DNA提取和制备解读
提取dna的方法及原理
提取dna的方法及原理提取DNA的方法及原理DNA提取是生物学和遗传学研究中的一项基础操作，它是获取DNA样本的过程。
DNA提取的方法有很多种，下面将介绍几种常用的DNA提取方法及其原理。
1. 高盐法高盐法是一种简单且常用的DNA提取方法。
其原理是利用高盐溶液中DNA与其他细胞组分（如蛋白质）之间的亲和性差异。
在高盐环境下，DNA更容易溶解而不与蛋白质结合，从而实现DNA的提取。
具体步骤包括细胞破碎、加入高盐溶液、离心分离DNA和去除蛋白质等。
2. 酚/氯仿法酚/氯仿法是一种经典的DNA提取方法。
其原理是利用酚和氯仿两种溶剂的密度差异，将DNA从细胞中分离出来。
具体步骤包括细胞破碎、加入酚/氯仿混合液、离心分离DNA和去除蛋白质等。
3. 硅胶柱法硅胶柱法是一种高纯度DNA提取方法。
其原理是利用硅胶柱上的硅胶颗粒与DNA之间的亲和性差异。
DNA样本在经过一系列处理后，通过硅胶柱，DNA能够与硅胶颗粒结合，而杂质则被洗脱。
最后，通过洗脱DNA，即可获得高纯度的DNA。
硅胶柱法的优点是提取纯度高、操作简单，适用于分子生物学研究和临床诊断。
4. 磁珠法磁珠法是一种高效、快速的DNA提取方法。
其原理是利用带有亲和基团的磁珠与DNA之间的亲和性，实现DNA的选择性吸附和洗脱。
具体步骤包括磁珠悬浮液制备、样本加入、磁珠与DNA结合、磁珠分离、洗脱DNA等。
除了上述常用的DNA提取方法外，还有其他一些特殊的DNA提取方法，如酶解法、离心法、凝胶切割法等。
这些方法在不同的实验和应用中具有各自的特点和优势。
总结起来，DNA提取的方法多种多样，选择适合的方法取决于实验目的、样本类型和实验条件等。
无论采用哪种方法，都需要严格控制实验操作，以确保提取到高质量的DNA样本。
DNA提取的成功与否直接影响到后续的实验结果，因此在进行DNA提取时，需要注意样本的保存、细胞破碎的方式、溶解液的选择等因素，以获得可靠且高纯度的DNA。
DNA的提取的原理和方法
DNA的提取的原理和方法DNA的提取的原理和方法一、实验原理DNA是生物体遗传信息的主要载体，它是一种长链的生物高分子，由四种碱基（腺嘌呤、胸腺嘧啶、鸟嘌呤、胞嘧啶）按照特定的顺序排列组成。
DNA主要存在于细胞的细胞核中，也有一些存在于线粒体和叶绿体中。
DNA提取的原理主要是利用不同物质在特定溶剂中的溶解度不同，通过控制溶剂的种类和条件，将DNA从细胞中分离出来。
在DNA提取过程中，通常需要使用一些化学物质，如苯酚、氯仿等，来破坏细胞膜和核膜，使DNA释放出来。
同时，还需要使用蛋白酶等酶类物质来消化蛋白质，以便更好地分离DNA。
二、实验方法1.材料准备提取DNA的材料可以是动物组织、植物组织、微生物等。
不同的材料需要采用不同的处理方法，以最大限度地获得高质量的DNA。
例如，对于植物组织，可以使用液氮研磨法或CTAB法等方法进行提取。
2.细胞裂解细胞裂解是DNA提取的关键步骤之一，目的是破坏细胞膜和核膜，使DNA释放出来。
常用的裂解方法有机械法、化学法和酶法。
机械法包括研磨、超声波等；化学法使用化学物质如苯酚、氯仿等；酶法使用蛋白酶等酶类物质来消化蛋白质。
3.蛋白质去除在细胞裂解后，蛋白质也会随着DNA一起释放出来。
为了获得纯净的DNA，需要去除蛋白质。
常用的去除蛋白质的方法有苯酚/氯仿抽提法和盐析法。
苯酚/氯仿抽提法利用苯酚和氯仿的特性，将蛋白质和DNA分离开来；盐析法则是利用高浓度的盐溶液使蛋白质沉淀，而DNA则溶解在上清液中。
4.DNA沉淀去除蛋白质后，需要通过一定的方法将DNA沉淀下来。
