组织切片制备的基本要求
细胞生物学实验⑤植物组织切片的制备
二甲苯(5min)→二甲苯(5min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→100%乙醇(1min)→95%乙醇(1min)→90%乙醇(1min)→80%乙醇(1min)→70%乙醇(1min)→50%乙醇(1min)→番红染色(40min)→50%乙醇(1min)→70%乙醇(1min)→80%乙醇(1min)→90%乙醇(1min)→95%乙醇(1min)→
切片染色后经封藏可制作成永久制片。
实验步骤：
1)取材、固定与抽气：
本实验用蚕豆根、向日葵茎、夹竹桃叶为材料，制作横切片观察其内部结构。用刀片切取所需根和茎的部位3-4㎜为一段，叶应取叶片中部主脉约4㎜宽的叶片。小组各取5-6块，立即用FAA固定液固定。固定过程中必须进行抽气。
2)洗涤与保存：
教师代做。
植物组织切片的制备
生物122xx实验目的：
通过石蜡切片法了解和掌握动物和植物材料切片制作的基本原理和一般方法。
实验原理：
进行组织学和细胞学研究，必须把新鲜的组织或器官制作成切片，以便在显微镜下观察。
制作生物制片要求尽量保持细胞结构的完整性和真实性。
石蜡切片法是一种较常用的制片法。一般操作步骤是：
取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→贴片→烤片→脱蜡→复水→染色→脱水→透明→封藏。其原理是将样品固定后，包埋于石蜡中，使其具有一定的硬度，便于在石蜡切片机上切片成足够薄的切片。
0.5%固绿(1min)→95%乙醇(1min)→100%乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯；乙醇(1min)→二甲苯(1min)→二甲苯(1min)。
10)封片：
将切片从二甲苯中取出，用滤纸擦去材料周围的二甲苯。在材料中央滴加一滴加拿大树胶，然后用镊子轻轻加盖盖玻片。
组织切片观察实验报告
组织切片观察实验报告组织切片观察实验报告引言：细胞是构成生物体的基本单位，而细胞的结构对于理解生物体的功能和生命活动至关重要。
组织切片观察实验是一种常用的方法，通过切割和染色组织样本，使其能够在显微镜下观察和研究。
本实验旨在通过组织切片观察，深入了解细胞的结构和功能。
实验步骤：1. 样本准备：选择适当的组织样本，如植物叶片、动物肌肉或神经组织等。
将样本固定在适当的溶液中，如福尔马林或乙醇中，以保持其形态和结构。
2. 切片制备：使用显微切片机或手工切片工具，将样本切成薄片。
切片时要注意切割的角度和切片的厚度，以确保观察到的细胞结构清晰可见。
3. 染色处理：将切片放入染色剂中，如伊红染色剂或伊红-苏木精染色剂，以增强细胞的对比度和可见度。
染色时间和浓度应根据样本类型和需要进行调整。
4. 干燥和封片：将染色后的切片用纸巾轻轻吸干，并放入显微镜玻片上。
然后，将一滴透明胶水滴在切片上，用另一块玻片轻轻压平，使切片牢固地固定在玻片上。
实验结果：在显微镜下观察组织切片，可以看到不同类型的细胞和细胞结构。
例如，在植物叶片切片中，可以清晰地观察到叶肉细胞、气孔细胞和导管细胞等。
叶肉细胞通常呈长方形或多边形，具有细胞壁和细胞质。
气孔细胞则呈现出特殊的形状，具有细胞壁和气孔孔口。
导管细胞则形成了植物的维管束系统，具有管状结构和细胞壁。
在动物组织切片中，可以观察到肌肉细胞、神经细胞和上皮细胞等。
肌肉细胞通常呈长条状，具有明显的纵横纹理。
神经细胞则具有分枝突起和轴突，用于传递信号和信息。
