山药粗多糖的提取工艺 - 江南大学杂志社
山药多糖分离提取工艺研究
山药多糖分离提取工艺研究作者：叶春苗来源：《农业科技与装备》2017年第08期摘要：比较水浸提法和超声波辅助提取法分离提取山药多糖效果的差异性，确定以操作简便的水浸提法作为山药粗多糖的提取方法；并通过单因素试验，确定山药水溶性多糖的最佳提取条件为提取时间3 h、提取温度50 ℃、物料粉碎程度60目、料液比1∶40。
关键词：山药多糖；分离；提取；水浸提；超声波；工艺中图分类号：TQ461 文献标识码：A 文章编号：1674-1161（2017）08-0053-03山药是薯蓣科植物。
山药中含有多种碳水化合物、脂肪、蛋白质、维生素、微量元素等营养成分，还含有人体所需的十几种氨基酸。
此外，山药中还含有具有生物活性的多糖，如甘露糖、葡萄糖和半乳糖等。
大量研究发现，山药多糖具有提高机体免疫力、抗衰老、抗突变、抗氧化、抗肿瘤和降血糖等功效，在药用与保健方面具有广阔的应用前景。
分离纯化是多糖研究的关键步骤，将直接影响后续工作的可行性和真实性。
山药多糖可以采用多糖化学中常用的一些技术来提取分离和纯化，最常用的提取方法是溶剂提取。
由于多糖中糖链具有高度亲水性，因此可用水作溶剂进行提取。
本研究对热水浸提、超声波辅助提取这两种方法提取山药多糖的效果进行比较，以确定一种经济、高效的提取方法，并通过分离纯化处理获得性能稳定的山药精多糖。
1 材料与方法1.1 材料与试剂新鲜山药：市售；抗坏血酸：天津市福晨化学试剂厂；柠檬酸：分析纯，天津市福晨化学试剂厂；氯仿：分析纯，天津市大茂化学试剂厂；铁氰化钾：分析纯，沈阳市东兴试剂厂；浓硫酸：分析纯，天津市大茂化学试剂厂；透析袋：分子截留量3 000，天津市大茂化学试剂厂。
1.2 试验方法1.2.1 超声辅助法提取山药多糖的单因素试验设计 1）超声功率对山药多糖提取率的影响。
精确称取3.0 g过80目筛网的山药粉，置于150 mL三角瓶中，料液比为1∶40，在超声功率分别为40，60，80，100 W的条件下超声30 min，再水浴60 min，超声和水浴的温度均为40 ℃。
山药水溶性多糖提取工艺的研究
Y2多糖含量/% 52.55 53.23 43.96 49.25 52.62 53.21 54.71 56.99 51.56 47.56 55.23 50.65 57.06 57.23 57.15
采用回归方程：Y＝a0＋a1x1＋a2x2＋a3x3＋a11x12＋a22x22＋a33x32＋a12x1x2＋a13x1x3＋ a23x2x3 对试验结果用SAS rereg程序进行分析，计算出回归方程中各系数，得到粗 多糖得率和多糖含量模型： Y1=17.2233+3.0688x1+0.5013x2+0.695x3-3.4842x12-0.9192x22-0.3417x32+0.495
山药水溶性多糖提取工艺的研究
Study on extraction of polysaccharide from Chinese yam 1 2 2 刘秀河 吴艳 艾连中 LIU Xiu-he1 WU Yan 2 AI Lian-zhong 2 (1.山东轻工业学院， 山东 济南 250100； 2.江南大学食品学院， 江苏 无锡 214036) (1.Shandong Institute of Light Industry, Jinan, Shandong 250100, China；2. School of Food Science and Technology, Southern Yangtze University, Wuxi, Jiangsu 214036, China) 摘要： 以水为提取溶剂，探讨了提取山药水溶性多糖的优化工艺。通过响应面分 析法考察了浸提温度、浸提时间和料水比对山药多糖的得率和含量的影响，从而确 定了较佳的提取工艺条件：浸提温度为60～64 ℃、浸提时间3.2～3.5 h和料液比 1:20。同时用sevag法除去了山药多糖中大部分的蛋白质。 