标本采集和送检ppt课件
《标本采集和送检》课件

05 案例分析
案例一:血液标本采集不当引发的误诊
总结词
血液标本采集是临床诊断中常见的检验项目,采集过程中需注意避免交叉感染 、防止溶血等。
详细描述
某患者因发热就诊,医生采集血液标本进行血常规检查,结果提示贫血、白细 胞升高。但重新审视采血过程,发现采血器消毒不彻底,导致交叉感染。最终 诊断为败血症,与初步诊断大相径庭。
粪便标本
粪便标本应保存在适当的 容器中,并避免污染和交 叉污染。在送检前应将粪 便中的水份适当干燥。
04
注意事项与问题处理
采集过程中的注意事项
采集时间
01
需在规定时间内完成采集,确保样本的有效性 。
采集方法
02
按照规定的操作流程进行采集,避免样本被污 染或破坏。
样本标识
03
确保每个样本都有唯一的标识,便于后续识别 和管理。
异常结果的处理与报告异常结果,需进行核 实,确认是否为操作误差或
真实异常。
01
02
根据复检结果撰写报告,详 细说明异常情况及处理建议
。
03
04
复检与确认
如为真实异常,需进行复检 和确认,以保障结果的准确
性。
反馈与改进
将异常结果反馈给相关人员 ,并针对问题进行分析和改
进,提高检测质量。
02
常见标本采集方法
血液标本采集
静脉血液标本采集
从肘静脉或手背静脉采集,常用真空 采血管。
末梢血液标本采集
严格消毒,防止交叉感染;确保采血 量足够;避免溶血和凝血。
动脉血液标本采集
用于血气分析,常用股动脉、肱动脉 或桡动脉。
注意事项
用于快速血糖检测,从手指或耳垂采 集。
尿液标本采集
检验标本的采集及运送ppt课件

4、检验人员:必须等收到临床医生书面或电子打印的检验申请单
时,才可接收标本进行检验。
5、检验申请单及检验结果记录:保存2年。
5/22/2024
4
四、标本采集方法:
收取检验申请单——审核合格后,检查真空管标识和检验 申请单一致——做好患者准备工作——找好采血静脉并消毒—— 采集致标本容器——送至检验科。
2:血液标本的运送应由患者(除血交叉标本外) 或临床卫生员运送。运送过程中必须保证安全, 防止容器破裂、遗漏等现象。
5/22/2024
3
三、检验的申请:
1、临床医生:应完整填写申请单各项内容,字迹必须清楚,包
括患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序
号、标本类型、临床诊断、采集标本日期和时间、申请检查的实验
3.5 溶血标本拒收 3.6 血糖标本 3.6.1 要注意:患者的饮食,高糖饮食、剧烈运动、情
绪激动等,都会引起血糖生理性增高。 血清管抽血后,尽快送检验科检测,因为葡萄糖
在空气中,在血细胞的作用下,很容易孝解。 全血标本室温放置1小时,血糖值下降。3-6% 全血标本室温放置4小时,血糖值下降。10-30%
↓
阻断葡萄糖的分解
5/22/2024
2
二、采集血液标本的职责:
1:住院病人血液由临床医护人员采集。临床医 护人员必须明确告知病人标本采集前的准备条 件,要求及注意事项(如禁食、禁水、特殊标 本采集前的准备等);医护人员有义雾向患者 解释标本采集中的各种问题,标本采集的类型、 血量、保存条件、注意事项、生物参考区间、 临床意义等,指导患者进行正确的准备。
介绍
检验标本的采集及运送是保证检验结果 准确与否首要的、重要环节。包括适当的患 者准备、检验申请,适当的标本收集、标记、 保存、运送和处理。
标本采集PPT课件

温即可,温度过低会导致对温度敏感的细菌死亡。
培
血培养对无菌操作的要求比注射、采集生化、
凝血等其它标本要高,所以要最先采集血培养
标本
1、成人一份标本2个培养瓶(需氧+厌氧),每
养
