3种提取淡水涡虫基因组DNA方法比较

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提取dna的方法及原理

提取dna的方法及原理

提取dna的方法及原理提取DNA的方法及原理DNA提取是生物学和遗传学研究中的一项基础操作,它是获取DNA样本的过程。

DNA提取的方法有很多种,下面将介绍几种常用的DNA提取方法及其原理。

1. 高盐法高盐法是一种简单且常用的DNA提取方法。

其原理是利用高盐溶液中DNA与其他细胞组分(如蛋白质)之间的亲和性差异。

在高盐环境下,DNA更容易溶解而不与蛋白质结合,从而实现DNA的提取。

具体步骤包括细胞破碎、加入高盐溶液、离心分离DNA和去除蛋白质等。

2. 酚/氯仿法酚/氯仿法是一种经典的DNA提取方法。

其原理是利用酚和氯仿两种溶剂的密度差异,将DNA从细胞中分离出来。

具体步骤包括细胞破碎、加入酚/氯仿混合液、离心分离DNA和去除蛋白质等。

3. 硅胶柱法硅胶柱法是一种高纯度DNA提取方法。

其原理是利用硅胶柱上的硅胶颗粒与DNA之间的亲和性差异。

DNA样本在经过一系列处理后,通过硅胶柱,DNA能够与硅胶颗粒结合,而杂质则被洗脱。

最后,通过洗脱DNA,即可获得高纯度的DNA。

硅胶柱法的优点是提取纯度高、操作简单,适用于分子生物学研究和临床诊断。

4. 磁珠法磁珠法是一种高效、快速的DNA提取方法。

其原理是利用带有亲和基团的磁珠与DNA之间的亲和性,实现DNA的选择性吸附和洗脱。

具体步骤包括磁珠悬浮液制备、样本加入、磁珠与DNA结合、磁珠分离、洗脱DNA等。

除了上述常用的DNA提取方法外,还有其他一些特殊的DNA提取方法,如酶解法、离心法、凝胶切割法等。

这些方法在不同的实验和应用中具有各自的特点和优势。

总结起来,DNA提取的方法多种多样,选择适合的方法取决于实验目的、样本类型和实验条件等。

无论采用哪种方法,都需要严格控制实验操作,以确保提取到高质量的DNA样本。

DNA提取的成功与否直接影响到后续的实验结果,因此在进行DNA提取时,需要注意样本的保存、细胞破碎的方式、溶解液的选择等因素,以获得可靠且高纯度的DNA。

提取植物DNA方法

提取植物DNA方法

提取植物DNA方法植物DNA的提取方法是将植物细胞中的DNA分离出来,以便进行进一步的研究。

以下是常用的植物DNA提取方法:1. CTAB法:CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)是一种表面活性剂,可以溶解脂质,破坏细胞膜,从而释放DNA。

