LipofectAMINE2000 Fugene6转染细胞的效率比较_张宝

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各种细胞转染方法比较

各种细胞转染方法比较
瞬时转染
相对简便、重复比磷酸钙好,但对细胞有一定的毒副作用,转染时需除血清且一般只用于BSC-1,CV-1,COS细胞系
Sigma-Aldrich(DEAE-Dextran Transfection Kit)
磷酸钙法
磷酸钙DNA复合物吸附细胞膜被细胞内吞
稳定转染,染瞬转染
不适用于原代细胞(所需的DNA浓度较高),操作简便但重复性差,有些细胞不适用
各种细胞转染方法比较
细胞转染方法包括DEAE-葡聚糖法,磷酸钙法,阳离子脂质体法,阳离子聚合物,病毒介导法,Biolistic颗粒传递法(基因枪粒子轰击法),显微注射法,电穿孔法等,对各种方法的原理,应用,特点,厂家产品等信息的比较结果如下表:
转染方法
原理
主要应用
特点
厂家及产品
DEAE-葡聚糖法
带正电的DEAE-葡聚糖与核酸带负电的磷酸骨架相互作用形成的复合物被细胞内吞
稳定转染,瞬时转染,所有细胞
使用方法简单,可携带大片段DNA,通用于各种类型的裸露DNA或RNA,能转染各种类型的细胞,没有免疫原性。虽在体外基因转染中有很高的效率,但在体内,能被血清清除,并在肺组织内累积,诱发强烈的抗炎反应,导致高水平的毒性,这在很大程度上限制了其应用
Invitrogen(Lipofectamine 2000,Lipofectamine,Lipofectin,Lipofectamine Plus,Cellfectin)
瞬时转染,特定宿主细胞
可用于难转染的细胞,需考虑安全因素
中国科学院典型培养物保藏委员会
Biolistic颗粒传递法(基因枪粒子轰击法)
将DNA用显微重金属颗粒沉淀,再将包被好的颗粒用弹道装置投射入细胞,DNA在胞内逐步释放,表达

LIPOFECTAMINE2000转染试剂转染步骤

LIPOFECTAMINE2000转染试剂转染步骤

LIPOFECTAMINE2000转染试剂转染步骤转染是指将外源DNA或RNA导入到目标细胞中的过程,LIPOFECTAMINE2000是一种常用的转染试剂。

下面是使用LIPOFECTAMINE2000进行转染的详细步骤:步骤一:细胞处理1.1培养要转染的细胞株,并确保细胞达到70%-80%的密度。

1.2使用无菌PBS洗涤细胞,将细胞悬浮于含有10%FBS的完全培养基中。

1.3通过计数细胞数来得到适当的细胞密度,以确保每个孔或皿中有足够的细胞进行转染。

步骤二:DNA/RNA和转染试剂的配制2.1在无菌离心管中配制DNA/RNA和转染试剂的混合液。

按照试剂的说明书中的推荐比例将DNA/RNA和转染试剂混合在一起,并使用无菌PBS 或者培养基和其它试剂进行稀释。

2.2轻轻摇晃混合液,避免产生气泡。

步骤三:转染3.1将配制好的转染混合液加入到每个孔或皿中,并轻轻摇晃培养皿/板使其均匀分布。

3.2将细胞和转染试剂混合液共孵育4-6小时,在37℃的CO2培养箱中进行转染反应。

转染时间可以根据目标细胞的特性进行调整。

步骤四:更换培养基4.14-6小时后,将转染混合液完全去除,并用预温热的完全培养基洗涤细胞,以去除未吸附的DNA/RNA和转染试剂。

4.2加入足够的完全培养基来覆盖细胞,尽量减少液体涡流,以避免对转染效率的不良影响。

步骤五:细胞培养和分析5.1将培养皿/板放回37℃的CO2培养箱中,并进行适当的培养条件。

5.2根据实验需要的时间点收集转染后的细胞进行后续的实验和分析。

需要注意的是,转染步骤中的各种参数(例如细胞密度、转染试剂的浓度和比例等)可能因不同的实验目的和目标细胞而有所不同。

因此,在具体操作中请参考所使用转染试剂和目标细胞的说明书,并根据实验需要进行相应的优化。

lipofectamine2000原理

lipofectamine2000原理

lipofectamine2000原理Lipofectamine2000是一种常用于转染细胞的试剂,它的原理是通过脂质体介导的转染技术,将外源DNA或RNA导入到细胞内。

