土壤微生物数量测定
土壤微生物量测定方法
土壤微生物量测定方法常规培养法是最早也是最常用的土壤微生物量测定方法之一、该方法是将土壤样品经过稀释后接种到含有特定培养基的培养皿中，经过一段时间的培养，根据培养皿上的菌落数量计算土壤中微生物的数量。
常用的培养基有营养琼脂培养基、土壤细菌培养基和土壤真菌培养基等。
常规培养法的优点是简单易行，可以同时测定不同类型微生物的数量，但该方法有一些局限性，如只能测定能够在培养基上生长的微生物，不能测定需异养条件才能生长的微生物，而且该方法容易低估土壤中微生物的真实数量。
生物量测定法是一种利用土壤微生物的生物学过程测定微生物量的方法。
该方法一般分为碳饥饿法和氮饥饿法两种。
碳饥饿法是将土壤样品暴露在低碳条件下（如0.01%葡萄糖溶液中）一段时间后，测定土壤中的微生物的生物量。
氮饥饿法是将土壤样品暴露在低氮条件下（如0.01%硝酸铵溶液中）一段时间后，测定土壤中的微生物的生物量。
这两种方法都是利用微生物的生物学特性，通过测定微生物对不同养分的响应来估计微生物的数量。
生物量测定法的优点是准确度较高，可以测定土壤中广泛类型的微生物，但该方法也有一些局限性，如需要较长的试验周期，测定过程中需要严格控制温度、湿度等环境条件，且操作较为繁琐。
生物学特征法是一种通过测定土壤微生物的生物学特征来评估微生物群体数量的方法。
该方法常用的特征包括土壤酶活性、呼吸作用速率、微生物生长速率和微生物群体的磷脂脂肪酸组成等。
这些特征的测定可以通过色谱、酶反应和分子生物学技术等手段进行。
生物学特征法的优点是操作简便，消耗土壤样品较少，时间短，结果可靠。
但该方法也有一些问题，如不同微生物对环境的响应不同，结果受环境因素影响较大。
综上所述，土壤微生物量的测定方法有常规培养法、生物量测定法和生物学特征法等。
不同的测定方法各有优缺点，使用时可以根据具体的研究目的和所需数据的准确度进行选择。
此外，单一的方法往往无法全面准确地评估土壤微生物量，因此常采用多种方法综合分析，以得到更准确的结果。
土壤微生物数量测定方法
土壤微生物数量测定方法土壤微生物是指生活在土壤中的微小生物，包括细菌、真菌、放线菌、古菌等。
土壤微生物在土壤的生物地球化学循环、有机质分解、养分转换和植物健康等过程中起着重要的作用。
因此，对土壤微生物数量的准确测定具有重要意义。
本文将介绍一些常用的土壤微生物数量测定方法。
1.瓶培法：将适量的土壤样品与适量的培养基混合，在37°C下培养约24小时，然后通过平板计数法或最凼稀释法进行测定。
2.膜过滤法：将土壤提取液通过特定孔径的膜过滤器滤过，然后将膜放置在培养基上进行细菌的生长，最后进行计数。
3.间接法：通过测定土壤样品的可培养细菌指标，如氧化还原酶、脱氢酶等的活性，从而推算出土壤中的细菌数量。
4.分子生物学方法：通过PCR扩增土壤DNA中的细菌基因，如16SrRNA基因，再通过测定PCR产物进行细菌数量的测定。
1.直接镜检法：直接在显微镜下观察土壤样品中的真菌，通过计数来估算真菌的数量。
2.平板计数法：将土壤样品均匀撒在培养基上，通过培养方法使真菌生长形成菌落，最后进行计数。
3.膜过滤法：与细菌数量测定相似，将土壤提取液通过膜过滤器滤过，然后将膜放置在适当的培养基上进行真菌的生长，最后进行计数。
