小鼠免疫程序
免疫学实验操作流程
免疫学实验操作流程第一次实验 双向免疫扩散试验1、小鼠摘眼球取血，双侧均摘取，(搞眼球者和用Eppendorf 管接血者配合好，尽量不要让血液流到管外)。
收集血液于Eppendorf 管中(1管/鼠)。
(小鼠取血前12小时停止给固体食物，多给水)2、待血液凝固后，用牙签剥离血块，将Eppendorf 管于37℃放置半小时后，转入4℃ 冰箱中，直至血清彻底析出(约2小时)。
3、在第一个半小时内(37℃ 孵育)，解剖小鼠，观察小鼠免疫器官的状、大小、位置等。
4、在4℃ 的2个小时内，要做两件事情。
一是为第二天的ELISA 实验做准备，具体是包被的那一步骤；二是双向免疫扩散的实验操作。
(1) ELISA 的包被包被是将抗原吸附于酶标板的过程。
抗原的包被浓度为10ug/ml 。
48孔酶标板各孔依次加包被液100ul/孔，注意设置空白对照。
包被好的酶标板置于4℃ 过夜。
包被说明：设三复孔。
A1-A3不包被抗原，C1-C3不包被抗原，它们用于阴性对照。
2 43 5 6 7 8 10 9 1211(2) 琼脂双向免疫扩散实验操作步骤①制板配制1.5%琼脂粉溶液(用生理盐水)，微波炉加热至琼脂成溶胶状态(短间隔多次)，室温自然冷却至50℃左右(手摸上去能忍受)将琼脂粉溶液倾倒至载玻片上，待琼脂成凝胶状态后进行下一步。
(琼脂凝胶尽可能厚一些)②打孔用打孔器在琼脂上打孔。
③为稀释抗体和抗原(倍比稀释)做准备。
抗体浓度在做预实验时从原浓度开始稀释至8倍结束共3个梯度。
稀释方法：取三个EP管，分别标记为1/2、1/4、1/8。
每管先加50ul的生理盐水。
取血清50ul，加入标记1/2的EP管内，充分混匀后，用加样器吸出50ul，加入到标记有1/4的EP管内，再充分混匀后，再取出50ul，加入至标记1/8的EP管内，充分混匀。
再将各管内的血清加入到对应的孔内，每个对应孔加25ul(见图)。
④加样结束后将载玻片置于一个湿盒内，置于37℃孵箱中过夜。
小鼠免疫
小鼠免疫免疫是单抗制备过程中的重要环节之一。
即用目的抗原免疫小鼠，抗原通过血液循环或淋巴循环进入外周免疫器官，刺激相应B淋巴细胞克隆，使其活化、增殖，并分化成为致敏B 淋巴细胞。
一、血清效价的影响因素小鼠免疫效价的高低直接影响单抗的制备。
单抗免疫程序不同，包括免疫用的动物，抗原的性质、抗原量、免疫途径、免疫间隔时间、是否应用佐剂均会影响免疫效果。
二、免疫材料1．免疫用的动物抗原与免疫动物种属差异越远越好，小鼠、大鼠、亚美尼亚仓鼠和兔中分离的淋巴细胞的杂交瘤技术已经很成熟。
小鼠是极好的免疫接种对象，原因是：1）小鼠易操作；2）多个纯系株易得到且价格合理；3）有很多试剂可用以检测鼠源免疫球蛋白；4）小鼠对外来蛋白质能产生良好的免疫应答；5）小鼠淋巴细胞能够和多种鼠源骨髓瘤细胞系发生有效融合。
2．免疫原（抗原）颗粒性抗原：颗粒性抗原免疫原性强，如肿瘤细胞、淋巴细胞、•细菌等可作为抗原，不加佐剂直接进行免疫，就可获得较好的免疫效果。
可溶性抗原：因其免疫原性较弱，一般要加佐剂，如系半抗原，•应先制备成人工免疫原，再加佐剂。
免疫原的形式会影响宿主体液免疫产生的抗体谱，因此选择免疫原制备抗体时应该考虑到所制备抗体的最终用途，并应该根据其用途决定何种方法筛选抗体更合适。
一般认为，影响免疫血清中lg亚类谱的因素主要包括免疫原、接种途径、佐剂和动物遗传背景等。
且主要由初次基础免疫所决定，加强免疫的作用主要是提高特异性抗体的滴度。
3．佐剂目的：1）增强抗原对机体的免疫原性；2）增强抗体的产生能力；3）为制备出高效价的免疫血清；4）增强可溶性抗原的免疫原性；5）在某种情况下，改变Ag免疫应答类型；6）延长抗原在免疫动物的时间；7）改变抗原的分布；8）增强共刺激信号和激活免疫系统而刺激淋巴细胞增殖。
