血液样本的采集运输处理保存
血液样本的采集运输处理
保存
Final approval draft on November 22, 2020
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运
输、处理、保存
sop 版本
号：第五版
标准操作规程（SOP）
编号：DZJY/ZY450-01
题目：血液样本的采集、编号、运输、处理、保存
版本：第五版
作者：曲文才
日期：2010/05/20
页数：３
联系人：曲文才
SOP 1 版本
号：第五版
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运
输、处理、保存sop 版本号：第五版
一、目的
确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完
整、不被污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。保
证分析数据、血样的准确性和具有可追溯性。
二、范围
适用于 HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。
三、责任
操作人员严格按要求执行。
四、定义
无
五、背景
本 SOP 是为配合 HIV实验室检测，现场样品从采集到检测前的工作而制定
的, 以确保检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。
六、程序
1、采集
(1) 所需材料 : 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒
精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。
(2) 采血方法 :
采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。
70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。
在采血枕上铺上一次性纸垫。
让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。
将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏
水平线。
在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静
脉，确认是静脉。
用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。
用酒精成同心圆状向外消毒。
待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。
沿血流方向, 以与前臂成 150°将针头插入静脉内。
血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采
血量要求后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。
采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。
嘱咐调查对象按住棉球 5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平 ; 将针
头弃入金属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。
(3) 血清采集
取静脉血3ml，室温放置2小时，待血液凝固、血块收缩后，3000rpm离心
15分钟，吸出血清备用，编号登记。
抗凝血样品采集：用注射器抽取静脉血，转移至加有抗凝剂的试管内，反
复
SOP 2 版本
号：第五版
艾滋病筛查实验室标准操作规程血液样本的采集、编号、运
输、处理、保存sop 版本号：第五版
轻轻颠倒混匀6～8次，编号登记，备用。
2、样品编号
(1) 编号原则：唯一性原则，简明性原则，稳定性原则。
(2) 方法：样品编号前4位数字为年代号，后4位为样品序号
□□□□-□□□□
年代号:为年代后四位，例如：2010年，年代号为2010
样本序号：按采样或接受样本先后顺序进行的流水编号
3、样品的运送
(1) 应符合生物安全要求，有专人专程护送，运送样品必须有记录。
(2) 样品应置于带盖的试管内，试管上应有明显的标记，标明样品的编号或受检者姓名
(3) 采用三层容器对样品进行包装，随样品附有送检单。
(4) 接样第一层为带盖的试管，第二层为带密封口的塑料袋，第三层为保温壶。
(5)用于抗体检测的血清或血浆样品应在冻存条件下运送，用于CD4+和CD8+T 淋巴细胞测定的样品应在室温下（18～25℃）或4℃（特殊要求时）运送。用于病毒载量检测的样品应在-20℃以下运输。
4、样品的接受
(1) 样品必须在具有处理感染性材料能力的实验室内、由经过培训的工作人员在生物安全柜中打开，用后的包裹应及时进行消毒。
(2) 核对样品与送检单，检查样品管有无破损和溢漏。如发现溢漏应立即将尚存留的样品移出，对样品管和盛器消毒，同时报告实验室负责人。
(3) 检查样品的状况，记录有无严重溶血、微生物污染、血脂过多以及黄疸等情况。如果污染过重或者认为样品不能被接受，应将样品安全废弃。并将样品情况立即通知送样人。
(4) 接受样本编号登记。
5、样品的保存
用于抗体和抗原检测的血清或血浆样品，短期（1周）内进行检测的可存放于2～8℃，一周以上应存放于-20℃以下。
七、参考文件
《全国艾滋病检测技术规范》（2009年修订版）中国疾病预防控制中心《程序而文件》（第三版）德州市疾病预防控制中心
SOP 3 版本号：第五版
第二章 废水样品的采集和保存
