四季菊花色素的提取及其理化性质的研究
2021国内外对菊花的化学成分与药理活性的研究范文2

2021国内外对菊花的化学成分与药理活性的研究范文 菊花为菊科菊属植物菊 Chrysanthemummorifoliuin Ramat.的干燥花,既是名贵的观赏花卉也是药食同源植物。
每年 9~11 月份菊花盛开时分批采收,阴干、焙干或熏蒸后晒干,菊花茶是喜闻乐见的健康饮品,菊花酒也是金秋时节必喝佳酿。
中医理论认为菊花性甘、味苦,微寒;归肺、肝经;可散风,平肝明目,清热解毒。
临床上菊花主要用于治疗风热感冒、头痛眩晕、目赤肿痛、眼目昏花及疮痈肿毒[1].在多类中成药里菊花都为主要成分,如桑菊饮颗粒、杞菊地黄丸及菊花茶调散等;菊花还被制成大量的保健品供人们使用,如菊花药枕、菊花床垫等。
菊花种类繁多,在药材市场上就有杭菊、亳菊、贡菊、滁菊、祁菊、怀菊、济菊和黄菊8大主流商品[2].国内外对菊花的研究报道也非常多,为了进一步研究与开发利用该植物的,对近 20年来国内外对菊花的化学成分、药理活性研究作一概述,尤其对菊花中所含有的萜类及有机酸类化合物进行了总结,为以后这两类化合物的药理学研究提供基础。
1化学成分 已有的研究表明菊花中主要含有黄酮、萜类及有机酸等化学成分。
1.1黄酮类化合物 菊花中所含的黄酮类化合物主要为黄酮类、黄酮醇类和二氢黄酮类。
1.1.1黄酮类菊花中所含的黄酮类成分主要有金合欢素(1)[3]、金合欢素-7-O-β-D-葡萄糖苷(2)[4]、金合欢素-7-O-(6″-O-丙二酰基)-β-D-吡喃葡萄糖苷(3)[4]、金合欢素-7-O-半乳糖苷(4)[5]、刺槐苷(5)[4]、金合欢素-7-O-(3″-O-乙酰基)-β-D-吡喃葡萄糖苷(6)[6]、金合欢素-7-O-(6″-O-乙酰基)-β-D-半乳糖苷(7)[5],金合欢素-7-O-α-L-鼠李糖基 -(1→6)[(2-O- 乙酰基)-β-D-葡萄糖基-(1→2)]-β-D-葡萄糖苷(8)[7]、芹菜素(9)[3]、芹菜素-7-O-β-D-葡萄糖苷(10)[4]、芹菜素-7-O-(6″-O-丙二酰基葡萄糖苷)(11)[4]、芹菜素-7-O-葡萄糖醛酸苷(12)[4]、芹菜素-7-O-芸香糖苷(13)[4]、芹菜素-7-O-(6''-O-乙酰基)-β-D-葡萄糖苷(14)[5]、芹菜素-7-甲醚(15)[8]、木犀草素(16)[3]、木犀草素-7-O-β-D-葡萄糖苷(17)[4]、木犀草素-7-O-(6''-O-丙二酰基)-β-D-葡萄糖苷(18)[4]、木犀草素-7-O-葡萄糖醛酸苷(19)[4]、木犀草素-7-O-芸香糖苷(20)[4]、木犀草素-7,3′-二-O-β-D-葡萄糖苷(21)[4]、香叶木素-7-O-二-β-D-葡萄糖苷(22)[5]、木犀草素-4'-甲氧基-7-O-(6''-O-乙酰基)-β-D-葡萄糖苷(23)[6]、香叶木素(diosmetin,24)[9]、香叶木素-7-O-β-D-葡萄糖苷(25)[10]、香叶木素-7-O-葡萄糖醛酸苷(26)[4]、香叶木素-7-O-β-D-(6''-O-p-羟苯乙酰基)-葡萄糖苷(27)[9]、香叶木素-7-O-(6''-O-丙二酰基)-β-D-葡萄糖苷(28)[4]、香叶木素-7-O-半乳糖苷(29)[5]、香叶木素-7-O-(6''-乙酰基)-β-D-葡萄糖苷(30)[5]、香叶木素-7-O-β-D-(6''-O-丙二酸单酰)-葡萄糖苷(31)[11]、scolimoside(32)[9]、牡荆黄素-2-O-鼠李糖苷(33)[12]、异泽兰黄素(eupatilin,34)[13]、麦黄酮(tricin,35)[13]、5,7,3′,4′-四羟基-6,5′-二甲氧基黄酮(36)[13]、5,3′,4′-三羟基-6,7-二甲氧基黄酮(37)[14]. 1.1.2黄酮醇类菊花中的黄酮醇类成分主要有槲皮素(38)[3]、槲皮素7-O-β-D-葡萄糖苷(39)[4]、槲皮素3-O-β-D-葡萄糖苷(40)[4]、槲皮素-7-O-(6''-O-丙二酰基)-β-D-葡萄糖苷(41)[4]、槲皮素3,7-二-O-β-D-葡萄糖苷(42)[4]、芦丁(43)[4]、槲皮素-7-O-半乳糖苷(44)[5]、槲皮素-3-O-半乳糖苷(45)[12]、栎素(46)[12, 15]、山柰酚(47)[12]、杨梅黄素(48)[12]、异鼠李素-3-O-β-D-半乳糖苷(49)[16]、六棱菊亭(artemetin,50)[17]、3,5-二羟基-4′,6,7,8-四甲氧基黄酮(51)[17]、蒙花苷(linarin,52)[18]等。
叶绿体色素的提取、分离、理化性质和叶绿素含量的测定

