小鼠尾静脉注射方法
小鼠尾静脉注射细节
小鼠尾静脉注射细节
第一，固定小鼠。
50ml管最好。
盖子中间挖洞，大小适合鼠尾伸出。
管身挖几个洞，方便透气。
多余空间要用棉花填塞，防止小鼠在管中前后移动。
第二，注射器选择。
(针头大小，G自己换算吧)我从1ml的注射器针头到胰岛素针头，以及胰岛素专用注射器全都用过，表示有一种黄色胰岛素专用针头最好用。
粗细，长度，硬度都刚好。
(硬度很重要)打10只左右要换针头，因为不锋利，影响手感。
第三，酒精棉球擦拭。
目的是能清楚的看到血管。
第四。
注射。
这个细节就特别多，只能做的人用绳命去总结。
古代武学大师都把自己看家绝学总结成几句话，这是很有道理的，只能达意，不能言传。
尾部拉直，35-45度入针，至针尖切面的2/3进入后，将注射器平行鼠尾，匀速插入血管0.5-1cm，推药。
最重要的就是匀速前进0.5-1cm这一步。
是否插入血管中，全凭这一段的手感。
顺滑，圆润，无阻力。
重要的事，说三遍，全凭感觉，全凭感觉，全凭感觉。
小鼠尾静脉注射心得培训资料
小鼠尾静脉注射心得培训资料
小鼠尾静脉注射心得
小鼠尾静脉注射心得
对血管的选择
1.小鼠尾部有三条静脉，左右两边各一条而且比较浅，容易穿刺；中间一条较深不容易找到，建议尽量不要选择。
另外穿刺选择尾部中下1/3-1/2处比较好，因为此处皮肤较薄，可以用75%的酒精反复擦拭穿刺部位血管，使其充盈，并使皮肤的角质层软化，便于穿刺。
或者在注射之前，小鼠尾巴用温水泡大约
2min,（水温大约50℃），这样才能使血管充分舒张。
注射前用干棉球擦干，从下往上扎。
这样的好处是万一一次扎不进，还可以继续使用此血管。
2.针的选择：书上说使用的是1ml的注射器，有人在实验中用的是头皮针，后接1ml注射器，因为头皮针针头更小，对血管的损伤更小，适合连续多次给药，其次使用头皮针穿刺后，我们可以通过回血来判断穿刺是否成功。
（4号半1ml 注射器已经足够且容易进针。
3.注射手法：左手食指和中指上下夹住你所选择血管的靠近身体的一边，无名指和小指垫起一块纱布或者纸巾（建立一个穿刺的平面的作用），拇指压住所选血管的尾尖端，上下夹住血管的距离应以不影响右手持针上下移动为宜。
（否则容易人为建立穿刺的角度，而使右手持穿刺针穿刺过深，导致穿刺失败。
）右手持穿刺针，针斜面向上，针与皮肤稍成一角度（10℃左右），进针后要将针头稍向上挑，然后将针向里送一点。
如果在血管里，则无阻力，并且能看见针。
若针看得很清晰，则扎到了皮下，若针看不清，则针扎深了。
看到回血表明成功，还可以回抽，见到回血后表明穿刺已进入血管，可以给药。
小鼠尾静脉注射方法
小鼠尾静脉注射方法一器材1 mL 一次性注射器、棉球（酒精棉球和干棉球）、试管夹、橡胶手套、固定器(自制，将50mL螺盖塑料离心管底部钻开4-6个透气小孔，离心管盖子正中钻一直径约5mm的小孔)，电热恒温水槽。
二方法1.小鼠的固定最好使用小鼠固定器，前部有气孔保证小鼠呼吸，后部可以将尾部拉出，不要让小鼠在固定器中有太多活动空间，如空间较大，可加入一些填充物，防止小鼠在注射时乱动。
2.尾静脉的准备对于小鼠，其尾部血管中有4根十分明显:背腹各有一根动脉,两侧各有一根静脉。
动脉的位置相对较深且管腔相对较小，不容易刺入，因此常常选择两侧的静脉，且两侧的静脉较容易固定，它的直径平均小于0.6±0 .5 mm，但当遇到热水，75 %酒精，或远红外线的烘烤时，尾静脉呈明显扩张，平均为0.9± 0 .7 mm。
可以将小鼠尾部在45℃左右温水浸浴2分钟，以扩张静脉法适用于室温较低的情况。
