小鼠尾静脉注射的心得体会
小鼠尾静脉注射方法与体会
（） １固定。用纱 网 自 制小 鼠固定器 ， 圆筒状 ， 为小 正好容纳
一
只小 鼠 ， 固定器 一端是 盲端 ， 另一端有 后盖 ， 盖上 留一圆 后
孔， 正好容下尾巴。用左手拇指 、 食指将小 鼠尾 巴拉直 固定 ， 使 小 鼠 巴与实验 台保持平行 。 尾
（） ２ 扩张血管 。 用酒精棉球擦拭小鼠尾巴， 使血管扩张 ， 或者 用热水浸泡 ， 直至发红 。 注射状态为小鼠尾 巴发 白， 紧靠 白色的
尾骨两侧清晰可见两根红色静脉 。
小 鼠尾静脉注射方法的关键是要多练习， 熟能生巧 。 操作时 心要静、 手要稳 。 要有耐心。 该方法迅速 、 准确， 用于指导学生进
长期实践 ， 我们总结 出一套准确 、 速的单人操作方法 ， 快 现介绍
如 下。
１器材
自制小 鼠固定器 ，ｍ 一次性注射器 ， ｌｌ 酒精棉球 ， 医用手套 。
２ 方法
时， 要缓慢 、 均匀推射 ， 一旦速度过快 ， 鼠会发生充血性心衰。 小 （） ５每次注射 的剂量 不可超过 ０ ｍ ， ． ｌ注射剂量过大 ， 鼠会发 ２ 小
【 董敬 富． ３ 】 虚拟局域网 （Ｌ Ｎ） Ｖ Ａ 的教 学研 究叨． 中小企业 管理与科技 ，
２０ ，２ １ ）２７ ２９ ０ ８ １（ １ ：２— ２ ．
进学员成长 ， 培育其挖掘 自 身价值 的能力 ， 练其判 断分析力 、 训
评估 力、 批判力及帮助他人 的能力。在这种情况下 ， 教员在教学
２年教学应用中实现网上 报名 ３０人次 ，网上咨询教学 问题并 ２
Ⅲ 贾丽瓤 智 能网络教学 系统的开发与实现 大理学 院学报 ，０８ １ ２０ ，２
（ ）７ — ７ ７ ：５ ７ ．
注射实验心得体会和感想(优秀20篇)
注射实验心得体会和感想（优秀20篇）实验后的心得体会感想在我们的学习生涯中，实验是一种重要的教学方式之一。
实验除了让我们更好地理解理论知识外，还能够培养我们的实践能力和解决问题的能力。
在实验过程中，我们会面临各种挑战和困惑，但通过实验后的心得体会，我们能够总结经验，开拓思维，更好地应对未来的学习和研究。
在进行实验之前，我们必须做好充分的准备工作。
首先，我们要熟悉实验原理和流程，了解实验的目的和要求。
其次，我们要仔细阅读实验指导书，并准备好所需的实验器材和试剂。
最后，我们要充分思考和预测实验可能遇到的问题，并制定解决方案。
这些准备工作是实验顺利进行的基础，也是我们获得准确实验结果的关键。
第三段：实验中的挑战与困惑。
在实验过程中，我们常常会遇到各种挑战和困惑，这需要我们保持耐心和细心。
首先，实验操作过程中的细节要求极高，我们必须按照实验原理和流程进行准确的操作。
其次，实验可能会出现意想不到的情况，我们需要快速反应并调整实验方案，以确保实验顺利进行。
此外，实验中可能出现测量误差和实验结果与理论预期不符的情况，这需要我们进行认真的思考和分析，找出问题的原因并改进实验方法。
实验结束后，我们应该及时总结实验结果并进行思考。
首先，我们要比较实验结果和理论预期，分析实验中可能存在的误差和偏差，并从中找出改进的方向。
其次，我们要回顾实验过程中遇到的问题和困惑，总结经验和教训，为以后的实验做好准备。
最后，我们还应该思考实验背后的原理和意义，深入理解实验的目的和涵义，从而更好地应对实验中的挑战和困惑。
通过实验后的总结和思考，我深刻体会到实验是一种宝贵的学习方式。
实验不仅能够帮助我们巩固和加深理论知识，还能够培养我们的实践能力和解决问题的能力。
在实验中，我学会了细心和耐心，并锻炼了观察和分析的能力。
实验还让我明白了科学研究的严谨性和灵活性，教会了我如何面对挑战和困惑，并主动解决问题。
通过实验后的心得体会，我更加坚定了从事科学研究的决心，并对未来的学习和研究充满了信心和期待。
小鼠注射实验报告心得体会
小鼠注射实验报告心得体会在我的科研生涯中，我曾经进行过小鼠注射实验。
这是一项基础科研工作，但却是非常重要的一环。
通过小鼠注射实验，我们可以研究小鼠的体内反应和生理学变化，探究新药的毒性和疗效。
在这个过程中，我收获了许多经验和体会。
