功能学实验 家兔高钾血症
家兔高钾血症实验抢救原理(一)
家兔高钾血症实验抢救原理
1. 了解家兔高钾血症的原因
- 高钾血症是指血液中钾离子浓度超过正常范围，可能导致心脏问题和其他严重并发症。
- 家兔高钾血症通常由于肾脏功能异常、饮食问题或其他疾病引起。
2. 探讨家兔高钾血症的症状
- 家兔高钾血症的症状可能包括虚弱、食欲不振、心律不齐等。
- 一旦发现这些症状，需要立即进行抢救和治疗。
3. 分析家兔高钾血症的实验抢救原理
- 实验抢救原理主要包括降低血钾浓度、恢复心脏功能和治疗潜在病因。
4. 详述降低血钾浓度的方法
- 注射胰岛素和葡萄糖，促进细胞内钾离子的转运和利用。
- 给予盐酸碳酸氢钠口服或静脉注射，通过尿液排出多余的钾离子。
- 使用离子交换树脂，将血液中的钾离子与树脂结合，再通过排尿排出。
5. 论述恢复心脏功能的手段
- 给予钙剂，增加心肌细胞对钙离子的感受性，促进心肌收缩。
- 使用β受体激动剂，增加心脏收缩力和心输出量。
6. 解释治疗潜在病因的措施
- 针对肾脏功能异常，需及时进行肾功能检查，并根据检查结果采取相应的治疗措施。
- 针对饮食问题，需要调整家兔的饮食结构，限制高钾食物的摄入。
7. 总结家兔高钾血症实验抢救原理
- 家兔高钾血症的实验抢救原理涉及降低血钾浓度、恢复心脏功能和治疗潜在病因。
- 在实际抢救过程中，需要根据具体情况综合应用不同的抢救措施，以提高抢救效果。
通过以上对家兔高钾血症实验抢救原理的详细解释，使读者对该主题有了更深入的了解。
抢救措施的多样性和综合性为读者提供了更全面的知识，有助于在实际抢救中更好地处理相关问题。
实验一家兔高钾血症及抢救
实验一家兔高钾血症及抢救实验一家兔高钾血症及抢救一、实验目的（1）掌握家兔高钾血症模型的复制方法。
（2）观察高钾血症叫家兔心电图变化的特征。
（3）自行设计和实施抢救治疗方案。
（4）了解血钾升高后，对心肌细胞的毒性作用。
二、实验动物、药品与器材1．动物家兔，雌雄不拘，体重2.0～3.0 kg。
2．药品2.5 %戊巴比妥钠溶液，肝素生理盐水溶液（125U肝素／ml生理盐水），2 %、5 %、10 %氯化钾生理盐水溶液，10%氯化钙溶液，4 %碳酸氢钠溶液，葡萄糖胰岛素溶液（每4 ml的%葡萄糖加1U胰岛素）。
3．器材计算机实验系统，心电记录与转换设备，一般手术器械，静脉输液装置，5 ml、l0 ml、20ml注射器，小儿头皮针，抗凝试管。
三、观察指标精神神经状态（是否兴奋、躁动、昏迷、痉挛），呼吸频率、深度和节律，心电图变化，血浆钾浓度。
四、方法与步骤1．动物的麻醉与手术动物称重后，用2.5 %戊巴比妥钠，按1.0 ml／kg剂量给药，由耳缘静脉缓慢注入。
注射期间注意观察动物肌张力、呼吸频率和角膜反射的变化，防止麻醉过深。
麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。
颈部剪毛，沿甲状软骨下正中切开皮肤约 6 cm，分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉并插管。
颈动脉导管用于取血；颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置，缓慢输入生理盐水（5～10滴／min），以保持管道通畅。
2．测血钾用抗凝试管通过颈总动脉取血l ml，用电解质测量仪测置动物实验前的血浆钾浓度。
3．心电描记将针型电极分别插入四肢踝部皮下。
导联线按右前肢（红）、左前肢（黄）、左后肢（蓝）、右后肢（黑）的顺序连接，通过计算机和心电记录系统描记实验前的心电图波形。
用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。
方法是将胸导联电极插入胸部皮下，将头部导联电极插入下颏部皮下，将心电转换盒上的导联旋钮旋到头胸导联位置。
这样记录的心电图高大清晰，高血钾的异常心电图波形出现早而清晰。
机能实验报告高钾血症
一、实验目的1. 了解高钾血症的定义、病因及临床表现。
2. 掌握高钾血症的诊断方法及治疗原则。
3. 通过实验操作，观察高钾血症对心肌的影响，提高对高钾血症的认识。
二、实验原理高钾血症是指血清钾浓度超过5.5mmol/L的一种病理状态。
高钾血症可导致心肌细胞膜电位异常，心肌兴奋性、传导性、自律性和收缩性降低，严重时可引起心律失常、心肌损伤甚至心脏骤停。
本实验通过家兔高钾血症模型的建立，观察心电图变化，了解高钾血症对心肌的影响，为临床诊断和治疗提供依据。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2只，体重2～3kg，雌雄不限。