4.分子生物学方法：通过PCR扩增土壤DNA中的真菌基因，如18SrRNA基因，再通过测定PCR产物进行真菌数量的测定。
1.直接镜检法：直接在显微镜下观察土壤样品中的放线菌，通过计数来估算放线菌的数量。
2.平板计数法：将土壤样品均匀撒在培养基上，通过培养方法使放线菌生长形成菌落，最后进行计数。
3.膜过滤法：与细菌和真菌数量测定类似，将土壤提取液通过膜过滤器滤过，然后将膜放置在适当的培养基上进行放线菌的生长，最后进行计数。
4.分子生物学方法：通过PCR扩增土壤DNA中的放线菌基因，如16SrRNA基因，再通过测定PCR产物进行放线菌数量的测定。
通过上述方法测定土壤中微生物的数量，可以了解土壤微生物对土壤生态系统功能的影响，并为土壤质量评价和科学合理利用提供依据。
土壤微生物测定方法
土壤微生物测定方法
目前常用的土壤微生物测定方法主要包括直接计数法、培养法、DNA
分析法和生化方法等。
1.直接计数法：直接计数法是指通过显微镜观察和计数土壤中微生物
的数量。
这种方法简单直观，可以快速测定土壤中微生物的数量。
但是，
由于土壤微生物数量庞大，直接计数方法需要大量的样品和时间，且对操
作者的要求较高。
2.培养法：培养法是指通过将土壤样品接种在富含营养物质的培养基上，并在一定温度和湿度下培养一段时间，通过观察和计数可见的菌落来
测定土壤中微生物的数量和种类。
这种方法可以有效地测定土壤中常见的
细菌和真菌等，但是对于无法培养的微生物种类相对有限。
3.DNA分析法：DNA分析法是指通过提取土壤中微生物的DNA，并通
过PCR扩增和DNA测序等技术来测定土壤中微生物的种类和多样性。
这种
方法可以检测到所有存在的微生物，无论是否可以培养。
因此，DNA分析
法可以更全面地测定土壤中微生物的多样性和种类。
但是，这种方法对实
验条件和技术要求较高。
4.生化方法：生化方法是指通过测定土壤中微生物代谢产物的含量或
活性来测定土壤中微生物的数量。
例如，通过测定脲酶、葡萄糖酶、氧化
还原酶等土壤微生物常见的酶活性来评估微生物的活性和数量。
生化方法
可以快速测定土壤微生物的数量和活性，但是受土壤理化性质的影响较大。
总之，以上所述的方法各有优缺点，可以根据实际情况选择合适的方
法或多种方法相结合来测定土壤微生物的数量和多样性。
此外，测定方法
的选择还要考虑实验所需的样品数量、可行性和经济性等因素。
土壤微生物量及土壤酶活性测定方法
2 土壤微生物量测定土壤微生物量（MB）是指土壤中体积小于5x103叩3的生物总量，但活的植物体如植物根系等不包括在内］。
它通过调控土壤中能量和养分循环以及有机物转化，来反映土壤同化和矿化能力。
土壤微生物生物量包括土壤微生物生物量碳、土壤微生物生物量氮、土壤微生物生物量磷和土壤微生物生物量硫，但一般情况下土壤微生物生物量的大小以土壤微生物生物量碳来表示。
2.1熏蒸浸提法2.1.1原理利用不同的浸提剂，通过氧化滴定法来测定土壤浸提液中有机C、N和P提取的可溶性有机碳含量和微生物量C之间存在较稳定的比例关系。
2.1.2则定步骤1.根据土壤样品含水量，调节土壤含水量为田间持水量的50%，25 ℃下密封培养10 d，以保持土壤均匀和不同地方所得结果的可比性。
2.氯仿熏蒸24 h后，用真空泵反复抽气，直到土壤闻不到氯仿气味为止。
根据所测对象不同选择不同的提取剂浸提，振荡浸提30 min后，立即分析浸提液中所测对象的含量或放入-15 ℃下保存。