首先，小鼠注射实验需要非常谨慎和细心。
小鼠的身体非常娇小，在注射的过程中，我们需要特别小心，不能用力过大，需要找准注射点位，以免小鼠受到不必要的伤害。
同时，注射液体的用量也需要控制，不宜过多或过少，否则会影响实验结果。
我们需要严格遵守实验操作规程，确保实验的准确性和可靠性。
其次，在进行小鼠注射实验时，我们需要重视动物福利和伦理问题。
小鼠是研究对象，但我们也需要尊重其生命和权益。
我们需要为小鼠提供适宜的饮食和生活环境，在实验结束后，及时给予善后处理，以确保小鼠得到妥善的照顾。
在实验过程中，我们需要尽可能的减少小鼠的痛苦和不适，同时也需要尊重小鼠的生理需求，以确保实验的合理性和道德性。
最后，小鼠注射实验需要耐心和细致。
在实验的过程中，我们需要对实验结果进行认真的观察和记录，及时发现和纠正实验中的问题。
我们需要有耐心和细致的态度，逐步分析实验结果，找出其中的规律和意义，以便为科学研究提供更为可靠的基础资料。
总之，小鼠注射实验是一项非常重要的基础科研工作，我们需要持续不断地投入到其中，努力推进科学研究。
在这个过程中，我们需要高度重视实验操作的准确性和可靠性，同时也需要尊重动物福利和伦理原则，以确保实验的合理性和道德性。
只有这样，我们才能为人类的健康和福利做出更大的贡献。
尾静脉注射技巧档
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得- -大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。
小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。
通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。
在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。
如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。
或者用这个方法：1 小鼠要固定好，自制一个笼子，前面通气，中间最好有一个挡板，让小鼠不能后退，筒子后面开一个口，尾巴从这里出来，这样固定牢靠；2、注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；3、先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；4、进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。
至于能否穿进，个人手感如何，全靠自己啦。
多练习，一定很快掌握的，不难，绝对不难！我练习10余只小鼠就比较熟练了2. 用酒精棉球擦拭尾巴,使血管扩张;或者用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大。
用酒精或热水擦拭，擦拭的时候，可把尾巴用力扯在桌面上。
注射状态为尾巴发白，紧靠白色的尾骨两侧清晰可见两根红色静脉。
3.用左手的食指,中指,无名指及大拇指将小鼠尾巴固定,; 手法：握住1ml注射器前面0.1ml处。
右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处按此手形进针；看针尖前面那个斜面有3/4（关键），如果血管充盈则进1/2，进入，停，上挑针头，进针；左右轻摆动，如可动，可注射。
原则是：把你第一次打进的手形，完全固定下来，每次都重复。
4.注射:注射时左手扯尾，使尾巴紧贴桌面，尾巴与桌边紧贴转弯处为进针部位，一般选择距尾尖1/4或1/3处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易。
小鼠尾静脉注射心得(附有图片)
1、固定：很重要，我们实验室自制了一个小圆筒（50ml的离心管），筒的直径正好容下一直小鼠，筒的一端是盲端，筒身上
开了N个通气空，有一个后盖，后盖上留有一圆孔，正好容下尾巴。