第二章废水样品的采集和保存 §2-1概述 在具有代表性的时间，地点，按规定的采集要求采集水样，才能准确反映实际的污染情况。若忽视了试样的代表性，即使采用先进的分析手段，进行认真地分析，得到的结果也是不准确的，没有代表性的。这不仅浪费了、人力人物力，而且还误导了环境治理工作。因此，准确的采样是环境分析的首要问题。 采样涉及采样的时间、地点和频数三个方面。为了采集到有代表性的废水，采样前应该了解污染源的排放规律和废水中污染物浓度的时空变化。在采样的同时还应该测量废水的流量，获得排污量的准确数据。 §2-2 废水采样点的设置原则 一、布设原则 1．第一类污染物采样点位一律设在车间或车间处理设施的排放口或专门处理此类污染物设施的排口。第一类污染物主要有汞、镉、砷、铅的无机化合物，六价铬的无机化合物及有机氯化合物和强致癌物质等。 2．第二类污染物采样点位一律设在排污单位的外排口。第二类污染物主要有悬浮物、硫化物、挥发酚、氰化物、有机磷化合物、石油类、铜、锌、氟的无机化合物、硝基苯类、苯胺类等。 3．综合排污口、排污渠的采样应在污水泵站的进水口及安全溢流口，污水处理厂的进水、出水口和市政排污管线入江(河)口处设置采样点。 4．废水处理设施效率监测采样点的布设 （1）对整体废水处理设施效率监测时，在各种进入废水处理设施废水的入口和废水设施的总排口设置采样点。 （2）对各废水处理单元效率监测时，在各种进入处理设施单元废水的入口和设施单元的排口设置采样点。 §2-3 废水样采集的时间和频率 一、采样频次 1．监督性监测
地方环境监测站对污染源的监督性监测每年不少于1次，如被国家或地方环境保护行政主管部门列为年度监测的重点排污单位，应增加到每年2～4次。因管理或执法的需要所进行的抽查性监测或对企业的加密监测由各级环境保护行政主管主管部门确定。 2．企业自我监测 工业废水按生产周期和生产特点确定监测频率。一般每个生产日至少3次。废水监测应填写废水监测基本信息登记表。 3．对于污染治理、环境科研、污染源调查和评价等工作中的污水监测，其采样频次可以根据工作方案的要求另行确定。 4．排污单位为了确认自行监测的采样频次，应在正常生产条件下的一个生产周期内进行加密监测：周期在8h以内的，每小时采1次样；周期大于8h的，每2h采1次样，但每个生产周期采样次数不少于3次。采样的同时测定流量。根据加密监测结果，绘制污水污染物排放曲线(浓度-时间，流量-时间，总量-时间)，并与所掌握资料对照，如基本一致，即可据此确定企业自行监测的采样频次。 根据管理需要进行污染源调查性监测时，也按此频次采样。 5．排污单位如有污水处理设施并能正常运转使污水能稳定排放，则污染物排放曲线比较平稳，监督监测可以采瞬时样；对于排放曲线有明显变化的不稳定排放污水，要根据曲线情况分时间单元采样，再组成混合样品。正常情况下，混合样品的单元采样不得少于两次。如排放污水的流量、浓度甚至组分都有明显变化，则在各单元采样时采样量应与当时污水流量成比例，以使混合样品更有代表性。6．实际采样位置的设置 实际的采样位置应在采样断面的中心。当水深大于lm时，应在表层下1／4深度处采样；水深小于或等于lm时，在水深的1／2处采样。 二、排污总量监测 1．流量测量 （1）流量测量原则 ①污染源的污水排放渠道，在已知其“流量-时间”排放曲线波动较小，用瞬时流量代表平均流量所引起的误差可以允许时（小于10%），则在某一时段内的任意时间测得的瞬时流量乘以该时段的时间即为该时段的流量。
实验样品采集运输保存方法
1.R N A实验样品采集、保存方法 使用范围及样品量 类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量： 样本样本量 哺乳动物培养细胞样品（悬浮细胞）1*107个 哺乳动物培养细胞样品（贴壁细胞）15cm2 植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织决定组 织需要量，尽可能多些，但不必超过1g 动物组织样品 新鲜组织样品 A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。 4度孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。
匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。 冻存组织 生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全 -70保存 贴壁细胞 从培养容器中吸出并弃去培养液 培养瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。 -70度保存。 植物组织样品 准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。 立即投入液氮中保存。 2.血液类样品采集、保存方法 适用范围及样品量 全血/血细胞：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 血清/血浆：Microarray Service；PCR Array& PCR Service
水质采样-样品的保存和管理技术规定
中华人民共和国国家环境保护标准 HJ 493—2009 代替GB 12999—91 水质采样样品的保存和管理技术规定 Water quality sampling — technical regulation of the preservation and handling of samples (发布稿) 2009-09-27 发布；2009-11-01 实施 前言 为了贯彻《中华人民共和国环境保护法》和《中华人民共和国水污染防治法》,保护环境,保障人体健康,规范水质样品的保存和管理,制定本标准. 本标准规定了水样从容器的准备到添加保护剂等各环节的保存措施以及样品的标签设计,运输, 接收和保证样品保存质量的条款. 本标准对《水质采样样品的保存和管理技术规定》(GB 12999-91)进行了修订,原标准起草单位:中国环境监测总站,首次发布于:1991 年,本次是第一次修订. 主要修订内容: ——增加单项样品的最少采样量及量化部分保存剂的加入量. ——增加分析项目的容器洗涤方法.删除"分析地点"和"建议"合并为"备注" . ——增加待测项目,其中理化和化学指标33 项,如高锰酸盐指数,凯氏氮,总氮,甲醛,挥发性有机物,农药类,除草剂类,邻苯二甲酸酯类等:增加生物指标 4 项:增加放射学指标10 项. 自本标准实施之日起,原国家环境保护局1991 年 1 月25 日批准,发布的国家环境保护标准《水质采样样品的保存和管理技术规定》(GB 12999-91)废止. 本标准由环境保护部科技标准司组织制订. 本标准主要起草单位:中国环境监测总站,辽宁省环境监测中心站. 本标准环境保护部2009年9月27日批准. 本标准自2009年11月1日起实施. 本标准由环境保护部解释. I 水质采样 1 适用范围 样品的保存和管理技术规定