关键词:山药；多糖；得率；多糖含量 Abstract:The extraction of polysaccharides from Chinese yam was studied. The optimum extracted parameters were obtained by response surface analysis under various conditions for the maximum yield and content of polysaccharides. The result showed that optimum extracted conditions were determined as follow: temperature ranged from 60 ℃ to 64 ℃, time from 3.2 h to 3.5 h and stock ratio 1:20. The most protein in polysaccharides was eliminated by sevag method. Keywords: Chinese yam； Polysaccharides； Yield；Content 山药又名薯蓣、怀山药、延章、玉延等，为薯蓣科薯蓣属植物(Dioscorea opposita Thunb.)，是一种营养丰富的传统药食同源植物。 《本草纲目》记载：山药 [1] 味甘性平、益肾气、健脾胃、止泻痢、化痰涎、润皮毛 。现代药理研究表明，山 药水煎剂有抗衰老、降血糖、增强免疫调节、抗突变及抗肿瘤等功能[2～6]，其中山药 多糖为其主要的活性成分，本研究对山药水溶性多糖的提取工艺进行了优化。
山药多糖提取纯化工艺研究进展
2013年第2期江苏调味副食品总第133期山药多糖提取纯化工艺研究进展余芳，朱秋红(江苏经贸职业技术学院工程技术学院，江苏南京211168)摘要：山药多糖作为药食兼用植物山药中的重要活性物质，具有增强免疫、抗衰老、抗肿瘤、降低血糖等多种生物活性。
对近年来山药多糖的提取分离工艺、纯化方法等研究进行系统分析，为进一步探索山药多糖的提取新工艺，促进山药资源的综合开发利用提供参考。
关键词：山药多糖；提取；纯化中图分类号：TS218文献标志码：A文章编号：1006—8481(2013)02—0013—04山药是传统的药食同源植物，为薯蓣科植物的块茎，具有补脾养胃、补肺养肾的功效，首见于《神农本草经》，被列为上品，言其“主伤中补虚赢，除寒热邪气，补中益气力，长肌肉，久服耳目聪明，轻身不饥延年”。
山药含有粗纤维、果胶、多糖、淀粉酶、黏液质、糖蛋白、尿囊素、皂苷、山药素、胆碱、脂肪酸等成分，以及碘、钙、铁和磷等人体不可缺少的微量元素。
山药多糖是目前公认的山药有效成分，也是山药化学和药理研究的重点。
大量研究表明，山药多糖具有增强免疫-l j、抗衰老‘2J、抗肿瘤口J、降低血糖H1等多种药理作用。
山药多糖的组成和结构较为复杂，不同研究者提取分离出不同的山药多糖，其中有均多糖、杂多糖、蛋白复合多糖等；就分子质量而言，覆盖了7×103到2×106的偌大范围，其糖基组成也各不相同。
这些多糖的获得与研究者采用的提取纯化方法密不可分。
1山药多糖的提取方法1．1水提法影响水浸提多糖的因素主要有提取时间、提取次数、溶剂体积、浸提温度、pH值、醇析浓度和植物颗粒大小等。
用水提取山药多糖，成本低、不破坏生物活性、方便实用且安全性高，但耗时长、提取率不高。
赵卫星等以光皮长柱型新鲜山药为原料，利用水提法工艺浸取鲜山药中的多糖，并用苯酚硫酸法测定其粗多糖的含量”J。
此实验以浸提温度、料液比、浸提时间等为自变量，进行单因素实验，最终确定料液比为1g：9m L、提取温度为70℃、浸提时间为3h、提取多糖总含量为0．905％。
2 山药多糖的纯化
2 山药多糖的纯化2.1 化学试剂除杂在提取的山药粗多糖中还有许多杂质如蛋白质、脂类、色素等。
常用的脱蛋白的方法有：Sevage 法、三氟三氯乙烷法、三氯乙酸法、酶法和等电点沉淀法。
试验证明，Sevage 法比较温和，而三氯乙酸法反应剧烈[8]。
王美秋等人[9]采用双氧水与乙醇共用的方法脱色，取得了良好的效果。
2.2 色谱除杂以往除去粗多糖杂质的方法常采用化学试剂的方法，在除去杂质的同时也会带走多糖。
采用色谱层析的方法除杂能最大限度的减少多糖的损失，而且除杂效果远高于化学试剂法。