首先,将植物样品粉碎,加入CTAB缓冲液中并进行润湿,然后加入蛋白酶,破坏细胞膜。

接下来,加入CTAB-蛋白酶混合液,室温静置,使DNA与CTAB结合。

之后,将混合液经过苯酚-氯仿提取,将DNA从其他组分中分离出来。

最后,使用异丙醇沉淀法将DNA沉淀,洗涤并溶解。

2. 硅胶柱法:硅胶柱法适用于小规模提取和纯化植物DNA。

首先,将植物样品粉碎,加入提取缓冲液中,并加入蛋白酶进行细胞壁降解。

接下来,将溶有脂质的提取液加载到硅胶柱上,使用重力流动分离DNA。

然后,使用洗涤缓冲液去除残余的污染物。

最后,使用低盐缓冲液将DNA从硅胶柱上洗脱,并收集纯化的DNA。

3. 高盐法:高盐法适用于粗提植物DNA。

首先,将植物样品细碎,加入高盐缓冲液中,其中含有高浓度的盐和蛋白酶。

高盐浓度可以破坏细胞膜,并使DNA 从蛋白质中解离出来。

然后,使用异丙醇沉淀法将DNA沉淀,洗涤并溶解。

4. 快速提取法:快速提取法是一种高效和便捷的方式,适用于大规模提取植物DNA。

首先,将植物样品经过快速研磨处理,将DNA释放到提取缓冲液中。

然后,使用聚乙二醇或盐酸沉淀方法使DNA沉淀,然后洗涤并溶解。

这些方法在植物科学研究中被广泛使用。

在选择提取方法时,需要考虑样品量、样品类型、实验目的和所需纯度等因素。

植物DNA的提取方法的选择也可以根据实验室设备和研究经验进行调整,以获得满意的结果。

需要注意的是,植物样品在提取DNA之前需要进行适当的贮存和处理。

样品应在低温下保存,以保持DNA的完整性。

此外,处理样品时要避免污染和酶解,以确保提取的DNA质量。

DNA实验室常用的DNA提取方法有哪些

DNA实验室常用的DNA提取方法有哪些

DNA实验室常用的DNA提取方法有哪些DNA提取是生物实验室中常用的基本实验操作之一,有许多不同的DNA提取方法可供选择。

以下是一些常见的DNA提取方法:1.高盐法高盐法是一种常见的DNA提取方法。

它利用高浓度的盐溶液中的离子和DNA分子之间的相互作用来分离DNA。

此方法使用高浓度的盐溶解细胞和脱水细胞核,然后使用酒精等溶剂沉淀DNA。

最后,通过洗涤步骤去除杂质,并用缓冲液溶解DNA。

2.酚氯仿法酚氯仿法是一种常用的DNA提取方法,广泛应用于基因组学和分子生物学研究中。

它利用酚氯仿混合物的不同密度分离DNA。

此方法通过酚氯仿混合物中DNA与其他细胞组分的相互作用,将DNA分离为有机相和水相。

然后使用酒精沉淀纯化DNA。

3.硅胶柱提取法硅胶柱提取法是一种常用的DNA纯化方法。

它使用硅胶柱过滤杂质,如RNA、蛋白质和其他污染物,然后将DNA吸附在硅胶柱上。

纯化后的DNA可通过洗脱步骤从硅胶柱中获得。

4.循环盐提取法循环盐提取法是一种经典的DNA提取方法,适用于从粉碎组织,血液和细胞中提取DNA。

该方法使用多种缓冲液、蛋白酶和溶液来处理样本,以去除RNA、蛋白质和其他杂质。

接下来,使用酒精沉淀提取出的DNA。

5.醇沉淀法醇沉淀法是一种快速的DNA提取方法。

它通过向样品中加入醇沉淀剂(如醋酸乙酯或异丙醇)来沉淀DNA。

醇沉淀发生时,DNA从溶液中析出。

然后,通过旋转离心将DNA沉淀并用缓冲液溶解。

6.热碱法热碱法是一种简单的DNA提取方法,通常用于从细菌和酵母细胞中提取DNA。

此方法使用高碱性溶液(如NaOH)溶解细胞膜和核膜,然后通过中和步骤得到纯化的DNA。

最后,通过酒精沉淀将DNA沉淀。

7.快速溶解法快速溶解法是一种快速提取DNA的方法,常用于大批量样本处理,如血液或组织样品。

该方法使用组织裂解缓冲液和蛋白酶,快速裂解细胞和细胞核,并用盐和异丙醇沉淀纯化DNA。

以上是一些常见的DNA提取方法,每种方法有其特点和适用范围。

不同物种的DNA提取方法

不同物种的DNA提取方法

不同物种的DNA提取方法摘要DNA作为遗传微粒,为生物体的遗传信息复制和传递做出了巨大的贡献,而1953年J.Watson和F.Crick提出的双螺旋结构模型不仅解释了有关DNA 的性质,而且也清楚地解释了DNA的各种生物功能,进而使DNA的研究进入到了分子水平。

然而DNA是如何具体在生物体内发挥其作用的,到现在还是一个热门课题,为了研究其作用,就需要从各种物种中提取DNA,由于不同物种结构的复杂性不同,导致提取DNA的方法也是各不相同,为此,我整理了一些物种的DNA提取方法。