第四章 生物样品的采集、储存及预处理
第四章生物样品的采集、储存及预处理 第一节生物样品的采集、储存 体内药物分析的任务和分析对象具有如下特点:被测定的药物和代谢物的浓度极低；样品介质复杂，其中存在各种各样直接或间接影响测定结果的物质，大多需要分离和净化；仅有少量样品可供分析，尤其是在连续测定过程中，很难再度获得完全相同的样品；样品的稳定性需要特别注意等。 一、生物样品的采集 生物介质(biological matrix)包括全血、血浆、血清、尿、粪、唾液和各种组织。其中最常用的生物样品是血液和尿液。 1.血样的采集 供测定的血样应能代表整个血药浓度。若能从动脉或心脏取血最为理想，但只能用于动物，不能用于人。动物采血可根据不同种类及实验需要，采取适当的方法。如大、小鼠可由尾动脉、静脉、心脏、眼眶取血或断头取血等，家兔可由耳缘静脉、颈静脉等多处取血，犬可由前、后肢静脉等处取血。对于受试者通常采用静脉取血(成人从肘正中静脉取血，小儿从颈外静脉取血)。静脉取血一般将注射器针头插入静脉血管抽取。抽取的血液转移至试管或其它容器时应缓缓压出，以防血细胞破裂。 全血在加肝素或柠檬酸、草酸盐等抗凝剂后，离心分取血浆，其体积约为全血的一半。血清则是由血液中纤维蛋白原等影响下，引起血块凝结而析出，离心取用，而血块凝结时往往易造成药物吸附的损失。 全血直接作为样品时，也应加入抗凝剂混匀，防止凝血。对大多数药物来说，血浆浓度与红细胞中的浓度呈正比，所以测定全血不能比测定血浆提供更多的信息。而全血的净化较血浆与血清复杂，尤其是溶血后，血色素等可能会给HPLC测定带来影响。但是，一些药物可与红细胞结合，或药物在血浆和红细胞的分布比率因人而异，在这些情况下，宜采用全血。 血样抽取量受到一定的限制。人体药代动力学研究需要在多个时间点(一般为12~20点)取样，每次由前臂静脉取血3~5m1。随着高灵敏度测定方法的建立，取样量可继续降低，从而更易为受试者接受。实验动物取血量应注意是否超过了动物的生理承受能力。 制备血浆样品时，将采取的血样置含有抗凝剂的试管中，缓缓转动试管使其充分混合、离心，所得上清液即为血浆。常用的抗凝剂有肝素，它是体内正常的生理成分，因而不会改变血样的化学组成或引起药物的变化，一般不会干扰测定。通常lml血液采用20个单位
实验一 食品样品的采集与保存
实验一食品样品的采集与保存 1.实验目的 掌握苹果、青菜、大米、大排等几种食品原料类型的采集和保存方法； 理解采样的注意事项。 2.实验原理 2.1采样原理 采样是指从整批被检食品中抽取一部分有代表性的样品，供分析化验用。采样是食品分析的首项工作和重要环节。同一类的食品成品由于品种、产地、成熟期、加工或保藏条件不同，其成分及其含量有相当大的差异。同一分析对象，不同部位的成分和含量也可能有较大差异。因此必须掌握科学的采样和保存技术。否则，即使以后的样品处理、检测等一系列环节非常精确、准确，其检测的结果亦毫无价值，以致导出错误的结论。 2.2采样原则 1. 代表性 在大多数情况下，待鉴定食品不可能全部进行检测，而只能抽取其中的一部分作为样品，通过对样品的检测来推断该食品总体的营养价值或卫生质量。因此，所采的样品应能够较好地代表待鉴定食品各方面的特性。若所采集的样品缺乏代表性，无论其后的检测过程和环节多么精确，其结果都难以反映总体的情况，常可导致错误的判断和结论。 2. 真实性 采样人员应亲临现场采样，以防止在采样过程中的作假或伪造食品。所有采样用具都应清洁、干燥、无异味、无污染食品的可能。应尽量避免使用对样品可能造成污染或影响检验结果的采样工具和采样容器。 3. 准确性 性质不同的样品必须分开包装，并应视为来自不同的总体；采样方法应符合要求，采样的数量应满足检验及留样的需要；可根据感官性状进行分类或分档采样；采样记录务必清楚地填写在采样单上，并紧附于样品。 4. 及时性 采样应及时，采样后也应及时送检。尤其是检测样品中水分、微生物等易受环境因素影响的指标，或样品中含有挥发性物质或易分解破坏的物质时，应及时赴现场采样并尽可能缩短从采样到送检的时间。 2.3四分法采样
水质采样样品的保存和管理技术规定
水质采样样品的保存和管理技术规定 本标准是水质采样标准第三部分。 本标准参照采用ISO 5667-3:1985《水质采样样品保存和管理技术指导》。 1 主题内容与适用范围 本标准适用于天然水、生活污水及工业废水等，当所采集的水样(瞬时样或混合样)不能立即在现场分析，必须送往实验室测试时，本标准所提供的样品保存技术与管理程序是适用的。 2 样品保存 各种水质的水样，从采集到分析这段时间里，由于物理的、化学的、生物的作用会发生不同程度的变化，这些变化使得进行分析时的样品已不再是采样时的样品，为了使这种变化降低到最小的程度，必须在采样时对样品加以保护。 2.1 水样变化的原因 2.1.1 生物作用：细菌、藻类及其他生物体的新陈代谢会消耗水样中的某些组分，产生一些新的组分，改变一些组分的性质，生物作用会对样品中待测的一些项目如溶解氧、二氧化碳、含氮化合物、磷及硅等的含量及浓度产生影响。 2.1.2 化学作用：水样各组分间可能发生化学反应，从而改变了某些组分的含量与性质。例如溶解氧或空气中的氧能使二价铁、硫化物等氧化；聚合物可能解聚；单体化合物也有可能聚合。 2.1.3 物理作用：光照、温度、静置或振动，敞露或密封等保存条件及容器材质都会影响水样的性质。如温度升高或强振动会使得一些物质如氧、氰化物及汞等 挥发；长期静置会使A1(OH) 3，CaCO 3 及Mg 3 (PO 4 ) 2 等沉淀。某些容器的内壁能不可 逆地吸附或吸收一些有机物或金属化合物等。 水样在贮存期内发生变化的程度主要取决于水的类型及水样的化学性质和生物学性质。也取决于保存条件、容器材质、运输及气候变化等因素。 必须强调的是这些变化往往是非常快。常在很短的时间里样品就明显地发生了变化，因此必须在一切情况下采取必要的保护措施，并尽快地进行分析。 保护措施在降低变化的程度或减缓变化的速度方面是有作用的，但到目前为止所有的保护措施还不能完全抑制这些变化，而且对于不同类型的水，产生的保护效果也不同，饮用水很易贮存，因其对生物或化学的作用很不敏感，一般的保护措施对地面水和地下水可有效的贮存，但对废水就不同了。采自不同地点或废水性质不同其保存的效果也就不同，如采自城市污水和污水处理厂的水其保存效果不同，采自生化处理厂的废水及未经处理的污水其保存效果也不同。 由于样品中成分性质不同，有的分析项目要求单独取样，有的分析项目要求在现场分析，有些项目的样品能保存较长时间。 由于采样地点和样品成分的不同，迄今为止还没有找到适用于一切场合和情况的绝对准则。 在各种情况下，存储方法应与使用的分析技术相匹配，本标准规定了最通用的适用技术。 2.2 盛装水样容器的选择及清洗 盛装水样容器材质的选择及清洗是样品保存的首要问题。 2.2.1 对容器的要求 选择容器的材质必须注意以下几点：