血培养瓶(厌氧优先) 凝血试管(蓝色) 其 它有抗凝剂管(黑-绿-紫) 无添加剂管(红色,
处理程序
1、护士发现采集标本错误,立即停 止送检,重新采集标本,并做好解释。 2、发现标本有误或检验结果有质疑, 立即核查,通知医生,做好解释,重 新采集标本。 各类标本在采集、暂存与运送过程中 发生标本撒漏、标本容器破损等紧急 意外事件时,立即按医疗垃圾处理标 本,重新采集标本。
谢谢
苏朦朦 2017/11/26
22
2024/5/22
要看懂胸水的报告,首先要分清是漏出液还是渗出液
成功项胸目水展示
漏出液可见于:充血性心力衰竭、上腔静脉阻塞、缩窄性 心包炎、肝硬化、肾病综合征、急性肾小球肾炎、腹膜透 析、粘液性水肿、药物过敏和放射反应等。
渗出液又可分: 1.浆液性:①感染性疾病:结核性胸膜炎,肺炎、病毒、真菌和寄生 虫感染;②恶性肿瘤;③肺栓塞;④结缔组织疾病;⑤Meigs综合征 等。 2.脓胸:①结核性脓胸;②肺部感染引起脓胸;③外伤、食管穿孔、 气胸、胸腔穿刺或术后继发化脓性感染等。 3.血胸:①恶性肿瘤;②外伤;③血气胸;④胸主动脉瘤破裂;⑤肺 栓塞等。 4.乳糜胸:①外伤致胸导管破裂;②丝虫病;③肿瘤致胸导管阻塞等。
血培养,30分钟内完成3套血培养的采集,采集
后立即进行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报
告阴性,则继续采集2套血培养。
年度工血作液概述
标本采集与运送ppt课件

HUNAN PROVINCIAL TUMOR HOSPITAL
标本的采集与运送
检验科 黄宏君
.
1
主要内容
➢ 如何看待检验工作 ➢ 标本采集前准备 ➢ 标本采集
➢ 意义和原则 ➢ 常见检验项目试管选择 ➢ 常用标本采集方法和注意事项
➢ 标本的运送与拒收 ➢ 常见问题反馈和处理 ➢ 小结
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19
血常规管
• 适用于血常规、血型鉴定、交叉 配血试验及临床血液学检查等
• 抗凝剂:EDTA-K2、 EDTA-K3
• 血液标本量不小于1ml
• 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
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20
血沉管
• 适用于血沉(ESR)检测 • 抗凝剂:柠檬酸0.129mol/L • 抗凝剂与血样的体积比(1:4 ) • 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
• 必须空腹的项目 – 1.肝功能 – 2.血糖 – 3.血脂 – 4.真菌 D葡聚糖(血脂高患者) – 5.凝血功能(血脂高患者) – 6.血液流变的检查如全血粘度、血清粘度 、血浆粘度等 – 7.甲胎蛋白、血清免疫球蛋白、粘蛋白
.
12
标本采集
.
13
明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
.
观察病情
.
21
血凝管
• 适用于PT、APTT、PT、D-二聚体 、凝血因子检测等。
• 2. 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动,采血当 日早晨应避免剧烈运动和劳动,采血前应有10分钟 的休息。采血时,患者要保持相对安静和情绪稳定 。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅 并休息10分钟后采血。
.