关键词:物种、DNA提取1、月季DNA的提取方法:之所以提取高质量的月季DNA有难度,是因为其体内富含多糖及多酚类的物质,在一般的DNA提取方法中,很难被分离,这就严重干扰了提取月季DNA的纯度以及完整性。

为了解决这个问题,北京市园林科学研究所采取五种提取方法,在其最后的实验结果表明:Draper法提取月季DNA的纯度最高,完整性最好。

2、大麦小孢子DNA的提取方法:要想分离提取小孢子的DNA,就需要降解小孢子壁,而小孢子壁由外壁和内壁组成,内壁主要由纤维素和果胶组成,这类物质能够被相应的酶所水解,而外壁的主要成分是类胡萝卜素和类胡萝卜酯的氧化多聚化的衍生物,化学物质非常稳定,到目前为止,还没有相应的酶可以水解。

因此外壁便成为提取高质量的大麦小孢子DNA的一个“拦路虎”。

对此,莱阳农学院展开了研究,他们通过“收集大麦的花药”、“分离小孢子”、“分离小孢子”。

最后“DNA的提取”等一系列的步骤,在最后的统计结果中,发现CTAB法和微量快速提取法取得不错的效果,而且DNA的得率和质量几乎一样。

这也证明了上述两种方法是有效而可行的,当然在这个研究过程,首次采用超声波法进行破壁,收到出乎意料的效果,也为CTAB法和微量快速提取法提供了必要的条件。

所谓的CTAB,其中文名是十六烷基三甲基溴化铵,是一种阳离子去污剂,具有从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特性。

快速分离基因组DNA的方法研究

快速分离基因组DNA的方法研究

快速分离基因组DNA的方法研究DNA是生命活动的基础物质,我们常常会需要从样本中分离出DNA进行后续的分析和研究,因为样本中的DNA往往夹杂着各种其他成分,因此快速、高效、纯化地分离基因组DNA就成为了重要的科学研究方法之一。