实验报告课程名称: 植物生理学及实验(甲) 实验类型:实验名称: 叶绿体色素的提取、分离、理化性质和叶绿素含量的测定姓名: 专业: 学号:同组学生姓名: 指导老师:实验地点: 实验日期:一、实验目的和要求二、实验内容和原理 三、主要仪器设备 四、操作方法与实验步骤五、实验数据记录和处理 六、实验结果与分析七、讨论、心得一、实验目的和要求 1、掌握植物中叶绿体色素的分离和性质鉴定、定量分析的原理和方法。
2、熟悉在未经分离的叶绿体色素溶液中测定叶绿素a 和b 的方法及其计算。
二、实验内容和原理以青菜为材料,提取和分离叶绿体色素并进行理化性质测定和叶绿素含量分析。
原理如下: 装 订 线1、叶绿素和类胡萝卜素均不溶于水而溶于有机溶剂,常用95%的乙醇或80%的丙酮提取。
2、皂化反应。
叶绿素是二羧酸酯,与强碱反应,形成绿色的可溶性叶绿素盐,就可与有机溶剂中的类胡萝卜素分开。
COOCH3COO-C32H30ON4Mg + 2KOH C32H30ON4Mg + 2KOH +CH3OH +C20H39OHCOOC20H39COO-3、取代反应。
在酸性或加温条件下,叶绿素卟啉环中的Mg++可依次被H+和Cu++取代形成褐色的去镁叶绿素和绿色的铜代叶绿素。
(H+取代Mg2+, Cu2+ (Zn2+)取代H+ )褐色绿色4、叶绿素受光激发,可发出红色荧光,反射光下可见红色荧光。
5、定量分析。
叶绿素吸收红光和兰紫光,红光区可用于定量分析,其中645和663用于定量叶绿素a,b及总量,而652可直接用于总量分析。
根据朗伯-比尔定律,最大吸收光谱不同的两个组分的混合液,它们的浓度C与吸光值之间有如下的关系: OD1=Ca*ka1+Cb*kb1OD2=Ca*ka2+Cb*kb2查阅文献得,叶绿素a和b的80%丙酮溶液,当浓度为1g/L时,比吸收系数k值如下。
波长/nm比吸收系数k叶绿素a叶绿素b66382.049.2764516.7545.60将数值代入式子得:OD663=82.04*Ca+9.27*Cb OD645=16.75*Ca+45.60*Cb经整理后,得到式子:Ca=0.0127 OD663 - 0.00269 OD645 Cb=0.0229 OD645 - 0.00468 OD663三、主要仪器设备天平(万分之一)、可扫描分光光度计、离心机、研具、各种容(量)器、洒精灯等四、操作方法与实验步骤1、定性分析:鲜叶5g+95%30ml(逐步加入),磨成匀浆,过滤入三角瓶中,观察荧光现象。
不同方法提取金鸡菊花中天然黄色素及稳定性研究

不同方法提取金鸡菊花中天然黄色素及稳定性研究晏小欣;贾淑平;赵丽凤【摘要】采用冷浸提取、超声波提取及索氏提取法进行研究金鸡菊色素的含量,从而避免了单一方法的局限性。
结果表明,超声波提取方法在粗提中显示明显的优势。
于此同时,金鸡菊色素具有很好的抗氧化性,并且具有剂量效应关系,在光照和空气下该色素稳定性差,应避光保存。
%Total flavonoids contents of Coreopsis Basal Pigment by water immersing, ultrasonic extraction and soxhelt extraction methods were determined by spectrophotometer.The results showed that ultrasonic extraction method has an advantage over other methods for its extraction.Coreopsis Basal Pigment has strong antioxidation capability and the effects show a direct relationship with the agents added amount, the Coreopsis tinctoria flowers yellow pigment was very sensitive to light and the stability of worse.【期刊名称】《喀什师范学院学报》【年(卷),期】2015(000)003【总页数】3页(P36-38)【关键词】金鸡菊色素;提取方法;稳定性【作者】晏小欣;贾淑平;赵丽凤【作者单位】喀什师范学院化学与环境科学系,喀什844008;喀什师范学院化学与环境科学系,喀什844008;喀什师范学院化学与环境科学系,喀什844008【正文语种】中文【中图分类】TS202.3金鸡菊黄色素是一种利用价值较高的功能性天然食用色素,且主要成分为黄酮类化合物[1-2].其具有清热解毒和降脂降压之功效[3-6],而黄酮类化合物与酚类物质作为自由基吸收剂都具有抗氧化作用[6-7].而现在金鸡菊原料广泛,易于种植,花瓣艳丽色泽明亮,色素含量高,利用无毒无害的天然物质提取食用、化妆品和医用色素成为一种趋势.特别是其具有一定生理功能的色素,越来越多的被发掘和应用.和其他天然产物类似,天然色素最多的活性为抗氧化性,可清除导致动脉硬化、肿瘤等多种疾病的氧自由基,是近年来研究的热点[8].