7
血液样品采集前患者的准备
2024版标本采集PPT课件[1]
![2024版标本采集PPT课件[1]](https://img.taocdn.com/s3/m/8c31268e09a1284ac850ad02de80d4d8d05a0161.png)
标本采集PPT课件•标本采集概述•标本采集前准备•标本采集方法与步骤•标本处理与保存•标本运输与接收•质量控制与安全管理目录CONTENTS01标本采集概述定义与目的定义标本采集是指从患者体内或体表、排泄物、分泌物等中取出少量物质,供医生进行病理学、微生物学、免疫学、生物化学等检验和分析的过程。
目的明确疾病诊断,指导临床治疗,评估治疗效果,监测病情变化,为科研和教学提供素材。
标本类型与来源静脉血、动脉血、毛细血管血等,用于血液常规、生化、免疫、凝血等检验。
晨尿、随机尿、24小时尿等,用于尿常规、尿生化、尿沉渣等检验。
自然排便、灌肠或采便器采集,用于便常规、隐血、寄生虫等检验。
脑脊液、胸腹水、痰液、分泌物等,根据临床需求进行相应检验。
血液标本尿液标本粪便标本其他标本采集原则与注意事项采集原则无菌操作,避免污染;正确选择采集部位和时间;保证标本质量,满足检验要求。
注意事项采集前核对患者信息,确保无误;遵守消毒规范,防止交叉感染;注意采集量,避免浪费和不足;标本及时送检,避免延误。
02标本采集前准备详细询问患者病史、用药史等相关信息。
了解患者当前病情,包括症状、体征等。
评估患者采集标本的风险和可行性。
了解患者病情与病史根据检测项目要求,选择合适采集时间,如空腹、餐后等。
选择合适采集部位,避免影响检测结果的因素。
对于特殊患者,如危重、新生儿等,需特别注意采集时间与部位的选择。
选择合适采集时间与部位准备采集器材与试剂根据检测项目要求,准备相应的采集器材,如注射器、采血管、拭子等。
检查采集器材的完整性和有效期,确保使用安全。
准备所需试剂和耗材,如抗凝剂、消毒剂等。
03标本采集方法与步骤采集前准备采集部位与消毒穿刺与采血止血与后处理01020304核对患者信息,选择合适的采血针、采血管等。
常选肘部静脉,消毒皮肤。
穿刺静脉,使血液自然流入采血管。
用无菌棉球按压穿刺点止血,嘱患者保持穿刺部位干燥、清洁。
采集前准备采集方法标本保存与运输留取清晨第一次尿或随机尿,避免污染。
标本的采集和运送PPT课件

正确规范的采集和运送标本, 通过实验室检查,结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中,不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理,立即送往实验 室;对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤:应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物,以碘酒、酒精消毒皮肤, 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿:用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿:以无菌干燥注射器穿刺抽取;疑为厌 氧菌感染者,取脓液后立即排净注射器内空气,针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱,不耐 冷,容易死亡,故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少,宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本:性传播疾病-尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液;生殖道疱疹-穿刺疱疹液;盆腔脓 肿-于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外,所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中,自然凝固、 血块收缩后吸取血清,56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于-20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检,排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率(如霍乱)。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在,对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
标本采集ppt课件

4、压脉带压迫时间不宜过长、过紧
应用压脉带的目的是增加静脉局部充盈,有利于穿刺, 如果压脉带压迫超过1min,可使局部血氧含量降低,乳酸 增加,pH下降。
3、要求当天晚上只能进一点清淡饮食的,注意要询问是 否钦用过牛奶、豆浆、鸡蛋等高脂肪、高蛋白之类食品, 因为高脂肪饮食可使外源性乳糜微粒、甘油三脂升高,并 将影响肝功、免疫球蛋白、血脂等测定。同时要求停止饮 用咖啡、浓茶类饮料,更不能饮酒。
4、为了准确测定血脂,要求病人积极配合,严格做到连续 三天素食后才能采集标本。
2、必须空腹采血的坚持空腹采血
如空腹血浆葡萄糖测定,一旦吃了早餐将会影响结果的 价值。不少检验项目如生化测定也要求禁食12h后才能采 血,但空腹时间过长(超过16h),同样也会影响血液中成 分,如血清白蛋白、补体、转铁蛋白及葡萄糖等含量下降 ,据文献报导餐后血中不但葡萄糖升高,而且钙、磷、胆 红素、尿酸和白蛋白均有统计学上改变。
(5)枸橼酸钠: 测定血沉用3.8%枸橼酸钠抗凝,抗凝剂与血液比例为1:
4,凝血试验需用3.2%枸橼酸钠抗凝,比例为1:9。
(6)实验室使用抗凝剂种类较多,血细胞分析及红细胞比 积测定宜用 EDTA·K2 抗凝,保证室温下6小时RBC体积不 变,抗凝剂比例为1.0~2.0mg/1ml血。
抗凝血凝固有以下几个原因:
(2) 肝素:常用于电解质、血气分析、血氨等测定。抗凝 剂比例为50~61u肝素/5ml血。注意钠盐可使淀粉酶升高。
(3) 氟化钠:常用氟化钠—草酸钠混合抗凝剂作血糖测定 的抗凝剂,氟化钠可以抑止烯醇化酶,它可避免血细胞葡萄 糖酵解酶的作用,延长标本的保存时间。
完整 微生物标本的正确采集运送ppt课件

︕
极易由表皮葡萄球菌造成污染
标本采集步骤
血培养标本的运送要求和拒收标准
采血量
• 成年人采血量为10~20ml, 婴幼儿为1~2ml,儿童3~5ml
血液标本与培养基之比1:5 -1:10为宜
成人血液中含有的菌量 <=10cfu/ml 儿童血液中含有的菌量 100~1000cfu/ml
• 需氧瓶和厌氧瓶
– 对常规血培养,建议采需氧和厌氧的一套血培养瓶 – 当采血量不能满足推荐的血量时,需氧培养优先
先注入哪个瓶?