表1指出氯仿熏蒸浸提法测定不同土壤微生物量所选用的浸提剂及其条件。
表1姓熏薪髓喉土就生帽条件Table I F'E fcrdieneasuirm aitcondiocnsof soilm riobialbmass土情即鄢Detemiia血cfhdicaMr Eitatnt土觥生醯K(=D,3S 或D.45土觥物1小K国加士躺蜘M恻般注®拓牖腌雄魂航觥刎楠融脑机装痴螭定雕耐帕帆小麒眼3 土壤酶活性测定土壤酶活性均用风干土壤。
土壤转化酶活性和过氧化氢酶活性、脲酶活性、磷酸酶活性依次用硫代硫酸钠滴定法、高锰酸钾滴定法、靛酚蓝比色法和磷酸苯二钠比色法测定（关松荫,1986）3.1脲酶一一靛酚蓝比色法脲酶的活性可以用来表示土壤供氮能力（一）方法原理土壤中脲酶活性的测定是以尿素为基质，酶促水解生成的氨与酚类化合物起反应生成蓝色的靛酚，颜色深度与氨含量相关，因而用于脲酶活性的测定。
土壤微生物生物量的测定方法
土壤微生物生物量的测定方法1.直接计数法：直接计数法是通过显微镜观察土壤样品中微生物数量来测定土壤微生物生物量。
常用的直接计数法包括滴定法、薄层计数法和电镜计数法。
滴定法是将土壤样品溶解后，通过滴定法来计数微生物细胞的数量。
滴定法主要包括用荧光假单胞菌（Pseudomonas fluorescens）作为参比菌，将细菌与土壤样品混合，经一系列稀释后进行滴定。
通过观察滴定液中菌落的数量，可以推算出原始土壤样品中微生物的生物量。
薄层计数法是将土壤样品制成薄层，然后在显微镜下进行计数。
这种方法可以直接观察微生物的形态特征，通过计算单位面积上微生物的数量来估算微生物生物量。
电镜计数法是利用电镜的高分辨率特性，观察土壤样品中微生物的形态和数量。
这种方法可以观察到更小的微生物和微生物的形态细节，但是操作复杂，成本较高。
2.间接测定法：间接测定法通过测定土壤中微生物活性代谢产物来估算微生物生物量。
常用的间接测定法包括ATP测定法、细胞膜脂肪酸测定法和氮素代谢产物测定法等。
ATP测定法是通过测定土壤中的三磷酸腺苷(ATP)含量来估算微生物生物量。
微生物的ATP含量与其生物量有一定的关系，因此可以通过测定ATP含量来间接估算土壤微生物生物量。
细胞膜脂肪酸测定法是通过测定土壤样品中微生物细胞膜中的脂肪酸含量来估算微生物生物量。
微生物细胞膜中的脂肪酸种类和含量与微生物群落的组成和数量有关，因此可以通过测定脂肪酸的含量来间接估算微生物生物量。
氮素代谢产物测定法是通过测定土壤样品中微生物氮素代谢产物的含量来估算微生物生物量。
微生物的氮素代谢活动与其生物量有关，因此可以通过测定氮素代谢产物的含量来间接估算微生物生物量。
3.分子生物学方法：分子生物学方法是利用PCR技术对土壤样品中微生物的DNA或RNA进行扩增和测定来估算微生物生物量。
常用的分子生物学方法包括引物扩增法、荧光原位杂交法和高通量测序法等。
引物扩增法是通过设计特定的引物对微生物的DNA或RNA进行扩增，并通过PCR反应的产物数量来估算微生物生物量。
土壤的微生物检测指标
土壤的微生物检测指标
土壤微生物检测指标主要包括以下几类：
1. 微生物数量指标：主要包括总菌数、细菌数、真菌数、放线菌数等。
这些指标反映了土壤中微生物的数量和多样性。
2. 微生物生物量指标：主要包括微生物生物量碳、微生物生物量氮等。