2. 实验仪器：心电图机、手术器械、注射器、剪刀、镊子、生理盐水、20%氨基甲酸乙酯、2%、10%化钾溶液、10%化钙溶液、4%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液（50%葡萄糖4ml加1U胰岛素）、肝素生理盐水溶液（125单位肝素/ml生理盐水）等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：将家兔放入实验箱中，用20%氨基甲酸乙酯（1%浓度）行腹腔注射，麻醉后仰卧固定。
2. 术前准备：常规消毒家兔四肢，备皮。
3. 插管：在豚鼠的右前肢、左后肢和右后肢分别插入注射针头，将白色的鳄鱼夹与右前肢针头，红色的鳄鱼夹与左后肢针头，黑色的鳄鱼夹与右后肢针头相连。
4. 连接心电图：将豚鼠的右前肢、左后肢和右后肢分别与心电图机的电极相连。
5. 建立高钾血症模型：将2%、10%化钾溶液按1ml/kg体重注入家兔体内，观察心电图变化。
6. 观察心电图：记录高钾血症时的心电图变化，包括P波、QRS波和T波的变化。
7. 抢救治疗：给予家兔葡萄糖-胰岛素溶液（50%葡萄糖4ml加1U胰岛素）和肝素生理盐水溶液（125单位肝素/ml生理盐水）进行抢救治疗，观察心电图变化。
8. 实验结束：实验结束后，拔除家兔四肢的针头，清理实验现场。
五、实验结果1. 高钾血症时，心电图表现为P波和QRS波波幅降低，间期增宽，可出现宽而深的S波；T波高尖，严重时可出现正弦波。
疾病学基础 实验六 高钾血症
实验六家兔高钾血症一、实验目的1．复制家兔高钾血症的动物模型。
2．了解动物高钾血症时心电图变化的特征，并设计抢救和治疗方案。
二、实验内容1．家兔高钾血症动物模型的复制。
2．观察动物高钾血症时心电图变化的特征，3．设计动物高钾血症的抢救和治疗方案。
三、实验准备【实验动物】家兔【仪器设备】计算机生物信号采集处理系统、心电电极输入线、兔手术台、哺乳类动物手术器械、三通管、双凹夹、铁支架、注射器（1ml，5ml，10ml）、输液装置、小儿头皮针等。
【药品试剂】1.5%戊巴比妥钠溶液、2%、5%、10%氯化钾生理盐水溶液、10%氯化钙溶液、5%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液（50%葡萄糖4ml加1单位胰岛素）、生理盐水。
四、实验方法1．动物称重、麻醉和固定家兔称重后，用1.5%戊巴比妥钠溶液（2ml/kg）从耳缘静脉缓慢注入。
待动物自然倒下，将动物仰卧固定在实验台上，并保持耳缘静脉通畅。
2．心电图描记（1）将心电电极输入端插头插入计算机生物信号处理系统插口。
（2）将针型电极分别插入动物四肢踝部皮下，心电导联线按右前支（红）、左前支（黄）、右后支（黑）、左后支（绿）的顺序联接。
或变换心电输入线的三个端点可以测出标准I、II、III导联心电信号。
（3）用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形，方法是选择心电图的I导联，将右前肢电极插在下颏部皮下，左前肢的电极插在胸壁，相当于心尖部位的皮下。
这样高血钾的异常波形出现早而清楚。
（4）开机启动计算机生物信号采集处理系统，设置心电图描记参数：低通滤波：上限频率40HZ。
在MedLab中依次选择“实验/常用生理学实验”→“心电图测量”。
MedLab放大器和采样参数设置如下：MedLab采样参数表采样参数显示方式记录仪采样间隔 2 m sX轴显示压缩比 5：1通道通道1DC/AC AC处理名称心电放大倍数 100 - 200Y轴压缩比 16：13．观察项目（1）氯化钾注入：沿三通管装置从耳缘静脉持续输注2%氯化钾溶液1ml/kg，根据实验需要及家兔反应情况调整输入速度，输注过程中记录并观察家兔心电图波形的变化规律。
家兔高钾血症实验抢救原理
家兔高钾血症实验抢救原理家兔高钾血症(Hyperkalemia)是指血液中钾离子(K+)的浓度超过正常范围，一般大于5.0 mmol/L。
高钾血症是一种常见的临床问题，当病人出现高钾血症时，需要进行紧急抢救，以防止潜在的危险。
本文将介绍家兔高钾血症的抢救原理。
高钾血症可分为两种类型：急性高钾血症和慢性高钾血症。
急性高钾血症通常由外部因素引起，如严重创伤、急性肾功能损害、药物（如非那根、ACE抑制剂、肾上腺素、利尿剂）使用不当等。
慢性高钾血症则与慢性肾功能损害、糖尿病等慢性疾病相关。
针对不同类型的高钾血症，抢救原理略有不同。
家兔高钾血症的抢救原理主要包括以下几个方面：1.确认诊断：首先要通过实验室检查确认家兔是否患有高钾血症。
这可以通过血清钾离子浓度的测定来完成。
如果血钾浓度高于正常范围，就可以确诊为高钾血症。