影响阳性标本检测的因素
绝对需氧菌
苛养菌?
生长因子X,V 维生素B6,K3
1.细菌
兼性厌氧菌 微需氧菌 绝对厌氧菌
影响阳性标本检测的因素
高?
2. 血中细菌的浓度
低? - 成人:血中细菌1~30 CFU/ml - 儿童:血中细菌高于成人 (100~1000 CFU/ml或更高)
为何要多次采血?
• 血循环中的细菌有“暂时性”、“持 续性” • 一过性的菌血症,细菌仅在外周血中 持续数秒 • 共生菌、复数菌 • 提高检出率、减少漏检,判断病原
采血部位
• 多次采血时,应在不同部位进行 消 毒 剂 的 作 用 时 间 • 切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本
避免由插管或导管取标本
4. 标本的采集次数和采集量
采 血 量 与 检 出 率 的 关 系
每增加 1 毫升血 = 增加 3% 的敏感度 (由0.6%至4.7%)
每天1、2、或3次血培养对敏感度的影响
100% 95% 90% 85% 80% 75% 70% 1 2 3
96% 89%
99%
所以一般要求血培养一天做3次
血培养的阳性检出率低原因:
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标本采集
1.把握时机:血液中许多成分在一天中会出现周期性生理变 化,如胆红素、铁清晨最高;生长激素入睡后出现短时高 峰;血浆蛋白在夜间降低;心肌标志物cTnT、cTnI在发病 后3h开始升高,1-2周逐渐恢复,采血时机4-6h为宜。此 外,还应考虑到饮食、患者状态、用药、输液等情况,一 般在早晨空腹、安静状态、用药和输液前采集标本。 2.选择适当容器:根据项目需要选择相应的促凝管或抗凝管, 适当的混匀等; 3.止血带时间:不宜超过2min,禁止用力在采血部位拍打, 穿刺后患者不要握拳,皮肤消毒后,用干棉签擦干再行穿 刺,静脉穿刺要求一次成功,避免同一部位反复穿刺。 4.唯一性标志:建立申请单与标本容器的唯一对应标识。 5.送检:要及时、避免污染。
3.采血前,患者应处于平静状态,不能运动,不能处于激动或恐惧状态, 不能受过冷或过热刺激。
4.采血前禁食8-12h,但禁食不能超过24h;例如胆红素空腹48h可增加 240%,血糖偏低;一般要求晚饭后禁食,次日清晨采血。
5.吸烟饮酒对检验结果都有影响;
6.药物的药理学或毒理学的作用引起生理、生化、病理的变化,从而影 响检验结果;有些药物的物理化学性质与标本中某些成分作用,或者 与试剂发生反应,或者药物本身带有颜色影响比色反应,从而影响检 验结果。 7.体位变化也影响检验结果。从卧位到坐位或站位时,水分从血液向组 织间隙移动,导致大分子物质蛋白质假性增高。
2.标本的送检:
标本留取后1小时之内必须送检。超过2小 时易造成假阳性,应重新留取标本送检。 标本送达实验室后,应立即接种,不能存 放。
四、便培养标本的采集和送检
1.标本采集:应在发病早期、未用抗菌素前采 集标本。可直接采集、也可用直肠棉拭子采 集。 2.标本送检:标本采集后应立即送检;实验室 接到标本后应立即接种。 3.显微镜检查:粪便直接涂片做革兰氏染色, 可作为弧菌、弯曲菌、葡萄球菌、白色念珠 菌等初步筛查。
细菌培养标本采集和送检
标本管理的安全提示
► 标本的采集、运送和处理应在无菌操作和/或
防止污染的原则下进行。 ► 已采集的原始标本都应置于防漏、密封的容 器中运送,并有条形码标识。 ► 带针头的注射器运送标本时,用无菌试管或 其他防护装置套住注射针,再置于防漏塑料 袋中运送。
一、血培养标本的采集和送检
► 标本的采集通常是由医生和护士执行的。临
床标本的正确采集在检验的全部过程中是最 重要的一环,它涉及病人的准备、标本的采 集、选用、处理、运送等,这样一个分析前 过程。
患者准备:
1.患者的年龄、性别、种族称之为固定生物因素,通过建立相应参考区 间加以解决;
2.患者的状态、饮食、药物称之为非固定生物因素,对这些可变的生物 因素不加以控制,结果可能会出现很大偏差,从而导致错误的判断。
标本合格的标本进行检测不如不进行
检测。”这是一条非常重要的原则。对于保
证实验室的工作质量至关重要。 ► 保持标本自然状态,才能保证检验质量。它 是分析前的重要质量指标,只有高度重视标 本质量(标本采集的每个环节),才能实现 得到及时的、准确的检验结果和缩短诊治周 期的目的(TAT turn around time).