种类：氢氧化铝佐剂、明矾佐剂（常用于肌肉、皮下注射）、弗氏佐剂。
弗氏佐剂是最主要的免疫佐剂，热处理杀死的分歧杆菌可以引起炎症反应，募集淋巴细胞到抗原沉积部位，但若重复刺激可导致肉芽肿的形成，故不能重复使用。
单抗制备小鼠免疫SOP
单抗制备免疫一、材料准备：弗式完全佐剂（complete Freunds adjuvant，CFA）弗氏不完全佐剂（incomplete Freunds adjuvant，IFA）实验动物：小鼠（Balb/c）雌性，8周以上,体重20g以上每种抗原蛋白免疫小鼠4只靶抗原：具有免疫原性的抗原或蛋白质、多肽，生理盐水抗原要求：抗原要尽量在无毒无刺激溶液中（PBS或生理盐水），纯度大于80%，浓度1mg/ml以上，总量大于2mg。
抗原尽量是可溶性抗原，溶液为PBS，如必需加入刺激物质，SDS浓度在0.5%以下，尿素在2M以下，不含咪唑，丙烯酰胺等变性剂，要求溶液澄清，无沉淀。
二、实验步骤1.抗原准备：每只小鼠按照100ug/100ul蛋白质或多肽置于生理盐水中制备成抗原。
2.抗原-佐剂的准备：将抗原液与佐剂混合制成乳状液，抗原与佐剂混合按照1：1比例进行，加入搅拌子后于4度搅拌过夜。
注射量为200ul 每只小鼠，抗原量为100ug。
第一次免疫使用弗氏完全佐剂，以后加强使用弗氏不完全佐剂，最后一次加强不加佐剂，免疫前采集阴性血做为对照，乳化因考虑损失，多计算两只小鼠的量。
乳化完全判断标准：挤出一滴乳状液滴于冷水表面以检测乳状液是否稳定，如果液滴散开则继续混合操作直至稳定的乳状液形成。
将乳状液移入1ml注射器。
3.小鼠免疫：将小鼠放在鼠笼上，拉住小鼠尾尖部，背部75%酒精消毒，针头15度角刺入小鼠皮下，挑起注射。
皮下注射共200ul，分5个点（背部皮下任意点）4.冲击免疫：如计划在免疫3d后进行细胞融合实验，则使用水相溶解的游离抗原进行直接脾脏免疫。
过程：将小鼠在固定架上固定，脾脏位置毛剪掉并消毒，快速分别剪开外皮和内皮，将脾脏拉出，吸取100ul/100ug抗原注入脾脏内，并快速用手术线分别缝合内皮和外皮。
5.小鼠阳性血清采集：尾部剪尾采血20ul，用生理盐水稀释10倍，离心收集上清。
6.效价检测：间接法检测小鼠多抗血清效价。
多克隆抗体制备免疫小鼠 (2)
多克隆抗体制备免疫小鼠简介多克隆抗体制备是一种常用的实验技术，用于获得特定蛋白质及其表位的抗体。
免疫小鼠是多克隆抗体制备的常见动物模型之一。
本文将介绍多克隆抗体制备免疫小鼠的一般流程和关键步骤。
流程多克隆抗体制备免疫小鼠的流程主要包括以下几个步骤：1.抗原制备：准备目标蛋白质作为免疫小鼠的抗原，可以是纯化的蛋白质、重组蛋白质或合成的多肽。
2.免疫小鼠：将抗原与适当的佐剂混合，注射到小鼠体内，观察免疫反应情况。
3.收集抗体：采集小鼠的血液样本，离心分离血清，获得抗体。
4.抗体筛选：使用各种筛选方法（如酶联免疫吸附试验、免疫组织化学染色等）筛选出特异性较好的抗体。
5.抗体纯化：通过亲和层析、离子交换层析等技术，对抗体进行纯化，得到高纯度的抗体。
关键步骤抗原制备抗原制备是多克隆抗体制备的关键步骤之一。
抗原质量的好坏直接影响免疫小鼠及最终制备的抗体的质量。
以下是一些常见的抗原制备方法：•纯化蛋白质：通过基于亲和层析、离子交换层析等技术，从含有目标蛋白质的来源中纯化目标蛋白质。
•重组蛋白质：利用基因工程技术在大肠杆菌或其他表达系统中表达目标蛋白质，然后通过亲和层析或其他纯化方法纯化目标蛋白质。
•合成多肽：合成目标蛋白质的特定片段或多肽，用于免疫小鼠。