由于小鼠有钻洞的习性，把它往筒口一放，自己就钻进去了，然后把尾巴从盖孔中穿过，盖上后盖即可。
这样比较稳妥。
我一般找一张桌子，把尾巴压在桌边沿上，由于边沿
是个直角，把尾巴的下1/3处压在直角上能使尾部暴露很好。
2、扩张血管：关键，我一般用热水泡，直至发红即可，不能太热，容易把皮烫掉了；小鼠尾巴如果发白，那是没烫到位，再多泡一会即可。
3、手法：这要靠多练，熟能生巧。
一开始最好从小鼠尾静脉的末端开始注射，如果在中前端注射一旦失败这样可以防止注射的数次失败后液体漏出。
4：注射时手上的感觉很重要，如果针头进入尾静脉，手上会有一种透空感，这种感觉只有自己亲自经历后才会有比较深的体会，另外针头如果进入后，液体的推射会很顺利；如果，感觉液体推不进去，很费力，说明针头没有进入尾静脉，而是进入了周围的软组织。
5：在注射时，一个很重要的原则是注射要缓慢，均匀推射，速度不可以快，一旦速度快，小鼠会发生充血性心衰；如果一旦出现这种情况，立即停止注射，对小鼠实行心脏按摩，也许可以救活（自己曾经这样救活过2只小鼠）！
6：每次注射的剂量：不可以超过0.2毫升；注射剂量过多，也会发生充血性心衰。
现在我基本上是100％的成功率，关键是要对自己有信心！！。
小鼠尾静脉注射的几点体会
小鼠尾静脉注射的几点体会本文从网络收集而来，上传到平台为了帮到更多的人，如果您需要使用本文档，请点击下载按钮下载本文档（有偿下载），另外祝您生活愉快，工作顺利，万事如意！论文导读：小鼠尾静脉注射是药理，毒理实验中常用的注射方法，也是医学学生必备的技能之一，本文主要总结了医学本科生小鼠尾静脉注射实验中的几点体会。
关键词：小鼠尾静脉注射，体会在医学研究中，小鼠常常被选为实验对象，进行药理、毒理实验、肿瘤实验及各种急、慢性实验。
小鼠目前的给药方式有灌胃给药，腹腔注射，皮下注射，尾静脉注射等[1] 。
尾静脉注射是一项重要的给药方法，由于小鼠尾静脉较细，尾静脉难度大，在学生实验中的广泛应用受到了限制。
发表论文。
为此，笔者把实践过程中得出了一些经验介绍如下，以供大家交流。
发表论文。
1.器材与方法器材：1ml一次性注射器，棉球，纱布，毛巾或面纱手套方法简介：将小鼠固定在小鼠固定器中，使其尾巴露出。
用手指压迫尾根部的两侧片刻，一手食指从下面托起尾尖部,与拇指捏住并微微转动,使左或右侧的静脉向上，一手持4号或号针头注射器，在距尾尖1／2或1／3处进针。
发表论文。
一次注射量为~ ml/10 g体重。
注射完后拔出针尖，把尾部向注射侧弯曲或以棉球压迫止血[2]。
2.小鼠尾静脉注射的体会实验开始之时，应注意检查小鼠固定器是否完好，注射针头是否变钝，否则应注意更换，以免由于实验器材的问题造成不必要的困扰，影响实验的进度。
小鼠尾部的血运十分丰富，在其背、腹及左右两侧有数条动静脉伴行的血管丛。
其中背、腹各一根的动脉与左右各一根的静脉最为明显。
动脉的位置相对较深且管腔相对较小，不容易刺入，因此常常选择两侧的静脉，且两侧的静脉较容易固定，它的直径平均小于±0 .5 mm，但当遇到热水,7 5 ％酒精，或远红外线的烘烤时，尾静脉呈明显扩张，平均为±0 .7 mm[3]。
压迫尾根部使血管充盈，此外，使用40”C左右的热水浸泡鼠尾l 0~2 0 s或使用75％酒精棉球强檫，软化角质，还可以灯泡靠近鼠尾烤均可以使血管更加充盈、清晰。
浅谈大小鼠尾静脉注射之经验体会
容易发生溶血。
４ ． ３泡鼠尾的热水温度一定要控制好 ， 温度过高会烫伤
尾巴甚至引起脱皮。
４ ． ４一般注射速度要缓慢，均 匀推拄 ，速度不可以快，
一
酒精棉球强檫 ，软化角质 ，使血管充盈 ；（） ３灯泡靠近
文章编号：１２ － ８（０８１．０ ８ ２ ７９５ ６ ０）２０ ５． ３ ２ ０ 于观察血管 ，然后再采用如上三种方法充盈血管。
３ 注
一
中图分类号：Ｒ３ ２ －３
文献标ｉ￣－Ｂ ， ｑ
尾静脉注射 是 日常动物实验 中用得 比较多的一项 实验操作，也没有多大的技术含量，完全是熟能生巧，