已经有许多学者在纯化山药多糖时采用色谱技术，如顾林[4]、王刚[10]在山药多糖的纯化采用了DEAE 柱层析和SephadexG- 100 层析，均取得了良好效果。
3 测定方法3.1 紫外—可见分光光度法紫外—可见分光光度法是目前测定多糖含量最常用的方法，常用的显色剂有苯酚，蒽酮—硫酸和3，5- 二硝基水杨酸（DNS）。
前两者主要利用多糖在强酸性条件下脱水生成糠醛或其衍生物，然后与酚类或者胺类反应缩合，生成有特定吸收波长的有色物质进行测定；DNS 法则是利用了多糖的还原性。
目前最常用的为苯酚硫酸法，曾凡梅[6]采用此法测定山药中多糖的质量分数为24.8 mg/g。
3.2 高效液相色谱法目前，鲜有见运用高效液相色谱法测定山药多糖的报道。
王刚[10]在建立山药中多糖的含量测定时，选用C18 100A 色谱柱（150 mm×4.60 mm），以乙腈- 磷酸盐缓冲液（70∶30）为流动相，以葡萄糖为对照品，在波长210 nm 下检测，结果在0.5～1.5 g/L内呈良好线性关系（R2=0.999 6），测得山药中总多糖的质量分数为16.42%，RSD 为0.09%，结果良好，方法快速、准确，重复性好。
山药多糖的提取分离及活性初步研究的开题报告
山药多糖的提取分离及活性初步研究的开题报告题目：山药多糖的提取分离及活性初步研究1. 研究背景山药是一种常见的蔬菜，富含多种营养成分。
其中山药多糖是一种重要的生物活性成分，具有较强的免疫调节、抗肿瘤、抗氧化等生物活性，因此备受关注。
本研究旨在提取分离山药多糖，并对其生物活性进行初步研究，为山药多糖的开发利用提供科学依据。
2. 研究内容（1）提取山药多糖的最佳工艺条件的研究：采用不同浓度、不同比例的溶剂，对山药多糖的提取工艺进行优化，得到最佳工艺条件。
（2）山药多糖的分离纯化：采用氨基硅胶柱层析、凝胶过滤层析、超滤等方法进行山药多糖的分离纯化。
（3）山药多糖的物化性质研究：包括分子量、糖含量等的测定。
（4）山药多糖的生物活性研究：主要包括免疫调节、抗氧化、抗肿瘤等方面的活性测试，探究山药多糖的生物学功能。
3. 研究意义山药多糖作为一种生物活性成分，具有广泛的开发利用价值。
本研究可以进一步探究山药多糖的生物学功能，为其在保健食品、药品等领域的应用提供科学依据。
4. 研究方法（1）植物材料的购买和加工：从市场上购买山药，并进行加工处理。
（2）山药多糖的提取：采用不同的提取条件，包括溶剂体系、提取时间、提取温度等条件的优化，提取山药多糖。
（3）山药多糖的分离纯化：采用氨基硅胶柱层析、凝胶过滤层析、超滤等方法进行山药多糖的分离纯化。
（4）山药多糖的物化性质研究：包括分子量、糖含量等的测定。
（5）山药多糖的生物活性研究：主要包括免疫调节、抗氧化、抗肿瘤等方面的活性测试。
5. 预期结果本研究预期能够提取纯化山药多糖，并进行初步的物化和生物活性研究，进一步探究山药多糖的功能，为其在保健食品、药品等领域的应用提供科学依据。
☆山药多糖研究进展
凝胶柱层析、高效液相层析、微晶纤维素柱层析、 ＤＥＡＥ—ＳｅｐｈａｒｏｓｅＣＬ－６Ｂ柱层析和透析法等方法纯 化山药多糖，然后利用层析法鉴定纯度，ＨＰＬＣ测 定分子质量，ＧＣ－ＭＳ测定单糖摩尔比，ＩＲ和ＮＭＲ 分析其结构。何书英等口７３纯化得山药多糖ＲＰ，相 对分子质量８１ ０００，摩尔比１：１．２４：６．４２（岩藻 糖：丙三醇：赤藓醇），主要由带有分枝的１—４连接 的吡喃糖苷骨架构成，同时含有少量１—３键型的 岩藻糖。Ｚｈａｏ等［１８］纯化得白色粉末状山药多糖 ＲＤＰＳ－Ｉ，相对分子质量４２ ０００，比旋光度＋１８８．４。
（ｃＯ．８０，Ｈ２
和７ ３００。从各学者的研究发现山药多糖的种类较
多，分子质量差异大，单糖组成多样，糖苷键连接方 式多。这是由于山药的品种繁多，山药生长环境不 同，产生的山药多糖也多种多样，不同结构组成的 功能活性及其作用机理将成为未来探讨的方向。 ３
生理活性
３．１促进肠胃功能
Ｏ），特性粘度［．，１］一１６．４８
ＷＡＮＧ
（Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｆｏｏｄ
Ｈｏｎｇ—ｘｉｎ，
ＷＡＮＧ Ｙｕａｎ－ｈｕｉ
Ｓｃｉｅｎｃｅ