适当的佐剂适当的佐剂对于免疫小鼠产生良好的免疫响应非常重要。
佐剂的作用是增强抗原的免疫原性和稳定性，促进免疫细胞的活化。
常用的佐剂包括完全佐剂（如完全弗氏佐剂）和不完全佐剂（如不完全弗氏佐剂）。
免疫小鼠免疫将抗原与适当的佐剂混合后，通过皮下注射、腹腔注射等方式将抗原注射到小鼠体内。
注射后，可以观察小鼠的免疫反应情况，如产生抗原特异性抗体。
血液采集和抗体收集一段时间后，如一般在免疫小鼠体内产生可检测到的抗体，可以采用静脉采血的方式采集小鼠的血液。
血液离心后，就可以获得含有抗体的血清。
抗体筛选和纯化获得含有抗体的血清后，可以使用各种筛选方法对抗体进行筛选，如酶联免疫吸附试验（ELISA），免疫组织化学染色等。
小鼠免疫
小鼠免疫免疫是单抗制备过程中的重要环节之一。
即用目的抗原免疫小鼠，抗原通过血液循环或淋巴循环进入外周免疫器官，刺激相应B淋巴细胞克隆，使其活化、增殖，并分化成为致敏B 淋巴细胞。
一、血清效价的影响因素小鼠免疫效价的高低直接影响单抗的制备。
单抗免疫程序不同，包括免疫用的动物，抗原的性质、抗原量、免疫途径、免疫间隔时间、是否应用佐剂均会影响免疫效果。
二、免疫材料1．免疫用的动物抗原与免疫动物种属差异越远越好，小鼠、大鼠、亚美尼亚仓鼠和兔中分离的淋巴细胞的杂交瘤技术已经很成熟。
小鼠是极好的免疫接种对象，原因是：1）小鼠易操作；2）多个纯系株易得到且价格合理；3）有很多试剂可用以检测鼠源免疫球蛋白；4）小鼠对外来蛋白质能产生良好的免疫应答；5）小鼠淋巴细胞能够和多种鼠源骨髓瘤细胞系发生有效融合。
2．免疫原（抗原）颗粒性抗原：颗粒性抗原免疫原性强，如肿瘤细胞、淋巴细胞、•细菌等可作为抗原，不加佐剂直接进行免疫，就可获得较好的免疫效果。
可溶性抗原：因其免疫原性较弱，一般要加佐剂，如系半抗原，•应先制备成人工免疫原，再加佐剂。
免疫原的形式会影响宿主体液免疫产生的抗体谱，因此选择免疫原制备抗体时应该考虑到所制备抗体的最终用途，并应该根据其用途决定何种方法筛选抗体更合适。
一般认为，影响免疫血清中lg亚类谱的因素主要包括免疫原、接种途径、佐剂和动物遗传背景等。
且主要由初次基础免疫所决定，加强免疫的作用主要是提高特异性抗体的滴度。
3．佐剂目的：1）增强抗原对机体的免疫原性；2）增强抗体的产生能力；3）为制备出高效价的免疫血清；4）增强可溶性抗原的免疫原性；5）在某种情况下，改变Ag免疫应答类型；6）延长抗原在免疫动物的时间；7）改变抗原的分布；8）增强共刺激信号和激活免疫系统而刺激淋巴细胞增殖。
种类：氢氧化铝佐剂、明矾佐剂（常用于肌肉、皮下注射）、弗氏佐剂。
弗氏佐剂是最主要的免疫佐剂，热处理杀死的分歧杆菌可以引起炎症反应，募集淋巴细胞到抗原沉积部位，但若重复刺激可导致肉芽肿的形成，故不能重复使用。
小鼠免疫方案
小鼠免疫方案1.将抗原蛋白溶于生理盐水中（可以溶解为0.2mg/mL的抗原溶液）；1.1. 与等体积的弗氏完全佐剂双推法混匀（此时抗原浓度约0.1mg/mL）；1.2 经腹部皮下多点注射免疫BALB/C小鼠(注射约0.25mL)；1.3 2周后用等量抗原与不完全弗氏佐剂同上法混匀后免疫；1.4 再过1周后连续每周用以上1.3.的方法加强免疫1次(抗原可减半)，共3次；1.4 最后一次免疫3d后，可通过断尾取血测血清效价，若达到预期目的，即可放血收集抗血清。
2.20-100ug/mouse3.用正常小鼠的血清做阴性对照4.初步实验方案如下：小鼠眼球采血500ul，将血液在37°C恒温箱中放置30分钟，再在4°C放置过夜。
用药铲将血凝块从管壁上拨落，将血液转移至塑料离心管中，4°C，10,000g离心10分钟，收集上清液即为抗血清，可在-20°C保存数年。
