尾静脉注射
小鼠尾静脉注射的心得体会
小鼠尾静脉注射的心得体会Prepared on 22 November 2020小鼠尾静脉注射的心得体会IV比IP困难许多，我练习了非常久了之后，才抓到窍门。
由于当时没有一个人能指导我，所以我的IV技术可说是完全自己摸索出来的。
当我遇到困难时，找了许多课本、网络，可是读了却做不出来，果然theory跟practical之间还是有差距的。
一般书本所形容的IV很简洁，但实际情况要复杂许多，因此不先训练，是一定打不好静脉针的。
照例，打针之前，先量体重、准备要打的液体、做好稀释、load好进针筒里面。
准备好完这些后，就开始要抓老鼠了。
但打IV不能靠普通的restraint方法，因为打静脉要很固定的，不能有丝毫动摇。
因此需要一个restrainer，就是一个小小的塑胶东东，来困住老鼠，但它的尾巴可以掉出来。
你就抓住它的尾巴，然后往尾巴上的静脉打针。
这个restrainer一定要把老鼠牢牢地关在里面，一点都不能动才可以。
这时就要尽量把老鼠压在里面，压成一团也没问题，只要不要弄到它骨折，或者呼吸困难就可以了。
一般老鼠虽然喜欢关在一个圆圆的筒子里，但因为IV需要的是绝对的动弹不得，所以它会被关压到蛮不舒服的。
而且老鼠不喜欢别人去碰它的尾巴的，所以打尾巴针对它们来说是相当痛的。
如果不牢牢困住，就算有一点点的位置，它也会挣扎的，它一挣扎，你就打不到了。
为什么那么困难呢就是因为老鼠尾巴的静脉其实不大，很小而已，只要稍微移动，很容易就打错地方了。
打静脉的针头我一般用30G，是比26G更加细的针头。
我把步骤简化如下：1)把针尖向下，即bevelup，这样比较容易刺进去，位置也能很精准2)从尾巴的最后面开始试，不要一开始就刺比较靠近身体的部位，因为如果弄错了，还可以一直往上继续试，但如果一刺就刺靠近身体的，就没办法再上了3)老鼠尾巴有静脉的地方会泛有红色的，就对准红色的线条4)尾巴要抓紧，不要有丝毫动摇，有时候老鼠会挣扎，就要大力一点抓尾巴5)刺进去时，尽量把针摆得跟尾巴越平行越好，因为稍微有一点角度就打不进去了(平行的话针就会在血管里面，如果有角度可能会刺过血管到血管下面的组织去)6)可以尽量刺深一点，只要是平行就好，刺得够深的话整支针可以挂在那里不会掉下来的7)往后拉一拉plunger，如果看到血，位置就对了！8)位置对的话，保持针的不动，然后注射，注射的时候会觉得很顺畅，而且可以亲眼看到红色的血管慢慢被你所注射的液体所flushed，所以红色就会慢慢变成白色9)最后把针拉出来，针口的位置会流一点血(代表真的是血管嘛)，然后用一块棉花按按扎针的部位就可以了那错误又会怎样发生咧举例如下：1)明明是看到自己刺到红色的线条了，可是往后拉的时候没看到血，只是感觉真空压力，这时就可以肯定刺错位置了，刺到尾巴的其他组织上，要拉出来再找一个地方刺，一般不要再刺回同样一个位置2)开始注射后发现很难注射，plunger遇到很大的阻力似的，其实这也是打错了，不在血管里面就会这样，这时你就会看到你打针的部位周围开始泛白，但这个泛白跟血管里面泛白不同，这个泛白就围绕在你打针的部位，而且尾巴的那个部分会开始肿胀。
小鼠尾静脉注射方法
各位高手提供的方法希望对你有帮助我今天尾静脉注射，没有经验，针进去也觉得挺顺，但一推生理盐水尾巴就变白，请问如果打到静脉里，尾巴有何反应，会不会变白?变白是不是插到皮下了呢？尾巴变白，肯定没有打进血管，进了血管后，注射器推进很顺利，基本没有阻力，血管内也可以看见药液把血液推走。
尾巴变白，且注射器推动有阻力，肯定没有进血管。
注射前用热水泡一下尾巴，打左右两侧的静脉，应该是比较好打的。
我推药液时也挺顺的。
但推后尾巴变白了，血管内好像也可以看见药液把血液推走。
但推走后，看到的就是血管变白了。
是不是因为把红色的血液推走了，所以变白了？我说得这种情况有没进血管的可能性呢？我回抽了一下，始终未看到回血。
我用的是小鼠，小鼠尾静脉注射时回抽能看到回血吗，好像即使是断尾，也只能采集到0.1ml啊。
请指教一下吧？谢谢！小鼠尾静脉注射时是没有回血的，只要注射器推进顺利，且局部没有肿起，一般就是进入血管了我是麻醉科的，尾静脉注射很熟练。
经验是：1－尾静脉上止血带，使静脉充盈2－酒精涂搽或温水浸泡3－剃须刀备皮4－用套管针而非普通针头，留管后见回血才能确保在静脉内，方能给药。
5－普通细针容易移位和穿破血管。
用温水浸泡时水温应该稍高一点，特别象是在冬天，温度最好是让老鼠不能耐受，即鼠尾会在水中剧烈摆动，此方法特别适用于黑色或褐色的老鼠（当然温度也不能太高，又不是煲汤，呵呵），时间10-20秒即可。