目前,天然色素的应用和开发越来越受到人类的关注和重视.在食品的质量评价指标中,食品色泽评分约占45%[8-9],随着食品色素添加剂在食品工业中占有十分重要的地位,需求量与日俱增.由于近年来合成色素致癌及其他毒害作用不断被发现,可使用的合成色素种类和数量越来越被严格限制[10-12].相反,天然色素以其安全可靠、色泽自然、兼有营养和药理作用而受到人们的重视.本实验用多种方法提取金鸡菊花中天然黄色素进行研究,从而避免了单一方法的局限性.目前还未见系统的将各方法进行比较研究,本实验分别采用索氏提取法、冷浸提取法、超声波提取技术3种方法提取金鸡菊花中天然黄色素,利用本研究的结果对不同提取方法的选择更具有指导意义.1.1 材料1.1.1 原料金鸡菊,由新疆和田沙漠玫瑰有限责任公司提供.1.1.2 试剂和仪器设备石油醚、无水乙醇、Al(NO3)3、NaNO2、NaOH、盐酸、磷酸盐缓冲液、维生素C、维生素E、TBHQ、芦丁(纯度99.99%)、邻二氮菲溶液、TCA溶液、K3Fe(CN)6、氯甲烷等试剂均为分析纯,市售.DHG-9123A型电热恒温鼓风干燥箱(上海-恒科技有限公司);FW-100型(40-200目)粉碎机(北京市永光明医疗仪器厂);SP-2102UV紫外分光光度计(上海棱光技术有限公司);AL104型分析天平(Mettler-Toledo Group);HH-S型恒温水浴锅(巩义市英峪予华仪器厂).1.2 试验方法1.2.1 原料预处理选取形态均匀、颜色鲜艳、无虫害的金鸡菊花瓣,晾干.试验前将其置于45℃干燥箱中烘至恒重,然后用粉碎机粉碎(在粉碎过程中防止粉碎机过热对金鸡菊色素造成氧化),过筛(60目),备用(储藏置于磨口塞得棕色瓶中,防止受潮).1.2.2 标准曲线的制作精确称取烘至恒重的芦丁标准品25mg,用65%的乙醇定容至100ml,作为储备液.精确吸取上述稀释液2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0ml分别放置到25m l的容量瓶中,分别加入5%的NaNO2溶液1.0m l,摇匀放置6min,加1%Al(NO3)3溶液1m l,摇匀放置6min,加4%NaOH溶液10ml,然后用65%乙醇稀释至刻度,摇匀放置10min,用65%乙醇作空白,分别在504nm波长处测定吸光度A,绘制标准曲线.以吸光度A作纵坐标,芦丁浓度C(mg/mL)作横坐标得标准曲线.所得标准曲线为C=5.4219A-0.0307,R2=0.9876,线性关系良好(如图1).1.2.3 索氏提取法提取精确称取烘至恒重的金鸡菊花瓣粉末3份,每份5g,用滤纸包好至于索氏提取器中,先用100ml石油醚(沸点60~90℃)回流5h,再加入100m l65%乙醇回流5 h,最后将浸提液减压浓缩,得浸膏,向浸膏中加入50ml蒸馏水,再移入100 ml烧杯中,水浴(60~80℃)加热3 h,冷却至室温,过滤,滤渣用无水乙醇溶解,过滤得乙醇提取液,在水浴上蒸干,用65%乙醇转移定容在50ml容量瓶中,待测总黄酮.1.2.4 冷浸提取法精确称取烘至恒重的金鸡菊花瓣粉末3份,每份5 g,至于250 ml的锥心瓶中,料液比为1∶10,依次用石油醚、65%的乙醇浸泡提取3次,每次浸泡3 h,提取温度室温在(25±1℃).取65%乙醇提取液减压浓缩得浸膏,向浸膏中加入50 m l 蒸馏水,再移入100 ml烧杯中,水浴(60~80℃)加热3 h,冷却至室温,过滤,滤渣用无水乙醇溶解,过滤得乙醇提取液,在水浴上蒸干,用65%乙醇转移定容在50 m l容量瓶中,待测总黄酮.1.2.5 超声波提取法精确称取烘至恒重的金鸡菊花瓣粉末3份,每份5 g,至于250 ml的锥形瓶中,料液比为1∶10,依次用石油醚、65%的乙醇浸泡超声波提取3次,每次超声波提取30 min,提取温度控制在50℃.取65%乙醇提取液减压浓缩得浸膏,向浸膏中加入50 m l蒸馏水,再移入100 m l烧杯中,水浴(60~80℃)加热3 h,冷却至室温,过滤,滤渣用无水乙醇溶解,过滤得乙醇提取液,在水浴上蒸干,用65%乙醇转移定容在50 ml容量瓶中,待测总黄酮.1.2.6 提取率的计算金鸡菊色素的提取率计算公式如下:其中:Y为测量出的提取液吸光度,V1为样液的体积,V2为对照样液的体积,V3为用于测量吸光度的样液的体积,m为实验样品的质量.1.2.7 金鸡菊色素总抗氧化能力测定用65%的乙醇配制浓度为0.1 mg/ml,0.3 mg/ml,0.5 mg/m l,0.7 mg/m l,0.9 mg/m l金鸡菊色素、维生素C、维生素E、TBHQ各五份.精确吸取不同浓度各样品1 ml,加入2.5 m l pH6.6的磷酸盐缓冲液和2.5 m l1%K3Fe(CN)6溶液,混合后在50℃放置20 min,加入2.5 ml10%TCA溶液混合后,吸取2.5 m l,加入2.5 m l蒸馏水和0.1%FeCl3溶液2.5 ml,混匀,静置10 min,测定吸光度A,以试剂代替试样作为空白对照吸光度A0.