的成像基本原理
在真空条件下，电子束经高压加速后，穿透样品时形成散射电子和透射电子，它们在电磁透镜的作用下在荧光屏上成像。
2、扫描电子显微镜的成像基本原理
利用二次电子信号成像来观察样品的表面形态。
电子“探针”扫描，激发样品表面放出二次电子，探测器收集二次电子成像。
三、主要电镜制样技术
1、超薄切片技术
用于电镜观察的样本制备
2、负染色技术
染色背景，衬托出样品的精细结构
3、冰冻蚀刻技术
冰冻断裂与蚀刻复型：主要用来观察膜断裂面的蛋白质颗粒和膜表面结构。
4、电镜三维重构技术
电子显微术、电子衍射与计算机图象处理相结合而形成的具有重要应用前景的一门新技术。
电镜三维重构技术与X-射线晶体衍射技术及核磁共振分析技术相结合，是当前结构生物学（主要研究生物大分子空间结构及其相互关系）的主要实验手段。
实验三、胶体金的制备
一、实验原理
氯金酸(HAuCl4)在还原剂作用下，可聚合成一定大小的金颗粒，形成带负电的疏水胶溶液。
由于静电作用而成为稳定的胶体状态，故称胶体金。
胶体金颗粒由一个基础金核（原子金Au）及包围在外的双离子层构成，紧连在金核表面的是内层负离子（AuC12－），外层离子层H+则分散在胶体间溶液中，以维持胶体金游离于溶胶间的悬液状态。
胶体金标记，实质上是蛋白质等高分子被吸附到胶体
金颗粒表面的包被过程。
吸附机理可能是胶体金颗粒表面负电荷，与蛋白质的正电荷基团因静电吸附而形成牢固结合。
用还原法可以方便地从氯金酸制备各种不同粒径、也就是不同颜色的胶体金颗粒。
免疫金标记技术(Immunogold labelling techique) 主要利用了金颗粒具有高电子密度的特性，在金标蛋白结合处，在显微镜下可见黑褐色颗粒，当这些标记物在相应的配体处大量聚集时，肉眼可见红色或粉红色斑点，因而用于定性或半定量的快速免疫检测方法中，这一反应也可以通过银颗粒的沉积被放大，称之为免疫金银染色。
二、实验步骤
•柠檬酸三钠法
0.01%氯金酸（HAuCl4)水溶液100ml加热至沸腾，加4ml
1%柠檬酸三钠水溶液，出现酒红色。
•金颗粒大小与柠檬酸三钠的关系
柠檬酸三钠（ml) 4 1.5 1.0 0.75 金颗粒的直径（nm) 15 30 50 60 胶体金与标记蛋白的配比
•胶体金pH的调节：用0.1mol K2CO3调到pH9.0
•取7支2ml离心管分别加入1ml胶体金
•再向每支管中加入1ml不同浓度的牛血清白蛋白
•混合均匀后分别加入0.1ml10%NaCl
•混合均匀后按照下图观察颜色的变化
•确定出包裹胶体金蛋白的量
胶体金与标记蛋白的比例
40 35 30 25 20 15 10
蛋白含量μg（牛血清白蛋白）
三、注意事项
1、配制胶体金溶液的pH以中性（pH7.2）较好。
2、氯金酸的质量要求上乘，杂质少。
最好是进口的。
3、玻璃器皿必须彻底清洗，最好是经过硅化处理的玻
璃器皿，或用第一次配制的胶体金稳定的玻璃器皿，
再用双馏水冲洗后使用。
否则影响生物大分子与金
颗粒结合和活化后金颗粒的稳定性，不能获得预期
大小的金颗粒。