这种转染方法被广泛应用于基因功能研究、蛋白表达和基因治疗等领域。

脂质体是由脂质分子组成的小囊泡,可以与细胞膜融合并释放其内部所带的DNA或RNA分子。

Lipofectamine2000是由一种阳离子脂质和一种阴离子脂质组成的复合物,这种复合物能够与DNA 或RNA形成稳定的复合体。

当Lipofectamine2000和DNA或RNA共同存在于培养基中时,它们会自发地结合在一起,形成脂质体-核酸复合物。

脂质体-核酸复合物具有良好的转染效果,主要有以下几个原因。

首先,脂质体可以提供稳定的保护作用,保护DNA或RNA免受外界环境的影响。

其次,脂质体能够与细胞膜融合并被细胞摄取,将DNA或RNA导入到细胞内。

此外,Lipofectamine2000还可以增加细胞膜的通透性,使DNA或RNA更容易进入细胞。

Lipofectamine2000的使用方法相对简单。

首先,将所需的DNA 或RNA与Lipofectamine2000按照一定比例混合,形成脂质体-核酸复合物。

然后将复合物加入到细胞培养基中,与细胞共同孵育一段时间。

在此过程中,脂质体-核酸复合物与细胞相互作用,将DNA或RNA导入到细胞内。

最后,可以利用适当的实验方法检测转染效果,如荧光显微镜观察、PCR检测等。

尽管Lipofectamine2000在转染实验中具有诸多优势,但也存在一些局限性。

首先,该方法对细胞类型有一定的选择性,不同细胞株对Lipofectamine2000的响应程度不同。

其次,脂质体-核酸复合物的稳定性较差,容易受到环境因素的影响。

此外,Lipofectamine2000的转染效率可能受到多种因素的影响,如DNA或RNA浓度、孵育时间等。

为了提高转染效率,研究人员还不断改进Lipofectamine2000的配方和使用方法。

Lipofectamine 2000细胞转染实验步骤 注意事项

Lipofectamine 2000细胞转染实验步骤 注意事项

Invitrogen阳离子转染试剂Lipofectamine 2000细胞转染实验步骤注意事项2010-07-10 16:16Invitrogen的细胞转染试剂:Lipofectamine 2000Lipofectamine 2000是最为人熟知的转染产品之一。

已知可为517种细胞(见下面连接地址)提供高转染效率(表达转基因细胞的百分数)和活性(细胞抽提物中转入基因的酶产物活性)。

特点两个关键性特点使得Lipofectamine 2000试剂的转染步骤快速简便:(1)DNA-阳离子脂质体试剂的复合体可以直接加入到细胞培养基中,有血清也不怕(2)转染后不需要除去Lipofectamine 2000试剂,无需换培养基操作流程事实上Lipofectamine系列产品操作流程都是又快又简单:稀释DNA 以及Lipofectamine 2000,混合2种稀释液保温20分钟,加入培养细胞中孵育24-96小时检测结果。

