药理学实验指导
药学大实验实验指导药理学部分
药学大实验实验指导药理学部分Revised at 2 pm on December 25, 2020.药学实验（药理学实验）实验五不同给药途径、给药剂量对药物作用的影响(一)不同给药途径对药物作用的影响实验目的观察不同给药途径对药物（硫酸镁）作用的影响，了解核酸镁不同给药途径产生不同作用的原因；掌握硫酸镁的作用以及小鼠灌胃、腹腔注射方法实验原理硫酸镁为一种容积性泻药（此外还有刺激性和润滑性泻药），口服在肠道难吸收，在肠内形成高渗压而阻止肠内水分的吸收，从而扩张肠道、刺激肠壁、促进肠道蠕动，产生泻下作用。
注射给药可使血中Mg2+增加，由于Ca2+和Mg2+化学结构相似，Ca2+和Mg2+间存在相互拮抗作用，Ca2+参与运动神经末梢Ach释放，而Mg2+拮抗Ca2+这种作用，结果使神经肌肉接头处Ach减少，骨骼肌紧张性降低，肌肉松弛。
同时对中枢神经及心血管系统产生抑制作用。
因此产生抗惊厥及降压效果。
本实验观察不同给药途径对硫酸镁作用性质的影响。
大多数药物需进入血液分布到作用部位才能发生作用。
药物自给药部位进入全身血液循环的过程为吸收（absorption），吸收速度的快慢及吸收数量的多少直接影响药物的起效时间及强度。
其中给药途径是决定药物起效时间及强度的重要因素之一。
给药途径不同，则药物吸收快慢亦不同，其吸收快慢顺序除静脉注射外是：腹腔注射>吸入>舌下>直肠>肌内注射>皮下注射>口服>皮肤。
给药途径不同，其吸收程度又不同，由此使药物作用强度不同。
药物经不同给药途径所致的吸收程度是：吸入、舌下、直肠、肌内注射较为完全，口服次之，皮下较差；皮肤表面吸收程度最差，一定要脂溶性特别高的药物才能通过此途径较好地吸收。
而胃肠道给药，影响因素较多，包括有首关消除的影响等，使药物吸收程度有所不同。
首关消除（first pass elimination）：从胃肠道吸收入门静脉系统的药物在到达全身血循环前必先通过肝脏，如果肝脏对其代谢能力很强或由胆汁排泄的量大，则使进入全身血循环内的有效药物量明显减少，这种作用称为首关消除。
实验实训指导书药理学
实验一药理学实验基本知识和技术实验目的：1、掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力；2、更好地掌握药理学基本理论知识；3、培养科学思维。
实验内容：一、药理实验的基本目的与要求二、实验动物：1、动物的选择；2、动物的标记与捉拿、固定方法；3、动物的取血方法（尾尖、眼眶静脉丛、摘眼球、断头）；4、动物的给药方法（灌胃、腹腔、皮下、尾静脉）；5、动物的麻醉方法；6、动物的处死方法。
三、实验设计基本原则。
实验步骤：一、药理学实验的基本目的与要求药理学实验课在药理学教学中占有非常重要的地位。
药理学实验课的目的在于通过实验验证药理学的基本理论，加深理解与掌握药理学的基本知识和规律；也是了解获得药理学知识的科学途径。
同时，培养学生独立思考，独立工作，科学思维的能力；培养学生动手操作、分析问题和解决问题的能力；还应培养学生对科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法及实事求是的工作作风。
为了达到上述目的，要求做到下列事项：1. 实验前：预习实验内容并复习相关理论知识；2. 实验时：（1）实验分小组进行，实验前分工明确，实验时密切配合；（2）确定实验仪器、药品、动物与实验指导相符时，将实验器材妥善安排，正确装置、保管；（3）实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，实事求是地做好记录；（4）注意爱护动物、节约实验药品；（5）实验过程中保持实验室肃静、清洁。
3. 实验后：⑴各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘送回准备室；⑵值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所；⑶整理实验结果，经分析思考作出结论，按要求写出实验报告，按时交给指导老师。