本文将介绍几种常见的快速分离基因组DNA的方法。

一、理化方法1. 加热提取法加热提取法是一种常见的快速分离DNA的方法。

它的原理是利用高温使细胞裂解并使DNA解离出胞质,同时蛋白质、核糖核酸等其他组分会在高温的条件下沉淀,从而实现DNA的分离。

具体操作可以将细胞样本置于80℃水浴中加热5~10分钟,之后快速离心将蛋白质、细胞碎片等杂质分离出来,最后用EtOH等溶液沉淀DNA即可。

2. 碱提取法碱提取法是另一种常见的分离DNA的方法,其原理是利用碱性条件使DNA 进一步解离出胞质。

碱提取法虽然存在较大的对细胞壁和膜的破坏,但其所得DNA纯度较高。

具体操作可以将细胞样本加入3%NaCl和0.1M NaOH的混合溶液中高速旋转或摇晃,使得细胞裂解并DNA解离出来。

最后中和反应液并提纯得到DNA。

二、生物学方法1. CTAB法CTAB法是一种方法常用于分离残留组织样本中的DNA,其原理是使用某些表面活性剂将DNA与其他杂质分离。

尽管这种方法比化学方法更为繁琐,但由于其不依赖于细胞壁的破坏,从而保留了样品间的多样性。

操作流程是将样本加入CTAB、EDTA等表面活性剂和利用正己烷分离的氯仿等有机溶剂的混合液中,再用酶蛋白酶K、蛋白酶后胃蛋白酶等酶类水解蛋白质、RNA等杂质。

最后用过滤或离心方法将DNA和溶液分离,最终得到纯度较高的DNA。

2. DNeasy血小板抽提试剂盒法DNeasy试剂盒法是一种快速高效分离基因组DNA的方法,这种方法适用于多种样本的分离。

操作流程是先对分离的细胞用表面活性剂溶液处理,再用乙醇、酚/氯仿等物质发生分层,最终用洗涤清洁后的DNA样本进行分析。

三、高通量DNA分离方法高通量DNA分离方法是利用自动化设备,以及巨大的平行性和基因组学技术以高效快速得到分离好的DNA。

DNA的提取方法

DNA的提取方法

DNA的提取方法DNA提取是在分子生物学研究和临床诊断中非常重要的步骤。

DNA提取的目的是获取足够纯净的DNA样本,以供后续实验和分析使用。

这篇文章将介绍几种常用的DNA提取方法。

1.高盐法:高盐法是最常用的DNA提取方法之一、它通过加入高盐浓度的缓冲液来破坏细胞膜并释放DNA。

首先,待提取的细胞或组织样本被收集并转移到离心管中。

接下来,加入裂解缓冲液,通常含有高浓度的盐并对抗离子泵,从而使细胞膜破裂并释放DNA。

裂解后,使用酒精或酚/氯仿萃取法来分离DNA与其他细胞组分。

最后,通过旋转沉淀法或乙醇沉淀法从溶液中提取DNA。

2.CTAB法:CTAB法是一种适用于植物和真菌等高纤维、低DNA含量的样品提取方法。

CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)作为一种阴离子表面活性剂,可以结合在DNA和脂质上,并形成沉淀,从而使DNA分离出来。

首先,样本被粉碎并浸泡在CTAB缓冲液中,含有CTAB、盐和EDTA等。

接下来,DNA与其他细胞组分一起沉淀,通过聚乙二醇进行沉淀,并通过离心分离。

然后,洗涤DNA沉淀并通过乙醇沉淀法或旋转沉淀法提取DNA。

3.柱式纯化法:柱式纯化法是一种用于高质量DNA提取和纯化的流程。

该方法基于DNA与硅胶膜吸附和洗脱的原理。

首先,细胞或组织样品经过裂解后,溶液经过去蛋白酶和去RNA酶处理。

然后,将样品通过柱子,DNA与硅胶膜相互作用,并形成强烈的结合,同时其他细胞组分被清除。

接着,使用洗涤缓冲液去除杂质,最后使用低盐缓冲液来释放DNA。

这种方法可以提供高纯度的DNA样本,适用于大规模DNA提取和高通量分子生物学实验。

4.磁珠法:磁珠法是一种基于磁性珠子的DNA提取方法。

该方法使用特定大小和表面修饰的磁性珠子将DNA选择性地吸附到表面上。

首先,待提取的细胞或组织样本被裂解,并加入磁珠和DNA结合缓冲液。

接下来,通过磁力将磁珠与DNA结合物分离出来,并洗涤去除杂质。

最后,通过低盐缓冲液将DNA释放出来并收集。

提取dna的方法

提取dna的方法

提取dna的方法提取DNA的方法是从一种物质中检索出DNA分子的过程,包括酶切、基因工程等。

DNA提取方法有核酸沉淀法、缓冲溶液法、植物提取法、实验室提取法等。

下面将对这些方法进行详细介绍。

1、核酸沉淀法:核酸沉淀法是一种常用的DNA提取方法,它的原理是通过pH调节使DNA沉淀,然后将DNA从溶液中收集。

步骤如下:首先,将样品用盐水或蛋白酶/胰蛋白酶消化;其次,加入超纯水、EDTA缓冲液和NaCl,调节pH至5.5;然后,加入乙醇,溶解DNA并沉淀;最后,在0℃-4℃维持1小时,收集沉淀的DNA。

2、缓冲溶液法:缓冲溶液法是通过改变溶液的pH值来提取DNA的一种方法,它利用DNA的结合能力和电性作用力,将DNA结合到某种特定的溶剂上,然后从溶剂中提取出来。

步骤如下:首先,将样品加入缓冲溶液,消化;其次,加入非离子表面活性剂,使DNA脱水;然后,加入离子表面活性剂,将DNA与其他组分分离;最后,用低温冷藏保存,以便收集DNA。

3、植物提取法:植物提取法是通过一系列物理和化学步骤,从植物细胞中提取DNA的一种方法。

步骤如下:首先,将植物细胞磨碎,用盐水悬浮;其次,加入碱性溶液,使细胞膜脱落;然后,加入非离子表面活性剂,溶解脱落的细胞膜,将DNA沉淀;最后,加入乙醇,将DNA沉淀,冷却保存,然后收集DNA。