下面是Invitrogen提供的详细流程和注意事项。

转染前一天,胰酶消化细胞并计数,细胞铺板,使其在转染日密度为90%。

细胞铺板在0.5ml含血清,不含抗生素的正常生长的培养基中。

对于每孔细胞,使用50μl无血清培养基(如OPTI-MEMⅠ培养基)稀释0.8μg-1.0μg DNA。

对于每孔细胞,使用50μl OPTI-MEMⅠ培养基稀释1μl-3μl LIPOFECTAMINE 2000试剂。

Lipofectamine 2000稀释后保温5分钟(在30分钟内同稀释的DNA 混合。

保温时间过长会降低活性。

)注意:即使Lipofectamine 2000使用OPTI-MEMⅠ稀释,细胞也可以使用D-MEM培养。

如果D-MEM做为Lipofectamine 2000的稀释液,必须在5分钟内同稀释的DNA混合。

混合稀释的DNA(第2步)和稀释的Lipofectamine 2000(第3步)。

在室温保温20分钟。

各种转染方法比较

各种转染方法比较

各种转染方法比较转染方法原理主要应用特点主要的厂家及产品DEAE-葡聚糖法带正电的DEAE-葡聚糖与核酸带负电的磷酸骨架相互作用形成的复合物被细胞内吞瞬时转染相对简便、重复比磷酸钙好,但对细胞有一定的毒副作用,转染时需除血清且一般只用于BSC-1,CV-1,COS细胞系Sigma-Aldrich(DEAE-DextranTransfection Kit)DNA复合物吸附细胞膜稳定转染,染瞬转染不适用于原代细胞(所需的DNA浓度较高),操作简便但重复性差,有些细胞不适用细胞建议用CSCL梯度离心,转染是拷贝数较多GIBCO BRL,Promega阳离子脂质体法带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物,然后脂质体上剩余的电核与细胞膜上的唾液酸残基的负电核结合;另一种解释是通过细胞是内吞作用而被进入细胞。

(若DNA浓度过高,中和脂质体表面电核,而降低了与细胞的结合能力)稳定转染,瞬时转染,所有细胞使用方法简单,可携带大片段DNA,通用于各种类型的裸露DNA或RNA,能转染各种类型的细胞,没有免疫原性。

虽在体外基因转染中有很高的效率,但在体内,能被血清清除,并在肺组织内累积,诱发强烈的抗炎反应,导致高水平的毒性,这在很大程度上限制了其应用Invitrogen(Lipofectamine2000,Lipofectamine,Lipofectin,LipofectaminePlus,Cellfectin)Roche(Dosper,DOTAP,FuGENE6)CPG Biotech Co(GeneLimoPlus,GeneLimo Super)Promega(Transfast,Tfx,Transfectam)阳离子聚合物带正电的聚合物与核酸带负电的磷酸基团形成带正电的复合物后与细胞表面带负电的蛋白多糖相互作用,并通过内吞作用进入细胞。

稳定转染,瞬时转染,所有细胞除了具有阳离子脂质体的转染效率高,操作简单,适用范围广,重复性好等特点外,还具有在体内,转染效率高,细胞毒性低等特点,是新一代的转染试剂。

各种细胞转染方法比较

各种细胞转染方法比较
细胞建议用CSCL梯度离心,转染是拷贝数较多
GIBCO BRL,Promega
阳离子脂质体法
带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物,然后脂质体上剩余的电核与细胞膜上的唾液酸残基的负电核结合;另一种解释是通过细胞是内吞作用而被进入细胞。(若DNA浓度过高,中和脂质体表面电核,而降低了与细胞的结合能力)
显微注射法
用显微操作将DNA直接注入靶细胞核
稳定转染,瞬时转染
转染细胞数有限,多用于工程改造或转基因动物的胚胎细胞
电穿孔法
高脉冲电压破坏细胞膜电位,DNA通过膜上形成的小孔导入
稳定转染,瞬时转染,所有细胞
适用性广,除了质粒外,还可转染大的基因组(>65kb)但细胞致死率高,DNA和细胞用量大,需根据不同细胞类型优化电穿孔实验条件,拷贝数较少1-20
Roche(Dosper,DOTAP,FuGENE6)
CPG Biotech Co(GeneLimoPlus,GeneLimoSuper)
Promega(Transfast,Tfx,Transfectam)
阳离子聚合物
带正电的聚合物与核酸带负电的磷酸基团形成带正电的复合物后与细胞表面带负电的蛋白多糖相互作用,并通过内吞作用进入细胞。
瞬时转染,特定宿主细胞
可用于难转染的细胞,需考虑安全因素
中国科学院典型培养物保藏委员会
Biolistic颗粒传递法(基因枪粒子轰击法)
将DNA用显微重金属颗粒沉淀,再将包被好的颗粒用弹道装置投射入细胞,DNA在胞内逐步释放,表达
瞬时性转染,稳定转染
可用于:人的表皮细胞,纤维原细胞,淋巴细胞系以及原代细胞
稳定转染,瞬时转染,所有细胞
使用方法简单,可携带大片段DNA,通用于各种类型的裸露DNA或RNA,能转染各种类型的细胞,没有免疫原性。虽在体外基因转染中有很高的效率,但在体内,能被血清清除,并在肺组织内累积,诱发强烈的抗炎反应,导致高水平的毒性,这在很大程度上限制了其应用