上皮细胞则形成了动物体表的保护层，具有紧密排列的结构和细胞膜。
讨论：组织切片观察实验为我们提供了深入了解细胞结构和功能的机会。
通过观察不同类型的细胞和细胞结构，我们可以更好地理解生物体的组织构成和生命活动。
例如，通过观察植物叶片切片，我们可以了解到叶肉细胞的负责光合作用和物质储存的功能，气孔细胞的调节气体交换的作用，以及导管细胞的输送水分和养分的功能。
组织病理切片步骤
组织病理切片步骤1. 采集组织样本在进行组织病理切片前，首先需要采集患者的组织样本。
通常，医生会通过手术或活检等方式获得组织样本。
为了确保样本的准确性和完整性，医生会根据患者的情况进行选择。
2. 固定组织样本采集到的组织样本需要进行固定处理，以保持其形态结构和细胞组织的完整性。
常用的固定剂包括福尔马林等。
固定处理的时间和方法要根据不同的组织类型和病理分析的需要进行调整。
3. 预处理组织样本在进行切片之前，需要对固定的组织样本进行预处理。
这包括去除固定剂、脱水、清洗和浸泡等步骤。
通过这些预处理，可以将组织样本从固定剂中解除，并使其逐渐适应后续处理的要求。
4. 切片制备切片制备是组织病理学中非常重要的步骤。
在这一步骤中，医生会将预处理的组织样本切割成非常薄的切片。
常用的切片工具是显微切片机。
切片的厚度一般在4-6微米之间，以确保组织结构的清晰可见。
5. 染色切片制备完成后，需要对切片进行染色，以突显组织结构和细胞组分。
常用的染色方法包括血液学染色、组织学染色和免疫组织化学染色等。
不同的染色方法可以提供不同的信息，有助于医生做出准确的病理诊断。
6. 镜检染色完成后，医生会使用显微镜对染色的切片进行观察和分析。
通过观察组织结构、细胞形态和染色结果，医生可以了解组织的病理变化，并做出相应的诊断。
镜检是组织病理学中最核心的步骤之一。
7. 病理报告根据对切片的镜检结果，医生会撰写病理报告。
病理报告中包括对组织病变的描述、病变类型的确定以及可能的诊断建议等内容。
病理报告是医生向临床医生提供病理诊断的重要依据，也是指导治疗和预后评估的重要参考。
通过以上的步骤，组织病理切片可以提供丰富的病理学信息，为医生做出准确的诊断和治疗决策提供重要依据。
这一过程需要医生的精确操作和细致观察，以确保结果的准确性和可靠性。
对于患者来说，组织病理切片是了解疾病发展和制定个体化治疗方案的重要工具。
组织切片制作方法
组织切片制作方法
组织切片是制备病理学标本的主要方法之一，以下是其制作步骤：
1. 收集组织样本，并在一定时间内将其放入固定液中进行固定。
2. 将组织样本从水中逐渐转移到酒精中进行脱水。
3. 将样本置于包埋剂中，使其逐渐转移到蜡块中。
4. 用切片机将蜡块切割成极薄的切片，并用染色剂染色，以便在显微镜下进行观察和分析。
5. 将切片封入载玻片中。
此外，为了确保切片的质量，需要注意以下几点：
1. 载玻片应干净无油，如有云雾斑点，则不能使用。
2. 切片制作过程中，应将预冷的蜡块固定在石蜡切片机上，使蜡块的切面与刀口成平行方向。
刀的倾斜度通常为15℃，转动轮转推进器，调节切片厚度为6μm，切成厚度均匀的切片。
3. 切片贴附后，放在空气中稍晾干，然后进行烤片。
烤片的温度以蜡溶解为准，也可以放置60℃烘箱内烘烤过夜。
血块组织、皮肤组织须及时烤片，但脑组织、脂肪组织待完全晾干后才能进行，这样可防止产生气泡而影响染色。
以上信息仅供参考，建议咨询专业人士获取更准确的信息。
病理组织切片制作技术
病理组织切片制作技术病理组织切片制作技术病理组织切片常用的制作方法有三种。
即石蜡切片法，冰冻切片法和火棉胶切片法。