常用的沉淀方法有乙醇沉淀法和盐析法。
乙醇沉淀法利用乙醇能够使DNA沉淀的特性，将DNA从溶液中分离出来；盐析法则是利用高浓度的盐溶液使DNA沉淀，然后通过离心等方法将DNA 收集起来。
5.DNA洗涤和溶解DNA沉淀后，需要用70%乙醇洗涤数次以去除杂质，然后用适量的TE缓冲液或去离子水溶解DNA。
TE缓冲液是一种常用的维持DNA稳定的缓冲溶液，含有Tris-HCl和EDTA二钠等成分。
实验报告DNA提取与纯化
实验报告DNA提取与纯化实验报告：DNA 提取与纯化一、实验目的本次实验的主要目的是掌握从不同生物样本中提取和纯化 DNA 的方法，并对提取的 DNA 进行质量检测和分析。
通过本实验，深入了解DNA 的性质和特点，为后续的分子生物学实验，如 PCR 扩增、基因测序等提供高质量的 DNA 模板。
二、实验原理DNA 是生物体遗传信息的携带者，存在于细胞核和细胞器中。
提取 DNA 的基本原理是利用细胞裂解液破坏细胞膜和核膜，使 DNA 释放出来，然后通过一系列的物理和化学方法将 DNA 与其他细胞成分（如蛋白质、RNA 等）分离，并进行纯化。
在本实验中，我们采用了酚氯仿抽提法和乙醇沉淀法相结合的方法。
酚氯仿可以有效地去除蛋白质，而乙醇沉淀则可以使 DNA 从溶液中析出。
三、实验材料与试剂（一）实验材料1、新鲜的动物肝脏组织2、植物叶片（二）实验试剂1、细胞裂解液（含 TrisHCl、EDTA、SDS 等）2、蛋白酶 K3、酚氯仿（1:1）混合液4、无水乙醇5、 70%乙醇6、 NaCl 溶液7、 TE 缓冲液（含 TrisHCl、EDTA）（三）实验仪器1、离心机2、移液器3、恒温水浴锅4、紫外分光光度计5、电泳仪及电泳槽四、实验步骤（一）动物肝脏组织 DNA 的提取1、取约 05g 新鲜的动物肝脏组织，用剪刀剪碎，放入预冷的匀浆器中，加入 5ml 细胞裂解液，匀浆至组织完全破碎。
2、将匀浆液转移至离心管中，加入100μl 蛋白酶 K（20mg/ml），轻轻混匀，置于 55℃水浴锅中保温 1-2 小时，期间不时轻轻摇动。
3、加入等体积的酚氯仿混合液，颠倒混匀，12000rpm 离心 10 分钟。
4、小心吸取上层水相，转移至新的离心管中，加入 2 倍体积的无水乙醇，轻轻混匀，可见白色的 DNA 沉淀出现。
5、 12000rpm 离心 5 分钟，弃上清液，保留沉淀。
6、加入 1ml 70%乙醇，轻轻洗涤沉淀，12000rpm 离心 5 分钟，弃上清液。
DNA提取方法和试剂作用详解
DNA提取方法和试剂作用详解DNA提取是分子生物学和遗传学研究中非常重要的步骤。
其作用是从生物样本中提取出纯度高的DNA，以便进行进一步的实验和分析。
DNA提取的方法和试剂作用有很多种，下面详细介绍一种常用的DNA提取方法和相应试剂的作用。
常用的DNA提取方法有酚/氯仿法、盐酸法、离心法和柱式法等。
下面以酚/氯仿法为例进行介绍。
酚/氯仿法是一种传统的DNA提取方法。
它利用了DNA、RNA和蛋白质在不同溶剂中溶解性的差异来分离DNA。
主要步骤如下：1.细胞破碎：首先将待提取DNA的样本（如动物组织或细菌）进行细胞破碎，使细胞膜破裂释放出细胞质和细胞核。
2.蛋白质沉淀：加入酚/氯仿（以1:1:0.7的比例混合）使细胞膜溶解，并沉淀DNA上层浮游的蛋白质和脂类，然后离心分离。
3.DNA与RNA沉淀：将上层液体转移到新离心管中，加入等体积的异丙醇，使DNA和RNA沉淀，然后离心分离。
4.DNA纯化：将DNA沉淀物洗涤去除残留的溶液和盐类，然后再次离心分离，脱水干燥或用缓冲液溶解。