Lipofectamine 2000细胞转染实验步骤 注意事项

Lipofectamine 2000细胞转染实验步骤 注意事项

Invitrogen阳离子转染试剂Lipofectamine 2000细胞转染实验步骤注意事项2010-07-10 16:16Invitrogen的细胞转染试剂:Lipofectamine 2000Lipofectamine 2000是最为人熟知的转染产品之一。

已知可为517种细胞(见下面连接地址)提供高转染效率(表达转基因细胞的百分数)和活性(细胞抽提物中转入基因的酶产物活性)。

特点两个关键性特点使得Lipofectamine 2000试剂的转染步骤快速简便:(1)DNA-阳离子脂质体试剂的复合体可以直接加入到细胞培养基中,有血清也不怕(2)转染后不需要除去Lipofectamine 2000试剂,无需换培养基操作流程事实上Lipofectamine系列产品操作流程都是又快又简单:稀释DNA 以及Lipofectamine 2000,混合2种稀释液保温20分钟,加入培养细胞中孵育24-96小时检测结果。

下面是Invitrogen提供的详细流程和注意事项。

转染前一天,胰酶消化细胞并计数,细胞铺板,使其在转染日密度为90%。

细胞铺板在0.5ml含血清,不含抗生素的正常生长的培养基中。

对于每孔细胞,使用50μl无血清培养基(如OPTI-MEMⅠ培养基)稀释0.8μg-1.0μg DNA。

对于每孔细胞,使用50μl OPTI-MEMⅠ培养基稀释1μl-3μl LIPOFECTAMINE 2000试剂。

Lipofectamine 2000稀释后保温5分钟(在30分钟内同稀释的DNA 混合。

保温时间过长会降低活性。

)注意:即使Lipofectamine 2000使用OPTI-MEMⅠ稀释,细胞也可以使用D-MEM培养。

如果D-MEM做为Lipofectamine 2000的稀释液,必须在5分钟内同稀释的DNA混合。

混合稀释的DNA(第2步)和稀释的Lipofectamine 2000(第3步)。

在室温保温20分钟。

LIPOFECTAMINE2000转染试剂转染步骤

LIPOFECTAMINE2000转染试剂转染步骤

LIPOFECTAMINE2000转染试剂转染步骤1.准备转染试剂:取出存储在-20℃的LIPOFECTAMINE2000试剂,并将其溶解在适量的去离子水或者PBS缓冲液中,制备转染试剂。

2. 根据实验需要确定转染的质粒DNA量和细胞数量。

一般来说,每个转染需要1-2ug的质粒DNA,细胞密度则根据细胞类型的不同而有所变化。

3.将准备好的转染试剂和质粒DNA混合在一起。

首先将质粒DNA加入到含有LIPOFECTAMINE2000的管中,并轻轻混合均匀,然后将混合物静置15-30分钟,使其形成脂质-DNA复合物。

4.在脂质-DNA复合物静置的同时,准备待转染的细胞。

将细胞用无血清培养基洗涤一次,并将其悬浮在新的无血清培养基中。

5.将静置好的脂质-DNA复合物滴加到细胞中。

将脂质-DNA复合物滴加到含有细胞的培养皿中,并轻轻摇晃培养皿,使复合物均匀分布在细胞表面。

6.将转染后的细胞培养在37℃的CO2培养箱中孵育。

具体培养时间视实验需求而定,一般来说,24-48小时后可以进行下一步实验。

7. 检测转染效率。

可以通过荧光显微镜观察细胞内是否表达了目的基因或荧光标记,也可以采用Western blotting或者RT-PCR等方法进行进一步的检测。

总的来说,LIPOFECTAMINE2000转染试剂转染步骤相对简单,但需要注意的是在每一步操作中都要轻柔并避免产生气泡,以确保脂质-DNA复合物可以均匀地与细胞相结合,从而提高转染效率。

