微生物限度方法学验证
微生物限度和无菌检查法验证
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方法验证的步骤与内容 1、制备验证试验用菌液 按药典无菌检查法中培养基灵敏度检查项中试验用 菌液的制备方法将规定需用的试验菌分别制成每毫 升中含10～100个菌（CFU）的供试菌液。 2、样品的前处理方法 样品的前处理方法是验证试验的一部分，需证明所 用的处理方法对各试验菌的生长无影响。 根据供试品的性状，选用以下适宜的方法，或几种 方法联合使用： 溶解：验证所用溶液、助溶剂和水浴助溶温度对微 生物的生长无影响。
7
乳化：验证所用乳化剂和水浴助溶温度的有效性、 使用量及对微生物的生长无影响。 破乳：验证所用破乳剂的有效性、使用量及对微生 物的生长无影响。 萃取：验证有机相选择的合理性、有效性及对微生 物的生长无影响。 稀释：验证降低供试品相对抑菌浓度的有效稀释倍 数。 离心：验证所用转速、时间和微生物的分布情况。 应说明采取某种前处理方法的原因，如样品不需要 特别的前处理就能制成均匀的供试液，这一步可以 省掉，直接进入确定样品有无抑菌性的步骤。
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选择适当的方法消除或有效降低供试品的抑菌性 根据供试品的特性选择药典规定的消除其抑菌性的 方法（一种或几种方法联合），或根据药物的化学 特性，寻找出其他合理、有效的方法，特别是有效 的中和剂；并通过模拟试验（验证试验）对消除或 降低抑菌性的效果进行检验。 无菌检查可采用：①薄膜过滤法；②中和法（目前 药典仅收载β-内酰胺酶处理法）。 ①薄膜过滤法适用于液体供试品和可溶于水的固体 供试品（只要许可，应首先采用）。验证的重点是 确定滤膜的适用性、确定冲洗的方法和冲洗液的用 量。
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方法验证中应注意的问题与评价要求 1、验证试验的完整性 验证试验的完整性与方法的科学性密切相关，验 证工作不完整，就不能全面体现供试品和试验过 程对微生物的影响情况，则很可能影响或干扰对 最终试验结果的判断。故应按照中国药典2005年 版的要求进行方法验证。特别是对某些具有抑菌 性的供试品，需采取适当的方法消除或有效降低 供试品的抑菌性。在对供试品进行特殊处理时， 既要考察供试品的抑菌性，还要考察在供试液制 备过程中微生物受影响的程度（稀释剂对照组） 。
无菌检查微生物限度检查方法学验证实例
供试液制备：取样品10瓶分别加0.1%蛋
白胨溶液30 ml溶解后，过滤。
7.活菌计数
活菌计数结果见表1。
10－4稀释
10－5稀释
10－7稀释
试验次数
1
2
1
21Βιβλιοθήκη 2金黄色葡萄球菌56
60
枯草芽孢杆菌
77
79
白色念珠菌
86
70
黑曲霉菌
80
76
铜绿假单胞菌
47
50
方法验证
直接接种法：取样品12支，分别接种8支硫乙醇酸盐和4支霉菌液体培养基2ml/支后，再按要求加入相应的阳性菌液（30-100个/ml），置规定温度培养3-5天，逐日观察结果。
仪器和滤器：HTY-2000A集菌仪，全封闭无菌试验过滤培养器（批号20050105）北京牛牛基因有限公司。
01
方法：中国药典2005年版无菌检查的验证实验
02
操作方法 菌液制备： 取金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、大肠埃希菌、铜绿假单胞菌的新鲜培养物少许接种至营养肉汤培养基中, 生孢梭菌的新鲜培养物少许接种至硫乙醇酸盐流体培养基中, 32.5±2.5℃培养18～24小时；
培养：硫乙醇酸盐流体培养基桶30-35℃培养；真菌培养基桶23-28℃培养。观察结果。
结果 细菌和真菌数计数结果分别见表1和表2。
表1 细菌数计数 表2 真菌数计数结果
*
菌 种
大肠埃希菌
金黄色葡萄球菌
枯草芽孢杆菌
铜绿假单胞菌
生孢梭菌
计数(CFU)
22
26
36
39
62
66
58
54
45、 23
128、108
微生物限度方法学验证
微生物限度检查方法学验证一、检验方法依据微生物计数法（中国药典2015年版四部1105）；控制菌检查法（中国药典2015年版四部1106）；非无菌药品微生物限度标准（中国药典2015年版四部1107）；抑菌效力检查法（中国药典2015年版四部1121）检查。