除了上述步骤外，还需要一系列的试剂来协助完成DNA提取过程。
1.细胞破碎液：用于破裂细胞膜，释放出细胞内的DNA。
破碎液通常是一种含有酶和盐的缓冲液，可以有效地破坏细胞膜结构。
2. 蛋白酶：用于降解细胞核和线粒体中的蛋白质，以达到去除蛋白质的目的。
常用的蛋白酶有蛋白酶K和蛋白酶ase K。
3.酚/氯仿：用于沉淀和去除蛋白质。
酚是一种有机溶剂，它与蛋白质和脂类发生相互作用，从而使它们沉淀到底部。
氯仿能与酚混溶，形成一个界面，便于底部上层液体的分离。
4.异丙醇：用于沉淀DNA和RNA。
异丙醇能够调节DNA和RNA的溶解度，使其在溶液中沉淀下来，从而方便提取。
5.盐溶液：用于洗涤去除DNA沉淀物中的盐类和杂质，以提高DNA的纯度。
常用的盐溶液有EDTA和盐酸。
通过酚/氯仿法，可以得到高质量、高纯度的DNA样品，适用于进一步的PCR、测序和片段长度分析等实验。
实验报告DNA提取与纯化
实验报告DNA提取与纯化一、实验目的本次实验的主要目的是掌握从生物样本中提取和纯化DNA 的方法，并了解 DNA 的性质和特点。
通过实验操作，熟悉相关实验技术和仪器设备的使用，为后续的分子生物学研究和应用奠定基础。
二、实验原理DNA 是生物体内携带遗传信息的大分子物质。
在细胞中，DNA 与蛋白质等成分结合在一起。
提取 DNA 的基本原理是利用化学和物理方法破坏细胞结构，使 DNA 从细胞中释放出来，然后通过去除蛋白质、RNA 等杂质，达到纯化 DNA 的目的。
常用的方法包括：1、细胞裂解：使用裂解液破坏细胞膜和核膜，使细胞内容物释放。
2、去除蛋白质：加入蛋白酶或酚/氯仿等试剂，使蛋白质变性沉淀。
3、沉淀 DNA：通常使用乙醇或异丙醇等有机溶剂，使 DNA 沉淀出来。
三、实验材料与设备（一）实验材料1、新鲜的动物肝脏组织或植物叶片。
2、生理盐水。
3、裂解液（包含去污剂、盐等成分）。
4、蛋白酶 K。
5、酚/氯仿混合液。
6、无水乙醇、异丙醇。
7、 70%乙醇。
8、 TE 缓冲液（TrisEDTA 缓冲液）。
（二）实验设备1、离心机。
2、移液器。
3、恒温水浴锅。
4、涡旋振荡器。
5、冰箱。
6、微量紫外分光光度计。
四、实验步骤1、样本处理称取适量的动物肝脏组织或植物叶片，用生理盐水清洗干净，剪碎或研磨成匀浆。
2、细胞裂解将处理好的样本转移至离心管中，加入适量的裂解液，充分混匀，置于恒温水浴锅中孵育一段时间，使细胞充分裂解。
3、去除蛋白质加入蛋白酶 K，混匀后在适当温度下孵育，以降解蛋白质。
加入酚/氯仿混合液，涡旋振荡混匀，然后离心，使水相和有机相分离。
此时，蛋白质等杂质主要存在于有机相中，而 DNA 则在水相中。
4、 DNA 沉淀将上清液转移至新的离心管中，加入适量的无水乙醇或异丙醇，轻轻颠倒混匀，可见白色的 DNA 沉淀出现。
5、洗涤 DNA离心收集 DNA 沉淀，弃去上清液。
加入适量的 70%乙醇，轻轻洗涤沉淀，再次离心，去除乙醇。
DNA提取原理和方法
化学方法与机械方法的比较
化学方法和机械方法是常用的 DNA 提取方法。化学方法依靠试剂的化学反应，而机械方法则通过物理力学的 作用来破坏细胞。
细胞壁的化学胶的应用
一种常用的 DNA 提取方法是使用含有化学胶的溶液来破裂细胞壁，这种方法可以高效地提取 DNA 并同时去除 其他细胞组分。
组织样本选择和准备
选择合适的组织样本对 DNA 提取至关重要。不同组织类型需要不同的处理方 法，如可选择血液、组织切片或唾液等样本。
细胞破裂和裂解