总抗氧化能力可以ΔA来表示(ΔA=A-A0).1.2.8 金鸡菊色素稳定性的测定将反应体系放置60 min,每5 min测定其样品吸光度的变化.2.1 不同提取方法工艺条件及含量由表1可知不同方法的金鸡菊色素工艺条件及含量,结果表明,不同提取方法对金鸡菊色素的含量存在差异,在三种提取方法中,索氏提取法对金鸡菊色素花中总色素含量的提取效果最好,超声波提取法次之,冷浸法提取效果最低.2.2 不同添加量提取物与VC、VE、TBHQ的总抗氧化性能的比较根据金鸡菊色素的总抗氧化能力测定的实验方法得出的结果.从图2中可以看出,金鸡菊色素具有较强的抗氧化能力,且具有剂量效应关系.这主要是由于花色苷类化合物具有多酚羟基结构,金鸡菊色素浓度越高,总抗氧化力越大.由图可知,金鸡菊色素的总抗氧化能力:金鸡菊色素<维生素C<维生素E<TBHQ.2.3 金鸡菊色素稳定性的测定将待测液显色后,放置60 min,每隔5 min测定一次吸光值.从图3看吸光值随时间的变化有所下降.这是因为色素中黄铜几乎都带有一个以上羟基,对光和空气中的氧很敏感,导致其稀释液在室温下久置吸光度有所下降.因此,为准确测定,待测液应现用现制,并避光保存.结合比较三种金鸡菊色素的提取方法的工艺及提取率,结果表明,冷浸提法所提取金鸡菊色素含量浓度显著低于其它两种方法,但操作条件简便,耗能最少.索氏提取法得到的含量最高,适用于样品定性定量,但该方法操作复杂,成本较高,因此该方法不适于粗提物的大量提取.超声波提取方法操作较简便、快速,提取效率高,在粗提中显示明显的优势.每种方法测定原理各不相同,都有一定的有缺点或局限性,综合比较,利用超声波提取法提取金鸡菊色素,具有一定的开发前景.与此同时,实验证明了金鸡菊色素具有很好的抗氧化性,且随溶液浓度增加,抗氧化能力增强,通过对不同时间下金鸡菊色素吸光度变化的研究,表明暴漏在光照和空气下该色素稳定性差,应避光和隔绝空气保存.【相关文献】[1]梁淑红,哈木拉提,庞市宾,等.金鸡菊提取物降血压化学成分实验研究[J].时珍国医国药,2010,21(7):1619-1621.[2]吴钉红,杨立伟,苏薇薇.野菊花化学成分及药理研究进展[J].中药材,2004,27(2):142-143.[3]Crawford,Daniel J,Columbus,Edwin B.Smith,Anna,M. Mueller:Leaf flavonoid chemistry of Coreopsis sectionahnatae[J].Brittonia,1980,32:452-463.[4]朱笃,夏剑辉,张礼根,刘如龙,陈飞彪.金鸡菊黄色素提取工艺研究[J].江西师范大学学报,2005,29(4):359-362.[5]梁淑红,庞市宾,等.金鸡菊提取物降血脂作用的动物试验研究[J].农垦医学,2009,31(6):495-457.[6]朱笃,陈飞彪,夏剑辉,等.金鸡菊总黄酮的提取及含量测定[J].食品科学,2005,26(9):314-316.[7]Mitchell J H,Garder P T,Mcphail D B.Antioxidant efficacy of phy-toestrogensin chemicaland biologicalmodel systems.ArchBiochem Biophys,1998,(1):142-144.[8]阎炳宇.我国天然色素的现状及发展方针[J].精细与专用化学药品,1999,(9):8-9.[9]彭子模,惠寿年,李进等.玫瑰花色素及稳定性研究[J].西北植物学报,1999,19(2):349-353.[10]安黎哲,余谦.草莓果实红色素理化特性的研究[J].西北植物学报,1994,14(6):116-121.[11]周家华,杨辉荣,黎碧娜等.食品添加剂[M].北京:化学工业出版社,2001:83-84.[12]董世林.植物资源[M].哈尔滨:东北林业大学出版社,1994:202-203.。
菊花的化学成分研究进展

菊花的化学成分研究进展摘要】本文综述了近年来国内对菊花化学成分的研究成果,并对菊花质量控制标准的制定作了总结。
【关键词】菊花化学成分研究进展质量控制标准本品为菊科植物菊花Chrysanthemum morifolium Ramat.的干燥头状花序,具有散风清热、平肝明目、清热解毒的功效。
中国药典一部(2010年版) 菊花项下按产地和加工方法不同,收载了亳菊、滁菊、贡菊和杭菊[1]。
目前我国菊花药用类群有9个栽培变种,分别为贡菊、湖菊、小白菊、大白菊、小黄菊、滁菊、亳菊、大牙马和大怀菊[2]。