表4试剂稀释液：（1）pH6.8取，摇匀，既得。
（2）0.9%（3）0.05用。
（420ml徐徐滴入。
1细菌、霉菌、酵母菌接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基中，培养24小时；接种白色念珠菌的新鲜培养物至改良马丁培养基上，培养48小时。
上述培养物用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1ml含菌数为50～100cfu的菌悬液备用。
接种黑曲霉的新鲜培养物至改良马丁琼脂斜面培养基上，培养7天，加入5ml含0.05％（ml/ml）聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱，然后吸出孢子悬液（用带有无菌棉花的能过滤菌丝的无菌毛细吸管）用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1ml含孢子数50～100cfu的孢子悬液。
菌液制备后若在室温下放置，应在2小时内使用，若保存在2～8℃可在24小时内使用。
2控制菌接种大肠埃希菌、乙型副伤寒沙门菌、金黄色葡萄球菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基中，培养24小时。
用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1ml含菌数为10～100cfu的菌悬液。
菌悬液在室温下放置应在122.130～35℃培养48小时，计数；取白色念珠菌、黑曲霉1ml(内含菌约50～100cfu)，注入无菌平皿中（取用黑曲霉时应注意自身安全），立即倾注玫瑰红钠琼脂培养基，每株试验菌平行制备2个平皿，混匀，凝固，置23～28℃培养72小时，计数。
同时，用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验，作为对照。
其大小、形态应与对照培养基一致，且数量应不小于对照培养基的70%。
细菌、霉菌及酵母菌培养基适用性检查证明此批次培养基可以准确的检测出相应微生物情况。
版药典微生物限度检查方法验证方案
版药典微生物限度检查方法验证方案验证微生物限度检查方法的方案一、实验目的：验证药典中的微生物限度检查方法的准确性、可靠性和可行性。
二、实验材料：1.药典中规定的微生物限度检查方法；2.待验证的药品样品；3.适用的培养基和培养条件；4.培养基的质量控制菌种。
三、实验步骤：1.制备适用的培养基：按照药典中规定的方法和成分制备适用的培养基，并进行批次记录。
2.准备质量控制菌种：3.制备菌液悬液：从购买的质量控制菌种中，挑取一株菌种进行连续传代培养至活性最佳的生长阶段。
然后制备菌液悬液，以备后续试验使用。
4.扩大悬液应用范围：从第3步得到的菌液悬液中，取适量接种于适用培养基上，培养出代表性的细菌菌液悬液。
然后，通过菌液的光学检测、显微镜检查和菌落计数，确定菌液的细菌浓度。
5.验证方法的准确性：将待验证的药品样品加入培养基，根据药典中的方法将培养基分成不少于3组。
每组培养基中分别加入一定量的菌液悬液，并在药典规定的温度和时间下培养。
同时，设置对照组，只加入菌液悬液和培养基。
6.菌落计数：取适量的培养基样品，分别进行菌落计数，并根据培养基的数量、培养基总菌落数、对照组的菌落数等数据，计算菌落形成单位。
7.验证方法的可靠性：将待验证的药品样品按照药典中的方法进行连续验证，至少重复3次。
然后，对比不同验证结果的一致性和稳定性，评估方法的可靠性。
8.验证方法的可行性：根据实际的样品情况和验证结果，评估方法在操作上和技术上的可行性。
如，是否存在样品的特殊要求，检测方法是否能满足检测要求等。
四、数据处理与分析：根据实验结果的菌落计数和验证的次数，进行数据处理和统计分析。
评估验证结果的一致性、可靠性和可行性。
五、结论：根据实验结果和数据分析，得出关于药典中微生物限度检查方法的准确性、可靠性和可行性的结论。
如果验证结果与药典一致，说明方法可靠并可以使用。
如果验证结果与药典不一致，需要进一步分析原因和进行修正或优化。
微生物限度方法学验证方案