2.快速鉴别病因：患有高钾血症的家兔应尽快鉴别出导致高钾血症的病因。
如果是急性高钾血症，需要尽快找到外源性因素并及时消除；如果是慢性高钾血症，则需要重点关注肾脏功能是否受损。
3.积极纠正原发病：高钾血症的治疗应该从根本上治疗所致的原发病。
如果是急性高钾血症由于药物引起，可以通过停用药物、调整剂量等方式来纠正；而如果是慢性高钾血症，则应该注重治疗导致高钾血症的基础疾病。
4.降低血钾浓度：对于高钾血症的抢救，最重要的是降低血液中的钾离子浓度。
这可以通过以下几种方式来实现：-精确评估病情：了解病人的病情严重程度、身体状况等信息对于决定治疗方法和药物选择至关重要。
-钙剂纠正：在急性高钾血症的抢救过程中，补充钙剂可以迅速纠正心脏的传导异常，同时保护心肌免受高钾血症的影响。
-脱水：通过使用有效的利尿剂，如呋塞米，可以加速钾离子的排出，从而降低血液中的钾离子浓度。
-阻断钾离子的进入：通过使用排钾剂，如强力排钾剂，可以减少钾离子的进入血液循环。
排钾剂的作用机制一般是通过增加尿液酸化程度和尿酸盐含量，使尿液中的钾离子浓度增加，从而促进钾离子的排泄。
功能学实验家兔高钾血症
功能学实验家兔高钾血症
高钾血症是指体内钾离子浓度过高的病症，是造成心跳骤停等严重后果的原因之一。
目前已经有许多的离体实验和病理学研究表明高钾血症是由于肾脏排泄能力下降和细胞内外平衡失调所引起的。
因此，为了更好地研究高钾血症的原因和机制，可以采用功能学实验动物，其中家兔是一种常用的动物模型。
家兔作为高钾血症实验动物的优点之一在于其生理和代谢特征与人类相似，特别是其肾脏结构与人类相似，使得家兔可以更好地模拟人体的生理状态。
同时，家兔具有容易操控和较长的实验期等优点，可以更好地对高钾血症的发展和机制进行研究。
在家兔高钾血症的功能学实验中，可以采用电解质平衡实验、心电图监测、肌肉电学检测等多种实验方法，来评估家兔体内钾离子的平衡状况以及高钾血症对心脏和骨骼肌的影响。
其中，电解质平衡实验是评估家兔高钾血症最常用的方法之一。
该实验通过采集不同时期的尿液和血液样本，来测定家兔体内钾离子的浓度变化。
此外，还可以监测血液酸碱度、血液钠离子浓度等指标，以更全面地了解家兔高钾血症的病理变化。
心电图监测是在高钾血症实验过程中另一种重要的监测手段。
该实验可用来监测家兔心脏的收缩和舒张，以判断高钾血症对心脏的影响。
通过心电图监测，可以探究高钾血症引起的心率变化、心电图图像等多种影响因素，以更好地了解高钾血症对心脏的影响机理。
除了以上两种方法外，肌肉电学检测也是一个非常有用的功能学实验方法。
在肌肉电学检测中，可以检测家兔肌肉数量的变化、肌肉膨胀程度、细胞膜电位等，以确定家兔高钾血症的影响程度。
通过肌肉电学检测，可以进一步了解高钾血症对骨骼肌的影响程度以及高钾血症的发展趋势。
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功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法，观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化，了解和实践高钾血症的抢救措施，最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。
二.实验动物未知种属家兔（实验室提供）一只，体重为 2.00kg。
三.实验过程1•取一只家兔，称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉（家兔体重2.00kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉），然后固定四肢和头部。
2. 气管插管：剪除颈部毛发，依次切开皮肤和组织暴露气管，于恰当位置剪出T形切口，插入气管插管并固定。
3. 颈动脉插管：于气管旁暴露并分离颈动脉，结扎颈动脉头端，动脉夹夹住近心端。
分离3-4cm 长度的颈动脉，穿过一根线用于颈动脉插管固定。
颈动脉下垫着镊子，剪开管径一半，插入颈动脉插管，固定，后接充满生理盐水的注射器。
4. 于未滴注KCI之前从颈动脉第一次采血2 ml，静置。
5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下，连接生物信号处理系统，在MFLab上记录心电图波形。
6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min，用4% KCI溶液从耳缘静脉滴注，观察并记录心电图变化。
待出现P波低平，QRS波压低增宽，T波高尖现象时即停止滴注，第二次采集血液。