实验报告的书写1.题目2.目的3.原理4.材料：实验动物，器材，药品5.方法：用自己的语言简单扼要描述出来；6.结果：要求真实、清楚；7.讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足之处；结果异常或失败的原因；8.结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。
药理学实验指导
药理学实验指导（供自学助考班用）实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识；2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。
【器材】1ml、5ml、20ml注射器，大、小鼠灌胃针头，4号、6号注射针头，250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼)，天平秤、砝码。
【药品】0.9%生理盐水。
【动物】小白鼠、大鼠、家兔。
【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍，食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢；右手将双下肢拉直，左手无名指及小指将其压住而固定。
此法用于淋巴囊注射。
毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部，拇指和无名指小指握持双下肢，右手持刺针进行操作。
2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。
双手法：右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
单手法：小白鼠置于笼盖上，先用左手食指与拇指抓住鼠尾，手掌尺侧及小指夹住尾根部，然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。
3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人，捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠，先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与手掌握住背部和腹部。
不要用力过大，切勿捏其颈部，以免窒息致死。
4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大，其吃重点越分散)。
将兔提起，以左手托住其臀部，使兔呈坐位。
二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig)：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道。
如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。
常用灌胃量为0.1～0.2ml/10g。
皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。
注药量一般为0.1～0.2ml/10g。
肌肉注射(im)：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。
药理学常见实验操作方法
药理学常见实验操作方法药理学是研究药物在生物体内的活性、代谢、毒性和药物与生物体之间的相互作用等问题的学科。
药理学实验是药理学研究的重要手段，通过实验可以研究药物的药效、药代动力学、药物的药理作用和机制等方面的问题。
下面将介绍一些药理学常见的实验操作方法。
1. 细胞培养实验：细胞培养实验是研究药物对细胞的作用的一种常见的药理学实验方法。
首先需要选择合适的细胞系进行培养，如癌细胞、原代细胞等。
接下来，将药物加入到细胞培养基中，观察药物对细胞的影响，如细胞的增殖、凋亡、分化等。
可以使用细胞形态学方法、免疫组化、蛋白质分析等技术手段来评估药物对细胞的影响。