抗血清稀释度：1：100，1：200，1：400，1：800，1：1600，1：3200，1：6400，1：128001.抗原包被板子，10ug/ml,0.1ml/孔，4°包被过夜2、洗涤：每孔250ul洗涤液。
洗三次。
3、封闭：每孔200ul封闭液，37摄氏度1小时。
洗涤液,封闭液和包被液均是含0.1%吐温的PBST4、加入抗体，按比例稀释，每孔100ul，37度1小时。
5、洗涤：同上，5次。
6、加二抗：每孔100ul，37度1小时，洗涤5次。
（这部洗涤比较关键，必须洗干净，否则OD值偏高。
如果拍板熟练，也可以不用洗涤）7、显色：加入底物和供氢体。
分别50ul 避光显色15min8、终止：2mol/L硫酸50ul/孔9、测定：用酶标仪测450nm的OD 值。
动物免疫技术实验报告
动物免疫技术实验报告实验目的：本实验旨在通过动物免疫技术，研究动物体内对特定抗原的免疫应答机制，以及免疫后产生的抗体特性，为进一步的免疫学研究和疫苗开发提供理论基础和实验数据。
实验材料：1. 实验动物：健康成年小鼠，体重20-25g。
2. 抗原：纯化的蛋白质抗原。
3. 佐剂：弗氏佐剂。
4. 免疫试剂：PBS缓冲液、EPPENDORF移液枪、离心管等。
5. 检测试剂：ELISA试剂盒。
实验方法：1. 抗原制备：将蛋白质抗原与弗氏佐剂混合，制备成免疫原。
2. 免疫程序：将小鼠随机分为实验组和对照组。
实验组小鼠在第0天和第14天分别进行皮下注射免疫原，对照组小鼠注射等量的PBS缓冲液。
3. 采血：免疫后第28天，对小鼠进行心脏采血，分离血清。
4. 抗体检测：采用ELISA方法检测血清中特异性抗体的浓度和活性。
实验结果：1. 免疫后小鼠血清中特异性抗体水平显著升高，与对照组相比有显著性差异（P<0.05）。
2. 抗体的亲和力和特异性通过ELISA实验得到了验证，显示出良好的免疫效果。
3. 实验组小鼠在免疫过程中未出现明显的不良反应，说明免疫原的安全性良好。
实验讨论：本实验通过动物免疫技术成功诱导了小鼠产生特异性抗体，为研究免疫应答机制提供了实验依据。
实验中使用的弗氏佐剂作为一种有效的免疫增强剂，显著提高了免疫效果。
此外，通过ELISA方法对抗体的检测，进一步证实了免疫原的有效性和特异性。
结论：动物免疫技术是一种有效的研究免疫应答的方法，本实验成功地诱导了小鼠产生特异性抗体，为免疫学研究和疫苗开发提供了有价值的数据。
未来的研究可以进一步探索不同抗原和佐剂的组合，以及免疫程序的优化，以提高免疫效果和疫苗的保护力。
参考文献：[1] 张三, 李四. 免疫学基础与技术[M]. 北京：科学出版社，2015.[2] 王五, 赵六. 动物免疫技术在疫苗研究中的应用[J]. 中国免疫学杂志，2018, 34(2): 123-128.实验日期：2024年4月21日实验人员：XXX指导老师：XXX[注：以上内容为示例文本，实验数据和参考文献需根据实际实验情况进行调整。
如何确定小鼠免疫方案
以我给的标题写文档，最低1503字，要求以Markdown文本格式输出，不要带图片，标题为：如何确定小鼠免疫方案# 如何确定小鼠免疫方案## 引言在小鼠研究中，确定适当的免疫方案是十分重要和关键的。
通过适当的免疫方案，我们可以有效地激发小鼠的免疫系统，产生特定的抗体或细胞免疫应答。
本文将为您介绍一些确定小鼠免疫方案的基本步骤和考虑因素。
## 步骤一：确定研究目的在确定小鼠免疫方案之前，我们需要明确研究的具体目的。
不同的实验目标会对免疫方案有不同的要求。
例如，如果我们希望研究小鼠对特定抗原的免疫应答，我们需要选择一个能够激发小鼠产生特定抗体的免疫方案。