现就近年来国内对菊花化学成分研究综述如下:1. 黄酮类成分的研究从菊花中已分离得到的黄酮类化合物有:香叶木素、芹菜素、木犀草素、槲皮素、香叶木素-7-O-β-D-葡萄糖苷、芹菜素-7-O-β-D-葡萄糖苷、木犀草素-7-O-β-D-葡萄糖苷、金合欢素-7-O-β-D-葡萄糖苷[3,4]、棉花皮素五甲醚、5-羟基-3’,4,6,7 -四甲氧基黄酮[5]、橙皮素(hesperetin) [6]、刺槐素(acacetin)、橙皮苷、刺槐苷[7]、金合欢素-7-O-β-D-半乳糖苷、芹菜素-7-O-β-D-半乳糖苷、4’2-甲氧基木犀草素-7-O-β-D-葡萄糖苷[8]、baicalin、金合欢素-7-O-β-D-葡萄糖和diosmetin-7-O-β-D-葡萄糖[9]。
其中以金合欢素-7-O-β-D-葡萄苷和芹菜素-7-O-β-D-葡萄苷含量最高。
刘金旗[10]等将菊花置改良索氏提取器中,加甲醇回流提取。
采用高效液相色谱法测定菊花中金合欢素-7-O-β-D-葡萄苷、芹菜素-7-O-β-D-葡萄苷的含量。
其中亳菊和滁菊中金合欢素-7-O-β-D-葡萄苷的含量为0.0826%和0.1249%,杭菊和贡菊为0.0157%和0.0335%;芹菜素-7-O-β-D-葡萄苷的含量滁菊和亳菊为0.0126% 和0.0274%,而贡菊和杭菊为0.1177%和0.5877%。
叶绿体色素的提取、分离、定量及理化性质的鉴定

实验日期:2011.9.28叶绿体色素的提取、分离、定量及理化性质的鉴定1、实验原理叶绿体色素是植物吸收太阳光能进行光合作用的重要物质,主要由叶绿素a 、叶绿素b 、胡萝卜素和叶黄素组成。
它们与类囊体膜相结合成为色素蛋白复合体。
1. 叶绿体色素的结构与分离叶绿素a为蓝黑色固体,在乙醇溶液中呈蓝绿色;叶绿素b为暗绿色,其乙醇溶液呈黄绿色。
Chla与Chlb是吡咯衍生物与镁的络合物,它们很相似,不同之处仅在于Chla第二个吡咯环上的一个甲基(-CH3)被醛基(-CHO)所取代即Chlb。
Chla与Chlb 是植物进行光合作用必需的催化剂,易溶于石油醚等非极性溶剂中。
通常植物中叶绿素a的含量是叶绿素b的三倍。
其结构式如下:类胡萝卜素是一种橙色的天然色素,属于四萜,为一长链共轭多烯,有α、β、γ三种异构体,其中β异构体含量最多。
β-胡萝卜素(R=H)和叶黄素(R=OH)叶黄素是一种黄色色素,与叶绿素同存在于植物体内,是胡萝卜素的羟基衍生物,较易溶于乙醇,在石油醚中溶解度较小。
秋天,高等植物的叶绿素被破坏后,叶黄素的颜色就显示出来。
叶绿素与类胡萝卜素都不溶于水,而溶于有机溶剂,故可用乙醇、丙酮等有机溶剂提取。
提取液可用色谱分析的原理加以分离。
因吸附剂对不同物质的吸附力不同,当用适当的溶剂推动时,混合物中各种成分在两相(固定相和流动相)间具有不同的分配系数,所以移动速度不同,经过一定时间后,可将各种色素分开。
2. 叶绿体色素的物理性质叶绿素与类胡萝卜素都具有光学活性,表现出一定的吸收光谱,可用分光光度计精确测定。
叶绿素吸收光量子而转变成激发态,激发态的叶绿素分子很不稳定,当它从第一单线态返回基态时可发射出红光量子,因而产生荧光。
因为分子吸收的光能有一部分消耗于分子内部的振动上,发射的荧光的波长总是比被吸收光的波长要长。
3. 叶绿体色素的化学性质叶绿素的化学性质很不稳定,容易受强光的破坏,特别是当叶绿素与蛋白质分离以后,破坏更快,而类胡萝卜素则较稳定。
菊花化学成分及药理作用

菊花化学成分及药理作用摘要:概述了菊花的主要化学成分和药理活性研究进展。
菊花为药食同源的常用中药,其主要成分为黄酮、三萜类等化合物,具有多种药理活性,在心血管、抗病毒、抗肿瘤方面活性研究报道较多。
菊花还可制成各式糕点及粥膳,让你在享受美食的同时,还能保证身体的健康。
关键词:菊花简介化学成分药理活性保健功效正文:一、菊花的介绍菊花(学名Dendranfthema morifoliuum 常用chrysanthemum,拉丁文 Flos Chrysanthemi),多年生草本,基部木质,全体被白色绒毛。
叶片卵形至皮针形,叶缘有粗大锯齿或羽裂。
头状花序直径2.5—20cm;总苞片多层,外层绿色,边缘膜质;缘花舌状,雌性,形色多样;盘花管状,两性,黄色,具托片。
廋果无冠毛。
经长期人工选择培育的名贵观赏花卉,也称艺菊,品种达三千余种。
是中国十大名花之一,在中国有三千多年的栽培历史。
二、化学成分菊花因产地和品种不同,其化学成分有一定的差异。
目前对药典收载的四种来源的菊花的化学成分研究均有报道。
研究发现,菊花的化学成分比较复杂,其中黄酮类化合物、三萜类化合物和挥发油是其主要有效成分(黄酮类化合物从菊花中已分离得到的黄酮类化合物有:香叶木素、芹菜素、木犀草素、槲皮素、香叶木素7 OβD葡萄糖苷、芹菜素7OβD葡萄糖苷、木犀草素7OβD葡萄糖苷、金合欢素 7 OβD葡萄糖苷、棉花皮素五甲1 醚、5羟基3' ,4' ,6 ,7 四甲氧基黄酮、橙皮素(hesperetin)、刺槐素(acacetin)、橙皮苷、刺槐苷、金合欢素7OβD半乳糖苷、芹菜素7OβD半乳糖苷、4' 甲氧基木犀草素7OβD葡萄糖苷baicalin、金合欢素7OβD葡萄糖、diosmetin7OβD葡萄糖等)。