这些指标反映了土壤中微生物的生物量和活性。
3. 微生物群落结构指标：主要包括微生物群落多样性指数、优势度指数、均匀度指数等。
这些指标反映了土壤中微生物群落的结构和稳定性。
4. 微生物功能指标：主要包括氨氧化菌、硝化菌、反硝化菌、固氮菌、解磷菌、解钾菌等功能菌的数量和活性。
这些指标反映了土壤中微生物的功能和作用。
5. 微生物酶活性指标：主要包括脱氢酶活性、磷酸酶活性、脲酶活性、纤维素酶活性等。
这些指标反映了土壤中微生物的代谢活性和功能。
6. 微生物生态指标：主要包括微生物生态位、微生物生态效率、
微生物生态适应性等。
这些指标反映了土壤中微生物在生态系统中的地位和作用。
7. 微生物污染指标：主要包括病原菌、重金属抗性菌等的数量和种类。
这些指标反映了土壤中微生物对环境和人体健康的潜在风
险。
土壤微生物生物量的测定方法汇总
土壤微生物生物量的测定方法汇总操作步骤：1.准备工作：采集土壤样品，并将土壤样品分为适量的小样品。
2.氯仿熏蒸：将一定量的小样品放入氯仿熏蒸瓶中，然后加入适量的氯仿，并快速将瓶口封紧。
3.震荡：用震荡器对氯仿与土壤样品进行充分的混合震荡，使氯仿充分与土壤样品接触。
4.放置：将瓶子放置在室温下静置一段时间，一般为24小时，使土壤样品中的微生物充分溶解到氯仿中。
5.分液：将上清液和沉淀物分离。
上清液中含有溶解在氯仿中的微生物细胞，沉淀物中含有没有溶解的土壤颗粒和其他杂质。
6.校验：对上清液进行校验，可以采用PFLA（没有悬浮杂质时的上清液）或PFLA-Na2CO3（有悬浮杂质时的上清液）校验液。
7.测定：将校验液填入比色皿中，使用分光光度计对比色皿中的液体进行测定，并记录吸光度值。
原理：氯仿熏蒸法通过将土壤样品与氯仿混合，可以将土壤中的微生物细胞全部溶解到氯仿中。
通过将溶解在氯仿中的微生物细胞与校验液比色，在分光光度计上测定吸光度值，从而确定土壤中微生物的生物量。
氯仿熏蒸法的优点：1.操作简单，不需要复杂的设备和技术支持。
2.适用于各种类型的土壤，包括砂土、壤土、黏土等。
3.测定结果可靠，具有较高的重复性和准确性。
氯仿熏蒸法的缺点：1.只能测定细菌和放线菌等氧气需氧微生物，不能测定厌氧微生物的生物量。
2.氯仿对环境和人体有一定的毒性和危险性，操作时需要注意安全。
总结：氯仿熏蒸法是一种常用的测定土壤微生物生物量的方法。
通过将土壤样品与氯仿混合，将微生物细胞溶解到氯仿中，然后通过比色法测定吸光度值，从而确定土壤中微生物的生物量。
氯仿熏蒸法操作简单，适用于各种类型的土壤，且结果可靠。
但需要注意操作时的安全性。
除了氯仿熏蒸法外，还有其他一些方法也可用于测定土壤微生物生物量，如酚酸法、磷酸化氧化法等，可以根据实际需求选择合适的方法进行测定。
土壤微生物测定方案
三，土壤微生物数量（细菌，真菌，放线菌）的测定1 培养方法（1）稀释平板涂抹法具体操作如下：①准确称取10g（精确到0.001）采集的鲜土，倒入装有90 ml 无菌水的500 ml 的三角瓶中，置于往返震荡机上（120r/min，常温），震荡20 min，使土壤充分分散成为土壤悬液。
②将上面的土壤悬液用无菌移液管吸取 5 ml 到45 ml 稀释液中，即为10-2稀释度，依次按10倍法稀释，制成10-1~-~10-6稀释度。
