动物的捉拿 不同途径给药

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药理实验

药理实验

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材:鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品:生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物:小白鼠,20~30g【实验方法】1、捉拿与固定:用右手捉住鼠尾,将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上,向后轻拉鼠尾,用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤,将小鼠置于左手掌心,以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃:将小鼠固定,口朝上,颈部拉直,右手持灌胃针,先从口角处插入口腔,再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑵腹腔注射:将小鼠固定,右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后,再刺入腹腔,缓慢注入药物。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑶皮下注射:两人合作,一人左手抓住小鼠头部,右手拉住小鼠尾巴固定小鼠,另外一人用左手提起皮肤,右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌肉注射:最好两人合作,一人固定小鼠,另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉,回抽无回血即可注入药物,一侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。

⑸静脉注射:一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定,使尾巴露出来,在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴,使血管扩张,左手拉住鼠尾,右手持注射器,从鼠尾巴末梢开始进针,注入药液。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材:大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品:10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物:小鼠,18~22g【实验方法】1、取小鼠3只,称重编号,分别放入大烧杯中,观察小鼠的正常活动,记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药:一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察小鼠的反应及活动,记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

实验一实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法

药学 基础兽医
医学 临床兽医
兽医药理学是一门实验性学科
以试验为基础,通过实验熟悉药物的作用、作用原理及应用。
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2
兽医药理学实验安排
授课老 师
郝海红
周别
6 7
实验内容
实验动物给药方法;常用药药制剂的调制 药物的配伍禁忌;药物的反射作用
程古月 8 9
水合氯醛的麻醉作用及氯丙嗪的麻醉增强作用 尼可刹米对呼吸的兴奋作用
兽医药理学实验
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1
兽医药理学的性质和任务:
兽医药理学运用生理学、生物化学、微生物学和免疫学等基础理论, 阐明药物的作用原理、主要适应症(indication)和禁忌症 (contraindication),为临床合理用药提供理论基础。
药理学是一门桥梁学科
理论基础: 生理学 生物化学 病理学 微生物学 免疫学等
尾部有四条静脉很清楚, 用四号细针头,选出较粗静脉注入。
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兔子的捉拿及给药方法
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兔子的捉拿
捉拿:右手把两耳拿在手心,并抓住颈后部皮肤, 提起家兔,然后用左手托住臀部。
固定:手术时,可将家兔固定在兔实验台上,四肢固定, 门 齿用细绳栓住,固定在实验台的铁柱上。
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为防止药液进入血管,在注射药液之前,
应回抽针栓,如无回血,则可给药;
注射完毕后,用手轻轻按摩注射部位,帮
助扩散。
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20
实验动物处理
➢ 小鼠处死(防鼠患):
一手按头,一手拉尾,咔嚓一声。
➢ 家兔处死: 空气针
试验后安排
➢ 班长安排人将动物尸体送兽医院焚烧池 ➢ 各小组清理自己的台面 ➢ 班长安排人打扫卫生

药理学实验指导

药理学实验指导

药理学实验指导(供自学助考班用)实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识;2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。

【器材】1ml、5ml、20ml注射器,大、小鼠灌胃针头,4号、6号注射针头,250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼),天平秤、砝码。

【药品】0.9%生理盐水。

【动物】小白鼠、大鼠、家兔。

【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍,食指和中指夹住左前肢,拇指压住右前肢;右手将双下肢拉直,左手无名指及小指将其压住而固定。

此法用于淋巴囊注射。

毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部,拇指和无名指小指握持双下肢,右手持刺针进行操作。

2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。

双手法:右手提起鼠尾,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,向后方轻拉,小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤,并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部,固定于手中。

单手法:小白鼠置于笼盖上,先用左手食指与拇指抓住鼠尾,手掌尺侧及小指夹住尾根部,然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。

3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人,捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠,先用右手抓住鼠尾,再用左手拇指和食指握住头部,其余手指与手掌握住背部和腹部。

不要用力过大,切勿捏其颈部,以免窒息致死。

4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大,其吃重点越分散)。

将兔提起,以左手托住其臀部,使兔呈坐位。

二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig):左手固定小鼠,右手持灌胃器,灌胃针头自口角进入口腔,紧贴上腭插入食道。