针尖斜面朝上， 一旦进入， 须将针头稍稍上挑进入， 针 头沿血管进入 ， 肉眼可观察到针头前进。 如果针头在血 管中前进 ， 可明显地感觉到针行通畅， 毫无阻力。 若针 头不在血管中， 手感针行有阻力， 有一种堵的感觉。 针 进入后 ， 切记手不可发抖 ，因为血管壁非常薄， 容易扎 穿。推药前回抽 ，有回血 ，可确定在血管中，推药时，
５ ９
不栓塞 ， 打之 前可 以过 ２０目的铜 网或者过 ４ 针头 。 在 ０ 号
倒钩 ，这 也是 注射 不进 去 的原 因之一 。 【 收稿 日期 ２０－０２】 ０ ８１－ ９
４ ． ７注意注射时用手指检查一下针头部位 ， 有没有出现
・
经验 交流 ・
胸锁关节脱位 ８ 例临床治疗体会
将 断端 重叠 套在 一 起 ，这样 瓶 身 长 度就 变成 伸 缩可 调
４ 注意事项
４１注射器中要排空气泡。强调注射时一定确保没有空 ．
气被注射进静脉 ， 我们发现实验中， 即使是我们认为的 很小 的一滴气泡 ，也会在注射 中使小鼠死亡（ 它如果被 注射进空气就表现为突然的类似惊厥 的表现 ， 而后倒地 死亡 ，时间很短） 。另外气泡会影响每次给药量的准确
1裸鼠尾静脉
【求助】小鼠尾静脉注射，注射了三十只，只成功了两只！求教！各位ＧＧＪＪ：我做小鼠尾静脉注射，注射了三十只，只成功了两只！求教最好用几号针头？尾巴如何处理？将针头扎入静脉，可以看回血么？可是小鼠奥！还有扎入静脉后，注射的时候，尾巴与注射器该如何抓，才不会移位置？谢谢！据说小鼠比大鼠还好注射呢。
关于注射的操作帖子，本版有好多。
你可以search一下。
建议，先找几只练练手，熟练了在正式做。
>..............................谢谢谢谢谢谢我喜欢大鼠尾静脉!~感觉比小鼠好大!~--------------------------------------------------------------------------------谢谢谢谢谢谢?????????????????????????我觉得都难打，太小了。
我做过小黑鼠的尾静脉注射，也来说说体会：首先，要用固鼠器固定好，尽量把鼠尾拉直，用酒精擦鼠尾（必要时再用手拍打），好让静脉充分扩张，在鼠尾两侧可找到两条尾静脉（小黑鼠比较难看一点，但认真还是可以看到的）。
用细针头皮下进针（我用的是4号）从远端打起，后面的皮薄一点，较容易打成功（个人看法），打成功时进针会很顺畅，注药没有阻力，一般不会自己回血，若不成功再往近端打，但一般一条血管打过三次还不成功的话最好先暂停，因为刺激后血管会收缩，很难打，歇一会儿换另一边打。
还有一点，信心很重要！！有了信心才能找到感觉。
所以楼主一定要坚信自己能行，这样才能很轻松打中了谢谢，我练练不过还是难，痛苦中．．．．．．．．．首先，我觉得你打不进去小鼠的尾静脉，不应该发这个帖子，有这个时间和工夫，还不如去练习。
尽管我体验过几十只老鼠只打进去几只的崩溃心情。
我记得刚刚开始打尾静脉，很多老鼠都打废了，中午的时候我一个人在动物房对着一笼老鼠有放声大哭的冲动，心里难过得要命，可就是打不进去，我一个师姐买了包子让我吃了再做，包子是和眼泪一起吞到肚子里的，下午5点多回家以后我才意识到，一整天从早上起床到下午五点，我除去吃了师姐的一个包子外，没有吃任何东西，没有喝一口水，甚至没有上过厕所。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
小鼠尾静脉注射的心得体
会
Prepared on 22 November 2020
小鼠尾静脉注射的心得体会
IV比IP困难许多，我练习了非常久了之后，才抓到窍门。
由于当时没有一个人能指导我，所以我的IV技术可说是完全自己摸索出来的。
当我遇到困难时，找了许多课本、网络，可是读了却做不出来，果然theory跟practical之间还是有差距的。
一般书本所形容的IV很简洁，但实际情况要复杂许多，因此不先训练，是一定打不好静脉针的。
照例，打针之前，先量体重、准备要打的液体、做好稀释、load好进针筒里面。
准备好完这些后，就开始要抓老鼠了。
但打IV不能靠普通的restraint方法，因为打静脉要很固定的，不能有丝毫动摇。
因此需要一个restrainer，就是一个小小的塑胶东东，来困住老鼠，但它的尾巴可以掉出来。