微生物限度方法学验证方案1.实验目的：本实验的目的是确定产品中大肠杆菌的数量，以评估其微生物污染程度，并验证产品是否符合相关规定的微生物限度标准。
2.实验材料和仪器：-试样：待测试的产品样品（如药品、食品等）-培养基：亚洲太平洋社会协调委员会（APHA）液体培养基或平板培养基-培养器具和耗材：试管、平板、无菌纱布、无菌拔火棉、无菌吸管、无菌移液器、无菌塑料培养瓶等-仪器设备：恒温箱、培养箱、显微镜等3.实验步骤：3.1样品制备：将待测试产品样品均匀涂布于无菌培养基平板上，根据需要，将不同稀释度的样品分别涂布于多个平板上。
3.2培养：将涂布好样品的平板放入恒温箱或培养箱中，在适当的温度（通常为37°C）下培养一定时间（通常为24小时）。
在培养的过程中注意保持无菌环境。
3.3平板计数：在培养完成后，检查每个平板上的菌落形成情况。
根据实验需要，可以选择不同的方法进行菌落计数。
常见的方法有手工计数和自动计数仪器。
例如，使用显微镜进行手工计数，或使用自动计数仪器进行电子计数。
3.4数据处理：根据菌落计数结果计算大肠杆菌的数量，并将结果与相关的微生物限度标准进行比较。
如果实验结果符合标准，则产品可被视为合格；如果结果不符合标准，需要采取相应的控制措施，如重新调整产品配方、改变生产工艺等。
4.实验注意事项：-所有试验操作都必须在无菌环境中进行，以避免结果被外源性微生物污染。
-使用符合相关质量标准的试剂和培养基。
-实验前应进行适当的预试验，以确定最佳的稀释度和培养条件。
-大肠杆菌计数要根据不同的产品、数量和国家的相关标准来确定。
-实验结果的准确性和可靠性需要重复试验和验证。
通过以上实验步骤和注意事项，可以进行微生物限度方法学验证，确定产品中大肠杆菌的数量，并评估其微生物污染情况。
这个验证方案可以用于药品、食品和其他产品的质量控制和安全评估。
微生物限度检验方法验证__概述说明
微生物限度检验方法验证概述说明1. 引言1.1 概述微生物限度检验方法验证是一项重要的实验技术，用于评估和确认微生物对产品的影响程度和存在情况。
它可以帮助我们了解产品中是否存在有害微生物，并确保产品在使用过程中的安全性。
本文旨在介绍微生物限度检验方法验证的概念、重要性以及一般流程，并详细介绍常见的验证技术及其特点。
1.2 文章结构本文将分为五个部分进行阐述。
首先，在引言部分可以了解到微生物限度检验方法验证的概述、目的和文章结构。
接下来，在第二部分中探讨微生物限度检验方法验证的重要性，包括其背景与意义、验证方法的必要性以及验证结果的影响和应用。
第三部分将介绍微生物限度检验方法验证的一般流程，包括设计验证方案和实验步骤、样品的准备与处理，以及实验操作及数据分析。
在第四部分中，则具体介绍常见微生物限度检验方法验证技术，包括营养琼脂培养基平板计数法验证方法、膜过滤法验证方法以及PCR法验证方法。
最后，在第五部分中进行总结，对微生物限度检验方法验证的重要性进行归纳，并展望未来的发展方向。
1.3 目的本文的目的是为读者提供一个清晰全面了解微生物限度检验方法验证的文章。
通过介绍其概述、重要性、一般流程和常见技术，希望读者能够理解微生物限度检验方法验证在产品质量控制中的作用，并对未来方向有所思考。
同时，本文也为从事相关研究和实验工作的科研人员提供了参考和指导，以提高微生物限度检验方法验证技术的应用水平。
2. 微生物限度检验方法验证的重要性2.1 微生物限度检验的背景和意义微生物限度检验是一项重要的质量控制方法，用于评估药品、食品、化妆品以及其他消费产品中是否存在病原微生物和致病菌。
微生物污染可能引发严重的健康问题，包括细菌感染、传染病传播和中毒等。
因此，确保产品符合相关标准和法规对于保护公众健康至关重要。
2.2 验证方法的必要性验证微生物限度检验方法的准确性和可靠性是非常必要的。
通过验证方法，可以确认该方法能够准确地检测出有害微生物存在，并排除误报或漏报的可能性。
微生物限度方法学验证
微生物限度方法学验证
微生物限度方法学验证是一种用于确定化妆品和药品中微生物污染水平的方法。
这种验证方法用于确定产品是否符合微生物限度规定，并确保产品的安全性和质量。
微生物限度方法学验证的步骤包括：
1. 根据相关规定选择适当的微生物限度测试项目。
常见的微生物测试项目包括总生菌数、霉菌和酵母菌、大肠菌群等。
2. 准备适当的培养基和培养条件，以促使微生物在培养基上生长。
3. 从样品中获取适当的微生物培养物。
样品可以是产品中的一部分或整个产品。