为了释放细胞内的 DNA，我们需要使用适当的方法破坏细胞壁和细胞膜，如 物理方法、酶处理或化学溶解。
DNA 的纯化和提取
通过纯化和提取步骤，我们可以将 DNA 与其他细胞组分分离，从而获得纯净的 DNA 样本，以便后续分析和应 用。
DNA 提取原理和方法
DNA 提取是分子生物学和遗传学研究中的基础步骤。本演示将介绍 DNA 的提 取原理、各种方法以及在实验室和日常生活中的应用。
什么是 DNA？
DNA，即脱氧核糖核酸，是一种存储遗传信息的分子。它在细胞中起到了 传递遗传信息和控制细胞功能的重要作用。
DNA 提取的意义和应用
DNA 提取是研究遗传学、进化生物学、法医学等领域的基础。它广泛应用于基因组测序、亲子鉴定、疾病诊 断和基因工程等领域。
DNA的提取原理及提取技术
DNA的提取原理及提取技术DNA提取是指从生物体中分离出DNA分子的过程。
DNA提取的原理是基于DNA与其他生物分子（如蛋白质、脂质和核酸）之间的化学和物理性质的差异。
DNA提取的一般步骤包括以下几个步骤：1.细胞破碎：首先将待提取DNA的生物体细胞破碎，使DNA释放出来。
这可以通过物理的（如机械切碎、玻璃珠研磨等）或化学的（如胶体混悬液、表面活性剂、酶处理等）方法来实现。
2. 酶处理：添加酶来降解其他细胞组分，如蛋白质、RNA等。
例如，加入蛋白酶K可以降解蛋白质，使用RNase酶可以消除RNA的污染。
3.细胞溶解：加入适当的缓冲溶液以改变溶剂性质，有利于DNA的释放。
通常使用高盐缓冲溶液来改变细胞溶液中离子浓度和PH值，促使DNA从细胞中释放出来。
4.DNA沉淀：加入酒精或酚类物质，使DNA从溶液中沉淀下来。
这通过改变DNA和水之间的亲疏水性质来实现。
沉淀后，将DNA分离出来，并通过洗涤、干燥等步骤去除其他杂质。
DNA提取还可以根据需要对提取过程进行进一步改进，以增强DNA的纯度和产量。
常用的改进技术包括：1.有机溶剂提取法：加入有机溶剂（如酚/氯仿混合溶液），通过液液分离来提取DNA。
有机溶剂可以与DNA结合，而不与其他生物分子结合，从而分离DNA。
2.离心技术：通过离心将DNA从溶液中沉淀下来，以减少其他杂质的污染。
3.硅酸盐提取法：利用DNA与硅酸盐之间的亲和性，将DNA与硅酸盐材料结合，然后通过洗涤步骤分离DNA。
4.磁珠提取法：利用磁性珠子上的亲和剂（如亲合小分子、抗体等）与DNA结合，再将磁性珠子分离出来，从而分离和纯化DNA。
DNA提取技术的选择取决于需要的DNA产量和纯度，并且通常根据提取样本的特性进行优化。
常用的DNA提取技术包括：1.酚/氯仿提取法：适用于小样本量的DNA提取。
通过加入酚/氯仿混合溶液来回需DNA，然后通过离心将DNA沉淀。
2.盐酸提取法：适用于高纯度DNA的提取。
DNA提取原理和方法
DNA提取原理和方法样本处理是DNA提取的第一步，主要目的是将样本处理成适合提取DNA的形式。
不同的样本需要不同的处理方法。
例如，从动物组织中提取DNA时，可能需要粉碎组织样本，使得细胞更容易破碎，从而释放DNA。
而从细菌培养液中提取DNA时，则需要先离心去除其他细胞组分，然后使用溶解酶破坏细胞壁。
细胞破碎是DNA提取的关键步骤之一、细胞破碎的目的是释放DNA分子，使其能够在后续步骤中被分离和纯化。
常见的细胞破碎方法包括机械破碎、化学破碎和酶解破碎。
机械破碎是使用物理力量（例如，搅拌、磨碎、超声波等）来破坏细胞壁，从而释放细胞内的DNA。
化学破碎是使用化学物质（例如，洗涤剂、酸、碱等）来破坏细胞壁和细胞膜，从而释放DNA。
酶解破碎是使用特定酶（例如，蛋白酶、胰酶等）来降解蛋白质和核酸，从而破碎细胞。