如遇阻力,将灌胃针头抽回重插,以防损伤。

常用灌胃量为0.1~0.2ml/10g。

皮下注射(ih):可用腹部、背部、腹股沟的皮下,此处皮肤比较松弛,也可由助手协助。

注药量一般为0.1~0.2ml/10g。

肌肉注射(im):一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴,另一人持连4号针头的注射器,将针头刺入后腿外侧肌肉。

动物实验操作的基本知识

动物实验操作的基本知识

动物实验操作的基本知识一、实验动物抓拿固定(一)小白鼠(mouse)右手抓住其尾,放在鼠笼铁纱网上,然后用左手拇指及食指沿其背向前抓住其颈部,并以左手的小拇指和掌部夹住其尾固定在手上(图3-1)。

取尾血及尾静脉注射时,可将mouse固定在金属或木制的固定器上。

(二)大白鼠(rat)实验者应戴帆布手套,用右手将鼠尾抓住提起,放在粗糙的台面或鼠笼上,抓住鼠尾向后轻拉,左手抓紧两耳和头颈部皮肤,余下三指紧捏鼠背部皮肤,如果rat后肢挣扎厉害,可将鼠尾放在小指和无名指之间夹住,将整个鼠固定在左手中,右手进行操作(图3-2)。

若进行手术或解剖,则应事先麻醉或处死,然后用棉线活结缚四肢,用棉线固定门齿,背卧位固定在大鼠固定板上。

需取尾血及尾静脉注射时,可将其固定在大鼠固定盒里,将鼠尾留在外面供实验操作。

(三)豚鼠(cavy)Cavy具有胆小易惊的特性,因此抓取时要求快、稳、准。

一般方法是:以右手拇指和食指夹住两前肢及头部,使整个颈胸部皆在手掌中(不要抓得太紧以免窒息),左手抓住两后肢,使腹部向上,而后进行操作(图3-3)。

(四)蛙或蟾蜍(frog or toad)捉拿方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定,以中指、无名指、小拇指压住其左腹侧和后肢,拇指和食指分别压住左,右前肢,右手进行操作(图3-4)。

在捉拿toad时,注意勿挤压其两侧耳部突起之毒腺,以免毒液射到眼中。

实验如需长时间观察,可破坏其脑和脊髓以后放在蛙板上固定进行操作。

(五)家兔(rabbit)用右手抓住其颈背部皮毛,轻提动物,再以左手托住其臀部,使家兔的体重主要落在左手掌心,然后按实验要求固定(图3-5)。

作兔耳血管注射或取血时,可用兔盒固定。

作各种手术时,可将家兔麻醉后固定在手术台上。

固定方法常采用仰卧位固定,四肢用粗棉线固定,头用兔头固定夹固定或用棉线钩住家兔门齿再固定在兔台头端铁柱上。

(六)狗(dog)犬性凶恶,能咬人,因此进行实验时第一个步骤就是要绑住犬嘴,驯服的犬绑嘴时可从侧面靠近轻轻扶摸其背部皮毛,然后用寸带迅速兜住犬的下颌,绕到上颌打一个结,在绕回下颌打第二个结,然后将寸带引至头后颌颈部打第三个结,并多系一个活结(以备麻醉后解脱)。

实验动物的捉拿和给药方法

实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1.捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起.置于鼠笼上面或其他粗糙面上,向后拉轻鼠尾,迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤,翻转鼠体,使腹部朝上,然后以无名指及小指压往鼠尾,使小鼠完全固定(实验图1).实验图1 小白鼠的捉拿法2.给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后,使口部向上,将颈部拉直,右手持灌胃器自口角插入口腔,沿上颚轻轻进入食管,如动物安静,呼吸元异常、口唇无紫绀现象,即可注入药液(实验图2).灌胃器0.1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后,右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部,以免刺伤内脏,注射量一般为0.1~O.2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前,右手持注射器,将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作,一人固定小白鼠后,另一入持注射器,将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液,注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1.捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢,无名指和小指夹住蛙的两下肢,将蛙固定于手中。