7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液，观察并记录心电图变化。
待出现室扑时立即停止滴注，从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。
8. 然后开胸观察心跳，于颈动脉推注20 ml KCl溶液，观察心脏停搏状态。
从心室第四次抽取血液。
9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min ,取血清100ul ,混合蒸馏水9.9 ml 稀释，送火焰光度计测量血清钾浓度。
四.实验器材及注意事项实验器材：肢体导联，生物信号处理系统，火焰光度计，10ml刻度离心管，塑料试管，哺乳动物手术器械一套，塑料三通阀两个，Y形气管插管，动脉夹，20ml、10ml、5ml注射器，头皮针三支，输液装置一套，心电针型电极注意事项：1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时，在家兔皮肤处涂抹适量局麻药，稍后进行头皮针插入动作，防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。
功能学实验 家兔高钾血症
功能学实验家兔高钾血症实验报告一．实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法，观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化，了解和实践高钾血症的抢救措施，最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。
二．实验动物未知种属家兔（实验室提供）一只，体重为2.00 kg。
三．实验过程1. 取一只家兔，称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉（家兔体重2.00 kg，故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉），然后固定四肢和头部。
2. 气管插管：剪除颈部毛发，依次切开皮肤和组织暴露气管，于恰当位置剪出T形切口，插入气管插管并固定。
3. 颈动脉插管：于气管旁暴露并分离颈动脉，结扎颈动脉头端，动脉夹夹住近心端。
分离3-4cm长度的颈动脉，穿过一根线用于颈动脉插管固定。
颈动脉下垫着镊子，剪开管径一半，插入颈动脉插管，固定，后接充满生理盐水的注射器。
4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml，静置。
5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下，连接生物信号处理系统，在MFLab上记录心电图波形。
6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min，用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注，观察并记录心电图变化。
待出现P波低平，QRS波压低增宽，T波高尖现象时即停止滴注，第二次采集血液。
7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液，观察并记录心电图变化。
待出现室扑时立即停止滴注，从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml，观察心电图并在滴注后第三次采集血液。
8. 然后开胸观察心跳，于颈动脉推注20 ml KCl溶液，观察心脏停搏状态。
从心室第四次抽取血液。
9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min，取血清100ul，混合蒸馏水9.9 ml 稀释，送火焰光度计测量血清钾浓度。
四．实验器材及注意事项实验器材：肢体导联，生物信号处理系统，火焰光度计，10ml刻度离心管，塑料试管，哺乳动物手术器械一套，塑料三通阀两个，Y形气管插管，动脉夹，20ml、10ml、5ml注射器，头皮针三支，输液装置一套，心电针型电极注意事项：1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时，在家兔皮肤处涂抹适量局麻药，稍后进行头皮针插入动作，防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。
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功能学实验家兔高钾血症实验报告