ａｎｄ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｊｉａｎｇｎａｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｗｕｘｉ ２１４１２２，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｃｈｉｎｅｓｅ ｙａｍ（Ｒｈｉｚｏｍａ Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ）ｗａｓ ｗｉｄｅｌｙ ｕｓｅｄ ｉｔｓ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ，ｔｈｅ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ（ＲＤＰ）ｗａｓ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔ ｒｅｖｉｅｗｅｄ ｃｈｅｍｉｃａｌ
Ｓｕｍｍａｒｙ ｏｆ ｔｈｅ ｏｐｔｉｍｕｍ
１．３微波辅助法 微波辅助是在水浸提的同时加入微波，利用不 同结构的物质在微波场中吸收微波能力的差异，使 物质中的某些区域或提取体系中的某些组分被选 择性加热，从而使被提取物从物质或体系中分离， 该法溶剂用量少，提取率高，提取速度快［９］。许本 波等采用正交试验优化微波辅助提取山药多糖工 艺，粗多糖得率１０．５２％，最佳工艺：功率为４６４ Ｗ、 料水比１
山药多糖提取制备工艺
03
山药多糖的提取工艺
原料预处理
清洗
去除山药表面的泥沙和其他杂质。
切片
将山药切成小块或片状，便于后续的提取操作。
干燥
将切好的山药块或片进行干燥处理，以便保存和 使用。
提取方法选择
热水提取法
利用热水将山药中的多糖成分提取出来，适用于初步 提取。
酶解提取法
利用酶分解山药中的纤维素等成分，提高多糖的提取 率。
选择适宜的原料粒度
根据具体的提取方法和设备，选择适宜的原料粒度以获得 最佳的提取效率和过滤效果。
06
结论与展望
研究结论
01
成功建立了山药多糖提取制备工艺，实现了山药多 糖的高效提取。
02
通过优化工艺参数，提高了山药多糖的得率和纯度 。
03
验证了所建立工艺的稳定性和可重复性，为后续研 究提供了有力支持。
02
山药多糖的生物活性与作用
免疫调节作用
增强免疫力
山药多糖能够增强机体的免疫功 能，提高抵抗力。
调节免疫系统
对免疫系统具有调节作用，促进 或抑制细胞因子的产生，从而影 响机体的免疫应答。
抗肿瘤作用
抑制肿瘤生长
通过抑制肿瘤细胞的生长和扩散，对多种癌症具有预防和治 疗作用。
增强化疗效果
与化疗药物联合使用，能够增强化疗药物的疗效，减轻化疗 副作用。
结构鉴定
采用红外光谱、核磁共振等方法对山药多糖的结 构进行鉴定。
ABCD
纯度分析
通过凝胶电泳、高效液相色谱等方法对山药多糖 的纯度进行分析。
安全性评估
对提取得到的山药多糖进行急性毒性试验、长期 毒性试验等安全性评估，确保其安全无毒。
05
工艺参数对山药多糖提取制备 的影响
山药多糖提取实验方案(最新)
山药多糖提取实验方案仪器与试剂：冰箱；PH计；恒温水浴锅；离心机；鼓风干燥箱；无水乙醇（分析纯）；液氮；纯水。
实验步骤：取样称重（约2g）→磨浆→加水到一定料液比（b）→调节pH（d）→恒温（a）水浴→提取2h→离心（3000r/min,15min）取上清液A→沉淀再次提取→离心得上清液B→AB混合减压浓缩（60℃）→加一定量乙醇（c）4℃静置约10h→离心（3000r/min,30min）→干燥（40℃）→粗多糖。
正交法探究最佳提取条件（正交试验设计的基本特点是：用部分试验来代替全面试验，通过对部分试验结果的分析，了解全面试验的情况。
）分别按以下数据对各项影响因素设置梯度进行正交试验。