生物样品储存方法概述-冷冻保存
https://www.360docs.net/doc/0f13728325.html, 生物样品储存方法概述-冷冻保存 将需要冷冻的样品冷冻（freezing,放于-20?C或-80?C）得当能有效的保证样品质量！下面给大家安利几种常见样品的冷冻储存方式： DNA及缓冲液：对于基因组材料来说，收到轻微的机械剪切力不是什么大事情；对于不稳定的缓冲液，如含有DTT的缓冲液，可直接冷冻储存，无需调整。 蛋白：需要添加防冻剂用于蛋白的冷冻储存。蔗糖或甘油是防冻剂很好的选择，但对于不同的蛋白，蔗糖或甘油所占的百分比须有所不同。可选择20％的蔗糖或10％的甘油。限制性内切酶可以储存在50％甘油中以保持稳定性。由于较低的冷冻温度，这种甘油的浓度可防止溶液完全冻结！ 微生物（细菌，酵母和真菌）：10-20％甘油效果很好。更高的百分比（即更接近20％）使平板划线更加容易。 高等真核细胞：常见的的冷冻过程为（仅供参考）： 1. 配制含10% DMSO或甘油、10～20%小牛血清的冻存培养液； 2. 取对数生长期的细胞，用胰蛋白酶把单层生长的细胞消化下来，悬浮生长的细胞则直接将细胞移至15ml离心管中；
3. 离心1000rpm，5min； 4. 去除胰蛋白酶及旧的培养液，加入适量配制好的冻存培养液，用吸管轻轻吹打使细胞均匀，计数，调节冻存液中细胞的最终密度为5×106/ml～1×107/ml； 5. 将细胞分装入冻存管中，每管1～1.5 ml； 6. 在冻存管上标明细胞的名称，冻存时间及操作者； 7. 冻存：标准的冻存程序为降温速率-1～-2℃/ min；当温度达-25℃以下时，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃时，则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h ，然后放入-70℃冰箱中过夜，取出冻存管，移入液氮容器内。 8．从增殖期到形成致密的单层细胞以前的培养细胞都可以用于冻存，但最好为对数生长期细胞。在冻存前一天最好换一次培养液； 9．将冻存管放入液氮容器或从中取出时，要做好防护工作，以免冻伤； 10．冻存和复苏最好用新配制的培养液。 另外，反复冻融对样品损害很大，因此将样品分装成小规格保存是不错的选择。为了最大限度减少样品浪费，分装之前需要知道样品的浓度、后续实验每次的用量，以便分装成适当的体积。小贴士：对于分装成微小的体积，PCR条管是不错的选择。 此外，一些大分子在储存之前快速冷冻（flash-freezing）,能更好的保持功能。如何进行快速冷冻：穿上实验室外套，戴上护目镜、手套，将样品放入含有少量液氮的杜瓦瓶（dewar）中，有泡沫和烟雾产生（此操作需要在通风环境中进行）。一旦停止产生泡沫，迅速将样品取出，存储在-20?C或-80?C。 https://www.360docs.net/doc/0f13728325.html,
《样品采集、保存和管理作业指导书》
样品采集和保存 一样品采集和保存 ①氨氮:水样采集在聚乙烯瓶或玻璃瓶内，要尽快分析。如需保存，每升样品中应加1ml 浓硫酸，并在4下贮存，用酸保存的样品，测定时用氢氧化钠将PH值调至7左右。 ②溶解氧：样品应采集在细口瓶中，测定就在瓶内进行。试样充满全部细口瓶。不得有气 泡。 ③化学需氧量：水样采集于玻璃瓶中，应尽快分析。如不能立即分析时，应加入硫酸至PH ＜2，置4℃保存，时间不能多余5天。采集水样的体积不得少于100ml。 ④悬浮物：所用聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶要用洗涤剂洗净。在采样之前，再用即将采集的水 样清洗三次。然后采集水样500—1000ml，盖严瓶塞。 ⑤总磷：采集500ml水样后加入1ml硫酸调节样品的PH值，使之低于或等于1，或不加 任何试剂于冷处保存。 ⑥PH值：最好现场测定。否则应在采样后把样品保持在0—4℃，并在采样后6小时内进 行测定。 ⑦水温：最好现场测定。否则，应在采样后把样品保持在0~4，并在采样后6h之内进行测 定 ⑧氯化物：采集代表性水样，放在干净且化学性质稳定的玻璃瓶或聚乙烯瓶内。保存时不 必加入特别的防腐剂 ⑨色度：所用于样品接触的玻璃器皿都要用盐酸或表面活性剂溶液加以清洗，最后用蒸馏 水或去离子水洗净、沥干。样品采集在容积至少为1L的玻璃瓶内，在采样后尽快进行测定。 ⑩总氮：将采集好的样品储存在聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶中，用浓硫酸调节PH值至1～2，常温下可保存7天。储存在聚乙烯瓶中，-20℃冷冻，可保存一个月。 ⑾五日生化需氧量：采集的样品应充满并密封于棕色玻璃瓶中，样品量不小于1000ml，在0～4℃的暗处运输和保存，并与24小时内尽快分析。24小时不能分析可冷冻保存。 ⑿粪大肠菌群：采样瓶使用500ml已灭菌的磨口玻璃塞广口瓶，采集水样时应避免瓶盖及瓶子颈部受杂菌污染。灭菌后的采样瓶2周内未使用需重新灭菌 采集好的水样需放置约4℃冷藏设备内保存运输，一般要求在采集4小时内测定。
(整理)样品保存方法