你就抓住它的尾巴，然后往尾巴上的静脉打针。
这个restrainer一定要把老鼠牢牢地关在里面，一点都不能动才可以。
这时就要尽量把老鼠压在里面，压成一团也没问题，只要不要弄到它骨折，或者呼吸困难就可以了。
一般老鼠虽然喜欢关在一个圆圆的筒子里，但因为IV需要的是绝对的动弹不得，所以它会被关压到蛮不舒服的。
而且老鼠不喜欢别人去碰它的尾巴的，所以打尾巴针对它们来说是相当痛的。
如果不牢牢困住，就算有一点点的位置，它也会挣扎的，它一挣扎，你就打不到了。
为什么那么困难呢就是因为老鼠尾巴的静脉其实不大，很小而已，只要稍微移动，很容易就打错地方了。
打静脉的针头我一般用30G，是比26G更加细的针头。
我把步骤简化如下：
1)把针尖向下，即bevelup，这样比较容易刺进去，位置也能很精准
2)从尾巴的最后面开始试，不要一开始就刺比较靠近身体的部位，因为如果弄错了，还可以一直往上继续试，但如果一刺就刺靠近身体的，就没办法再上了
3)老鼠尾巴有静脉的地方会泛有红色的，就对准红色的线条
4)尾巴要抓紧，不要有丝毫动摇，有时候老鼠会挣扎，就要大力一点抓尾巴
5)刺进去时，尽量把针摆得跟尾巴越平行越好，因为稍微有一点角度就打不进去了(平行的话针就会在血管里面，如果有角度可能会刺过血管到血管下面的组织去)
6)可以尽量刺深一点，只要是平行就好，刺得够深的话整支针可以挂在那里不会掉下来的
7)往后拉一拉plunger，如果看到血，位置就对了！
8)位置对的话，保持针的不动，然后注射，注射的时候会觉得很顺畅，而且可以亲眼看到红色的血管慢慢被你所注射的液体所flushed，所以红色就会慢慢变成白色
9)最后把针拉出来，针口的位置会流一点血(代表真的是血管嘛)，然后用一块棉花按按扎针的部位就可以了
那错误又会怎样发生咧举例如下：
1)明明是看到自己刺到红色的线条了，可是往后拉的时候没看到血，只是感觉真空压力，这时就可以肯定刺错位置了，刺到尾巴的其他组织上，要拉出来再找一个地方刺，一般不要再刺回同样一个位置
2)开始注射后发现很难注射，plunger遇到很大的阻力似的，其实这也是打错了，不在血管里面就会这样，这时你就会看到你打针的部位周围开始泛白，但这个泛白跟血管里面泛白不同，这个泛白就围绕在你打针的部位，而且尾巴的那个部分会开始肿胀。
如果你强迫注射完进去，就发觉尾巴那里变大了，因为你所注射的液体都集中在这个部分的组织里，没有进去血管
3)有时候一开始时注射时没问题，似乎注射进了血管，可是注射到一半突然感觉阻力来了，感觉不在血管里面了，这可能是因为你的针移位了，或者老鼠的尾巴动了
4)如果注射错误，泛白了的尾巴部位就再也看不到血管了，因此才要从越下面开始尝试越好，因为你刺错后还可以往上在找找看别的位置刺，如果一开始就刺在很上面的位置而且刺错了，要从下面再注射是很困难的，因为上面已经充斥着肿胀的组织，要成功更加困难了
5)另外有一些时候，刺的时候发觉有血流出来，以为在对位置了，可是开始注射时就注射不进去，这可能跟针的角度有关系，角度不对就不容易进去，反而会注射到外面去
怎样可以帮助注射呢除了要一个很好的restrainer之外，还有一个重要的步骤，就是要给尾巴加温。
因为加温之后静脉会放大，放大了之后就比较容易注射。
一般我的做法是注射之前拿一盏很热的灯，照老鼠的尾巴大概5分钟左右，才开始注射。
这个办法很有用的，如果没有加温，效果差别很大。
还有一个TIPS，就是不要擦酒精。
酒精有点凉，擦在已经加温后的尾巴上面会马上给尾巴降温。
我每次擦了酒精之后都打得很困难的，所以还是不擦酒精比较实际。
如果万事顺利，打静脉针也可以很快的。
最好是做好好事前准备，如果可以第一次注射就成功就是最好了。
第一次如果不成功，之后就要更加小心仔细了，
不然最后可能落得老鼠的整条尾巴都被刺得白白了，已经没有新的位置可以尝试了---然后你的实验做不成功罗！
如果你折磨了老鼠很久才成功的话，老鼠放出来之后会很agitated，情绪会受到一点影响。
但是如果做得干净利落，老鼠不会觉得怎样的。
好啦，就是这样啦，说是容易，做啊，可真的要许多练习咧！。