（注意：每次吸取悬液时，在稀释液中反复吸入和吹出3-~5 次，减少因管壁吸附而造成的误差，并使悬液进一步分散，每个稀释度需要更换无菌吸管吸取悬液。
）③根据各类微生物在土壤中的数量多少选择适当稀释度的悬液接种。
本实验选择细菌的稀释度为10-3-~10-5，放线菌为10-2~-10-4，真菌为10-1~-10-3。
④土壤悬液的接种方法：在无菌培养皿中倒入15~20 ml 选择性培养基，待凝固后，用0.2 ml无菌移液枪吸取0.2 ml各稀释度的土壤悬液，然后立即用涂抹棒将悬液均匀的涂抹于培养基表面。
用同一支吸管接种时，从高稀释度开始，依次接种到低稀释度。
⑤接种了土壤悬液的培养皿，平放在超净工作台20~30 min，使得菌液渗透入培养基内，然后倒置于28~-30°C 恒温培养箱中培养一定时间：细菌1~-3 天，放线菌10-~14 天，真菌3~-7 天。
⑥培养结束后，取出培养皿计数。
（2）稀释培养法一系列稀释度的制作与稀释平板法相同。
根据各类微生物在土壤中数量的多少选择适当的稀释度，分别接种1 ml 稀释液与制作好的液体培养基中，根据需要做3~4 次重复，适温培养。
2 三大类土壤微生物培养基的分离三大类土壤微生物的分离采用稀释平板涂抹法，每个菌种要求做 3 个稀释度，每个稀释度做3-4 次重复，选取细菌和放线菌的菌落在20~-200 之间的培养皿、真菌的菌落在10-~100 的培养皿计数，并计算三次重复的平均值。
土壤微生物数量的测定方法
土壤微生物数量的测定方法土壤微生物数量的测定方法是指用来确定土壤中微生物的数量的一系列方法。
微生物在土壤中的数量是影响土壤肥力、健康状态以及生物多样性的主要因素，所以对土壤微生物数量的测定十分重要。
目前，有几种常用的测定土壤微生物数量的方法，包括计数法、分子生物学方法和非分子生物学方法。
一、计数法计数法是目前最常用的测定土壤微生物数量的方法。
该方法通过对样本中的细胞进行数目和形态的观察，来获得关于微生物数量的信息，然后通过计算微生物数量来估计土壤微生物总数。
1. 总体计数法总体计数法是使用显微镜观察和计数样品中的微生物，把检测到的微生物总数乘以一定的系数，就可以估算出土壤中的总微生物数量。
该方法是实时性强，耗时少，易于操作，但是由于细胞大小不一，活性差异大，难以检测到的微生物会影响准确性，因此不能精确测定土壤中的微生物数量。
2. 半定量计数法半定量计数法是通过将土壤样品进行细胞悬液制备，然后用显微镜观察和计数，来估算土壤中的微生物总数。
该方法也是实时性强，耗时少，易于操作，但是由于细胞大小不一，活性差异大，难以检测到的微生物会影响准确性，因此也不能精确测定土壤中的微生物数量。
二、分子生物学方法分子生物学方法是指使用基于DNA或RNA的技术来测定土壤中的微生物数量的方法。
目前，常用的分子生物学方法有PCR方法、qPCR方法、FISH方法、DGGE方法和pyrosequencing方法。
1. PCR方法 PCR方法是使用聚合酶链反应（Polymerase Chain Reaction, PCR）技术来检测土壤中的微生物数量的方法。
PCR方法可以快速检测出土壤中的微生物，但它不能检测出细菌的种类。
2. qPCR方法 qPCR方法是使用定量聚合酶链反应（Quantitative Polymerase Chain Reaction, qPCR）技术来检测土壤中的微生物数量的方法。