精品文档 分析项目 固定剂名称 采样器皿 保存方法 保存时间 钙 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铬 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铅烟 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 铅尘 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 锰 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钼 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 镍 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钾 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 钠 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 锌 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可长期保存 一氧化氮 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 二氧化氮 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 氨 吸收液 空气采样器，大型气泡吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 氰化氢 吸收液 空气采样器，小型气泡吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 当天测定 氰化物 微孔滤膜 空气采样器 滤膜置于具塞刻度试管 室温下至少7天 磷酸 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于清洁容器 室温下可保存3天 二氧化硫 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 室温下可保存15天 三氧化硫 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于具塞比色管 室温下可保存3天 硫酸 微孔滤膜 空气采样器 滤膜接尘面对折2次置于具塞比色管 室温下可保存3天 硫化氢 吸收液 空气采样器，多孔玻板吸收管 封闭吸收管进出气口，置于清洁容器中 至少可保存5天 氟化氢 微孔滤膜 空气采样器，多 封闭吸收管进出气 室温下可保存7天
环境监测样品采集与保存的质量控制
环境监测样品采集与保存的质量控制 发表时间：2018-03-21T15:12:45.437Z 来源：《防护工程》2017年第32期作者：张小英 [导读] 加强取样和保存的各个环节的质量控制，对我国大环境的污染治理和预防提供有力支持，改善水环境和对水环境保护有重要的意义。 深圳市环境监测中心站 摘要：水质样品取样和保存是个重要的过程，也是影响监测结果相对薄弱的环节。因此，对这个过程中的各个环节，如采样器材、采样操作规范、样品保存剂的添加、样品的保存、运输和交接等几个方面进行分析，根据多年的工作实践提出质量控制建议，供借鉴。 关键词：样品采集；保存；质量控制 前言 监测数据是体现水质结果的最终状态，为使监测数据能够准确反映水环境质量现状，要求监测数据要具有准确性、精密性、可比性和完整性。而水质环境监测工作中各个环境均会影响到监测结果，因此，对整个监测过程采取全程序质量控制措施，确保水质监测结果的准确性。当前水质环境监测质量保证工作比较注重实验室内部的质量控制，对于样品采集和保存过程尚不能严格控制，也是我们当前工作的薄弱部分。 一、水质样品采集和保存过程误差来源及质量控制 （一）采样器材的选择 采样器材主要有采样器和水样容器。采样器一般有聚乙烯塑料桶、单层采水瓶、直立式采水器和自动采样器。一般水质监测项目常用采样器为聚乙烯塑料桶，但特殊项目需用相应的采样器。例如油类采样需用直立式采水器，若采用聚乙烯塑料桶采样，则采集到的水样为表层样品，不符合在水面下300 mm采集柱状水样的要求，导致的误差将会使油类项目的分析数据失去意义。 水样容器主要有硬质玻璃瓶和聚乙烯瓶（桶）。一般的玻璃容器吸附金属，聚乙烯等塑料吸附有机物质、磷酸盐和油类，因此水质采样时，通常分析有机物的样品使用硬质玻璃瓶，分析无机物的样品使用聚乙烯塑料瓶（桶）。也有个别项目有特殊要求，如测定氟化物的水样不能用玻璃瓶盛装；用于测定农药或除草剂等项目的水样，一般使用棕色玻璃瓶盛装；测定BOD5和COD的水样，如果浓度较低，最好用玻璃瓶盛装。如果水样盛装容器对水样中待测项目有吸附或者容器解吸出待测物质，则会导致水样分析结果偏高或偏低。 选择好正确的采样器和水样容器后，在进行水质采样前，均要对采样器和水样容器进行清洗。如果使用新容器，则更应进行充分的清洗。盛装有机物、耗氧量和细菌类等样品的容器一般用洗涤剂洗1次，自来水洗3次，然后用蒸馏水冲洗1次；盛装金属类样品的容器用洗涤剂洗1次，自来水洗2次，HNO3荡洗1次，自来水洗3次，去离子水冲洗1次；盛装阴离子表面活性剂和磷酸盐样品的容器则需用铬酸洗液清洗1次，自来水洗3次，蒸馏水洗1次即可。测定农药或除草剂等项目的样品瓶按_般规则清洗后，在烘箱内180℃下烘干4 h，冷却后再用纯化过的己烷或石油醚冲洗数次。如果采集污水样品可省去用蒸馏水、去离子水清洗的步骤。采样器和水样容器清洗不干净或者采用错误的清洗方式，也会给样品分析结果带来误差，只有按规定的清洗方式将容器清洗干净，才能将这一环节的误差降到最低。 （二）采样操作规范 在地表水质监测中通常采集瞬时水样，采样量要考虑重复分析和质量控制的需要，并留有余地。采样时要保证采样点位的准确性，必要时用定位仪定位。采样时不可搅动水底的沉积物。测定溶解氧、生化需氧量和有机污染物等项目时，水样必须注满容器，上部不留空间，并有水封口。测定油类、BOD5、DO、硫化物、余氯、粪大肠菌群、悬浮物、放射性等项目时要单独采样。一般容器在采样前均需用水样进行荡洗，但测定油类的水样，应在水面下300 mm采集柱状水样，且样品不能用采集的水样冲洗。如果水样中含沉降性固体，则应分离除去。 水样采集好后，要将标签贴在水样容器上，标签内容包括采样时间、采样点位、监测项目、采样人员等。需要现场监测的项目要按规范进行现场监测，并填写水质采样记录表和现场监测表，字迹端正、清晰，内容完整。采样结束前，应仔细核对采样计划、记录与水样，如有错误或遗漏，立即补采或重采。 