a. 提取温度：60℃；70℃；80℃；90℃；100℃b. 料液比：1:8；1:10；1:12；1:15；1:20c. 乙醇：浓缩液（体积）：1:1；1:2；1:3；1:4；1:5d. pH：7.0；7.5；8.0；8.5；9.0四因素五水平正交试验，选用L25（56）正交表因素a.提取温度 b.料液比c. 乙醇：浓缩液（体积）d.pH蕲山药多糖提取率（%）1 60℃1:81:17.02 60℃1:101:27.53 60℃1:121:38.04 60℃1:151:48.55 60℃1:201:59.06 70℃1:81:28.07 70℃1:101:38.58 70℃1:121:49.09 70℃1:151:57.010 70℃1:201:17.511 80℃1:81:39.012 80℃1:101:47.013 80℃1:121:57.514 80℃1:151:18.015 80℃1:201:28.516 90℃1:81:47.517 90℃1:101:58.018 90℃1:121:18.519 90℃1:151:29.020 90℃1:201:37.021 100℃1:81:58.522 100℃1:101:19.023 100℃1:121:27.024 100℃1:151:37.525 100℃1:201:48.0标准曲线的制备1、对照品溶液的制备。
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3 结果与讨论
31 1 精制山药多糖的初步鉴定 精制山药多糖的气相色谱分析如图 1 和图 2 所
示 ,结果表明山药多糖是一种杂多糖 。图 1 是标准 单糖的气相色谱图 ,按出峰的先后顺序依次为鼠李 糖 ,阿拉伯糖 , 木糖 , 甘露糖 , 葡萄糖 , 半乳糖和肌 醇 ;图 2 是精制山药多糖完全水解物的气相色谱 图 ,表明山药多糖由鼠李糖 、阿拉伯糖 、甘露糖 、葡 萄糖和半乳糖组成 。
2) 精制多糖的初步鉴定 称取 20 mg 分离提 取得 到 的 精 制 多 糖 样 品 , 加 入 2 mL 2 mol/ L H2 SO4 溶液后 ,抽真空封管 。100 ℃水解 12 h 。水 解液用固体 BaCO3 中和 ,加少量蒸馏水 ,离心 ,真空 干燥至无水 。加入 10 mg 盐酸羟胺 ,01 5 mL 吡啶 , 然后放入 90 ℃水浴中反应 30 min ,取出后冷却至 室温 ,加入 01 5 mL 醋酸酐 ,在 90 ℃条件下继续反
式中 :ρ为粗提物样液葡萄糖质量浓度 (μg/ mL ) , D
为样品液稀释因素 , F 为换算因子 , m 为样品质量 (μg) 。
21 21 2 原料预处理 新鲜山药 →清洗 →晾干 →称
重 →去皮 →称重 →打浆 →加酒精使乙醇体积分数
达 80 % →50 ℃水浴提取 2 h →离心 →沉淀 A →相
式中 : m 为多糖质量 (μg) ,ρ为多糖液中葡萄糖质量
浓度 (μg/ mL) , D 为多糖稀释因素 。
5) 粗提物多糖质量分数的测定 精密称取粗
提物适量 ,蒸馏水定容至 100 mL ,精密吸取适量 ,测
定吸光度值 ,查标准曲线得葡萄糖质量浓度 ,然后
按下式计算多糖质量分数 YP :
YP ( %) = (ρ×D ×F ×100) / m
第200265年卷第5 月3
期
食
Journal of
品与 Food
生物技术 Science and
学报 Biotechnology
VolM. 2a5y N2o00. 36
文章编号 :167321689 (2006) 0320079205
山药粗多糖的提取工艺
孙 锋 , 谷文英 , 丁霄霖
同体积分数乙醇再提一次 →离心 →沉淀 B (用于提
取水溶性多糖) →冰箱储存
21 21 3 山 药 多 糖 提 取 方 法 沉 淀 B
热水提取 2 h
提取液 减压浓缩 提取浓缩液
离心 (3 000 r/ min ,15 min)
60 ℃
乙醇沉淀 沉淀物 干燥 粗多糖
干燥
40 ℃
21 21 4 山药水溶性多糖提取工艺的确定 选取与
SU N Feng , GU Wen2ying , DIN G Xiao2lin
( Key Laboratory of Food Science and Safety , Minist ry of Educatio n , Sout hern Yangtze University ,Wuxi 214036 ,China)
1 仪器与试剂
1. 1 仪器 8022 离心沉淀器 : 上海手术器械厂产品 ; MV