核酸纯化是DNA提取的核心步骤，其目的是将DNA与其他细胞组分（如蛋白质、RNA、杂质等）分离。
核酸纯化的方法有很多种，常见的包括酚-氯仿提取法、离心柱纯化法和磁珠纯化法。
酚-氯仿提取法是最常用的DNA纯化方法之一、该方法先使用酚提取样品中的核酸，然后使用氯仿去除蛋白质。
离心柱纯化法是使用离心管柱进行分离和纯化，其中DNA结合到离心柱上的固相载体上，而其他细胞组分则被洗脱。
磁珠纯化法是使用表面被修饰的磁珠与DNA结合，并使用磁场来分离和纯化DNA。
DNA提取完成后，需要对提取得到的DNA进行测量。
DNA的浓度和纯度测量是判断DNA质量的重要指标。
常用的测量方法包括比色法、荧光分光光度法和凝胶电泳法。
比色法是使用特定的染料与DNA结合，并通过比色读数来测量DNA的浓度。
荧光分光光度法是使用荧光分光光度计来测量DNA与DNA结合染料的荧光强度，进而计算DNA浓度。
凝胶电泳法是将DNA经过电泳分离，然后使用负载荧光染料或核酸染料在凝胶中可视化DNA，从而判断其浓度和纯度。
总之，DNA提取是从生物样本中分离和纯化DNA的重要步骤。
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干血点：干燥后室温或4℃保存；
羊水： -20或-70℃保存。 样本前处理 1. 微量血液处理同抗凝血液，不同之处是无需进行红细胞裂解步骤。 2. 干血点加入缓冲液直接进行提取。 3. 羊水/胸水提取时先离心得到沉淀，再进行裂解提取核酸。
样本保存和前处理－口拭子/漱口水
样本保存和前处理－非抗凝血
保存 非抗凝血即血凝块。-20℃保存一个月；-70℃长期保存。尽可能保证样本 不经过反复冻融。 样本前处理 1. 冻存的血凝块使用前应在37℃水浴溶解，轻柔颠倒混匀。 2. 血凝块取出后先采取机械破碎的方法（例如：放入无粉橡胶手套中捏 碎或匀浆）将血凝块破碎，然后再根据自己的实验取适量样本。
可以提取DNA
样本选择取决于试验目的
全血是基因组提取最常见的样本
血清、血浆、外周血有核细胞、痰液、体
液、棉拭子采集的各种分泌物、组织（包 括骨髓）和羊水等都是分子诊断的检验材 料，其中全血、血浆（血清）标本占分子 诊断的60%以上
DNA提取前样本采集、预处理和保存：
（一）全血
1.抗凝剂
EDTA-Na2
DNA提取原则2：DNA产物纯度
• 严格要求产物纯度
存档、产物长期保存 Southern杂交 荧光定量PCR SNP Microarray CGH (比较基因组杂交)
• 没有严格要求
常规PCR
ห้องสมุดไป่ตู้
基因组提取方法
溶液盐析法：无需酚氯仿，样本量灵活可变，得率高 硅胶膜吸附法：利用硅胶膜特异吸附核酸的原理来纯化核酸 磁珠法：独特包埋的磁珠，在一定条件下对核酸具有很强的亲和力，而 当条件改变时，磁珠释放吸附的核酸，能够达到快速分离纯化核酸的目 的。 传统酚氯仿法：传统方法，抽提时间长，成本低。但酚氯仿有毒，危害 身体健康。
样本保存和前处理－抗凝血液
保存 柠檬酸、EDTA、肝素三种抗凝剂均可使用。但肝素对酶反应有可能起阻害 作用,采血时如没有特殊要求,请使用柠檬酸或EDTA处理血样。 加入抗凝剂混匀后2-8℃保存一周；－20℃保存一个月；－70℃长期保存。 尽可能保证样本不经过反复冻融。
样本前处理
1. 冻存的抗凝血液使用前溶解应在37℃水浴迅速溶解。 2. 抗凝血提取前需要彻底混匀后再吸取实验所需的体积。
等等释放出来的游离核酸和蛋白质产物，在临床
上被广泛应用于病原微生物和肿瘤标志基因的检
测.