一．实验目的
学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法，观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化，了解和实践高钾血症的抢救措施，最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。
二．实验动物
未知种属家兔（实验室提供）一只，体重为2.00 kg。
三．实验过程
1. 取一只家兔，称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉（家兔体重
2.00 kg，故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉），然后固定四肢和头部。
2. 气管插管：剪除颈部毛发，依次切开皮肤和组织暴露气管，于恰当位置剪出T形切口，插入气管插管并固定。
3. 颈动脉插管：于气管旁暴露并分离颈动脉，结扎颈动脉头端，动脉夹夹住近心端。
分离3-4cm长度的颈动脉，穿过一根线用于颈动脉插管固定。
颈动脉下垫着镊子，剪开管径一半，插入颈动脉插管，固定，后接充满生理盐水的注射器。
4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml，静置。
5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下，连接生物信号处理系统，在MFLab上记录心电图波形。
6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min，用4% KCl溶液
从耳缘静脉滴注，观察并记录心电图变化。
待出现P波低平，QRS波压低增宽，T波高尖现象时即停止滴注，第二次采集血液。
7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液，观察并记录心电图变化。
待出现室扑时立即停止滴注，从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml，观察心电图并在滴注后第三次采集血液。
8. 然后开胸观察心跳，于颈动脉推注20 ml KCl溶液，观察心脏停搏状态。
从心室第四次抽取血液。
9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min，取血清100 ul，混合蒸馏水9.9 ml稀释，送火焰光度计测量血清钾浓度。
四．实验器材及注意事项
实验器材：
肢体导联，生物信号处理系统，火焰光度计，10ml刻度离心管，塑料试管，哺乳动物手术器械一套，塑料三通阀两个，Y形气管插管，动脉夹，20ml、10ml、5ml注射器，头皮针三支，输液装置一套，心电针型电极
注意事项：
1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时，在家兔皮肤处涂抹适量局麻药，稍后进行头皮针插入动作，防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。
插入位点应尽量选择耳缘静脉远心端，防止因先前的注射失败而导致无合适的再次进针位点。
2. 心电图电极插入应严格的插入四肢皮下，切勿插入肌肉组织
中，测量心电图时应关闭附近的电灯，防止肌电和其他外部电场对心电图测量造成影响，产生误差。
3. 蠕动泵的滴速应严格调整好，滴速会影响心电图的变化时间以及抢救成功率。
使用生理盐水调整时使用的EP管之后应进行蒸馏水的清洗，以免对之后血清的测量产生误差。
4. 血液样本应避免放置过久，若其中的血细胞因放置过久而破裂，细胞内的K离子溢出会使得之后血清K离子浓度测量出现较大误差。
五．实验结果
1. 家兔在KCl溶液滴注前后心电图的变化：
[1].在4% KCl溶液滴注之前，第一次颈动脉插管出现插入后导管
脱落，颈动脉大量出血，因动脉夹止血及时，损失的血量大
约在20 ml左右。
后观察心电图，心电图出现了较大杂音干
扰，但是各波形尚能分辩：P波高耸，QRS波明显，T波较不
明显但能与杂音区别。
R波幅度最高，P波幅度约为R波一半。
[2].KCl溶液开始滴注，30s内心电图变化不甚明显。
30s过后开
始出现P波低平增宽，再过10s QRS波开始出现低平。
约2min
后T波逐渐隆起，明显，幅度增长到R波的一半左右。
此时
停止滴注进行第二次采血。
[3].继续滴注KCl溶液，T波群继续高耸，QRS波群继续压低增宽，
QS波逐渐分辨不清，R波和T波幅度相近，在干扰下能清楚
分辩出正弦图形，此时停止滴注并推注葡萄糖酸钙，之后第