4. 在适当的培养基上接种微生物培养物。
5. 在适当的环境条件下孵育培养基，以促进微生物生长。
6. 定期检查培养基的生长情况，包括观察菌落形态和计数菌落数量。
7. 将菌落转移到适当的检测方法中，如涂抹法、膜过滤法等。
8. 使用适当的培养基和培养条件，在适当的温度和pH条件下，观察和计算培养基上的微生物生长数量。
9. 比较结果与规定的微生物限度标准，确定产品是否符合要求。
微生物限度方法学验证可以帮助制药和化妆品行业确保产品的微生物质量，并确保产品在使用过程中不会对消费者的健康有害。
这种验证方法需要严格的实验室操作和合理的测试标准，以确保结果的准确性和可靠性。
微生物限度方法学验证方案
微生物限度检测方法学验证方案文件编号：P-目录1.目的 ................................................................................................................................................... 错误！未定义书签。
2.范围 ................................................................................................................................................... 错误！未定义书签。
3.责任者及职责 ................................................................................................................................... 错误！未定义书签。
4.验证简介 ........................................................................................................................................... 错误！未定义书签。
5．验证过程 ........................................................................................................................................... 错误！未定义书签。
6．结果判断 ........................................................................................................................................... 错误！未定义书签。
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WOIRD格式微生物限度检测方法学验证方案&D.|[0w#j!Q+{/w7^#E:k'p(t9J!T3W#O&W!d8S*\7k!y$k!C1A|*Q4X*I)[5@8g%_8H0}!X:c5V4s:w%J'K)}0Q-W:H1f9N$[4V7L7}文件编号：P-AMV002-1101"r%|2C7e-IY#s%f1v8U8D4M(n(q*a6o3e2f0z/_9`'j5[+y9c&C)D!O*O\%X:d,r0C(o3D"A2c,\6C'j+^(L1L-n3{/J;K执行前批准签字页2N+}8E8x%C!M1b2~1o'}方案起草姓名公司/岗位签字日期:c"s'R:u"l1q#l'o)}8h (@.}&N#s;[2E)H&U!R1G5Q-h5N)|+I2p方案审核姓名公司/岗位签字日期+N:w0{4j"`"}-x4r(Z#P;a3Z/|0U1\2P&v6j*`2h方案批准姓名公司/岗位签字日期$p1h:X#G"u.})B;d.V7R!@7t5v&D9a0l!i,W4p4o6f+Z4V7s*X3F8A7B3q"`1g6T9y;U,k+k9b目录,t,n2w&_4mT1.目的42.范围4,V*l"_%Q5f,K#k3.责任者及职责43^X*Q$x(E3g:B)E4.验证简介45．验证过程76．结果判断76c9[/O1U&R7．结论和建议7%{)x.{$f%I8．异常情况报告7*E.Q.`;?!k#q9．再验证710．附件8/O0@.@8O!`:c5c1n!k1L)N.^2w+d3Y%V1.目的$M;j2K6p'|:y3F'K+K按照中国药典2010版（第一部），采用平皿法对龙加通络胶囊（成品）进行微生物限度检查，本方案是对此方法进行验证。