如果是炎炎夏天，可直接省去热水浸泡，改为喷酒精即可。
3.尾静脉的选择小鼠尾部有3条尾静脉。
背部1天，两侧各1条。
由于背部静脉较深，较细，一般选择侧面的2条。
4.注射器的选择选择1-2ml注射器，针头采用4号或4.5号（外径为0.4mm，0.45mm）。
注射器吸入药液后，应将空气推出，防止因空气栓塞。
5.注射用75%酒精消毒鼠尾后，一般在尾部远端的1/3到1/2处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易，而且一旦注射不成功，可以有更多近端注射的余地。
将欲注射的鼠尾用左手紧紧压在桌面上，右手进针时针头与桌面平行，针尖稍稍朝下，一旦进入，将针头稍稍上挑进入，针头沿血管进入，肉眼可关察到针头前进。
如果针头在血管中前进，可明显地感觉到针行通畅，毫无阻力。
若针头不在血管中，手感针行有阻力。
进针时不要太深，针头入皮肤后马上把针头略往上，平行进针，针扎入时有落空感，推液时无阻力则说明成功了。
如果推液阻力较大，甚至注射处出现渗液，则说明不在静脉内，需要重新调整注射。
小鼠尾静脉注射方法
各位高手提供的方法希望对你有帮助我今天尾静脉注射，没有经验，针进去也觉得挺顺，但一推生理盐水尾巴就变白，请问如果打到静脉里，尾巴有何反应，会不会变白?变白是不是插到皮下了呢？尾巴变白，肯定没有打进血管，进了血管后，注射器推进很顺利，基本没有阻力，血管内也可以看见药液把血液推走。
尾巴变白，且注射器推动有阻力，肯定没有进血管。
注射前用热水泡一下尾巴，打左右两侧的静脉，应该是比较好打的。
我推药液时也挺顺的。
但推后尾巴变白了，血管内好像也可以看见药液把血液推走。
但推走后，看到的就是血管变白了。
是不是因为把红色的血液推走了，所以变白了？我说得这种情况有没进血管的可能性呢？我回抽了一下，始终未看到回血。
我用的是小鼠，小鼠尾静脉注射时回抽能看到回血吗，好像即使是断尾，也只能采集到0.1ml啊。
请指教一下吧？谢谢！小鼠尾静脉注射时是没有回血的，只要注射器推进顺利，且局部没有肿起，一般就是进入血管了我是麻醉科的，尾静脉注射很熟练。
经验是：1－尾静脉上止血带，使静脉充盈2－酒精涂搽或温水浸泡3－剃须刀备皮4－用套管针而非普通针头，留管后见回血才能确保在静脉内，方能给药。
5－普通细针容易移位和穿破血管。
用温水浸泡时水温应该稍高一点，特别象是在冬天，温度最好是让老鼠不能耐受，即鼠尾会在水中剧烈摆动，此方法特别适用于黑色或褐色的老鼠（当然温度也不能太高，又不是煲汤，呵呵），时间10-20秒即可。
进针时角度要小一些，一般15°就行了。
进针深度不要太浅，否则当你把手移开准备注射时可能弄破血管。
注射时不用看回血，阻力较大即是未进血管，退出重新穿刺。
左右两侧的静脉以左侧稍粗，可以首先从这边注射。
在尾静脉注射时，抓住尾巴把小老鼠放在桌上或平的地方，边注射边顺势稍稍往后拉尾巴，小鼠会往前跑而不是回头，这样就能一人注射了。
之所以平放是因为老鼠倒提会回头咬人，不安全！这方法是我老师教的我，很不错，一个人熟练的话一个早上能注射60只小鼠，有兴趣的不防试试！现在的导师有几个会注射尾静脉的，真难为学生。
小鼠静脉注射给药实验
小鼠静脉注射给药实验
将小鼠放在金属笼或鼠夹中，通过金属笼或鼠夹的孔拉出尾巴，用左手抓住小鼠尾巴中部。
小鼠的尾部有2条动脉和3条静脉，2条动脉分别在尾部的背侧面和腹侧面,3条静脉呈品字型分布，一般采用左右两恻的静脉.拔去沿尾部静脉走向的毛，置尾巴于45～50℃温水中浸泡几分钟或用75%酒精棉球反复擦拭尾部，以达到消毒和使尾部血管扩张及软化表皮角质的目的。