需要现场监测的项目一定要在现场完成，并且完成记录的规范填写。pH值、溶解氧、电导率等现场测试项目需要对监测仪器进行校准后方能使用，测试方法严格按照国家标准进行。 （三）样品保存剂的添加 引起水样水质变化的原因有生物作用、化学作用和物理作用。水样采集后，要尽快送到实验室分析，样品存放过程中某些组分的浓度可能会发生变化，这就要求加入保存剂来减小组分浓度的变化。测定金属离子的水样常通过加酸来控制溶液pH值，既可以防止重金属的水解沉淀，又可以防止金属在器壁表面上的吸附，同时还能抑制生物的活动。为了抑制生物作用，可在样品中加入抑制剂，如在测氨氮的水样中加氯化汞以抑制生物对铵盐的氧化还原作用。加入硝酸一重铬酸钾溶液可使汞维持在高氧化态，使其稳定性大为改善。测定硫化物的水样，加入抗坏血酸对保存有利。一般保存剂的添加需要在样品采集自然沉降30 min后进行，否则可能影响水样分析结果。张艳研究指出，测定总磷的水样使用不沉降一加酸方式测得的总磷浓度为标准规定方法的1.22～2.21倍，平均1.60倍；不沉降一不加酸测得的总磷浓度为标准规定方法的1.12～1.83倍，平均1.41倍；沉降一不加酸测得的总磷浓度为标准规定方法的0.93～1.00倍，平均0.96倍。由此可见，保存剂添加与否、添加方式都将影响监测数据的质量。 （四）样品的运输 样品的运输也是水质监测的重要步骤，如果样品在运输过程中受到污染或者受损，之前和之后的工作都会受到影响。水样运输前应将容器的盖子盖紧，装箱时应用泡沫塑料、报纸等材料分隔，以防运输途中破损。运输途中应有专门人员管理样品，并填写水样质量保证卡。水样运回实验室后，及时交给样品接收人员，完成相应的交接手续。 （五）样品的保存 待测组分不同的样品要根据各自性质来决定保存条件及时间。有机污染物、悬浮物、酸碱度、阴离子组分等样品一般需要进行低温（0～4℃）避光保存，其余样品在室温条件下保存即可。金属类样品一般可以保存14 d，有机污染物、氨氦等其他组分一般最多保存24 h。（六）样品交接 样品在进入实验室前最后一个环节是进行样品的交接。分析人员领取样品时要查看样品是否破损，样品数量是否正确，保存条件和时
血液样本的采集与保存
实用帖血液样本的采集与保存 在脊椎动物中，外周血一直被认为是侵害性较小、富有价值的检测样本。在许多生物样 本库中，由于血液样本的常规收集、处理及保存方法简便、成本低且富含可利用成分和生物分子，因此是进行多种项目分析的理想实验材料。然鹅，科研僧们历经千辛万苦最后发现获 得的血液样本RNA降解了。。。。额，这就很惆怅了。 所以呢，在样本采集、处理及储存过程中必须格外注意，从根本上确保获得高质量的 RNA 今天小编和大家一起来聊一聊在进行RNA实验时血液样本如何进行收集与保存。 血液的组成 首先来熟悉一下血液的组成。 人类的血液由血浆和血细胞组成。其中血浆约占血液的55%是水，糖，脂肪，蛋白质, 钾盐和钙盐等的混合物。血细胞约占血液的45%主要分为红细胞、白细胞和血小板。而哺 乳动物成熟的红细胞和血小板是无核的。
11^ 血浆和血清 血浆是离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体, 其中含有纤维蛋白原，不含游离的 Ca 2+ ，若向血浆中加入 ，血浆会发生再凝固。 血清是离体的血液凝固之后， 经血凝块聚缩释出的液体， 其中已无纤维蛋白原, 游离的Ca 2+ ，血清中少了很多的凝血因子但多了很多的凝血产物。 不加卿赛 mm BW. 血囲 其他有形咸分 但含有 血浆 有形成分
采血管的选择 采血管，大家都不陌生，去医院抽个血，一定会用到采血管，那么问题来鸟，这么多颜 色的采血管，有什么区别呢？下面小编来给大家介绍一下采血管的分类及不同颜色试管帽代 表的含义。 1. 蓝色头盖管（含有柠檬酸钠抗凝剂的采血管） 2. 黑色头盖管（含有0.109mol/L 柠檬酸钠） 3. 紫色头盖管（含有乙二胺四乙酸以及其盐的采血管 ） 4. 绿色头盖管（肝素抗凝管） 5. 灰色头盖管（含有草酸钾/氟化钠） 6. 橘红色头盖管（促凝管） 7. 金黄色头盖管（含有惰性分离胶及促凝剂的采血管） 8.红色头盖管（无添加剂的干燥真空管） f l m ■ M M ■ ■ 机 ■ 忡-M M
临床样本保存及处理方式
临床常见的标本有血清（浆）、全血、分泌物、棉拭子、脓液、体液、新鲜组织、石蜡切片等，这些临床标本的处理和保存方法各有不同。 临床标本的处理 血清（浆）标本 一些病原体，如乙肝病毒（HBV）、丙肝病毒（HCV）、人类免疫缺陷病毒（HIV）等的PCR检测常采用血清或血浆标本。 HBV： 标本通常由医护人员采集，应注意避免溶血，如为血浆标本注意抗凝剂的选择，一般用EDTA-Na2或枸橼酸纳，不可使用肝素。标本为全血时，及时分离出血浆，提取病毒DNA进行检测。 HCV： 检测RNA病毒。由于RNA极易降解，标本的制备和保存方式往往可以影响测定结果。若用血浆标本，应使用EDTA抗凝。严禁使用肝素，因其对PCR扩增有抑制作用,且无法在核酸提取过程中去除。抗凝后6小时内分离血浆。如用血清标本，则应尽快（2小时内）分离血清进行检测，或-20oC保存。 全血标本 通常用来提取外周血单个核细胞核酸： 如基因组DN A、线粒体DN A、总RNA等。 抗凝剂： 一般使用EDTA-Na 2、枸橼酸xx，不使用肝素。
1）加适量的红细胞裂解液（破膜液），裂解全血中的红细胞。 2）再加适量的细胞核裂液（破核液），裂解白细胞中的细胞核，使核内DNA释放出来。 3）然后再加SDS（十二烷基硫酸钠）等去污剂，溶解脂蛋白，解聚核蛋白。 SDS可与蛋白质结成复合物，使蛋白质变性沉淀，但SDS在以后的核酸提取过程中必须除去。 痰标本 痰属于分泌物，临床上常用作结核杆菌DNA测定样本，由于痰标本中含大量粘蛋白和杂质，故在核酸提取时，一定要对标本进行前处理，即用4%NaOH 液化，去除粘蛋白，然后用煮沸或蛋白酶、酚/氯仿等经典法提取DNA。 具体方法： 用无菌平皿取患者肺深部咳出的痰液1-3ml，↓加入4倍体积4%NaOH，摇匀，室温下放置30分钟左右液化↓取 1.5ml EP管，加 0.5ml液化痰液，再加 0.5ml 4%NaOH室温放10分钟↓ 12000 rpm，离心15分钟↓弃上清，加无菌生理盐水1 ml，混匀，12000rpm离心5分钟↓弃上清，沉淀物用于DNA提取 棉拭子 用PCR方法检测性病病原体时（衣原体、支原体、淋球菌、梅毒螺旋体、人乳头状瘤病毒等），临床标本一般为棉拭子。标本取材是关键，衣原体等病原体感染上皮细胞，因此取材一定要取到细胞。