2. 动物实验：动物实验是研究药物在整个生物体内的药效和毒性的重要手段。
常见的动物实验包括药物的急性毒性实验、慢性毒性实验、药物代谢动力学实验、药效学实验等。
首先需要选择合适的动物模型，如小鼠、大鼠、猴子等。
然后，将药物给予动物进行观察和检测，如观察动物的行为、记录动物的生理指标、取动物组织样本进行药物浓度测定等。
3. 体外药物解剖学实验：体外解剖学实验是研究药物在体内分布、转化和代谢的重要手段。
常见的体外实验包括药物的分配实验、药物代谢实验、药物排泄实验等。
该实验通过收集和分析体内样本（如血液、尿液、组织）中的药物浓度以及代谢产物的浓度来评估药物在体内的代谢和排泄情况。
使用的方法包括液相色谱质谱联用技术、高效液相色谱技术、放射性同位素标记技术等。
4. 离体器官实验：离体器官实验是研究药物在特定器官上的药理作用的一种常见实验方法。
常见的离体器官实验包括离体心脏实验、离体肠段实验、离体骨骼肌实验等。
该实验将动物的某个器官取出，放置在体外培养液中，然后加入药物进行实验。
通过记录器官的生理活动的变化来评估药物对该器官的作用。
以上是药理学常见的一些实验操作方法，这些实验方法可以帮助研究人员深入了解药物的药理学特性和作用机制。
当然，在进行这些实验时，也需要遵守实验操作规范，保护实验动物的权益，确保实验结果的准确性和可靠性。
药理实验指导教案
药理实验指导教案一、实验目的通过药理实验，了解药物的作用机制、药力学参数以及药物相互作用等相关知识，培养学生科学实验的能力。
二、实验材料与设备1. 实验药物：如阿司匹林、盐酸吗啡等。
2. 药理实验动物：如小鼠、大鼠等。
3. 实验器材：如注射器、实验仪器等。
4. 实验材料：如生理盐水、缓冲液等。
三、实验内容及步骤1. 实验前准备（1）准备好实验动物，确保健康状况良好。
（2）配制药物溶液，根据药物剂量和实验要求进行稀释。
（3）准备实验器材和材料。
2. 药效学实验（1）组织实验动物，随机分组。
（2）给予实验动物不同剂量的实验药物，如阿司匹林。
（3）观察实验动物的反应，如频率、强度等。
（4）根据实验结果，绘制药物剂量-反应曲线图。
（5）计算药物的EC50值。
3. 药物代谢实验（1）给予实验动物一定剂量的药物，如盐酸吗啡。
（2）在一定时间间隔内，采集实验动物的生物样本，如血液、尿液等。
（3）采用适当的实验方法，分离和检测药物及其代谢产物。
（4）绘制药物的浓度-时间曲线图，并计算药物的半衰期。
4. 药物相互作用实验（1）选择两种具有不同作用机制的药物，如阿司匹林和盐酸吗啡。
（2）给予实验动物单独使用这两种药物，并记录其反应。
（3）给予实验动物同时使用这两种药物，并记录其反应。
（4）比较两种情况下实验动物的药效差异，评估药物之间的相互作用。
5. 实验结果分析根据实验数据和观察结果，进行统计学分析，并进行合理的解释和讨论。
四、实验安全注意事项1. 遵循实验室安全操作规范，佩戴实验服和防护手套。
2. 确保实验动物的福利，遵循动物实验伦理的相关规定。
3. 注意药物的剂量和给药途径，避免超出安全范围。
4. 注意药物的保存和处理，避免污染和损坏。
五、实验总结与思考对实验结果进行总结，并提出对实验方法和结果的改进意见。
思考药物在临床应用中的重要性和意义。
六、实验拓展学生可以根据自身兴趣和实验条件，开展其他相关的药理实验，如药物对器官的作用、药物对行为的影响等。
河北医大中药药理学实验指导04基本实验项目-9延胡索对小白鼠的镇痛作用(扭体法)
实验九延胡索对小白鼠的镇痛作用（扭体法）
【目的】观察延胡索的镇痛作用。
【原理】延胡索能活血行气止痛。
小白鼠腹腔受化学药物刺激，表现为扭体反应，以此作为指标、观察金铃子散的镇痛作用。
【器材】注射器、烧杯、鼠笼、计时器等。
【药品】延胡索水煎液lg/ml、0.6%醋酸溶液、生理盐水。
【动物】小白鼠。
【方法】将小鼠称重、标记后随机分组。
给药组灌服延胡索水煎液0.3ml∕10g,对照组灌服等量生理盐水。
给药后30min,各鼠腹腔注射0∙6%醋酸溶液0.2ml/只。
观察并记录注射醋酸溶液后15~30min内出现扭体反应（腹部收缩内凹、伸展后肢、臀部抬高、蠕行）的次数及时间。