;x'?8a'^6C5@!^2.范围&J+b'o7r7m6Z5t龙加通络胶囊成品8A,S/U]3h1J3.责任者及职责部门职责QC起草并审核验证方案进行验证试验的具体操作完成验证记录中相关操作记录的填写根据验证结果起草和审核验证报告6q5D5e1|(h,f3CQA审核并批准验证方案和验证报告(S&h:^!z#k,K:B1Q!j)?&^监督验证方案的实施7?4y(`6P(r4.验证简介4.1定义CFU：菌落数供试液3].N/E/p"O8}6C7R4d取样品10g，取pH7.0的氯化钠蛋白胨缓冲溶液稀释至1g/ml（1:10）。
供试品对照组取规定量供试液，按菌落计数方法测定供试品本底菌数。
'S#h$n1U:X's/J)e"C 试验组取规定量供试液采用平皿法进行细菌、霉菌及酵母菌计数。
菌液组测定所加的试验菌数。
%I8Y$G*Q4f;u.C*|%l+N样品组样品溶液菌悬液（50-100CFU）稀释液平均菌落数(CFU/皿)供试液对照组+-+C供试液对照组3G#_,O-A'P#P;H试验组+++C试验组菌液组-+-C菌液组'z5n%U:j2A(~"}N4.2菌悬液4.2.1菌种及来源(y)W#A2Q$p.I8y4M4m"z.|#p本次验证涉及到金黄色葡萄球菌、大肠埃希氏杆菌、枯草芽胞杆菌、白色念珠菌、黑曲霉，其详细情况如下：培养基名称名称及代号编号批号代次有效期至来源营养琼脂;{#X!e5G$K.I培养基金黄色葡萄球菌5A"m%R/H!`4[+s3@CMCC(B)26003注释1注释2中国生物制品检定所"x7i8@#~+k1j"L2c大肠埃希氏杆菌!C+G)S,c-NH+pCMCC(B)44102"`;X#m%_8R,`枯草芽胞杆菌5s,C2Q%{Sy.{#QCMCC(B)63501;A1n#H6t"?.X&O6{3J玫瑰红钠5\$K6K+D9["~3G)g$a#s)t1r7O琼脂培养基白色念珠菌6|!x+?&N*Rs9i;k%aCMCC(F)98001,G]:s"h0A!p(D黑曲霉CMCC(F)98003+Rf(L/N:h5[+A8|2J备注$D'_2t'\#O检查人：复核人：检查日期：4.2.2菌液制备接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基中，30~35℃培养18~24h；接种白色念珠菌的新鲜培养物至改良马丁培养基中，20~25℃培养24~48h。
上述培养物用0.9％无菌氯化钠溶液制成每1ml含菌数50~100CFU的菌悬液。
接种黑曲霉的新鲜培养物至改良马丁琼脂斜面培养基上，23~28℃培养5~7天，加入3~5ml含0.05％（ml/ml）聚山梨酯80的0.9％无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。
然后，采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内，用含0.05％（ml/ml）聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液制成每1ml含孢子数50~100CFU的孢子溶液。
4.3培养基及稀释液4V)Z!~!g%z%U0l4.3.1培养基和稀释液的名称:U*_*Z6d5M9x0z:E6f培养基：营养琼脂培养基（121℃15分钟）、玫瑰红钠琼脂培养基（121℃15分钟）稀释液：pH7.0的氯化钠蛋白胨缓冲溶液（121℃30分钟）4.3.2培养基灵敏度复核!V&g5[D)u;W${9B培养基灵敏度复核，参见《培养基的灵敏度检查操作规程》，结果见附件1。
-J7d9o+a)D9YC8 C4.4供试液的制备4.4.1样品名称及数量9v:m&Z7S.F&P$B.}*?(X+e:k)|-j:[样品名称批号取样量#e6u&X*|+M$a"n龙加通络胶囊（成品）10g0o9m;o'^/a1v'q10g"R'S!H.Q6y.{6_1q10g4.4.2样品预处理方法取样品10g，取pH7.0的氯化钠蛋白胨缓冲溶液稀释至1g/ml（1:10）。