如果我们关注小鼠的细胞免疫应答，我们可能需要选择一种能够激活小鼠免疫细胞的免疫方案。
## 步骤二：选择适当的免疫途径确定研究目的后，我们需要选择适当的免疫途径来实施免疫方案。
常用的免疫途径包括注射、皮下植入和口服给药等。
免疫途径的选择取决于多种因素，包括抗原的性质、实验设备和实验室的实际情况等。
对于大多数抗原来说，注射是最常用的免疫途径。
注射可以通过腹腔、皮下或肌肉等途径进行。
注射途径的选择应综合考虑确保抗原的充分分布和最佳免疫效果。
皮下植入是一种相对简单的免疫途径，适合小体积的抗原。
这种途径不需要特殊设备和技术，但需要注意合适的注射部位和注射剂量。
口服给药是一种非侵入性的免疫途径，适合一些特定抗原的研究。
通过口服给药可以模拟自然感染途径，但其免疫效果通常较注射或皮下植入途径差。
## 步骤三：确定免疫计划确定免疫途径后，我们需要制定一个合理的免疫计划。
免疫计划包括抗原剂量、免疫次数和免疫间隔等参数的确定。
在确定抗原剂量时，我们需要考虑抗原的理化性质、小鼠的年龄和健康状态等因素。
通常，较小的抗原剂量可以激发较强的免疫应答，但过高的抗原剂量可能导致免疫耐受或免疫抑制。
免疫次数和免疫间隔的确定也需要考虑多种因素。
通常，多次免疫可以增强免疫应答的持久性和效力。
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小鼠免疫程序
一、抗原的准备
1、收到抗原时，首先要了解抗原的种类、性质和浓度，以便采取不同的处理方法。
2、多肽抗原，一般分多肽—偶联KLH和多肽—偶联BSA（或GGG）或裸多肽三种。
多肽—偶联KLH一般用于免疫，而多肽—偶联BSA或裸肽一般用于检测，在免疫时注意区分使用。
3、分装
（1）收到抗原后，应及时按免疫需要分装，避免反复冻融。
（2）如抗原是大肠杆菌重组蛋白，可能存在不溶性沉淀，分装前，应用超声粉碎仪粉碎，要注意，在冰浴中进行，超声强度应以溶液不产生泡沫的水平为准，超声强度过大，易产生泡沫导致蛋白变性，超声强度太低效果不佳，每次2-3秒，重复3-4次，超声完毕立即分装。
（3）分装管应用不粘附蛋白的样品管，要用二种不同颜色的标签明确区分免疫用抗原和检测用抗原，并写明分装日期，抗原名，浓度和剂量。
A 免疫用抗原：一般50ug/每只小鼠×5只=250ug/1个分装管，备做首次免疫用。
另分装2个100ug/1管，备做融合前加强免疫用，再分装25ug/只/×5=125ug/1个分装管，共分装4-5管，备加强免疫用。
B 检测用抗原：100ug/每管，分装共3管。
C 分装好的抗原除马上免疫用管外，其余均装入小塑料袋中，写好抗原名标签，马上存入-700C。
剩余抗原交保管员存-700C，并填好交接班表格。
二、免疫程序
1、多肽类抗原（包括MAP型多肽），第一次用福氏完全佐剂，每只50-100ug ,腹腔注射，总剂量0.5ml/只，第二次起用福氏不完全佐剂，剂量为25-50ug/0.5ml/只，间隔3周，第三次注射后10天测血（ELISA法），如滴度未达到1:104, OD1.0以上，则继续免疫，如ELISA已达滴度，则可取血清送WB或ICC检测。
2、蛋白类抗原：所用抗原的剂量等与多肽类相同，但进程有差异，首次免疫21天
后，第二次免疫后，每次间隔为10天。
三、抗原的乳化
抗原乳化前，应检查抗原管有否颗粒状沉淀，如有沉淀，应超声粉碎后，立即溶解在0.01M PH7.2 PBS中（PBS应为无菌液），每只小鼠腹腔注射总量0.5ml，用2-5ml注射器，取1.25ml含抗原的PBS，另一支注射器取（等体积）福氏完全佐剂或不完全佐剂，用不锈钢连接接头连接，反复推拉混合约10-30分钟，平放静置30分钟，如水乳相不再分离，即可注射小鼠。