经过各种法测定,不同采收期对菊花中木犀草素及其苷的含量,以考察它们在采摘期内的含量变化,表明木犀草素含量在采摘期中无显著变化,但其糖苷的含量在采摘初期变化不明显,在采摘后期呈下降趋势。
植物提取颜色实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 掌握植物提取颜色的原理和方法。
2. 学习使用层析法分离植物中的色素。
3. 了解不同植物色素的特性及其在自然界中的作用。
二、实验原理植物中的色素主要分为两大类:叶绿素和类胡萝卜素。
叶绿素包括叶绿素a和叶绿素b,分别呈蓝绿色和黄绿色;类胡萝卜素包括胡萝卜素和叶黄素,分别呈橙黄色和黄色。
这些色素在植物的光合作用中起着重要作用。
本实验通过提取植物中的色素,并利用层析法将其分离,观察不同植物色素的特性。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:菠菜、紫罗兰、牵牛花、万寿菊等植物叶片。
2. 仪器:研钵、研杵、滤纸、层析柱、滴管、剪刀、量筒、烧杯、酒精灯、显微镜等。
四、实验步骤1. 植物色素提取(1)将植物叶片洗净、晾干,用剪刀剪成小段。
(2)将剪好的叶片放入研钵中,加入少量二氧化硅、碳酸钙和适量丙酮。
(3)用研杵充分研磨,使叶片与溶剂充分混合。
(4)将研磨后的混合物倒入滤纸中,过滤得到色素溶液。
2. 植物色素分离(1)取一张滤纸,将其剪成比层析柱直径略小的圆片。
(2)将圆片放入层析柱中,使其紧贴柱壁。
(3)将提取到的色素溶液用滴管滴入层析柱,控制液面高度。
(4)待色素溶液滴入层析柱后,加入适量的层析液,观察色素分离情况。
3. 观察与记录(1)观察层析柱中色素带的分布,记录各色素带的颜色和位置。
(2)分析不同植物色素的特性,总结实验结果。
五、实验结果与分析1. 实验结果菠菜叶片:叶绿素a(蓝绿色)、叶绿素b(黄绿色)、胡萝卜素(橙黄色)、叶黄素(黄色)。
紫罗兰叶片:花青素(红色)、叶绿素a(蓝绿色)、叶绿素b(黄绿色)、胡萝卜素(橙黄色)、叶黄素(黄色)。
牵牛花叶片:花青素(蓝色)、叶绿素a(蓝绿色)、叶绿素b(黄绿色)、胡萝卜素(橙黄色)、叶黄素(黄色)。
万寿菊叶片:叶绿素a(蓝绿色)、叶绿素b(黄绿色)、胡萝卜素(橙黄色)、叶黄素(黄色)。
2. 分析实验结果表明,不同植物叶片中含有不同的色素,这些色素在层析柱中分离出的位置和颜色也有所不同。
菊花黄色素的提取及其性质研究

菊花黄色素的提取及其性质研究古丽娜尔·夏依马尔旦;迪丽拜尔【期刊名称】《新疆师范大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2011(030)002【摘要】目的:研究pH,热,时间,光,金属离子,氧化剂等物质对菊花色素在可见光的稳定性的影响。
方法:采用75%乙醇作为提取溶剂,对色素提取液在400-520nm范围内进行测其吸光度。
结果:该色素最大吸收波长为400nm,在该波长的吸光度为0.580;该色素稳定的最佳pH条件为4~6;该色素对时间和热比较稳定,但对光不稳定;氧化剂及除铁和铜离子外,其他金属粒子对色素的影响不大;该色素对盐比较敏感;适合为酸性及弱酸性食品利用。
%Objective. Study the influence of pH, heat, time, light, metal ions, oxidants and other substances on the visible light stability of yellow pigment in Chrysanthemum. Methods. use the 75% ethanol as extraction solvent, the absorbance of extraction pigment【总页数】5页(P53-57)【作者】古丽娜尔·夏依马尔旦;迪丽拜尔【作者单位】新疆师范大学化学化工学院,新疆乌鲁木齐830054 ;新疆和田财政学校,新疆和田848100【正文语种】中文【中图分类】Q946.7【相关文献】1.野菊花黄色素的理化性质研究 [J], 王桃云;王金虎;戴玉锦;曹洪生;何波;徐曼2.不同方法提取金鸡菊花中天然黄色素及稳定性研究 [J], 晏小欣;贾淑平;赵丽凤3.菊花黄色素的性质研究 [J], 柳滢春;谷雪贤4.菊花黄色素的理化性质研究 [J], 杨兰;张洁;何淑华;杨白玉5.金盏菊花黄色素的性质研究 [J], 胡晓丹;谢笔钧;王建中因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
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表 6 食 品添 加剂 对 色素 溶 液 吸光 度 的 影 响