三、DNA的收率
样本类型
20mg肝脏组织
基因组DNA收率
8 g
100mg豆苗
100l全血 2106培养细胞
10 g
2 g 10 g
四、DNA提取的基本步骤
1、核酸的释放： 破裂细胞 2、核酸的分离与纯化 3、核酸的浓缩、沉淀与洗涤 4、DNA鉴定：浓度鉴定 纯度鉴定 完整性鉴定 释放核酸（机械法与非机械法）
保存 口拭子：干燥后室温保存 漱口水：4℃保存或离心得到沉淀-20℃或-70℃保存 样本前处理 1. 拭子将拭子棉头剪入到离心管里，加入缓冲液直接进行提取。
2. 有些拭子的棉头剪不下来，可以将拭子在生理盐水里漂洗几次，离心
得到沉淀再进行核酸提取。 3. 漱口水先进行离心得到沉淀再进行核酸提取。
基因组提取流程
分离得到的血清/血浆放置-70℃保存。尽量避免样本反复冻融。
样本前处理 1. 冻存的血清/血浆使用前溶解应在37℃水浴溶解，轻柔颠倒混匀。 2. 血清/血浆核酸提取时无需红细胞裂解。 3. 只需100-200ul样本，基本能满足下游常规PCR或荧光定量PCR检测。
样本保存和前处理－微量血液/干血点/羊水/胸水
提取基因组DNA，有时加入蔗糖的原因 加入多糖，保护DNA长度
不可忽视的细节
—血液基因组提取
天根生化科技（北京）有限公司
DNA提取原则1：DNA片段长度
DNA Len要求: PCR Southern Blots RFLP
五、DNA提取试验中常遇到的问题
基因组DNA收率较低或无基因组DNA
样本材料太少 细胞破裂不够充分，DNA释放不完全 离心力偏小 两相分离不完全… …
DNA降解的原因 样本不够新鲜，采集材料过陈旧 样本本身存在大量DNA酶
提取DNA的生物活性差的原因？ 提取的基因组DNA盐浓度过高 基因组DNA中乙醇未清除净 基因组DNA中可能存在其他抑制因素
第一部分 DNA提取 总论
一、提取DNA总的原则：
1 保证核酸一级结构的完整性；
2 其他生物大分子如蛋白质、多糖和脂类 分子
的污染应降低到最低程度；
3 核酸样品中不应存在对酶有抑制作用的有机溶
剂和过高浓度的金属离子； 4 其他核酸分子，如RNA，也应尽量去除。
二、样本来源：
理论上所有有核真核细胞、细菌、病毒都
血凝块前期破碎程度越高，提取基因组就越容易！
样本保存和前处理－白膜层
保存 全血分离得到的白膜层放置-20℃或-70℃长期保存。尽可能保证样本不经 过反复冻融。 样本前处理
1. 白膜层是将全血离心取中间层所得。白细胞则是用红细胞裂解液裂解
红细胞后得到的沉淀。 2. 冻存的白膜层使用前应在37℃水浴溶解，轻柔颠倒混匀。
3. 虽然得到的是白膜层，但是会有少量红细胞存在，所以红细胞裂解液
还是必要的，但用量减半。 4. 采用白膜层提取核酸时，所用到的提取溶液体积需按照全血体积进行 操作。即：1ml全血得到的白膜层提取时需要加入提取1ml全血的试剂量。
样本保存和前处理－血清/血浆
保存 现在很多科研者使用血清/血浆提取游离核酸进行研究，例如：肿瘤研究。
抗凝剂处理血 肝素 柠檬酸* EDTA*
第四天收率90%
-80℃ 4℃
保存2个月，第10天收率90%
或枸橼酸钠
作为抗凝剂 不宜使用肝素
第10天提取效 果差 提取效果差
第十天收率85% 第四天收率90% 第十天提取效果差
室温
（二）血浆和血清
血浆和血清是检测释放入血的游离核酸最主要的
标本来源，用来检测病毒、细菌，以及肿瘤细胞
溶液法（盐析法）
吸附柱法
样本裂解 纯化去蛋白 沉淀核酸
样本裂解
加入吸附柱
缓冲液漂洗 洗涤去盐 DNA洗脱收集
溶解DNA沉淀