进针时角度要小一些，一般15°就行了。
进针深度不要太浅，否则当你把手移开准备注射时可能弄破血管。
注射时不用看回血，阻力较大即是未进血管，退出重新穿刺。
左右两侧的静脉以左侧稍粗，可以首先从这边注射。
在尾静脉注射时，抓住尾巴把小老鼠放在桌上或平的地方，边注射边顺势稍稍往后拉尾巴，小鼠会往前跑而不是回头，这样就能一人注射了。
之所以平放是因为老鼠倒提会回头咬人，不安全！这方法是我老师教的我，很不错，一个人熟练的话一个早上能注射60只小鼠，有兴趣的不防试试！现在的导师有几个会注射尾静脉的，真难为学生。
尾静脉注射
（1）天之饺子:→首先将大鼠的尾巴拉直，绷紧。
（关键）进针时不要太深，针头入皮肤后马上把针头略往上，平行进针。
（用4号针头）针扎入时有落空感，推液时无阻力则说明成功了！如针头处出现皮丘则说明在皮下，推出重来。
进针处最好在尾巴的1/3-1/2处，甚至可以更下一点。
这样一次失败了还可以往上再来，不要马上在最高处打，因为你们要打这么多天。
要为以后作准备。
用热水、酒精、红外都可以扩张血管。
可以视情况而用。
总而言之，最重要的是“熟能生巧”。
你最好先练习一下或请高手相助。
不然到了最后几天，真的很难打的。
希望这些对你有用。
我觉得大鼠的尾巴比小鼠长且粗，有左，右两根。
我想打的好应该没问题的。
→你的是什么细胞？一定要尽量把细胞打散，不然很容易引起栓塞！（2）小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。
通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。
在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。
如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行（3）ycr一定要用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大（4）winson建议你先用蓝墨水练手，因为新手往往看不出打入的是皮下还是静脉其实真的只能熟能生巧一般推荐在尾下1/3处进针，但是我觉得1/2处准确度较好，个人经验针头可以插深入些，防止意外摆动戳破静脉而注入皮下，很多时候你觉得进了血管打的却是皮下，就是因为这个原因（5）hjpkf本人练尾静脉注射已经有一段时间了，经常是失败的机会比成功的几率高得多，但也有一些感受：动物越小越好操作，小鼠比大鼠容易，幼年大鼠比成年大鼠容易；对于小鼠最好还是尾静脉注射，这样损伤最小；成年大鼠实在不行可以选股静脉注射，相对要容易一些；最重要的一点，必须多练，进针时的那种感觉必须自己好好体会，熟能生巧，这是常识。
眼眶后注射和尾静脉
眼眶后注射和尾静脉眼眶后注射是一种常见的眼科治疗方法，它通过将药物注射到眼眶后部，直接作用于眼部组织，以达到治疗眼部疾病的目的。
眼眶后注射的主要途径是通过针头穿刺眼眶后部，将药物注射到目标位置。
这种方法具有直接、快速、高效的特点，可以减少药物在体内的代谢和分解，提高治疗效果。
眼眶后注射主要应用于以下几种情况：一是治疗眼部炎症。
眼眶后注射可以将抗炎药物直接送达到炎症部位，减轻炎症反应，缓解眼部不适。
二是治疗眼部感染。
眼眶后注射可以将抗生素等药物直接送达到感染部位，杀死病原体，缓解感染症状。
三是治疗眼部肿瘤。
眼眶后注射可以将抗肿瘤药物直接送达到肿瘤部位，抑制肿瘤生长，减少恶性肿瘤的扩散。
眼眶后注射需要经过专业医生的指导和操作，因为眼眶部位靠近重要的神经和血管，操作不当可能会对患者的眼部和身体健康造成严重影响。
在进行眼眶后注射前，医生会对患者进行全面的眼部检查，评估患者的眼部病情和身体状况，确保手术的安全性和有效性。
而尾静脉是人体尾部的一个重要血管，它连接着下肢和心脏，起到血液循环的重要作用。
尾静脉注射是一种将药物经尾静脉注入体内的方法，以达到快速传递药物和治疗疾病的目的。
尾静脉注射通常在动物实验中使用，用于给小鼠、大鼠等实验动物注射药物。
尾静脉注射的优点是简单、方便，可以快速将药物输送到体内各个器官和组织。
尾静脉注射通常用于给实验动物注射镇静剂、麻醉剂、抗生素等药物，以便进行各种实验研究。
尾静脉注射需要注意的是药物的剂量和注射速度，过高的剂量或过快的注射速度可能会对实验动物造成伤害。
总结起来，眼眶后注射和尾静脉注射是两种不同的医疗技术，分别应用于眼科治疗和实验动物实验中。
它们都具有直接、快速、高效的特点，可以减少药物代谢和分解，提高治疗效果。