同时,在实验过程中需要注意质粒DNA的质量和浓度,以及细胞的健康状态,这些因素都会对转染效果产生影响。

希望以上介绍对您有所帮助,祝您实验顺利。

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基因转染是分子生物学研究常用 的 技 术 , 将 外 源 基 因 或 有 功 能 的 核 酸 片 段 , 如 siRNA 、 反义寡核苷酸 等导入真核细胞,
[1,2] [3]
是研究其功能的一个重要手段。将外源 核 酸 导 入 真 核 细 胞 中 的 方法主要包括两类 , 即病毒感染和非病毒转染。非病毒转染是指 将外源核酸利用化学试剂或物理方法导 入 细 胞 。 目 前 应 用 的 化 非脂质体 [5,6]、 纳米材料 ( 如 学试剂层出不穷 , 如带正电的脂质体 [4]、 聚 乙 烯 亚 胺 , PEI)
012’3’Y 组 的 YKE 倍 )! Z@K@@E (& 而 <’3#99= 酶 活 性 是 012’3’Y 组
的 EKY 倍 *!Z@K@@Q(+ 与 012’3’Y 组相比 & 磷酸钙共沉淀法转染的
A
讨论
在基因治疗的过程中 & 或在研究基 因 功 能 的 实 验 中 & 常 须 将
0#8’&9: 酶活性在 7 组 间 无 差 别 & 但 <’3#99= 荧 光 素 酶 活 性 是 01[ 2’3’Y 组的 QKY 倍 *!\@K@7 (, 7K7
存在差异 , 当进行转染实验时 , 对于不同的细胞须根据情况进行选择。 [ 关键词 ]
LipofectAMINE2000 ; Fugene6 ; 转染 Q78
[ 文献标识码 ]
[ 中图分类号 ]

The Tr ansfection Efficiency Compar ison of LipofectAMINE2000 and Fugene6
1.2
LipofectAMINE2000 转染
[ 收稿日期 ] [ 基金项目 ] [ 作者简介 ] [ 通讯作者 ]
2006- 12- 04
中国博士后科学基金项目 ( 2005038187 ) 张宝 ( 1973- ) , 男 , 博士 , 汕头大学医学院博士后 霍霞 , ( E- mail ) xhuo@stu.edu.cn
张宝等 !"#$%&’()V+,-.7@@@ 与 012’3’Y 转染细胞的效率比较 胞按 >?@ 32 质粒 $6"ABCD #E 32 质粒 $<"BFG>/ 与 HIJ !" 7KL
!"#
分 别 用 "#$%&’()V+,-.7@@@ 和 012’3’Y 试 剂 & 将 质 粒 $6"XB
M%9 N " 的 O=O97 混和 $ 然后在 振 荡 过 程 中 加 入 适 量 的 7P5;F $ 静
HepG2,
DLD- 1 cells using
LipofectAMINE2000 and Fugene6 respectively. After 48 h transfection, cells were lysed and the luciferase activity was de- tected. Results: In 293T cells, the Firefly and Renilla luciferase activity of LipofectAMINE2000 transfection group were as more 6.5, 5.6 fold as that of Fugene6 transfection group ( P<0.005 ) P while in HepG2 cells, the activity of Lipofec- tAMINE2000 transfection group were as more 44, 49 times as Fugene6 transfection group ( P<0.001 ) P but in DLD- 1 cells, there was no difference between two groups. Conclusion: There is significant difference between LipofectAMINE2000 and Fugene6 for transfecting different cells. of cells.

1.1
材料与方法
材料 脂 质 体 LipofectAMINE2000 和 Fugene6 分 别 购 自 Invitrogen
gene6 比例进行转染 ; 转染 48 h 后进行酶活性测定。 1.4
磷酸钙共沉淀转染 细胞接种同上述。 首先制备 DNA 与 CaCl2 的复合物 , 每孔细
和 Roche 公 司 ; Dual- Glo 荧 光 素 酶 分 析 试 剂 盒 购 自 Promega 公 司 ; 余为国产分析纯试剂。
图!
"#$%&’()*+,-.!/// 和 012’3’4 转染 5’$67 细胞的酶活性比较 * !0#8’&9: 荧光素酶活性 "; !<’3#99= 荧光素酶活性
640
LETTERS IN BIOTECHNOLOGY Vol.18 No.4 Jul., 2007