行尾部静脉注射时，以左手拇指和食指捏住鼠尾两恻，使静脉更为充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指夹住尾巴的末梢,右手持4号针头注射器，使针头与静脉平行(小于30°角)，从尾巴的下1/4处进针，开始注入药物时应缓慢，仔细观察，如果无阻力，无白色皮丘出现，说明已刺入血管，可正式注入药物。
有的实验需连日反复尾静脉注射给药，注射部位应尽可能从尾端开始，按次序向尾根部移动，更换血管位置注射给药。
注射量为0.05～0.1ml/10g体重。
拔出针头后，用拇指按住注射部位轻压1～2min，防止出血。
小鼠尾静脉注射技巧
小鼠尾静脉注射技巧一小鼠保定：据说有专门給小鼠尾静脉注射用的保定装置，叫什麽我不知道，因为我没用，但这个可以用。
师姐给我做示范的时候，是用一个小烧杯罩住小鼠，把尾巴拽出来操作，这种方法好像好多人都在用，可是，需要另一个人按住烧杯才行。
我在网上看到有个人把50ml的离心管帽中央打了一个可以把小鼠尾巴伸出来的洞，离心管尖端锯开一个小口通气，试验时把小鼠放进离心管，拽住尾巴塞入帽上的小孔，把帽拧上就行了。
我觉得这招挺好，照着做了一个，不用怕小鼠回身咬人，很安全也很省钱，不用买仪器了，而且，我找了个铁架台（带夹子那种的），把小鼠塞进离心管后，可以把离心管固定在铁架台上，操作就更方便了。
二小鼠尾静脉：把小鼠塞进离心管前，我先在小鼠尾巴正背侧用记号笔画了一个竖道，拧上帽后，不管小鼠在离心管里面怎麽翻转打滚，把尾巴拉出来可以轻松地判定尾巴的背侧方向，不会整混了。
可以注射的静脉有两根，在正背侧的两边，很容易就能看到，但看到不代表能把针插进去，想进针顺利，尾静脉能够膨胀就行了，开始我把小鼠尾巴放到50度热水里泡这，静脉也膨胀了，也可以进针，可就是尾巴湿漉漉的，很容易滑手，水还得勤热着，不然就凉了，要不就得在旁边放个水浴锅或者电磁炉什麽地，太麻烦了。
后来，还是我师姐厉害，她让我拿个打火机，把尾巴拉出来，一燎，就完事了，而且还能把尾巴上的毛燎掉，我现在就用这种方法，很好使，打火机在尾巴上来回快速燎两下，等两三秒钟侧面的尾静脉颜色就变得特别深，深红色吧好像，不过燎的时间一定把握好，时间短了，静脉不膨胀，长了尾巴会烫坏甚至着火，建议开始时快一点燎，多燎两次就知道应该多久是最好地了。
三进针：我用的是1ml的针，每次注射大约100~200ul。
按照上述方法处理完尾静脉后，左手中指和食指夹住鼠尾大约二分之一处，大拇指和无名指夹住尾巴下部，别太靠近尾尖，容易失手，还有，就是中指和食指固定位置后把鼠尾前部分顺着离心管帽上的孔往里塞，直到这两根手指卡到官帽，放置注射的时候小鼠挣扎而打偏。
尾静脉注射技巧
尾静脉注射技巧
尾静脉注射是指将药物注射入小鼠、大鼠尾部的静脉，通常用于实验室动物的药理研究、毒理研究和生物学实验等研究领域。
以下是尾静脉注射的技巧：
1.准备好注射器、药物和针头。
注射器选择0.5毫升或1毫升的，针头可以选择30号或32号。
2.将小鼠或大鼠置于实验台上，用70%乙醇清洁尾部。
3.可以用温水浸泡尾巴5-10分钟，使尾巴血管扩张，易于找到尾静脉。
4.用手指轻轻压迫尾部，将血液推至尾的远端，找到尾的基部，可以在尾基部用光镜找到明显的血管。
5.用消毒的针头轻轻扎破皮肤，针头与血管成约45度角度插入尾静脉，向远端轻轻推进，直到看到血液。
6.吸取药液，将药物注入尾静脉内。