三次取血。
[4].推注葡萄糖酸钙过程中，T波逐渐低平，偶尔出现正常相QRS
波。
之后正常的QRS波增多，但P波仍然不是很明显。
推注
后4-5min，正常心电活动减少，家兔出现室颤波形，胸外心
脏按压效果不是很理想，最后心脏停搏，抢救宣告失败
[5].开胸暴露心脏，从颈动脉推注KCl溶液20ml后第四次采血。
2. 采血样本血清K例子浓度检测：
四管血液经凝固离心后，取血清稀释后送检得到结果如下：
第一次采血：25.2 mmol/L 第二次采血：5.6 mmol/L
第三次采血：6.9 mmol/L 第四次采血：11.1 mmol/L 六．讨论
1. 高钾血症对家兔心电图的影响：
总体影响为P波低平增宽，QRS波群压低变宽，T波高耸。
随着K离子浓度进一步提高，P波消失，T波抬高，形成M形心电图，最后呈正弦图样室扑心电图。
高钾血症对心肌的影响一般为兴奋性先增加后下降，传导性下降，收缩性下降，自律性下降。
[1].兴奋性：在血清钾浓度迅速轻度升高时，心肌细胞静息电位
（绝对值）轻度减小，距离阈电位的距离缩短，阈刺激减小
即心肌的兴奋性增高。
当血清钾浓度迅速显著升高时，由于
静息电位过小，与阈电位距离过近，从而使得电压依赖性的
钠离子通道（快钠通道）处于备用状态的数量明显减少乃至
失活，从而使得兴奋性降低。
[2].传导性：由于心肌细胞静息电位绝对值变小，与阈电位接近，
0期钠通道不易开放，使去极化的速度减慢、幅度变小，因
此心肌传导的速度减慢。
严重的高钾血症时，可因严重的传
导阻滞和心肌兴奋性消失而发生心脏骤停。
[3].收缩性：高钾血症时，细胞外液K离子浓度过高抑制了复极
化2期的钙离子内流，使心肌细胞内钙离子浓度降低，因此
心肌收缩性减弱。
[4].自律性：高钾血症时，细胞膜对K离子的通透性增高，复极
化4期K离子外流增加而Na离子内流相对缓慢，自律细胞如
浦肯野细胞的自动去极化减慢，因此引起心肌的自律性降低。
2. 血清K离子浓度分析
正常血钾浓度在血清中应为3.5-5.5 mmol/L。
第一次采血是在未注射KCl溶液时，检测结果明显偏高，分析是因为当时调整滴注速度时，用了采血的EP管接取KCl溶液，之后忘记清洗了直接进行了血清稀释的操作，此为人为的实验错误造成的。
另一个原因有可能为第一次采血，从采血完成到进行离心等操作有一段较长的时间间隔，导致血液中血细胞大量的破裂，K离子溢出，导致血清K离子浓度检测结果偏高。
第二次采血是在滴注KCl溶液观察到T波高耸时进行的。
此时K离子浓度略高于正常值。
由心电图可知该K离子浓度已经影响到了心肌细胞的正常除极化、复极化以及传导过程。
第二次采血血清K离
子浓度测量值较为合理。
第三次采血是在观察到室扑后进行推注葡萄糖酸钙抢救之后进行的。
推注葡萄糖酸钙对于血钾浓度影响不大，故于抢救后采血并不会对血钾浓度造成较大误差。
此时的血钾浓度已经高于正常值，属于血钾浓度严重偏高情况，已经严重的破坏了心肌细胞的正常电生理现象，兴奋性、传导性、收缩性和自律性都严重降低，导致出现室扑。
若不及时抢救降低血钾浓度，可出现心脏停搏和多器官不可逆损伤。
第四次采血为颈动脉推注KCl溶液之后，家兔死亡后进行的。
在此浓度下心肌细胞的电生理活动完全抑制，心脏停搏，家兔死亡。
第二次、第三次、第四次采血测得的K离子浓度均在实验结果可接受范围之内，且三次的数据梯度性良好，认为该次实验结果较为成功。
第一次采血测得数据有较大误差，存在人为失误造成的可能，以后需要我们小组共同的监督和进步。
3. 葡萄糖酸钙抢救机制：
之前的讨论有提到高钾血症影响心肌的收缩性。
具体来讲，高钾血症会影响细胞的兴奋-收缩耦联。
故在高钾血症时迅速注射葡萄糖酸钙进行抢救是由于葡萄糖酸钙能够置换过多的钾离子，提高细胞内钙离子的浓度，进而使得兴奋-收缩耦联得到恢复，而使得心脏的收缩性得到增加。
同时钙离子也能够通过提高阈电位进而降低高钾对心脏的影响。
临床上抢救高钾血症时通常还要注射钠制剂：高浓度的NaHCO3溶液。
HCO3-能中和因高血钾导致的细胞外液升高的H+，使钾离子进入细胞
内；Na+在细胞外液增加，从而导致肾远由小管Na+浓度上升，进而增加了Na+、K+的交换，使大量的钾离子随尿排出从而降低血液中的钾离子浓度。
七．实验结论
高钾血症能影响家兔心肌的电生理活动，高浓度的K离子能降低心肌细胞的兴奋性、传导性、收缩性和自律性。
本组实验表明，血钾浓度为5.6 mmol/L时家兔心肌电生理出现异常，血钾浓度为6.9 mmol/L 时出现室扑，血钾浓度为11.1 mmol/L时家兔心肌电生理活动消失而死亡。
推注葡萄糖酸钙抢救失败，未观察到明显的推注葡萄糖酸钙缓解高钾血症的现象。
（学习的目的是增长知识，提高能力，相信一分耕耘一分收获，努力就一定可以获得应有的回报）。