qPCR技术可以检测出微生物的种类，并且可以准确测定土壤中的微生物数量。
土壤微生物生物量的测定方法
土壤微生物生物量的测定方法土壤微生物生物量是衡量土壤生态系统功能的重要指标之一、测定土壤微生物生物量可以帮助我们了解土壤生态系统的活跃度和健康状况，进而指导土壤环境修复以及农田生产管理。
氯仿熏蒸法是一种常用的测定土壤微生物生物量的方法，本文将对该方法进行详细介绍。
首先，介绍氯仿熏蒸法的原理。
氯仿是一种广谱杀菌剂，可以破坏土壤中的微生物细胞膜，使微生物失去活性。
在测定土壤微生物生物量时，将土壤样品放置在含有适量氯仿的密闭容器中，通过熏蒸的方式杀灭土壤中的活性微生物。
熏蒸时间通常为24小时。
然后，通过测定氯仿熏蒸前后土壤中可溶性氮的浓度差异，计算出土壤微生物生物量。
其次，介绍氯仿熏蒸法的操作步骤。
首先，将采集到的土壤样品通过筛网筛选除去杂质。
然后，将土壤样品平均分配到已预先称量好的量筒中。
每个量筒中的土壤样品重量应保持一致。
为了保证测定的准确性，通常会设置重复样品。
接下来，在密闭容器的底部放置氟化钾和含有适量氯仿的吸附剂。
然后，将装有土壤样品的量筒设置在容器的顶部，将密闭容器封闭并在室内温度下进行熏蒸。
熏蒸时间通常为24小时。
熏蒸结束后，取出含有氯仿的吸附剂，并将土壤样品离心以去除残余的溶液。
最后，用适量的蒸馏水冲洗残留在土壤样品中的溶解态氮，并测定冲洗液中溶解态氮的浓度。
最后，介绍氯仿熏蒸法的数据分析和结果解释。
首先，通过测定熏蒸前后土壤样品中可溶性氮的浓度差异，计算出土壤微生物生物量。
常用的计算公式为：其中，溶液体积为冲洗液的体积，土壤样品质量即为放置在量筒中土壤样品的质量。
通过计算，可以得出土壤微生物生物量的结果。
根据测定结果，我们能够了解土壤微生物的数量和活性程度。
较高的土壤微生物生物量通常表示土壤中的微生物丰富多样且活跃，土壤生态系统功能较好。
而较低的土壤微生物生物量则提示土壤中微生物数量和活性较低，土壤生态系统功能受到一定程度的抑制。
因此，通过氯仿熏蒸法测定土壤微生物生物量，可以为土壤环境修复和农田生产管理提供科学依据。
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土壤微生物数量测定
（一）培养基的制备：
Ⅰ测定微生物总量培养基：
1. 细菌培养基（牛肉膏蛋白胨琼脂培养基）
牛肉膏Beefextract 5.0g
蛋白胨Peptone 10.0g
NaCI 5.0g
蒸馏水H20 1000m1
PH 7.2~7.4
2.放线菌培养基（高氏1号琼脂培养基）
可溶性淀粉20g
KNO
3
1g
K
2HPO
4
0.5g
MgSO
4• 7H
2
O 0.5g
NaCl 0.05g
FeSO4• 7H2O 0.01g
pH 7.2-7.4
注：配制时，先用少量冷水，将淀粉调成糊状，倒入少于所需水量的沸水中，在火上加热，边搅拌边依次逐一溶化其他成分，溶化后，补足水分到1000ml，调pH。
另：倒平板之前，在溶化的培养基中加重铬酸钾溶液，每300mL培养基加3%重铬酸钾1mL(l00ppm)。
3.真菌培养基（马丁（Martin）-孟加拉红琼脂培养基）
葡萄糖 10.0g
MgSO
4.7H
2
O O.5g
蛋白胨 5.0g
孟加拉红33.4mg （或者每升加1%溶液3.3mL）
K
2HPO
4
1g