一 4 0 m 下 3n
由表 6 以看 出 , 可 食盐 、 糖 、 蔗 柠檬 酸等食 品添 加剂对 色 素溶 液 吸光度 的影 响不 大 。结 果表 明 , 该色 素可
颜 色 浅 黄 浅 黄 浅 黄 浅 黄 浅 黄 菊 黄 菊 黄 菊 黄 菊 黄 菊 黄 橙 黄 深 黄 深 黄 棕 色 棕 色
由表 2中可 以看 出, 酸碱性 对本 色 素 的影 响较 大 , 目测色 素溶 液颜 色 有 明显 的变化 。在 酸性 ( H≤ 4 的 p ) 介质 中 , 色素 溶液 显浅 黄 色 ; 弱酸性 、 在 中性 和弱 碱性 ( ≤ p 5 H≤ 9 的介 质 中 , ) 色素溶 液 保持原 有 的 菊黄 色 ; 而
Vo . 8, . 1 2 No 2
20 0 9年 6月
J n 2 0 u .0 9
四季 菊花 色 素 的提取 及 其 理 化 性质 的研 究
“
库 尔班 江 赛 力 曼 卡 斯 木 江。 , ,
3 伊 犁 州 电 视 大学 , 疆 伊 宁 8 5 0 ) . 新 3 0 0
5 6
新疆 师范 大学 学 报 ( 自然 科 学 版 )
20 0 9年
由表 4中可 以看 出 , 色素 溶液加热 至 8 ℃时 , 液 颜色 目测无 明显 变 化 ; O 溶 加热 到 以上 9 ℃时 , O 溶液 显深 黄色 。结果 表 明, 8 ℃以下该 色素耐热 性很 强 , 以耐受一 般的食 品饮料 热处 理条 件 。 在 0 可
2 方 法 与 结 果
2 1 色 素 的提 取 . 将 干燥 的四季菊 花粉 碎 , 其干粉 1 0克 , 1 0 取 0 用 5 mL蒸 馏 水 室 温浸 泡 l 2小 时 , 抽滤 , 渣 用 l O 滤 O mL蒸
[ 收稿 日期]2 0 —1 —1 08 1 7
[ 者 简 介 ]库 尔 班 江 ( 9 2 ) 男 , 吾 尔 族 , 疆 伊 宁人 . 教 授 , 作 16一 , 维 新 剐 主要 从 事 中 药 与 天然 药物 方 向 的研 究 。
表 5 金 属 离 子 对 色 素 溶 液 吸 光度 的影 响
由表 5可 以看 出, 以上金 属离 子对 本 色素 均 有不 同程度 的减 色效 应 , a C 。对 色 素溶 液 吸光 度 的影 N 、 a
响不 大 ; Mn 、 抖 、 什 、 u。等离子对 色 素均有 不 同程 度 的增 色 效应 , 溶液 吸光 度 的影 响较 大 。 而 抖 Mg A1 C 。 对 2 2 7 食 品添加 剂对 四季 菊花 色素的影响 .。 配制分 别含有 食盐 、 蔗糖 、 柠檬 酸等食 品添 加剂 的色素 含量相 同的待 测溶 液若 干 份 , 在
素 用 水 浸 泡提 取 , 取液 用 乙醚 萃 取 , 层 减 压 蒸馏 , 取 率 为 7 1 。 色 素 的 水 溶 性 好 , 提 水 提 . 对光 、 、 酸 性 至 碱 性 介 质 及 食 品 添 加 热 弱 剂 相 当 稳定 , 受 一 般 的 食 品 饮 料 加 工 条 件 。 素 对 还 原 剂 Na O3的 耐 受 能 力 较 弱 。四 季 菊 花 黄 色 素 是 一 种 提 取 工 艺 简 单 、 耐 色 HS 性
5 4
第 2 8卷
第 2期
《 疆 师范 大 学 学 报 》 自然 科 学 版 ) 新 (
J u n l fXi a gNo ma iest o r a o  ̄in r l Unv ri y
( t r l ce c s Ed t n) Na u a in e ii S o
在强 碱性 介质 中色 素 溶 液 颜 色 的变 化 较 多 。结 果 表 明 : 素 水 溶 液 在 弱 酸 性 、 色 中性 及 弱 碱 性 介 质 中较 为
稳定 。 ’ 。
2 2 4 光 照对 色素 的影 响 取待 测 色素水 溶 液若 干份 , 强光 直 照下存 放 不 同时 间后 , 入 一 4 0 m 下 分 .. 在 在 3n 别 测其 吸光 度’ 果 如下 : , 结 ‘
入
图 1 四 季 花 色 素 的 吸 收 曲线
表 2 不 同 p 值 下 色 素 溶 液 颜 色 的 变化 H p 值 H 对 照 1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 0 1 1 1 2 1 3 1 4
吸 光 度 1 1 0 . 5 1 1 6 . 5 1 1 8 . 5 1 1 0 . 6 1 1 1 . 6 1 1 2 1 1 3 . 6 1 1 3 1 1 3 . 6 1 1 4 . 5 1 1 7 . 5 1 1 8 . 6 1 1 0 . 6 1 1 3 . 6 . 6 1 1 4 . 6 . 6