7.拔出针头，用棉球或压迫止血器压迫注射部位，避免流血。
8.观察研究动物的反应状态，如有异常情况及时处理。
注射完毕后，可以将小鼠或大鼠放回笼子内，并留意其情况，通常注射后应保持动物安静，24小时内不给予水和食物。
需要注意的是，尾静脉注射对动物可能存在一定的刺激和压迫，应根据具体实验需要和动物功能状态选择注射液量和注射频率，避免超量或过
度注射导致动物伤害和严重不良反应。
同时也要严格按照实验室动物合法管理要求进行操作，减少对动物的伤害。
小鼠静脉注射
小鼠静脉注射这也是常见的操作，稍微有点难度，没有指导的话，一开始可能会感觉有点手足无措。
但是可以肯定的说，只要掌握了方法，小鼠的尾静脉注射还是很容易的。
操作步骤：1. 首先要固定小鼠，最简单的固定方法就是把小鼠放在盒子里面，让它的尾巴伸在盒盖的外面，用手抓住小鼠尾巴，轻轻往外拽，就可以固定好小鼠了。
这种固定方法，小鼠可以在盒子里面活动，固定的也不是很牢固，但是只要你尾静脉注射的手法很熟练，就足以用来注射了。
还有的固定方法就是用一个小的圆筒，最好是金属做的，（可以在当地的铁匠铺，或者买白铁铺里面定做）首先是金属比较结实，而且可以用来固定在铁架台上，方便操作。
圆筒的一段有个盖子可以拿下来，盖子中间有个小孔，可以让小鼠的尾巴伸出来（中间的小孔可以用胶布缠一下，防止锐利的边缘割伤小鼠尾巴）。
另外一段可以用金属网的结构，网的形状可以做成子弹头的头端形状。
网状结构可以让光线透近来，方便小鼠钻进圆筒里面。
圆筒的长度约10cm，直径约3～4cm，可以做个系列长度和直径的圆筒，适合不同大小的小鼠。
2. 固定好小鼠后就是注射了，一般用一次性的1ml的注射器就可以了，玻璃的1ml的注射器也可以用，针头用4号的就可以了。
3. 注射前首先要让小鼠的血管充盈。
可以采用75%的酒精棉球擦拭的方法或者采用温水浸泡的方法。
若小鼠的血管很不清楚，推荐采用温水浸泡的方法，水温以不烫手为宜。
温水浸泡2～3分钟后，取出小鼠尾巴，用干棉球擦拭。
等一会儿，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了。
若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡，切不可冒险注射，除非你手法很熟练，另当别论。
4. 小鼠尾部共有四条血管，一般认为左右的两条静脉比较容易注射，多采用这两条静脉进针。
一般要求进针部位靠近小鼠的尾端，这样若注射失败的话，还可以再向上选择进针点。
但是进针部位也不可以太靠下，因为越往下，静脉越细，操作越难，一般以小鼠尾巴下三分之一的位置比较好。
5. 最关键的就是进针了。
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各位高手提供的方法
希望对你有帮助
我今天尾静脉注射，没有经验，针进去也觉得挺顺，但一推生理盐水尾巴就变白，请问如果打到静脉里，尾巴有何反应，会不会变白?变白是不是插到皮下了呢？
尾巴变白，肯定没有打进血管，进了血管后，注射器推进很顺利，基本没有阻力，血管内也可以看见药液把血液推走。
尾巴变白，且注射器推动有阻力，肯定没有进血管。
注射前用热水泡一下尾巴，打左右两侧的静脉，应该是比较好打的。
我推药液时也挺顺的。
但推后尾巴变白了，血管内好像也可以看见药液把血液推走。
但推走后，看到的就是血管变白了。
是不是因为把红色的血液推走了，所以变白了？我说得这种情况有没进血管的可能性呢？我回抽了一下，始终未看到回血。