以石蜡切片法为代表，切片的基本制作过程是：组织取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→组织包埋→组织切片→展片附贴→切片脱蜡→染色→脱水→染片透明→封固。
以上基本过程是互相联系的，任何一环节出现问题，都将使整个切片制作归于失败。
因此应细致、耐心、认真负责，并事先做好计划安排。
一、取材采取病料，要刀剪锐利，剪切时不可挤压，扯拉病料，以防人为损伤。
切取的工具要清洁。
采取病料越新鲜越好，一般不超过死后24小时。
应选择病变部与可疑病变部切取，切取时要由表及里，有浅入深并包括周围正常组织一部分。
特殊病料应根据器官的结构特点切取。
管状，囊状和皮肤组织应注意垂直切取（横切）。
带有薄膜的组织，要防止切时薄膜分离和脱落。
切取组织块大小，以1.5×1.5×0.3厘米为宜，最厚不宜超过0.5厘米。
组织块病变一面应平整光滑，另一面可不平整，以便包埋时辨认。
切取后，放入事先准备好的装有固定液的磨口玻璃广口瓶中，并做好标记。
二、固定固定的目的是迅速将组织细胞杀死，使细胞中的蛋白质，糖，脂肪等凝固，从而保持与活组织相似的结构状态。
材料取下后，应迅速固定。
固定液数量应为病理组织块的5到20倍。
由于一般把组织块浸入固定液后数小时，固定液渗入组织液的深度只达2到3厘米。
因此，可以放置冰箱内固定，使组织内酶失去作用，细菌也能停止滋生。
最常用的固定液是10%的福尔马林溶液：使用时，用40%的甲醛饱和水溶液10毫升，加水90毫升配成。
三、冲洗固定后的组织块，应将固定液洗去。
一般均用流水（自来水）冲洗12到24小时左右。
及时冲洗尚有停止固定的作用，防止固定过度，有利于制片染色。
冲洗时如不方便用流水冲洗，也可用较大容器盛装水浸洗，每隔相当时间换水一次。
整个浸洗时间比流水冲洗应稍长一些。
酒精固定的组织材料不需冲洗。
制作动物组织切片时取材的注意事项
制作动物组织切片时取材的注意事项：一、选择合适的动物组织1. 选择健康的动物组织作为样本，避免患有重大疾病或病变的动物组织，以确保实验结果的准确性和可靠性。
2. 对于需要比较不同种类动物组织的研究，应当注意选择相似的芳龄、性莂和生理状态的动物组织进行比对。
二、采集动物组织的方式3. 在动物的麻醉状态下进行动物组织的采集，避免造成动物疼痛和压力，同时也有利于维持组织的正常形态和结构。
4. 采集后的动物组织应尽快放入适当的缓冲液中冷藏或固定，避免组织的变性和损坏。
三、处理采集的动物组织5. 对于需要切片的组织，应选择合适的切片工具和方法，以确保切片的质量和准确性。
常见的切片工具包括冰冻微切机和甲醇冻切机。
6. 在切片过程中，应确保切片的厚度和角度是一致的，避免因切片不均匀而影响后续的实验结果。
四、保存和保存动物组织切片7. 切片完成后，应妥善保存切片样本，避免氧化和水分蒸发导致切片的变性和变质。
8. 对于长期保存的切片样本，可以采用冷冻保存或真空封存的方式，以延长切片的使用寿命和稳定性。
五、实验前的样本处理9. 在进行实验前，应对切片样本进行必要的处理，比如染色、去脂、抗体标记等，以便于观察和分析组织结构和功能。
六、注意实验的条件和操作10. 在进行实验时，应注意保持实验室的清洁和卫生，确保实验操作的准确性和可重复性。
11. 应注意实验条件的控制，比如温度、湿度、光照等，以确保实验结果的准确性和可靠性。
七、合理记录实验过程和结果12. 在实验过程中，应详细记录实验条件、操作步骤和结果，以便于后续的数据分析和结论的提出。
13. 对于实验结果的分析和结论，应注意客观和科学的态度，避免主观偏见和不严谨的推断。