2.给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差,被针头刺破后,针眼不易闭合会便药波外溢,故注射针头必须通过一层隔膜,再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时,针头应自大腿上端刺人,经过大腿肌层入腹壁肌层.再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1.Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1.捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起,以右手托住其臀部,使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作,由一人固定兔身,另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开,并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

实验动物的捉拿和给药方法

实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1.捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起.置于鼠笼上面或其他粗糙面上,向后拉轻鼠尾,迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤,翻转鼠体,使腹部朝上,然后以无名指及小指压往鼠尾,使小鼠完全固定(实验图1).实验图1 小白鼠的捉拿法2.给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后,使口部向上,将颈部拉直,右手持灌胃器自口角插入口腔,沿上颚轻轻进入食管,如动物安静,呼吸元异常、口唇无紫绀现象,即可注入药液(实验图2).灌胃器0.1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后,右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部,以免刺伤内脏,注射量一般为0.1~O.2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前,右手持注射器,将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作,一人固定小白鼠后,另一入持注射器,将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液,注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1.捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢,无名指和小指夹住蛙的两下肢,将蛙固定于手中。

2.给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差,被针头刺破后,针眼不易闭合会便药波外溢,故注射针头必须通过一层隔膜,再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时,针头应自大腿上端刺人,经过大腿肌层入腹壁肌层.再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1.Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1.捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起,以右手托住其臀部,使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作,由一人固定兔身,另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开,并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

药理实验

药理实验

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材:鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品:生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物:小白鼠,20~30g【实验方法】1、捉拿与固定:用右手捉住鼠尾,将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上,向后轻拉鼠尾,用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤,将小鼠置于左手掌心,以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃:将小鼠固定,口朝上,颈部拉直,右手持灌胃针,先从口角处插入口腔,再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量。

⑵腹腔注射:将小鼠固定,右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后,再刺入腹腔,缓慢注入药物。

一般给药剂量。

⑶皮下注射:两人合作,一人左手抓住小鼠头部,右手拉住小鼠尾巴固定小鼠,另外一人用左手提起皮肤,右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为肌肉注射:最好两人合作,一人固定小鼠,另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉,回抽无回血即可注入药物,一侧给药剂量为。

⑸静脉注射:一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定,使尾巴露出来,在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴,使血管扩张,左手拉住鼠尾,右手持注射器,从鼠尾巴末梢开始进针,注入药液。

一般给药剂量为【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材:大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品:10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物:小鼠,18~22g【实验方法】1、取小鼠3只,称重编号,分别放入大烧杯中,观察小鼠的正常活动,记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药:一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液10g3、观察小鼠的反应及活动,记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

4、当第三只小鼠出现垂头,俯卧时,立即静脉缓慢注射5%氯化钙溶液,直至恢复站立。

药理实验

药理实验

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材:鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品:生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物:小白鼠,20~30g【实验方法】1、捉拿与固定:用右手捉住鼠尾,将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上,向后轻拉鼠尾,用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤,将小鼠置于左手掌心,以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃:将小鼠固定,口朝上,颈部拉直,右手持灌胃针,先从口角处插入口腔,再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑵腹腔注射:将小鼠固定,右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后,再刺入腹腔,缓慢注入药物。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑶皮下注射:两人合作,一人左手抓住小鼠头部,右手拉住小鼠尾巴固定小鼠,另外一人用左手提起皮肤,右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌肉注射:最好两人合作,一人固定小鼠,另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉,回抽无回血即可注入药物,一侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。

⑸静脉注射:一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定,使尾巴露出来,在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴,使血管扩张,左手拉住鼠尾,右手持注射器,从鼠尾巴末梢开始进针,注入药液。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材:大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品:10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物:小鼠,18~22g【实验方法】1、取小鼠3只,称重编号,分别放入大烧杯中,观察小鼠的正常活动,记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药:一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察小鼠的反应及活动,记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