'k8i3^4Y9e&t.^4.5实验用品2i4r(D"\+t-@实验设备名称型号规格厂家有效期t0a,y:`/z$r;E(X低温培养箱注释3(y(O*J!{9S6r'S.y9h生化培养箱注释3)b5m4p#O7T8X洁净工作台——+m"Y#b3N#v"B-C0u6?生物安全柜——,P.@+B#x!l4_"h#h*Z7h水浴锅——0g7z/~8m.d-c备注检查人：复核人：检查日期：(Y,b;E.`8|实验中使用培养基2y0O,F3B5e$p名称规格厂家8g$t#a0k:z(q5U8I营养琼脂培养基,o)@8`$h'n1X%O玫瑰红钠琼脂培养基8Q;h7z+f7D硫乙醇酸盐流体培养基改良马丁培养基营养肉汤培养基改良马丁琼脂培养基4.6参考文件1}"f$Z+uz.]+f中国药典2010版第一部附录ⅩⅢC微生物限度检查法《验证管理规程》8Z)P!l;L!a+{《超标数据调查及处理管理规程》《异常情况管理规程》#W)\"V:r$m)k)D《取样管理规程》《培养基管理规程》"C9\4B6[/_.t-q-t1h《培养基的灵敏度检查操作规程》*K6X)H*f'm#R&T.Q5X4[/sb!w《菌种复苏、传代及菌悬液制备操作规程》8[7m#I9_9h5[《微生物限度检查操作规程》5．验证过程5.1试验次数：验证试验应进行3次独立平行实验4k$R,F!n0c5_&S1~(c5.2试验器具准备0p"t$o9~0V0b+T8k试验前，将先前已准备的适量稀释液和培养基灵敏度复核检查合格的培养基、检品和无菌的玻璃平皿（Φ90mm）一同放入无菌室的传递厨内，打开送风和灭菌按钮。
;e4O1j1x*Z0x用当月使用的消毒剂对无菌室进行消毒，并擦拭超净台，打开超净工作台风机及紫外灯灭菌1小时以上。
5T'L"l0c8m@5.3测定4M:~1x$m!J1a7@,S:|*k'B5.3.1按照无菌室更衣程序更衣，进入无菌室。
-^:Y"p2\5t1v%W8K5.3.2用70%酒精棉球擦拭工作台面与待测品表面。
5.3.3在无菌环境下，取4.2.2项下配制的大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌各1ml，分别注入无菌平皿中，立即将保温在水浴锅中（45℃）无菌营养琼脂培养基倾倒入内，每个平皿约20ml，每株试验菌平行制备2个平皿。
待培养基混匀、凝固后准备培养计数；取4.2.2项下配制的白色念珠菌、黑曲霉各1ml，分别注入无菌平皿中，立即倾注保温在水浴锅中（45℃）无菌玫瑰红钠琼脂培养基，每株试验菌平行制备2个平皿，待培养基混匀、凝固后准备培养计数；以上作为菌液组。
5.3.4无菌操作取4.4.2制备的预处理后的样品，加入至4个无菌平皿中，每个加入1.0ml。
将保温在水浴锅中（45℃）无菌营养琼脂培养基和无菌玫瑰红钠琼脂培养基培养基分别倒入2个无菌平皿中，每个约20ml。
作为供试液对照组。
5.3.5无菌操作取4.4.2制备的预处理后样品，加入至10个无菌平皿中，每个加入1.0ml，同时将4.2.2项下配制的5种菌液每种加入到2个已加入样品的平皿中，每个平皿加入1.0ml。
将保温在水浴锅中（45℃）无菌营养琼脂培养基和无菌玫瑰红钠琼脂培养基培养基按4.2.1项下规定，加入到平皿中，每个约20ml。
作为对照组。
5.3.9将5.3.3-5.3.5制得的平皿按下表进行培养，结果记录在附件2上。
培养基培养温度培养时间菌种名称营养琼脂培养基30-35℃3天金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌、大肠杆菌玫瑰红钠琼脂培养基23-28℃5天白色念珠菌、黑曲霉"W*?+h5i6E6．结果判断;`+Z1P$`"b2Z:O在三次独立的平行试验中，试验组的菌落数回收率K(试验组的平均菌落数减去供试品对照组的平均菌落数的值占菌液组的平均菌落数的百分率)均不低于70%。
若三次独立试验中任何一次K低于70%，应改进试验方法以消除供试品的抑菌活性，并重新进行方法验证。
+l/ |(M.Z-c&U/W试验组的菌落数回收率K=×100%7．结论和建议此项中将根据实际测试的结果给出结论，有异议的将给出建议。
8．异常情况报告对验证中发现的任何异常/不合格情况应按照《异常情况管理规程》执行。