4、实验室提取法:实验室提取法是一种基于细菌的实验室方法,它利用发酵的细菌细胞中的DNA进行提取。

步骤如下:首先,将细菌细胞加入特定的溶剂液中,使细胞膜脱落;其次,加入特定的酶和蛋白酶,将细胞内的DNA 溶解;然后,加入非离子表面活性剂,将溶解的DNA沉淀;最后,用乙醇沉淀DNA,将沉淀的DNA精细收集。

以上就是提取DNA的方法,主要有核酸沉淀法、缓冲溶液法、植物提取法和实验室提取法四种方法,它们都具有不同的优点和缺点,因此,在实际应用中,应该根据样品的不同,选择适当的提取方法。

DNA提取

DNA提取

几种DNA提取方法的优缺点比较文章来源:洛阳吉恩特生物科技有限公司自然界中无论是植物、动物还是病毒,DNA作为大部分生物的遗传物质,在遗传中起着不可替代的作用,为了研究生物的基因,就需要将DNA从细胞中提取出来,这个过程有很多方法可以实现,目前比较常用的有苯酚氯仿抽提法、离心柱法和磁珠法,吉恩特实验室就这三种提取方法进行了梳理和比较,总结出各方法的优缺点供广大科研工作者参考。

1.苯酚氯仿抽提法苯酚氯仿提取DNA是利用酚是蛋白质的变性剂,反复抽提,使蛋白质变性,SDS(十二烷基磺酸钠)将细胞膜裂解,在蛋白酶KEDTA的存在下消化蛋白质或多肽或小肽分子,变性降解核蛋白,使DNA从核蛋白中游离出来。

而DNA易溶于水,却不溶于有机溶剂。

蛋白质分子表面带有亲水基团,也容易进行水合作用,并在表面形成一层水化层,使蛋白质分子能顺利地进入到水溶液中形成稳定的胶体溶液。

当有机溶液存在时,蛋白质的这种胶体稳定性遭到破坏,变性沉淀。

离心后有机溶剂在试管底层(有机相),DNA存在于上层水相中,蛋白质则沉淀于两相之间。

利用萃取原理,根据蛋白核酸溶于不同的试剂层,将枪头伸入不同液层内抽取所需的成分,经多次洗涤后获得纯化核酸。

该方法的缺点是由于使用了苯酚、氯仿等试剂,毒性较大,长时间操作对人员健康有较大影响,而且核酸的回收率较低,损失量较大,由于操作体系大,不同实验人员操作重复性差,不利于保护RNA,很难进行微量化的操作。

优点是采用了实验室常见的试剂和药品,做起来成本比较低廉。

2.离心柱法吉恩特生物离心柱法主要原理是将对核酸有吸附作用的官能基团固定在离心柱模上,通过加入不同的裂解试剂、洗涤试剂并反复离心,以达到核酸与杂质分离的目的,获得纯化的核酸。

离心柱法DNA提取它的优点是比传统的酚氯法提取的纯度高,有利于RNA保护,而且能进行微量操作,以其低廉的价格和相对便捷的操作,渐逐取代了传统DNA提取方法,被高校科研所等市场普遍接受。

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170河南师范大学学报(自然科学版)
2.2DNA质量的琼脂糖凝胶电泳检测
试剂盒法、CTAB法和酚一氯仿法
3种不同方法分别提取活体涡虫和
95%酒精固定的涡虫标本的基因组
DNA,电泳检测结果表明:试剂盒法提
取的DNA条带清晰、整齐,说明所得
基因组DNA大分子较为完整,纯度
高,含杂质少,适于PCR扩增及其它分
子生物学实验.传统的酚一氯仿抽提法
表1DNA浓度的分光光度计检测结果
所得DNA尽管大分子区有明显条带,但有弥散现象,说明基因组DNA存在着一定程度的降解.而CTAB法所得DNA产率很低且降解严重(图1).
3讨论
3.1样品保存
淡水涡虫是一类温度敏感型动物,三角涡虫生活的水温较宽。