计算延胡索的镇痛百分率。
镇痛率二（对照组平均扭体次数-金铃子散组平均扭体次数）÷对照组平均扭体次数XlO0%
【结果】将实验结果填入表内。
延胡索对小鼠的镇痛作用（□±SD）
【注意】
（I）0.6%醋酸溶液必须临用前配制。
(2)若延胡索为生品，煎煮时可加入0.1%醋酸或食用醋适量，以助生物碱成分溶出。
(3)小鼠对疼痛刺激的反应差异甚大，据药理学惯例，镇痛百分率须大于50%才认为有镇痛作用。
(4)也可用0.01%酒石酸睇钾溶液0.2ml∕只致痛，作扭体实验。
药理学实验基本操作方法
药理学实验基本操作方法药理学实验基本操作方法是指在药理学研究中进行药物活性、毒性、代谢及药效评价等方面的实验操作方法。
下面将详细介绍药理学实验的基本操作方法。
1. 药物制备：首先需要准备所需的药物溶液。
根据实验需要，药物可以是天然的、合成的或者已经商业化的。
药物溶液的配制方法包括溶于溶剂中、配制不同浓度的药物溶液等。
药物在实验前需要进行精确称量，确保药物剂量的准确性。
2. 动物实验模型：选择合适的动物模型是进行药理学实验的关键。
常用的动物模型包括小鼠、大鼠、猪、猴等。
通过选用适合的动物模型可以更好地模拟人体的生理和病理状态，从而评价药物的疗效和安全性。
在动物实验前，需要进行动物的饲养和培养。
3. 药物给药方式：药物给药方式的选择取决于药物的性质和实验的目的。
常用的给药方式包括经口给药、静脉注射、皮下注射、直肠给药等。
给药时需要注意用药剂量、次数和给药时间的准确控制。
4. 临床观察和测量指标：在药理学实验中，需要对动物进行临床观察和测量，以评价药物的药效和毒性。
常见的观察指标包括体温、心率、呼吸频率、血压等。
另外，还可以通过采集血液、尿液等样本，进行对药物代谢、药物浓度的测定。
5. 数据处理和统计分析：药理学实验结束后，需要对实验数据进行处理和统计分析。
数据处理通常包括数据整理、计算药物的半数抑制浓度（IC50）、最大效应等指标，绘制药效曲线等。
统计分析可以通过方差分析、t检验、相关性分析等方法进行。
6. 实验设备消毒和废弃物处理：在药理学实验过程中，需要定期对实验设备进行消毒，以防止交叉感染。
实验结束后，需要按照相关规定安全处理药物残余和废弃物，确保实验环境的安全和卫生。
总结起来，药理学实验的基本操作包括药物制备、动物实验模型选择、药物给药方式、临床观察和测量指标、数据处理和统计分析以及实验设备消毒和废弃物处理。
这些基本操作方法是进行药理学实验的基础，通过合理的操作方法可以提高实验的准确性和可靠性，为药物的研发和临床应用提供科学依据。
药理学实验指导
药理学实验指导2实验报告的写作2.1实验题⽬实验题⽬⼀般应包括实验药物、实验动物、实验主要内容等。
如“⼼得安对⿇醉⽝的降压作⽤分析”，“普鲁卡因肌注对⼩⿏局⿇作⽤及中毒抢救”，“奎尼丁抗电诱发的蛙⼼⼼律失常的作⽤”等。
2.2实验⽬的2.3实验⽅法2.4实验结果实验结果是实验报告中最重要的部分，需绝对保证其真实性。
应随时将实验中观察到的现象在草稿本上记录，实验告⼀段落后⽴即进⾏整理，不可单凭记忆或搁置了长时间后再作整理，否则易致遗漏或差错。
实验报告上⼀般只列经过归纳、整理的结果。
但原始记录应予保存备查。
2.5讨论讨论应针对实验中所观察到的现象与结果，联系课堂讲授的理论知识，进⾏分析和讨论。
不能离开实验结果去空谈理论。
要判断实验结果是否为预期的。
如果属于⾮预期的，则应该分析其可能原因。
讨论的描述⼀般是：⾸先描述在实验中所观察到的现象，然后对此现象提出⾃⼰的看法或推论，最后参照教科书和⽂献资料对出现这些现象的机制进⾏分析，如实验观察到⽤药后动物出现了什么现象，提⽰了该药可能具有什么药理作⽤，⽂献曾报道该药可对什么受体有作⽤。
因此，可初步推测该药的这种药理作⽤可能与其作⽤于什么受体有关。
2.6结论实验结论是从实验结果归纳出来的概括性判断，也就是对本实验所能说明的问题、验证的概念或理论的简要总结。
不必再在结论中重述具体结果。
未获证据的理论分析不能写⼊结论。
第⼆章药理学实验设计的基本知识⼀实验设计的基本原则药理学研究的⽬的是通过动物实验来认识药物作⽤的特点和规律，为开发新药和评价药物提供科学依据。