总结：在制作动物组织切片时，选择合适的动物组织，采集、处理和保存动物组织，注意实验的条件和操作，以及合理记录实验过程和结果，是确保实验结果准确可靠的关键步骤。
也应尊重动物的权益和保护动物的福祉，在实验过程中遵守相关的伦理规范和法律法规。
组织病理切片制备流程
组织病理切片制备流程组织病理切片制备流程是临床病理诊断的基础。
下面将详细介绍组织病理切片制备流程。
1. 采集组织样本首先需要采集病人的组织样本。
组织样本可以来自手术标本、活检标本或尸检标本等来源。
在采集样本时，需要严格遵守无菌操作的原则，以避免样本受到外部污染。
2. 固定组织样本采集的组织样本需进行一定的处理，以保持其组织结构和形态不变。
常用的固定剂有福尔马林、甲醛、丙酮等。
其中福尔马林是最常用的固定剂，能够快速稳定组织，但是对人体危害较大，需要注意安全操作。
3. 制备组织样本固定后的组织样本需要进行切片处理。
首先，需要将组织样本浸泡在甲醛液中，并使用匀浆器进行均匀处理。
接着，将固定后的样本打蜡，然后使用切片机将样本切成薄片。
在切片的过程中，需要注意操作方法，以保持切片的质量。
4. 染色处理切片后需要进行染色处理，使细胞结构更加清晰明了。
常用的染色方法有血液学染色、肿瘤学染色、免疫组化染色等。
其中，免疫组化染色方法能够更明确地确定病理诊断。
5. 镜检染色后的切片需要进行镜检。
首先，需要将切片放在显微镜下观察，并进行病理学分析。
医生需要根据组织的形态、排列方式和染色效果等来进行分析和诊断。
6. 诊断报告根据镜检结果，医生需要撰写诊断报告。
诊断报告应准确地描述组织病变的程度、性质和位置等信息，并建议相应的治疗方案。
通过上述组织病理切片制备流程的介绍，可以看出，组织病理切片制备是一项复杂而严谨的工作。
医生和技术人员需要严格遵守操作规程，从而确保切片质量和诊断准确性。
组织病理切片制备
组织病理切片制备
组织病理切片的制作，首先医生取下组织病理标本，放在10%的中性福尔马林里进行固定，固定完之后标本送到病理科。
小标本需要固定4-6个小时，大标本需要固定6-12个小时，固定完之后由病理医生进行取材。
所谓的取材指把标本取出放在标本盒里，置于全自动脱水机中脱水16个小时处理标本。
处理过程包括组织进行固定、透明、脱水、浸蜡，处理完16个小时之后，病理技师把标本拿到包埋机上进行包埋，把病变组织放在蜡里，包埋成病理蜡块。
蜡块包埋完之后，病理技师把蜡块放在切片机上进行切片，切片大约需要切3-4μm的切片。
切完片子需要捞在病理玻片上，玻片再进行脱蜡，放在二甲苯中需要透明，之后放在全自动染色机中进行染色，再放在封片机里进行封片，这样才能制成病理切片，这个过程一般需要2-3天的时间。
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组织切片制备的基本要求
(一)组织制片过程中，应确保切片号与蜡块号一致。
(二)制片工作一般应在取材后2个工作日内完成（不含需要脱钙、脱脂等特殊处理的标本）。
(三)制片完成后，技术人员应检查制片质量，并加贴标有本病理科病理号的标签。
常规石蜡-HE染色片的优良率应≥95%，优秀率不<35％。
不合格切片应立即重做。
(四)制片过程发生意外情况时，有关技术人员和技术室负责人应及时向科主任报告，并积极设法予以补救。
(五)制片完成后，技术人员应将所制切片与其相应的活检记录单／取材工作单等进行认真核对，确认无误后，将切片连同相关的活检申请单／活检记录单／取材工作单等一并移交给病理医师。
双方经核对无误后，办理移交签字手续。
具体交接方法由各医院病理科自行制订。