我用的是小鼠，小鼠尾静脉注射时回抽能看到回血吗，好像即使是断尾，也只能采集到0.1ml啊。
请指教一下吧？谢谢！小鼠尾静脉注射时是没有回血的，只要注射器推进顺利，且局部没有肿起，一般就是进入血管了
我是麻醉科的，尾静脉注射很熟练。
经验是：1－尾静脉上止血带，使静脉充盈
2－酒精涂搽或温水浸泡
3－剃须刀备皮
4－用套管针而非普通针头，留管后见回血才能确保在静脉内，方能给药。
5－普通细针容易移位和穿破血管。
用温水浸泡时水温应该稍高一点，特别象是在冬天，温度最好是让老鼠不能耐受，即鼠尾会在水中剧烈摆动，此方法特别适用于黑色或褐色的老鼠（当然温度也不能太高，又不是煲汤，呵呵），时间10-20秒即可。
进针时角度要小一些，一般15°就行了。
进针深度不要太浅，否则当你把手移开准备注射时可能弄破血管。
注射时不用看回血，阻力较大即是未进血管，退出重新穿刺。
左右两侧的静脉以左侧稍粗，可以首先从这边注射。
在尾静脉注射时，抓住尾巴把小老鼠放在桌上或平的地方，边注射边顺势稍稍往后拉尾巴，小鼠会往前跑而不是回头，这样就能一人注射了。
之所以平放是因为老鼠倒提会回头咬人，不安全！这方法是我老师教的我，很不错，一个人熟练的话一个早上能注射60只小鼠，有兴趣的不防试试！
现在的导师有几个会注射尾静脉的，真难为学生。
应该是这样尾注射静脉，由一人操作，取出老鼠放到一个空笼子的食合上，尾巴从食合地金属网中穿出；分别用不同手指拉直尾巴合托起尾巴就可以了注射了，之手法慢慢炼吧。
注意：
1. 尾静脉注射一定要从末端开始，注意保护尾静脉，这样你注射失败了还有机会再次注射，否着你注射越来越困难，因饰演后期无法再注射而实验失败可就惨了。
除非是你指需要注射一次。
2. 认真体验针头进入血管中的滑润感，如果有了这样的体验你就可以做到一针成功。
手感不好找或没有经验建议用玻璃注射器，一次性的注射器力度不好掌握。
3. 注射是轻推注射器，见到血管向上变白就是你成功了，不要想要见到回血，回血后再推你的针头在你到手间可能又穿透血管失败了。
4.不要虐待动物，同时不要让其他老鼠看到同伴遭你折磨，否则你要是做免疫研究要失败的。
大鼠的尾静脉我们通常容易看到的有3条，正中和左右两侧各一条，我通常喜欢打侧面的两条。
大鼠麻醉后血管的充盈确实不如没麻醉的，我们注射是将大鼠装在尾静脉注射笼内（一种专门用于尾经脉注射的笼子，可以卡住身体只露出尾巴），拔去尾巴上的细毛，此时静脉就有扩张趋势（发红），然后酒精擦，靠近尾尖部（大概1/4）进针，此时的注意事项如其他战友所述。
在这项技术的练习过程中我总结出了一个方法，看是不是对药物注射的战友有帮助，就是先用生理盐水的针进针，回抽见血后，稍微注入一点盐水，通畅无阻力的话，就将针头固定，将针身从针头上拔下，换上要注射的药，根据需要的速度注入，这样可以确定注射的药量，不然有时候注到皮下无法估计药量，另外避免蓝色染料打到皮下使整个尾巴都变蓝，无法再看到静脉的情况。
要注意的是操作过程中要将尾巴卡紧。
我的尾静脉注射一直都用这个方法效果还不错，希望对其他战友有帮助。
我们的办法是用红外灯照，照到小鼠烦躁时（一般2，3 分钟），在用酒精棉球擦拭，可以使血管扩张，这时血管很表浅，在普通台灯下很容易分辨，在尾巴中偏末梢进针，稍微挑一下就可以了。
我师兄现在一次成功率几乎100%，小弟练习不够大概70%
用刀片轻轻的刮刮表皮的细毛和角质层,然后用温水浸泡1分钟左右，用1ml的注射器，先倾斜45度进针，然后放平进针，一般越靠近尾根部，越难扎，因为角质和皮肤较厚，虽然血管较粗，所以建议接近尾尖，用细针扎
尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部分角质，然后按住近心端让充血，就很容易看到了。
进针大概1～2厘米是最合适的。
尾静脉注射时，可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。
以左手拇指和食指夹住鼠尾，使静脉充盈，中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢，右手持注射器（连5号细针头），针头与静脉夹角一般小于30度，从距尾尖2~3厘米处进针，此处皮薄易进入，先抽回血，见到血后再缓慢注入少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。
一般推注速度为0.05~0.10ml/秒，一次注入量为0.05~0.25ml/10g体重。
如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移动注射如果你打进血管会觉得针头周围的压力很松，以前练习的时候就是可以回来进出针头的感觉，如果你没有进到血管会觉得针头周围压力很大，很难再往前，这时就应该退出来重打了，不必一定要回血的
打了将近一个学期尾静脉，谈谈自己的一些经验：
1、固定：很重要，我们实验室自制了一个小圆筒，筒的直径正好容下一直小鼠，筒的一端是盲端，筒身上开了N个通气空，有一个后盖，后盖上留有一圆孔，正好容下尾巴。
由于小鼠有钻洞的习性，把它往筒口一放，自己就钻进去了，然后把尾巴从盖孔中穿过，盖上后盖即可。
这样比较稳妥。
我一般找一张桌子，把尾巴压在桌边沿上，由于边沿是个直角，把尾巴的下1/3处压在直角上能使尾部暴露很好。
2、扩张血管：关键，我一般用热水泡，直至发红即可，不能太热，容易把皮烫掉了；小鼠尾巴如果发白，那是没烫到位，再多泡一会即可。
3、手法：这要靠多练，熟能生巧。
现在我基本上是100％的成功率，关键是要对自己有信心！！
使用无菌的1毫升的无菌小注射器足够了，药店里到处是卖的。
由于师兄做的是小鼠尾静脉注射，自己没事也玩玩，所以耳叙目染对尾静脉注射也有一点感受：
1：小鼠尾静脉最重要的是小鼠一定要固定好，自己可以做一个前面有挡板的塑料同道，后面也有挡板，在后面的挡板留一个小洞，以使尾静脉伸出来。
2：注射前将小鼠尾静脉用热水泡一下或是用75％的酒精擦拭小鼠尾静脉，以使注射1前使尾静脉充分充血扩张；或是在上方悬挂一灯泡，在适当距离烤尾静脉也可以使尾静脉充血扩张。
3：一开始最好从小鼠尾静脉的末端开始注射，如果在中前端注射一旦失败这样可以防止注射的数次失败后液体漏出。
4：注射时手上的感觉很重要，如果针头进入尾静脉，手上会有一种透空感，这种感觉只有自己亲自经历后才会有比较深的体会，另外针头如果进入后，液体的推射会很顺利；如果，感觉液体推不进去，很费力，说明针头没有进入尾静脉，而是进入了周围的软组织。
5：在注射时，一个很重要的原则是注射要缓慢，均匀推射，速度不可以快，一旦速度快，小鼠会发生充血性心衰；如果一旦出现这种情况，立即停止注射，对小鼠实行心脏按摩，也许可以救活（自己曾经这样救活过2只小鼠）！
6：每次注射的剂量：不可以超过0.2毫升；注射剂量过多，也会发生充血性心衰。
小鼠左右两侧的静脉较粗，而且很鼓(中间的那根太扁，最好不要采用)，用酒精擦一下，使血管扩张，可看到有明显的两根血管充盈，在距鼠尾2～3cm处小于30度进针，若打进去，则推行无阻力，而且拔针会有回血，最后祝大家好运！。