然而，由于涉及到眼部和血管等重要结构，操作时必须非常谨慎，遵循医生的指导和建议。
在科学研究和医疗实践中，我们可以根据具体需求选择适当的注射方式，以达到最佳的治疗效果。
小鼠尾静脉注射
：高手经验谈1、固定：小鼠一定要固定好，注射时尾巴不能动。
我一直用小鼠固定器固定，另外一人用手指轻轻夹住尾巴的根部，这样一般能固定的很好。
（我自己是找一个去500或者1000ml的烧杯，倒卡在桌子上，小鼠放在里面露出尾巴即可）2.对血管的选择,一般来说,小鼠尾部有三条静脉,左右两边各一根而且比较浅,容易穿刺；中间一根位置较深,不是很容易穿到,建议尽量不选择.另外穿刺选择尾部中下处比较好,因为此处皮肤较薄,我的体会是可以采用75%酒精反复擦拭穿刺血管,使其充盈,并且使皮肤的角质层软化,利于穿刺.或者在注射之前，小鼠尾巴用温水（水温约50度左右）泡大约2分钟，这样能使血管充分舒张。
用干棉球擦干。
血管应选择两侧的血管，从下向上扎。
这样的好处是万一一次扎不进，还可以继续使用此血管。
3.针的选择：书上说使用1毫升的注射器.有人在实践中采用的是头皮针,后接1毫升注射器.因为头皮针针头更小,对血管的损伤更小,适合多次连续给药，其次使用头皮针穿刺后,我们可以通过回血来判断穿刺是否成功.（我的体会是4号半1毫升注射器,已经足够且很容易进针）4、注射手法：左手食指和中指上下夹注你所选择血管的靠近身体的一边,无名指和小指垫起一块纱布或者纸巾(建立一个穿刺的平面的作用),拇指压住所选血管的尾尖端,上下夹住血管的距离应以不影响右手持针上下移动为宜.(否则容易人为建立穿刺的角度,而使右手持穿刺针穿刺过深,导致穿刺失败.)右手持穿刺针,稍微挑起皮肤一点,就可以平着进针,看到回血表明成功,还可以回抽,见到回血后表明穿刺已进入血管,可以给药.用左手将鼠尾拉直，右手持1ml注射器的中下部位，针斜面向上，在尾部的下处进针，针与皮肤稍成一角度（10度左右），进针后要将针头稍向上挑，然后将针向里送一点。
如果在血管里，则无阻力，并且能看见针。
若针看得很清晰，则扎到了皮下，若针看不清，则扎深了。
可轻推液体验证。
（联系那么多次，发现开始不能很顺利的进针，原因大部分就是插进去然后有个挑起的过程）5.穿刺结束后,用纱布压住穿刺部位反折尾部进行止血.良好并彻底的止血对于血管可以起到很好的保护作用,这对于需要天天穿刺给药是非常有用的.（一般小鼠需要按压时间很长，否则易引起出血）使用无菌的1毫升的无菌小注射器足够了，药店里到处是卖的。
尾静脉注射技巧
尾静脉注射技巧
尾静脉注射是指将药物注射入小鼠、大鼠尾部的静脉，通常用于实验室动物的药理研究、毒理研究和生物学实验等研究领域。
以下是尾静脉注射的技巧：
1.准备好注射器、药物和针头。
注射器选择0.5毫升或1毫升的，针头可以选择30号或32号。
2.将小鼠或大鼠置于实验台上，用70%乙醇清洁尾部。
3.可以用温水浸泡尾巴5-10分钟，使尾巴血管扩张，易于找到尾静脉。
4.用手指轻轻压迫尾部，将血液推至尾的远端，找到尾的基部，可以在尾基部用光镜找到明显的血管。
5.用消毒的针头轻轻扎破皮肤，针头与血管成约45度角度插入尾静脉，向远端轻轻推进，直到看到血液。
6.吸取药液，将药物注入尾静脉内。
7.拔出针头，用棉球或压迫止血器压迫注射部位，避免流血。
8.观察研究动物的反应状态，如有异常情况及时处理。
注射完毕后，可以将小鼠或大鼠放回笼子内，并留意其情况，通常注射后应保持动物安静，24小时内不给予水和食物。
需要注意的是，尾静脉注射对动物可能存在一定的刺激和压迫，应根据具体实验需要和动物功能状态选择注射液量和注射频率，避免超量或过
度注射导致动物伤害和严重不良反应。
同时也要严格按照实验室动物合法管理要求进行操作，减少对动物的伤害。
小鼠静脉注射
小鼠静脉注射这也是常见的操作，稍微有点难度，没有指导的话，一开始可能会感觉有点手足无措。
但是可以肯定的说，只要掌握了方法，小鼠的尾静脉注射还是很容易的。
操作步骤：1. 首先要固定小鼠，最简单的固定方法就是把小鼠放在盒子里面，让它的尾巴伸在盒盖的外面，用手抓住小鼠尾巴，轻轻往外拽，就可以固定好小鼠了。
这种固定方法，小鼠可以在盒子里面活动，固定的也不是很牢固，但是只要你尾静脉注射的手法很熟练，就足以用来注射了。
还有的固定方法就是用一个小的圆筒，最好是金属做的，（可以在当地的铁匠铺，或者买白铁铺里面定做）首先是金属比较结实，而且可以用来固定在铁架台上，方便操作。
圆筒的一段有个盖子可以拿下来，盖子中间有个小孔，可以让小鼠的尾巴伸出来（中间的小孔可以用胶布缠一下，防止锐利的边缘割伤小鼠尾巴）。