由于⽣物学研究普遍存在的个体差异，要取得精确可靠的实验结论必须进⾏科学的实验设计，因此必须遵循以下基本原则。
1 重复“重复”包括两⽅⾯的内容，即良好的重复稳定性（或称重现性）和⾜够的重复数，两者含意不同⼜紧密联系。
有了⾜够的重复数才会取得较⾼的重现性，为了得到统计学所要求的重现性，必须选择相应的适当的重复数。
统计学中的显著性检验规定的P<0.05及P<0.01反映了重现性的⾼低；“P”表⽰不能重现的概率。
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药理学实验指导中药教学部重庆邮电学院生物学院二O O四年六月前言药理学实验教学的目的，不仅是验证药理学理论，还可培养学生基本操作技能，观察和分析解决问题的能力，以及体验科学研究的基本原则和基本程序，从而提高学生实验研究能力和严密的科学思维方法。
为了使各专业的学生能深入理解药理学的基本理论和基本知识，特编写了这本《药理学实验实验指导》。
本实验指导选择的实验内容经典、实用，做到既与理论课有密切联系，又有实验课的独特体系；既有整体动物（包括清醒动物和麻醉动物）实验，又有器官水平实验；既有验证性实验，又有设计性实验,还有综合性实验。
从而使学生初步具备对客观事物进行观察、比较、分析、综合和解决问题的能力，并验证、巩固和加深理解基本理论，从而初步掌握药理学实验的基本方法。
为了达到上述目的，要求同学们做到下列事项：一、遵守纪律，提前5分钟到达实验室，因故外出或早退应向老师请假。
进入实验室必须身穿白大衣，不许穿拖鞋，衣着整洁干净。
实验时应严肃认真，不高声谈笑，不进行实验室无关的活动。
违者将给予一定的处罚。
二、实验前：1.仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、方法和操作步骤，领会其设计原理；2.结合实验内容，复习有关药理学和生理学、生化学等方面理论知识做到充分理解；3.预测实验中各个步骤可能出现的情况；4.注意实验中可能发生的问题。
三、实验时：1.实验者必须先熟悉仪器的使用要点，而后运用。
仪器损坏或失灵，应请老师修理或调换。
违章操作使仪器损坏者，要进行赔偿。
各小组实验器材不得调换。
公用物品用完后放回原处。
2.实验时将实验器材妥善安排好，正确装置；严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确计算给药量，防止出现差错意外；3.认真仔细地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应出现的时间、表现以及最后转归，联系课堂讲授内容进行思考。
4.注意节约实验材料。
四、实验后：1.整理实验结果，经过分析思考，写出实验报告（①.名、班级、组别、日期、操作者②.题目、目的、简要方法(包括仪器，药品等)．③实验结果是实验中最重要的部分，应该忠实，正确地记述实验过程中所观察到的现象。
一定随时记录，不可单凭记忆，否则容易发生错误或遗漏）。
时交给指导教师；2.整理实验器材，洗净擦干，妥为安好，放回原处。
将用过的动物进行处死动物及其他废物丢入指定处所。
有班长安排各组进行轮流打扫清洁，做好实验室的清洁卫生工作（桌、凳、地板、收拾干净，摆放整齐），离开时关闭所有的水、电、气关好门窗。
生物信息学院中药学教学部刘圣蓉刘毅编著二0 0四年六月目录实验一实验动物的捉持法和给药法3 (8)实验二不同给药途径对药物作用的影响8实验三传出神经系统药物对麻醉兔血压的作用9 (10)实验四氯丙嗪的安定和抗激怒反应作用11实验五吗啡的镇痛作用12 (13)实验六有机磷药物的中毒及其解救14 (15)实验七强心苷对在体蛙心的作用16附录常用生理溶液的成分和配制17 (18)实验一实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1．小鼠（1）双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。
迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图1）。