样品采集保存和运输
基因芯片样品的采集、保存和运输 基因芯片实验、microRNA芯片实验、 PCR芯片实验和实时定量PCR实验的样品准备 一、动物组织样品保存与运输（每张芯片需50-100mg组织） 1、新鲜组织样品的保存与运输 A、使用RNA later试剂 →取新鲜组织（注：生物体死亡后尽快在10分钟内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在 0.5 cm以下（长宽不限），然后放入装有5倍体积RNA later的离心管（或冻存管）中。 →4℃孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNA later，然后转入- 20℃中保存。样品在- 20℃不会冻结，但是溶液中可能有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。冻存样品也可以反复冻溶，其RNA含量和完整性不受影响。 →RNAlater处理的标本可用常规冰袋4℃低温运输（无需使用干冰- 70℃运输）。 B、使用Trizol试剂 Trizol试剂可抑制RNA酶活性，破坏细胞膜结构以裂解细胞释放出RNA。 →取新鲜组织（注：生物体死亡后1分钟内取材料并保存好），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50~100 mg组织加1 ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，操作最好在冰上进行。 →匀浆的裂解液4℃短期保存（1个月），-20度或- 70℃长期保存。干冰运输，短期（5天以内）冷藏（4℃）运输亦可。 2、冻存组织的保存与运输 生物体死亡后尽快（最好在10分钟内）切取新鲜组织，以PBS或生理盐水清洗干净切为小块，立刻放入液氮中冷冻2-3小时后可转入-70℃冰箱保存或着一直保存在液氮中。冻存组织可放入干冰中直接运输，或者以Trizol 4℃下匀浆：冻存的组织块以液氮研磨后加Trizol或直接加Trizol以电动匀浆器匀浆，匀浆的裂解液干冰运输或短期（5天以内）冷藏（4℃）运输。 二、哺乳动物培养细胞样品采集、保存与运输——使用Trizol试剂（不建议使用RNAlater） 1、悬浮细胞 →悬浮细胞培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 →细胞沉淀（1×107个细胞）中加入1 ml的Trizol裂解液。 →反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注：Trizol处理的标本冷藏（4℃）运输，短期（5天以内）亦可。 2、贴壁细胞 →从培养容器中吸出并弃去培养液。 →培养瓶中直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，约15 cm2细胞贴壁面积加入1 ml Trizol。 →反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。- 70℃保存或干冰运输。注：Trizol处理的标本冷藏（4℃）运输，短期（5天以内）亦可。 注： 1、上海市内细胞样品也可以直接常温运送，运送时在培养瓶中装满培养液并以封口膜封口，然而某些实验条件中包含时间限制，建议以Trizol处理。 2、所使用的1.5 ml冻存管或离心管、枪头等必须高温灭菌，装好样品后管口需要以封口膜封好。 3、如需干冰，快递运输所用干冰量至少为8公斤，且运输用泡沫箱需用封箱带密封。
废水采样操作规程
1.目的 规范废水的操作程序，正确使用仪器，保证采样工作顺利进行和人员的安全。 2.适用范围 本作业指导书适用于污染源排放污水的现场采集工作。 3.采样设备 水质采样可选用聚乙烯塑料桶、单层采样器、泵式采水器、自动采样器或自制 的其它采样工具和设备。场合适宜时也可以用样品容器手工直接灌装。 4.样品容器 使用硬质玻璃、聚乙烯、石英、聚四氟乙烯制的带磨口盖（或）塞瓶，原则上有机类监测项目选用玻璃材质，无机类监测项目可用聚乙烯容器。 5.采样 5.1样品的采集： 在分时间单元采集样品时，测定pH COD、BOD、硫化物、油类、悬浮物、等项目的样品，不能混合采样，只能单独采样，全部用于测定。 5.2采样方法： 5.2.1不同水体的采样方法 从管道、水渠等落水口处取样：从管道、水渠等落水口处取样，直接用容器或聚乙烯桶，要注意悬浮物质分取均匀。 从排污管道中取样：在排污管道中采样，由于管道壁的滞留作用，同一断面不同部位流速有差异，污染物分布不均匀，浓度相差颇大。因此当排污管道水深大于1m 时，可由表层起向下到1 / 4深度处采样，作为代表平均浓度的废水样。如果小 于或等于1 m时，可只取1 / 2深度的废水样即可。 从容器、贮罐、废水池等处取样：对盛有废液的小型容器，采样前先充分搅匀, 然后取样。废液分三层以上，不能搅匀时，可按各层量的多少的比例分层取样。对污染物分布不均匀的大型贮罐或废水池，根据具体情况，可多点分层采样。可采用自制的负重架，架内固定聚乙烯塑料样品容器，沉入废水中采样。 从地面水如河流、湖泊等水体取样：采集表层水样时，可直接用容器或聚乙烯 桶进行；采集表层以下各层面的水样时，可用单层采样器采样。 522各种采样器的采样方法
水质采样样品的保存和管理技术规定