另外一段可以用金属网的结构，网的形状可以做成子弹头的头端形状。
网状结构可以让光线透近来，方便小鼠钻进圆筒里面。
圆筒的长度约10cm，直径约3～4cm，可以做个系列长度和直径的圆筒，适合不同大小的小鼠。
2. 固定好小鼠后就是注射了，一般用一次性的1ml的注射器就可以了，玻璃的1ml的注射器也可以用，针头用4号的就可以了。
3. 注射前首先要让小鼠的血管充盈。
可以采用75%的酒精棉球擦拭的方法或者采用温水浸泡的方法。
若小鼠的血管很不清楚，推荐采用温水浸泡的方法，水温以不烫手为宜。
温水浸泡2～3分钟后，取出小鼠尾巴，用干棉球擦拭。
等一会儿，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了。
若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡，切不可冒险注射，除非你手法很熟练，另当别论。
4. 小鼠尾部共有四条血管，一般认为左右的两条静脉比较容易注射，多采用这两条静脉进针。
一般要求进针部位靠近小鼠的尾端，这样若注射失败的话，还可以再向上选择进针点。
但是进针部位也不可以太靠下，因为越往下，静脉越细，操作越难，一般以小鼠尾巴下三分之一的位置比较好。
5. 最关键的就是进针了。
尾静脉注射技巧档
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得- -大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。
小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。
通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。
在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。
如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。
或者用这个方法：1 小鼠要固定好，自制一个笼子，前面通气，中间最好有一个挡板，让小鼠不能后退，筒子后面开一个口，尾巴从这里出来，这样固定牢靠；2、注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；3、先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；4、进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。
至于能否穿进，个人手感如何，全靠自己啦。
多练习，一定很快掌握的，不难，绝对不难！我练习10余只小鼠就比较熟练了2. 用酒精棉球擦拭尾巴,使血管扩张;或者用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大。
用酒精或热水擦拭，擦拭的时候，可把尾巴用力扯在桌面上。
注射状态为尾巴发白，紧靠白色的尾骨两侧清晰可见两根红色静脉。
3.用左手的食指,中指,无名指及大拇指将小鼠尾巴固定,; 手法：握住1ml注射器前面0.1ml处。
右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处按此手形进针；看针尖前面那个斜面有3/4（关键），如果血管充盈则进1/2，进入，停，上挑针头，进针；左右轻摆动，如可动，可注射。
原则是：把你第一次打进的手形，完全固定下来，每次都重复。
4.注射:注射时左手扯尾，使尾巴紧贴桌面，尾巴与桌边紧贴转弯处为进针部位，一般选择距尾尖1/4或1/3处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易。
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大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得
2009/04/01 16:02[分子|细胞|病毒|免疫 ]
1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。
小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。
通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。