图 3 LipofectAMINE2000 和 Fugene6 转染 DLD- 1 细胞的酶活性比较 A: Firefly 荧光素酶活性 ; B: 荧光素酶活性
异 *!^@K@L (,
$6"XBCD ’ 启 动 子 为 胸 苷 激 酶 ( 和 $<"BFG>@ 转 染 7UAC 细 胞 & 于 >T R 后测定 0#8’&9: 和 <’3#99= 荧光素酶活性 & 结果如图 Q % 7 种酶
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638
文章编号 : 1009- 0002(2007)04- 0638- 03
LETTERS IN BIOTECHNOLOGY Vol.18 No.4 Jul., 2007






研究报告
LipofectAMINE2000 与 Fugene6 转染细胞的效率比较
张宝 1 , 2 , 霍霞 1 , 徐锡金 1 , 齐宗利 1 , 郑谨 1 , 彭琳 1
的脂质体主要为 Invitrogene 公 司 开 发 的 LipofectAMINE2000 等 ; 非 脂 质 体 型 的 转 染 试 剂 , 以 Roche 公 司 的 Fugene6 为 代 表 ; 而 磷 酸钙共沉淀的方法是经典的基因转移的方法。 为了获得好的转染效果 , 我们 采 用 荧 光 素 酶 活 性 测 定 的 方 法 , 比较了上述 3 种转染方法。首先选择常用的 293T 细胞 , 该细 胞株生长旺盛 , 容易被转染。 Fugene6 与 LipofectAMINE2000 与
[7,8]
pGL3- TK /pGL3- En Ⅱ [ 含 萤 火 虫 ( Firefly) 荧 光 素 酶 基 因 ] 、 5 ng
质 粒 pRL- SV40 ( 含 Renilla 荧 光 素 酶 基 因 ) 与 2 μ L Lipofec-
tAMINE2000 比例进行转染 ; 6 h 后更换培养液 , 转染 48 h 后应
7
7KQ
结果
转染 7UAC 细胞的酶活性分析 分别用 "#$%&’()V+,-.7@@@#O=O97 和 012’3’W 试剂 & 将质粒
7KX
转染 ]"]BQ 细胞的酶活性分析 分 别 用 "#$%&’()V+,-.7@@@ 和 012’3’Y 试 剂 & 将 质 粒 $6"XB
CD 和 $<"BFGS@ 转 染 ]"]BQ 细 胞 & 于 ST R 后 测 定 0#8’&9: 和 <’3#99= 荧光素酶的活性 & 结果见图 X&7 种转染方法无统 计 学 差
( P<0.005 ) ; 在 HepG2 细胞中 , LipofectAMINE2000 转染组的 Firefly 和 Renilla 荧 光 素 酶 活 性 分 别 是 Fugene6 转 染 组 的 44 和
49 倍 ( P<0.001 ) ; 而在 DLD- 1 细胞中 , 两者无差别。结论 : 转染试剂 LipofectAMINE2000 和 Fugene6 对不同细胞的转染效果
用 Dual- Glo 荧光素酶分析试剂盒进行酶活性测定。
等 。 本 研 究 的 主 要 目 的 , 是 比 较 Lipofec-
1.3
Fugene6 转染
细胞接种与 LipofectAMINE2000 转染相同。12 h 后 , 每孔细
tAMINE2000 和 Fugene6 的转染效果。
胞 按 490 ng 质 粒 pGL3- TK、 5 ng 质 粒 pRL- SV40 与 2 μ L Fu-
1. 汕头大学 医学院中心实验室 , 广东省免疫病理学重点实验室 , 广东 汕头 515031P 2. 南方医科大学 生物化学教研室 , 广东 广州 510515
[ 摘要 ] 目的 : 比较 LipofectAMINE2000 与 Fugene6 转染细胞的效果。方法 : 将含有 Firefly 和 Renilla 荧光素酶基因的质粒
[ Key wor ds]
That might be needed to choose proper transfection agents depending on the type
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