水质采样样品的保存和管理技术规定 水质采样样品的保存和管理技术规定 Water quality sampling-technical regulation of the preservation and handling of samples 1991-12-05实施 本标准适用于天然水、生活污水及工业废水等，当所采集的水样（瞬时样或混合样）不能立即在现场分析，必须送往实验室测试时，本标准所提供的样品保存技术与管理程序是适用的。 本标准是水质采样标准第三部分。 本标准参照采用ISO 5667-3:1985《水质——采样——样品保存和管理技术指导》。 1 主题内容与适用范围 本标准适用于天然水、生活污水及工业废水等，当所采集的水样(瞬时样或混合样)不能立即在现场分析，必须送往实验室测试时，本标准所提供的样品保存技术与管理程序是适用的。 2 样品保存 各种水质的水样，从采集到分析这段时间里，由于物理的、化学的、生物的作用会发生不同程度的变化，这些变化使得进行分析时的样品已不再是采样时的样品，为了使这种变化降低到最小的程度，必须在采样时对样品加以保护。 2.1 水样变化的原因 2.1.1 生物作用：细菌、藻类及其他生物体的新陈代谢会消耗水样中的某些组分，产生一些新的组分，改变一些组分的性质，生物作用会对样品中待测的一些项目如溶解氧、二氧化碳、含氮化合物、磷及硅等的含量及浓度产生影响。 2.1.2 化学作用：水样各组分间可能发生化学反应，从而改变了某些组分的含量与性质。例如溶解氧或空气中的氧能使二价铁、硫化物等氧化；聚合物可能解聚；单体化合物也有可能聚合。 2.1.3 物理作用：光照、温度、静置或振动，敞露或密封等保存条件及容器材质都会影响水样的性质。如温度升高或强振动会使得一些物质如氧、氰化物及汞等挥发；长期静置会使A1(OH)3，CaCO3及Mg3(PO4)2等沉淀。某些容器的内壁能不可逆地吸附或吸收一些有机物或金属化合物等。 水样在贮存期内发生变化的程度主要取决于水的类型及水样的化学性质和生物学性质。也取决于保存条件、容器材质、运输及气候变化等因素。 必须强调的是这些变化往往是非常快。常在很短的时间里样品就明显地发生了变化，因此必须在一切情况下采取必要的保护措施，并尽快地进行分析。
实验样品采集运输保存方法修订版
实验样品采集运输保存 方法修订版 IBMT standardization office【IBMT5AB-IBMT08-IBMT2C-ZZT18】
1. RNA实验样品采集、保存方法 1.1 使用范围及样品量 类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service 样本量： 样本样本量 1*107个 哺乳动物培养细胞样品（悬浮细 胞） 15cm2 哺乳动物培养细胞样品（贴壁细 胞） 植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织 决定组织需要量，尽可能多些，但不必超过 1g 1.2 动物组织样品 1.2.1 新鲜组织样品
A. 使用RNAlater试剂 取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在0.5cm一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。 4度孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA 抽提。 B. 使用Trizol试剂 取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。 匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。 1.2.2 冻存组织 生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。 细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液 反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全 -70保存 1.3 贴壁细胞
水质采样及样品保存资料
水质采样及样品保存
水质采样作业指导 容器清洗 Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ表示四种洗涤方法。如下： Ⅰ：洗涤剂洗一次，自来水洗三次，蒸馏水洗一次。对于采集微生物和生物的采样容器，须经160℃干热灭菌2 h。经灭菌的微生物和生物采样容器必须在两周内使用，否则应重新灭菌。经121℃高压蒸汽灭菌15 min的采样容器，如不立即使用，应于60℃将瓶内冷凝水烘干，两周内使用。细菌检测项目采样时不能用水样冲洗采样容器，不能采混合水样，应单独采样2 h后送实验室分析。Ⅱ：洗涤剂洗一次，自来水洗二次，（1+3）HNO3荡洗一次，自来水洗三次，蒸馏水洗一次。 Ⅲ：洗涤剂洗一次，自来水洗二次，（1+3）HNO3荡洗一次，自来水洗三次，去离子水洗一次。 Ⅳ：铬酸洗液洗一次，自来水洗三次，蒸馏水洗一次。如果采集污水样品可省去用蒸馏水、去离子水清洗的步骤。 水质采样 水质 pH 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最好现场测定。最少采集250mL，0～4℃冷藏，可保存6h。 水质色度、浊度、电导率 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集250mL，可保存12h。尽量现场测定。
水质悬浮物（SS） 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，4℃暗处冷藏，最长不得超过7d。 注：漂浮或浸没的不均匀固体物质不属于悬浮物质，应从水中除去。不能加入任何保护剂，以防破坏物质在固、液间的分配平衡。 水质酸度、碱度 采集容器：聚乙烯瓶或硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，1～5℃暗处冷藏，酸度样品可保存30d，碱度样品可保存12h。 水质化学需氧量（COD Cr） 采集容器：硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，用H2SO4酸化，pH≤2。可保存2d。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月，最长六个月。 水质高锰酸盐指数（COD Mn） 采集容器：硬质玻璃瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集500mL，1～5℃暗处冷藏，可保存2d。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月。尽快分析。 水质五日生化需氧量（BOD5） 采集容器：溶解氧瓶。洗涤方法Ⅰ。 采样保存：最少采集250mL， 1～5℃暗处冷藏，可保存12h。聚乙烯瓶-20℃冷冻可保存1个月。 水质溶解氧