蒸馏水H20 1000m1
PH 自然(4~5)
注：⑴灭菌前加卡那霉素20μg/ml，或者倒平板之前加链霉素。
⑵倒平板之前加乳酸，每100mL培养基加0.lmL。
以上培养基皆加琼脂15g/L。
Ⅱ测定功能菌所用培养基：
1.亚硝酸细菌培养基（改良的斯蒂芬逊（Stephenson）培养基A）
(NH4)2SO4 2.0g
NaH2PO40.25g
MnSO4·4H2O 0.01g
MgSO4·7H2O 0.03g
K2HPO40.75g
CaCO3 5.0g
蒸馏水1000ml
PH 7.2
注：CaCO3最后加，不需要溶解，直接调PH，培养基中有这个成分是为了缓冲pH。
因为硝化细菌的生长会产生酸化效应，使得氢离子过剩，到了一定程度硝化作用将无法继续，所以要碱性物质平衡酸碱。
下同。
2.硝酸细菌培养基（改良的斯蒂芬逊（Stephenson）培养基B）
NaH2PO40.25g
K2HPO40.75g
MgSO4·7H2O 0.03g
MnSO4·4H2O 0.01g
CaCO3 1.0g
Na2CO3 1.0g
NaNO2 1.0g
蒸馏水1000ml
PH 7.2
3. 反硝化细菌培养基
柠檬酸钠 5.0 g
KNO3 2.0 g
KH2PO4 1.0 g,
K2HPO4 1.0 g
MgSO4·7H2O 0.2 g
蒸馏水1000 ml
pH值7.2~7.5
4.好气性自生固氮菌培养基（改良阿须贝(Ashby)无氮培养基）
苯甲酸钠 1.5 g
K2HPO4 0.2 g
MgSO4·7H2O 0.2 g
NaCl 0.2 g
CaSO4·2H2O 0.1 g
PH 7.4—7.6
注：在培养基分装入试管时，每管加入一1cm滤纸长条，要露出液面。
5.氨氧化细菌培养基（蛋白胨氨化培养基）
K2HPO4 0.5 g
KH2PO40.5 g,
MgSO4·7H2O 0.5 g
蛋白胨 5.0 g
蒸馏水1000ml
PH 7.0~7.2
6. 好气性纤维素分解菌培养基（依姆歇涅茨基纤维素分解菌培养基）KH2PO4 1.0 g
FeCl3·6 H2O 0.1 g
MgSO4·7H2O 0.3 g
CaCl2·6H2O 0.1 g
NaCl 0. 1 g
NaNO3 2.5 g
pH 7.2～7．4
注：在培养基分装入试管时，每管加入一1cm滤纸长条，需露出液面。
(二)试剂的配制
1.格里斯试剂（Griess Reagent）第一、第二液：
第一液：将0.5g的对氨基苯磺酸（Sulfanilic Acid）溶于150ml的20-30%稀醋酸溶液中，保存于棕色瓶中。
第二液：将0.5gα-萘胺（α-naphthylamine）加入50ml蒸馏水中，煮沸后，缓缓加入150ml 的20-30%稀醋酸溶液中，保存于棕色瓶中。
2. 纳氏试剂
甲液：将20.0g碘化汞和10.0g碘化钾溶于100ml蒸馏水中。
乙液：将20.0g氢氧化钾溶于100ml水中。
分别配制甲、乙二液，待冷却后混合，放置2天后使用。
保存于棕色瓶中。
取上清液使用，保存期三周，随着沉淀增加会影响测定结果。
3.二苯胺试剂：
溶1.0g无色的二苯胺（Diphenylamine）于20ml蒸馏水中，然后徐徐加入100ml浓硫酸（相对密度1.84）中，保存于棕色瓶中。
（三）实验器材：
1.仪器设备