为10~25℃.张合彩n。

3通过实验推测:随着季节或温度变化,涡虫体内可能周期性地表达一种降解DNA的核酸酶,该酶活性随季节而周期性变化.温度较低时酶活较低,所提基因组DNA较完
整;相反,如果温度升高,酶活性增强而导致
DNA降解严重,实验失败.另外,涡虫又是一
种生活周期很明显的动物,有性生殖和无性生
殖周期性地交替进行,且很多生理活动亦呈现
出节律性,如褪黑素合成酶活性和褪黑素(N
一乙酰一5一甲氧色胺)水平呈昼夜节律ll¨,
由此给涡虫的野外采集、运输以及保存增加了
很大的难度.本实验通过提取95%酒精固定
半年以上的涡虫标本和活体涡虫基因组
DNA,发现95%酒精固定半年以上的标本的DNA降解不甚严重,如果提取方法适当,比如本实验所用的购自Omega公司的MolluscDNAkit,所得基因组DNA完全可满足PCRM:分子馈标准;a:活体涡虫;b:95%酒精同定的涡虫标本I.试剂盒法;2.改IO.CTAB法;3.改良酚一氯仿法.
图1不同方法提取活体涡虫和95%洒精同定的涡虫标本的基闪组DNA电泳图谱
等分子生物学实验要求.因此,涡虫样品野外采集时可以考虑用95%以上酒精对虫体进行固定,这样既可避免高温涡虫解体的隐患,便于运输;又可实验室内较长时间的低温保存,省去活体饲喂的工作量,而其基因组DNA也基本不会降解。

从而为分子实验提供有力的样品保障.
3.2基因组DNA的提取方法
由基因组DNA电泳结果可以看出,酒精固定标本和活体涡虫基因组DNA提取效果存在差异,酒精固定标本存放一定时间,其基因组DNA存在一定程度的降解。

但相对而言,试剂盒法效果最好,所得基因组DNA稍有降解,不影响后续的PCR扩增等分子生物学实验.对于活体涡虫,不同的DNA提取方法其结果差异显著,其中试剂盒法最好,酚一氯仿法次之。

CTAB法所得基因组DNA大分子产率非常低,降解最为严重.不同样品在同一方法DNA提取缓冲液消化后,消化液的颜色也不相同,活体比酒精同定标本颜色深;研磨的难易程度也不一样,其中活体较易研磨成匀浆,而酒精固定标本则相对较难,这对不同方法的细胞裂解液的消化效果有很大的影响,进而影响最终DNA产率.而每种方法的试剂处理时间不同。

结果也不尽相同.在酚一氯仿法和CTAB法中,苯酚与DNA接触时间过长,也会造成总DNA损失严重,而且涡虫体表和体
内液体中的杂质也可能与苯酚反应,引起DNA降解.在酚一氯仿抽提过程中宁可损失部分上清液,也一定
3种提取淡水涡虫基因组DNA方法比较
作者:孙健, 张合彩, 陈广文, 刘德增, SUN Jian, ZHANG He-cai, CHEN Guang-wen,LIU De-zeng
作者单位:孙健,张合彩,陈广文,SUN Jian,ZHANG He-cai,CHEN Guang-wen(河南师范大学,生命科学学院,河南,新乡,453007), 刘德增,LIU De-zeng(黑龙江省科学院,自然资源研究所,哈尔滨
,150031)
刊名:
河南师范大学学报(自然科学版)
英文刊名:JOURNAL OF HENAN NORMAL UNIVERSITY(NATURAL SCIENCE)
年,卷(期):2009,37(2)
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3.Bayascas J R;Castillo E;Muoz-Mármol A M Planarian Hox genes:novel patterns of expression during regeneration 1997
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6.白秀娟;李玉;刘淑艳粘菌基因组DNA提取方法的研究[期刊论文]-吉林农业大学学报 2003(02)
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10.张合彩;陈广文;李玉昌中国淡水涡虫RAPD分析条件的优化(简报)[期刊论文]-实验生物学报 2004(04)
11.刘辰莹;江慧适于涡虫基因组DNA快速制备的改良的CTAB法[期刊论文]-氨基酸和生物资源 2005(04)
本文链接:/Periodical_henansfdxxb200902049.aspx。

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