2 2 6 金属 离子对 色素 的影 响 配 制分别 含有 Na 1C C Mg 1、 n 1. C1、 C 。C C: 金属 氯化 .. C 、 a 1、 C Z C 2Mn 。 AI 1、 u 1等 物 的色素含 量相 同的待测 溶液 若干份 , 入 一 4 0 m 下分 别测 其吸光 度 , 果 如下 : 在 3n 结
文章 编号 : 10— 5( 0)2 04 4 08 692 90 05— 9 0 — 0
随着经济 的发展 、 民生活 水平 的提高 和健康 自我保 健意 识 的增强 , 人 人们 对食 品饮料 的营养 价值 和花色 品种 的标准提 出了更 高 的要 求 。推广 无害无 毒绿 色食 品饮 料 的呼 唤 日益增 大 , 对食 品添加 剂 的使用 要 求更 高[ 。人 们希 望食品 色味俱 全 , 有 营养价值 , 】 ] 且 安全 无毒 。近 年来 国际 上开 展 了对 用 于染 色 食 品饮 料 、 糖果 和糕点 等食用 色素 的研制 和开 发工作 。虽 然合成 色素 品种齐 全 、 泽鲜 艳 、 色 稳定 性好 、 品质 均一 , 于溶解 和 易 调色 , 成本低 廉等优 点 , 合成 色素有 不 同程度 的毒性 , 但 因而 , 对其 生产 和使用 受到 了很大 的限 制 。而 天然色 素则 不但无 害无毒 、 具有食 品本 身 的色泽 、 进食 欲 、 促 增加 消 化 液 的 分泌 , 有 些还 对 人 体 有 医疗 和 保 健作 且 用 。因此 , 寻找 和开发更 多的天 然 色素 已成 为使 用色 素发展 的必然 趋势 。 。 ] 四季菊 花为菊科 ( trca ) Aseae e 菊属 ( o o i e , C mp s a ) 植物 四季 菊 的花[ 。四季 菊是 分 布很 广 的一 种 植物 , t 4 ] 在全 国各 地 均 有 栽 培 , 般 作 为 观 赏 性 植 物 , 量 的 四季 菊 花 资 源 尚未 利 用 , 一 大 因此 , 有 开 发 和 利 用 价 具 值[ ] 5 。关于 四季菊花 中黄 色素 的提取 尚 未查 到文 献 报道 , 文章 对 四季 菊花 黄 色 素 的提 取 及 其 理化 性 质进
质 稳 定 、 色鲜 艳 、 廉 易得 、 源 充 足 的天 然 色 素 , 颜 价 来 可用 于 色 糖 果 、 面食 品 、 汁饮 料 、 饮 料 、 酸饮 料 及 酒 类 。 果 茶 碳
关键 { 司:四季菊 ; 花色 素; 提取 ; 理化性质
中图分类号 : T 253 S5.
文献 标识码 : A
大 吸收 峰 。
A
2 2 3 P 值 变化 对色 素 的影响 . . H
配 制 以 0 1 HC 和 0 1 Na .M l . M OH 溶 液 p H
值调 至 1 4 但 色 素 含 量 相 同 的 待 测 溶 液 若 干 ~1 , 份, 在 表 2 。 : 3 n 下 分 别 测 其 吸 光 度 , 果 如 = 0m =4 结
(. 犁 师 范学 院 化 学 与 生 物科 学 学 院 , 疆 伊 宁 8 50 ;2 伊 犁 州 技 工 学 校 , 疆 伊 宁 8 5 0 ; 1伊 新 30 0 . 新 3 0 0
捅 姜 :文章以四季菊花为原料提取 四季菊花黄色素, 并对其理化性 质和稳定性进行 了研究 。结果表 明 : 四季菊 花黄色
称取 四季 菊 色素 粉末 若干份 ( 每份 0 1克 ) 分别 以下列 溶剂 ( mL 中溶 解 , 果如下 : . , 3 ) 结
表 1 四 季 菊 花 色 素 在 不 同 的溶 剂 中 的 溶 解 性
结 果表 明 , 果 表 明 , 结 四季 花 色素 可 溶 于酸 、 碱, 可溶 于水 、 甲醇 、 丁 醇 、 正 丙酮 和 乙酸 乙酯 等极 性 较 强 的溶 剂 中 ( 液 呈菊 黄色 ) 不溶 于 氯仿 , 溶 , 石 油 醚 等非极 性 溶剂 中 。 2 2 2 四季菊 花色 素 的光谱 特性 . . 用 7 2型分 光光 度 计对 色素水 溶液 进 行 吸光 2 度测定, 以波 长 为 横 坐 标 , 光度 为 纵 坐 标 作 图 , 吸 得 一 吸收 曲线 , 图 1 如 。 由图 1可见 , 四季 菊 花 色 素在 可 见光 处 有 最
表 3 光 照 对 色 素 溶 液 吸 光 度 的 影 响
由表 3可 以看 出 , 色素 水溶 液在 强光 直 照下存 放 至 4 8小 时后 , 然无 明显 颜 色变 化 。结果 表 明 , 色素 仍 该
的耐光 性 能很 强 。
2 2 5 加 热对 色 素的影 响 取待 测 色素水 溶 液若 干份 , 别在 不 同 的温度 下恒 温 1小 时 , 入 一 4 0 m 下 .. 分 在 … 3n 分 别测 其 吸光度 , 果如 下 : 结
Na OH 、 1NaS 3 H2 、 a I、 C2 Z Cz Mn I、 C 3Cu 1 。 HC 、 2 O 、 O2C C2 Mg I、 n 1、 C 2AI 1、 C2等