图1小鼠双手捉持法（2）单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤（图2）。
图2 小鼠单手捉持法2. 大鼠大鼠容易激怒咬人，捉持时应戴防护手套。
先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与掌部握住背部和腹部。
注意不要捏其颈部，以防用力过大、过久，窒息死亡。
3．家兔一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，使兔呈蹲坐姿势（图3）。
切不可用手握持双耳提起兔子。
图3 家兔捉持法4．豚鼠豚鼠性情温和，不咬人，用手轻轻握住身体即可抓起。
5. 猫应戴好防护手套。
轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻抚猫头、颈和背部，一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住腰背部。
性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持，操作中应防其利爪和牙齿伤人。
6. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套，用绳带固定于耳后颈部；凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部，然后套上嘴套。
狗嘴也可用绳带固定，操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结，再绕到颈后部打结，以防绳带滑落。
狗麻醉后四肢固定于手术台上，取下嘴套或绳带，将一金属棒经两侧嘴角，穿过口腔压于舌上，再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴，并固定于手术台上。
应将狗舌拉出口腔，以防窒息。
二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。
适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。
口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。
若为保证剂量准确，可应用灌胃法。
（1）灌胃法小鼠：左手捉持小鼠，腹部朝上，右手持灌胃管经口角插入口腔，使灌胃管与食管成一直线，再沿上颚壁缓慢插入食管，稍感有阻力时(大约灌胃管插入1/2)，如动物安静，呼吸无异常，即可注入药液。
如遇阻力应抽出灌胃管重新插入，若药液误注气管，小鼠可立即死亡。
一次灌注药量0.1－0.3ml/10g体重。
操作宜轻柔，防止损伤食管（图4）。
灌胃管可用粗大的注射针头制作，磨钝针尖制成，管长4-5cm，直径1mm，连接于1-2ml注射器上即成。
图4 小鼠灌胃法大鼠：左手捉持大鼠，右手持灌胃器，灌胃方法与小鼠相同。
若两人合作时，可由助手协助固定后肢与尾巴。
但灌胃管必须长6－8cm，直径1.2mm，尖端呈球状，并安装在5－10ml 的注射器上。
注药前应回抽注射器，证明未插入气管（无空气逆流）方可注入药液。
一次投药量1—2ml／100g体重。
家兔：需两人合作，一人坐好将兔躯体夹于两腿之间，左手紧握双耳固定头部，右手抓住两前肢固定前身，使兔头稍向后仰；另一人将木或竹制开口器横放于兔口中，将兔舌压住，以8号导尿管经开口器中央小孔，沿上颚壁慢慢插入食管15－18cm。
为避免误入气管，可将导尿管外口端放入清水杯中，无气泡逸出方可注入药液，并应再注入少量清水以保证管内药液全部进入胃内。
灌毕，慢慢拔出导尿管取出开口器（图5）。
图5 家兔灌胃法豚鼠：如用灌胃器，灌胃法与大鼠相同。
如用开口器和导尿管，操作方法与兔灌胃法相同。
猫和狗：灌胃方法与兔相似，将导尿管从鼻腔或口腔经食管插入胃内给药。
操作时应防止动物咬伤与抓伤。
（2）口服法片剂药物可在扒开动物上下齿列后，用镊子夹住药物放在舌根部，迅速合起上下颌即可咽下药物。
给药前若先以水湿润口腔内部，更易咽下。