1.采血时机:最好在发热期间,以正在发冷发热时
为宜,最佳条件是在抗菌治疗前。
2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病和急性化脓
性疾病时,需要马上用抗菌素治疗或需要紧急手 术治疗的患者,应立即从两臂分别取1份标本。对 感染性心内膜炎患者24h内取血3次,每次间隔 ≥30分钟,必要时次日在做2次。对发热不明的两 次抽血间隔≥60min,必要时24~48h后再抽血2次。 据统计1次抽血阳性率10.8%,2此抽血阳性率 14.8%。
►
分 类
6 5 4 3 2 1
白细胞/扁平上皮细胞 白细胞 <25 >25 >25 >25 10~25 <10 扁平上皮细胞 <25 <10 10~25 >25 >25 >25
4.显微镜检查初步报告:在对标本质量检查 的同时,可以作出初步病原学参考诊断, 如革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌、球菌或 杆菌等。 5.分离培养:最好接种三种培养基,即血琼 脂培养基、巧克力琼脂培养基、麦康凯琼 脂培养基(中国篮)。 6.特殊要求的作特殊处理:如抗酸染色等。
三、尿培养标本的采集和送检
1.标本采集的基本要求: ► 在应用抗菌素之前或停药5d以上; ► 尿液应在膀胱停留6—8h以上; ► 留取标本次数不能少于3次; ► 留取标本必须保持清洁,不能有任何外部污 染; ► 留尿的方法:清洁排尿法、膀胱穿刺法、导 尿法、肾盂穿刺法等。
(1)清洁排尿法:是最常用的方法,也是最易造 成假阳性的方法,有很多注意事项需要患者按要求 认真去做,更重要的是我们医务人员要耐心详细告 知病人如何去做。用肥皂水清洗外阴,然后用清水 冲洗尿道口;女患者要将阴唇分开清洗,男患者要 将包皮翻转清洗,排出前段尿,留取中段尿。婴儿 要做阴部消毒,将无菌瓶对准尿道,用橡皮膏固定。 (2)膀胱穿刺法:是避免尿道正常菌群污染的最 好采集方法。 (3)留置导尿法:用消毒剂严格消毒导尿管和引 流管连接处,用注射器穿刺导尿管吸取尿液,不能 打开尿管放出留取,也不能用引流袋中的尿液作为 标本。
3.采血部位:多次采血应在不同部位,一是避免污
染,二是在不同部位取血,2次分离出同样菌种才 是确定病原菌的有力证据。
4.采血量:
成人10ml;儿童5ml;婴幼儿2ml;
5.无菌操作:从皮肤消毒、标本采集、运送、分离
各环节都要严格无菌操作,避免污染。用头皮针 抽血时,应更换针头再将血注入培养瓶。
6.送检:在20℃室温下存放不应超过2小时,要求在
低室温下要及时送检。
二、痰培养标本的采集和送检
1.标本采集:要求患者清晨留 取,先用清水漱口三次, 之后用力自然咳出。 2.标本运送:标本直接吐在专 用痰盒内立即送检,最好 在20min内送达细菌室。 3.标本质量:显微镜涂片检查
1~3类为唾液不做培养,重留标本; ► 4~5类为合格标本; ► 6类为气管穿刺液,如未见到WBC,而扁 平上皮>10/LP,也应重新留取标本。