4℃冰箱、立式自动电热压力蒸汽灭菌器、恒温培养箱、电子天平、电热恒温水浴锅、超净工作台、微量移液器、全温空气摇床、旋涡混合器、磁力搅拌器、微波炉等。
2.器材准备
⑴将90ml水装入250ml三角瓶中，并装有15-20个玻璃珠，灭菌。
⑵将9ml水装入试管，灭菌。
⑶试管架，1ml无菌吸管，记号笔，白瓷比色板，接种环，酒精灯等。
（四）实验方法：
1.样品采集
在靠近植株根系部, 去除表层0-5cm的表土，采集5~20 cm土壤剖面,多点采集, 混匀后四分法取1 kg, 装无菌塑料袋带回，4℃冰箱保存。
2.悬液制备
称取10g土壤样品，放入盛有90ml无菌水的三角瓶中，置于摇床上室温振荡20min，使土样与水充分混合，将土壤中的微生物细胞充分分散，从土壤中分离出来。
此为10-1土壤悬液，吸取lml此土壤悬液于9ml无菌水中，另用无菌吸管吹吸3次混匀，制成10-2土壤悬液。
以此类推依次制成10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8不同稀释度的土壤悬液。
3.土壤悬液稀释度选择
⑴细菌:10-4~10-6
⑵放线菌：10-3~10-5
⑶真菌：10-2~10-4
以上采用稀释平板法，分别设置三个浓度梯度，二次重复。
⑷亚硝酸细菌：10-3~10-6
⑸硝酸细菌：10-3~10-6
⑹反硝化细菌：10-4~10-7
⑺好气性自生固氮菌：10-3~10-6
⑻氨氧化细菌：10-5~10-8
⑼好气性纤维素分解菌：10-2~10-5
以上采用最大或然法（MPN），分别设置四个浓度梯度，三次重复。
4.接种
⑴液体培养基
将六种功能菌培养基分装于试管中，每管5ml，每个菌需培养基12支试管。
按照纵3横4的方阵排列于试管架上，标签示之。
用1ml无菌吸管依次从低浓度到高浓度吸取土壤稀释液，放入各自对应编号的管中。
另取一管培养基接种1ml无菌水作为对照。
⑵琼脂培养基
将细菌、放线菌、真菌琼脂培养基采用混菌法进行接种，每个培养皿接种lml土壤稀释液，二次重复。
接种后，倒入15-20ml培养基迅速混匀。
5.培养
将所有试管和平板置于25-28℃黑暗条件下避光培养。
培养时间由短到长分别为：
⑴真菌：2～3d；
⑵细菌：3～4d；
⑶放线菌：5～7d。
⑷氨氧化细菌：7～8d；
⑸好气性自生固氮菌：7～8d；
⑹亚硝酸细菌：10～14d；
⑺硝酸细菌：10～14d；
⑻反硝化细菌：10～14d；
⑼好气性纤维素分解菌：10～14d；
6.结果观察
⑴亚硝酸细菌：取出培养液5滴于白瓷比色板上，加入格里斯试剂（Griess Reagent）第一、第二液各两滴，如有亚硝酸盐存在，则呈红色。
⑵硝酸细菌：取出培养液5滴于白瓷比色板上，加入格里斯试剂（Griess Reagent）第一、第二液各两滴，如不呈红色，表示亚硝酸均已经完全消失。
此时，另取培养液5滴于白瓷比色板上，加二苯胺试剂2滴，如呈蓝色，则表示亚硝酸已经被氧化成硝酸，说明有硝酸细菌的存在。
⑶反硝化细菌：加入格利斯亚硝酸试剂，观察颜色变化，确定正负反应。
⑷好气性自生固氮菌：观察试管培养液表面与滤纸接触处有无褐色或黏液状菌膜生成，或有无圆晕混浊出现。
⑸氨氧化细菌：取出培养液5滴于白瓷比色板上，加入纳氏试剂两滴，如有氨氧化细菌存在，则呈棕色或褐色。
⑹好气性纤维素分解菌：观察滤纸条是否成团，有无黄色或橘黄色菌斑出现及滤纸断裂情况。