液体药物可在轻轻固定动物头部后，从口角齿列间注入药液，动物多能自动咽下。
溶于水的药物也可加入饮水中口服，不溶于水的药物可加入饲料中给药。
但这两种给药法必须是无味的药物，且难以保证剂量准确。
2. 注射给药法（1）皮下注射法：小鼠：一般需两人合作，一人把小鼠头与鼠尾牵向两端并固定，另一人左手提起背部皮肤，右手持注射器刺入皮下，若针头容易向左右摆动即可注入药液。
拔针时左手捏住针刺部位，防止药液外漏（图6）。
一人操作可把小鼠放在金属网上，左手拉鼠尾，小鼠以其习性向前移动，此时右手持注射器从头端向尾部刺入背部皮下。
注药量0.1－0.3 ml/10g体重。
图6 小鼠皮下注射法大鼠：以捉持法握住大鼠，于背部或大腿拉起皮肤，将注射针刺入皮下。
一次注射药量小于1.0ml/100g体重。
家兔：左手将兔背部皮肤提起，右手持注射器，针尖刺人皮下松开左手，进行注射。
豚鼠：注射部位可选用大腿内侧面、背部、肩部等皮下脂肪少的部位。
通常为大腿内侧面注射。
一般需两人合作，一人固定豚鼠，一人进行注射。
猫：将臀部皮肤拉起，将注射针刺入皮肤与肌肉之间，注入药液。
犬：将犬的颈部或背部皮肤拉起，注射针刺入皮下进行注射。
（2）皮内注射法：先将注射部位剪去毛。
左手绷紧皮肤，右手持注射器，小于15°角刺入皮内，注射药液，注射处出现一白色小皮丘。
（3）腹腔注射法：小鼠：左手捉持小鼠，腹部向上，右手将注射器针头刺入皮肤，其部位是距离下腹部腹白线稍向左或右的位置。
向前推进3—5mm，接着使注射器针头与皮肤呈45°角刺入腹肌，继续向前刺人，通过腹肌进入腹腔后抵抗消失，这时即可轻轻注入药液。
小鼠的一次注射量为0.1—0.2m1/10g 体重（图7）。
图7 小鼠腹腔注射法大鼠：腹腔注射与小鼠相同。
注射量为1—2ml/100g体重。
豚鼠、猫、免等：豚鼠、猫腹腔注射部位同小鼠。
兔在下腹部近腹白线左右两侧约lcm处，犬在脐后腹白线侧边1—2cm处注射为宜。
（4）静脉注射法：大鼠和小鼠：一般采用尾静脉注射，事先将小鼠和大鼠置于固定的筒内或铁丝罩内，或扣于烧杯内，使尾巴露出，于45—50℃温水中浸泡、或用60-100瓦电灯泡烘烤、或用75％酒精棉球擦之，使血管扩张，选择尾巴左右两侧静脉注射，注射时若出现隆起的白色皮丘，说明未注入血管，应重新向尾根部移动注射。
一次注射量小鼠为0.05—0.1ml/10g体重（图8）。
注射完毕后用棉球按压止血。
图8小鼠尾静脉注射法家兔：一般采用耳缘静脉注射。
可用酒精棉球涂擦耳部边缘静脉，或用电灯泡烘烤兔耳使血管扩张。
以左手指在兔耳下作垫，右手持注射器，针头经皮下进入血管。
注射时若无阻力或无发生隆起现象，说明针头在血管内，注射完毕，压住针眼，拔去针头，继续压迫数分钟止血（图9）。
图9 家兔耳缘静脉注射法豚鼠：一般用前肢皮下头静脉注射，后肢小隐静脉注射也可以。
接近下部比较容易刺入静脉。
注射量一般不超过2ml。
猫：一般采用前肢皮下头静脉注射。
注射前先将猫装入固定袋或笼内，左手抓住前肢，酒精棉球涂擦后，从前肢的末稍端将注射器针头刺入静脉。
证实针在静脉内后，即可注射。
犬：可选用前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。
以手或橡皮带把静脉向心端扎紧，使血管充血。
酒精棉球涂檫后，针头向近心端刺入静脉，回抽针栓，倘有回血即可推注药液（图10）。
图10 犬后肢外侧小隐静脉(左)和前肢背侧皮下头静脉(右)注射法实验二不同给药途径对药物作用的影响[目的]观察不同给药途径对尼可刹米作用的影响。
[器材]注射器（1ml×l）、小鼠灌胃器、玻璃钟罩。
[药品] 5％尼可刹米溶液。
[动物] 小鼠[方法]小鼠3只，称重，编号甲、乙和丙。
先观察正常活动，如呼吸、活动度和运动协调程度等。
然后将甲、乙、丙鼠以5％尼可刹米溶液0.2m1/10g体重，分别灌胃、皮下和腹腔注射，观察给药后各鼠是否出现兴奋、惊厥等症状，并记录出现症状的时间和小鼠的最终结局。
[结果] 将观察结果列表比较。
[思考题]不同给药途径为什么会影响药物效应？实验三传出神经系统药物对麻醉兔血压的作用[目的]观察传出神经药物对心血管系统的作用，并根据受体学说初步分析其作用机制。