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2
主要实验材料
实验动物: 实验动物:昆明鼠
实验药物: 戊巴比妥钠 实验药物:2%戊巴比妥钠 实验器材:鼠笼,注射器,苦味酸, 实验器材:鼠笼,注射器,苦味酸,固定器
3
主要实验过程
称重、分组 称重、
(0.3ml/10g) )
静 脉 注 射
腹 腔 注 射
皮 下 注 射
肌 肉 注 射
灌 胃 给 药
小鼠翻正反射消失时间 小鼠翻正反射消失时间
•灌胃给药
注意事项: 注意事项:
1.用左手拇指和食指抓住鼠两耳 1.用左手拇指和食指抓住鼠两耳 和头部皮肤, 和头部皮肤,其他三指抓住背部 皮肤,将鼠抓持在手掌内, 皮肤,将鼠抓持在手掌内,固定 好动物,头部和颈部保持很平, 好动物,头部和颈部保持很平, 右手取注射器进行灌胃。 右手取注射器进行灌胃。 2.灌时针头沿鼠口角通过食管进 2.灌时针头沿鼠口角通过食管进 入胃内。灌时如很通畅, 入胃内。灌时如很通畅,则表示 针头已进入胃内; 针头已进入胃内;如动物有呕吐 动物或强烈挣扎, 动物或强烈挣扎,必须拔出后按 上述方法重新操作。 上述方法重新操作。决不可进针 不顺硬向里插。 不顺硬向里插。
2% 实验药物及器材: 实验药物及器材: pentobarbital sodium, Mice boxes, balance, needles
实验方法: 实验方法: 实验结果: 实验结果:
1. 2. 3.
4.
Take 6 mice, divide them into 2 groups equally, then weight and number them one by one. Observe the behavior and the righting reflex of mice, then record in the table. Administrate 0.2% pentobarbital sodium following the dose 0.6-0.8 mg/10g (0.3-0.4ml/10g) by intravenous, intraperitoneal, intramuscular, subcutaneous, and oral injection, respectively. The drug is given to each group mice just by one route. After administration, put them into big beakers, record the time immediately, observe their behavior and the righting reflex, and then fill the data in the table.
5
实验注意事项
1. 每组选择两种注射途径进行实验; 每组选择两种注射途径进行实验; 2. 注意基本给药途径的正确操作,避免被咬伤; 注意基本给药途径的正确操作,避免被咬伤; 3. 注意小鼠翻正反射消失时间判定(>30 s); 注意小鼠翻正反射消失时间判定(> (> ); 4. 客观真实的记录实验数据。 客观真实的记录实验数据。
讨论: 讨论 小结: 小结
实验一
动物的捉拿 不同途径给药对小 1)掌握小鼠的捉拿及给药的基本方法。 )掌握小鼠的捉拿及给药的基本方法。 2)比较不同给药途径药物起效的时间快慢。 )比较不同给药途径药物起效的时间快慢。 实验原理: 实验原理:不同的给药途径的药物起效时间不 相同。 相同。
药理学实验课
实验课程学习目的
巩固药理学基本理论 巩固药理学基本理论 学习基本的实验方法 学习基本的实验方法 培养实事求是 培养实事求是的学习作风 实事求是的学习作风 培养动手能力、科研能力 培养动手能力、科研能力 动手能力 A B C D
实验课程简介
实验内容 动物的捉拿 不同途径给药 ED50的测定 二房室模型讲课及实验 有机磷中毒及解救讲课实验 学时分配 4 4 4 4 4 3 4 4 4 4 4 3 4 4
问题与思考