在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。
如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。
或者用这个方法：1 小鼠要固定好，自制一个笼子，前面通气，中间最好有一个挡板，让小鼠不能后退，筒子后面开一个口，尾巴从这里出来，这样固定牢靠；2、注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；3、先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；4、进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。
至于能否穿进，个人手感如何，全靠自己啦。
多练习，一定很快掌握的，不难，绝对不难！我练习10余只小鼠就比较熟练了
2. 用酒精棉球擦拭尾巴,使血管扩张;或者用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大。
用酒精或热水擦拭，擦拭的时候，可把尾巴用力扯在桌面上。
注射状态为尾巴发白，紧靠白色的尾骨两侧清晰可见两根红色静脉。
3.用左手的食指,中指,无名指及大拇指将小鼠尾巴固定,; 手法：握住1ml注射器前面0.1ml处。
右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处按此手形进针；看针尖前面那个斜面有3/4（关键），如果血管充盈则进1/2，进入，停，上挑针头，进针；左右轻摆动，如可动，可注射。
原则是：把你第一次打进的手形，完全固定下来，每次都重复。
4.注射:注射时左手扯尾，使尾巴紧贴桌面，尾巴与桌边紧贴转弯处为进针部位，一般选择距尾尖1/4或1/3处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易。
进针时针头与桌面平行，针尖稍稍朝下，从中指及无名指与拇指接触处稍上方进针，一旦进入，须将针头稍稍上挑进入，针头沿血管进入，肉眼可关察到针头前进。
如果针头在血管中前进，可明显地感觉到针行通畅，毫无阻力。
若针头不在血管中，手感针行有阻力，有一种堵的感觉。
进针时不要太深，针头入皮肤后马上把针头略往上，平行进针，针扎入时有落空感，推液时无阻力则说明成功了！如针头处出现皮丘则说明在皮下，推出重来。
进针处最好在尾巴的1/3-1/2处，甚至可以更下一点。
这样一次失败了还可以往上再来，不要马上在最高处打，因为你们要打这么多天。
要为以后作准备。
用热水、酒精、红外都可以扩张血管。
可以视情况而用。
总而言之，最重要的是“熟能生巧”。
你最好先练习一下或请高手相助。
不然到了最后几天，真的很难打的。
2。
注射：针进入后，切记手不可发抖，因为血管壁非常薄，容易扎穿。
推药时，要缓推。
若进针成功，推药顺畅，无阻力；若推药时感觉有阻力，说明针头不在血管中，须及时拔出，重新进针。
一般选用4号或4号半针头。
最好用打疫苗的2毫升一次性注射器。
尾静脉注射并不难，主要是一种感觉。
若用上十只鼠练手，你必会找到感觉。
心要静，手要稳，要有耐心。
我研一的时候尾静脉注射让我头疼万分，越急越打不进去。
后来静下心来，边注射边找感觉，很快就熟练了。
祝你找到感觉
5.通过看有无回血来测试针是否在静脉内;
6.注射.
做到以上步骤,保证注射成功!
注：（1）如果做细胞移植时，应该尽量把细胞打散，不然很容易引起栓塞！
（2）练习：建议你先用蓝墨水练手，因为新手往往看不出打入的是皮下还是静脉
其实真的只能熟能生巧一般推荐在尾下1/3处进针，但是我觉得1/2处准确度较好，个人经验针头可以插深入些，防止意外摆动戳破静脉而注入皮下，很多时候你觉得进了血管打的却是皮下，就是因为这个原因。
或者用：经常尾经脉注射胎盘兰，比较容易，静脉在侧面比较粗的那个，可以做个容器，我们是用一个50ml的离心管前面弄个开口，后面的螺盖弄个洞，把老鼠装进去，比较容易，把都对准管小鼠自动进去，把尾巴从盖子的洞穿出来，操作极为方便。
刮毛，用热水烫一下，血管涨起来就可以，具体的感觉还要自己实践一下掌握，不过还容易，有3－4只就可以掌握。
（3）规律：动物越小越好操作，小鼠比大鼠容易，幼年大鼠比成年大鼠容易；对于小鼠最好还是尾静脉注射，这样损伤最小；成年大鼠实在不行可以选股静脉注射，相对要容易一些；最重要的一点，必须多练，进针时的那种感觉必须自己好好体会，熟能生巧，这是常识。