仔细观察记录实验 结果, 结果,结合药理学 总论知识思考, 总论知识思考,何 种给药途径起效最 为什么? 快。为什么? 影响药物起效的 因素有哪些? 因素有哪些? 请分析本次实验 中,那些因素可 影响实验结果。 影响实验结果。
南开大学医学院药理学实验报告
姓名_____学号_____ ____班 姓名_____学号_____ 级____班____ 组____ 日期 _____成绩____ _____成绩____
实验题目: 实验题目: 实验目的: 实验目的: 实验动物: 实验动物:
Handing Animals and Different Routes of administration To observe the effects of pentobarbital sodium on mice by different routes of administration Mice, 18-22g
• 肌肉注射
注意事项: 注意事项:
选择小鼠的大腿外侧肌肉 进行注射(肌肉丰满、 进行注射(肌肉丰满、内 无大血管通过),注射时, ),注射时 无大血管通过),注射时, 针头迅速刺入肌肉, 针头迅速刺入肌肉,回抽 无回血即可注入。 无回血即可注入。
• 皮下注射
注意事项: 注意事项:
取背部及后腿皮下, 取背部及后腿皮下,注射 时用左手拇指及食指轻轻 捏起皮肤, 捏起皮肤,右手持注射器 将针头刺入, 将针头刺入,固定后即进 行注射。 行注射。
4
实验基本技能
注意事项: 注意事项:
右手提起鼠尾, 右手提起鼠尾, 左手拇 指和食指捏住双耳及头 部皮肤,无名指、 部皮肤,无名指、小指 和掌心夹其背部皮肤及 尾部, 尾部,便可将小鼠完全固 如图定。如图-1。 单手捉持, 单手捉持,用拇指和食 指抓住小鼠尾巴, 指抓住小鼠尾巴,用小 指、无名指和手掌压住 尾根部, 尾根部,再用腾出的拇 指、食指及中指抓住鼠 双耳及头部皮肤而固定 。 如图如图-2。
•腹腔注射
注意事项: 注意事项:
1、针头刺入部位不宜太接近 上腹部或太深,以免刺破内脏。 上腹部或太深,以免刺破内脏。 针头与腹腔的角度不宜太小, 针头与腹腔的角度不宜太小, 避免刺入皮下。 避免刺入皮下。 使用针头不宜太粗, 2、使用针头不宜太粗,避免 药液注射后从注射孔流出。 药液注射后从注射孔流出。注 射后可用棉球按一下注射部位。 射后可用棉球按一下注射部位。
共 54 学 时
抗炎作用实验及组胺药讲课 抗炎作用实验及组胺药讲课 药物对离体蛙心的影响 氯丙嗪对大鼠体温的影响 药物抗惊厥和药物镇痛实验 中枢兴奋药讲课 缩宫药讲课 平喘药讲课 利尿药实验 药物对离体平滑肌受体作用 链霉素实验 实验考试 病例讨论
实验课程学习要求
实验后 实验中 实验前 1.预习实验指导, 1.预习实验指导, 预习实验指导 明确实验目的和要 求,充分了解实验 方法 2.进入实验室 进入实验室, 2.进入实验室,必 须穿白大衣. 须穿白大衣. 白大衣 3.检查 检查实验器材 3.检查实验器材 1.根据实验内容进 1.根据实验内容进 行小组内分工 行小组内分工 2.严格 准确地按 严格、 2.严格、准确地按 照指导中的实验方 照指导中的实验方 法进行实验操作 实验操作。 法进行实验操作。 3.仔细 真实的记 仔细、 3.仔细、真实的记 实验结果。 录实验结果。 1.死亡动物放在 1.死亡动物放在 死亡动物 指定地点; 指定地点;存活 放入笼内。 动物放入笼内 动物放入笼内。 2.将器材洗净擦 2.将器材洗净擦 干,放回原处 3.每小组轮流负 3.每小组轮流负 责搞好实验室内 卫生 。
• 小鼠固定方法
图1
图2
• 小鼠的标记
在小鼠身上逆被毛 方向,用卷有纱布的 玻璃棒或笔,涂上适 当的苦味酸,标记 位置如左图。
• 静脉注射
注意事项: 注意事项:
将小鼠固定于固定器内, 1、将小鼠固定于固定器内,将 全部的尾巴露出外面; 全部的尾巴露出外面; 75%乙醇擦尾部 乙醇擦尾部; 2、用75%乙醇擦尾部; 选择最为充盈的血管, 3、选择最为充盈的血管,用左 手的拇指和示指捏住末端, 手的拇指和示指捏住末端,右手 持注射器以30℃角进行静脉穿刺。 30℃角进行静脉穿刺 持注射器以30℃角进行静脉穿刺。 注射完毕后,拨出针头, 4、注射完毕后,拨出针头,按 住注射部位止血。 住注射部位止血。
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