755B 分光光度计 : 上海精密科学仪器有限公司产 品 ;L XJ2 Ⅱ离心沉淀机 :上海医用分析仪器厂产品 ; GC 14A 气相色谱仪 :日本岛津公司产品 。 1. 2 试剂
乙醇 ,食用级 ; 吡啶 、盐酸羟胺 、醋酸酐 、D2葡萄 糖 、D2半乳糖 、D2鼠李糖 、D2甘露糖 、D2阿拉伯糖 、D2 木糖 、肌醇 、硫酸 、苯酚等试剂均为分析纯 。
Abstract : The paper st udied t he ext ractio n of polysaccharide f ro m D ioscorea op posi te T hunb. . Single facto r test and o rt ho go nal experiment design met ho ds L9 (34 ) were applied to analyze t he influence of t ho se factor s such as solid2liquid ratio , temperat ure , time and et hanol co ncent ratio n o n t he ext ractio n of t he polysaccharides. Experimental result s indicated t hat temperat ure and solid2liquid ratio wo uld significantly affect t he polysaccharides ext ractio n. The optimal solid liquid ratio was 1 ∶9 , temperat ure was 50 ℃, ext ractio n time was 2. 5h and et hanol co ncent ratio n was 75 %. U nder t his co nditio n , t he yield of water2soluble polysaccharides in Dio sco rea oppo site Thunb. was 0. 2449 %(by f resh yam) . Key words : D ioscorea o p posite Thunb ; water2soluble polysaccharide ;ext ractio n technolo gy
收稿日期 :2005201204 ; 修回日期 :2005203208. 作者简介 : 孙锋 (19792) ,男 ,江苏苏州人 ,食品科学与工程硕士研究生.
80
食 品 与 生 物 技 术 学 报 第 25 卷
解 ,影响其生物活性 。用水提取多糖 ,成本低 ,不破 坏生物活性 ,方便实用且安全性高 。因此 ,作者先 用体积分数 80 %的乙醇处理原料以除去单糖 、低聚 糖 、苷类 、生物碱及蛋白等物质 ,再用传统的水提工 艺浸提鲜山药中的多糖 ,通过单因素试验和正交试 验确定较优的鲜山药多糖水提醇沉工艺条件 ,并对 精制的山药多糖进行初步鉴定 ,又用改良的苯酚 硫酸法测定了多糖含量 ,以期为深入开发利用这一 药食同源资源以及更好地研究其生物活性功能提 供一定的参考 。
山药 ( D ioscorea o p posi te Thunb) 为薯蓣科多 年生宿根蔓草植物薯蓣属的块茎 ,是我国传统的药 食同源食物之一 。山药主要分布于热带和亚热带 地区 ,全世界有 600 种以上 , 而我国有 93 种[1 - 2] 。 目前认为山药多糖是其主要活性成分之一 ,其主要 生理功能有提高机体免疫[3 ] 、抗衰老[4 ] 、抗突变[5] 、 抗氧化[6 ] 、抗肿瘤[7 ] 、降血糖[8 ] 等 。
应 30 min ,进行乙酰化 ,反应物进行气相色谱分析 。
气相色谱分析条件 : 色谱柱 : 弹性石英毛细管
柱 ,30 m ×01 32 mm ; 固定液 : OV21701 ; 载气 : N2 ; 体积流量 :11 5 mL/ min ;检测器 : FID ;汽化室温度 :
280 ℃; 监测器温度 : 260 ℃; 程序升温 : 180 ℃→
2 材料与方法
21 1 材料 新鲜山药 :产地上海 ,购于无锡天润发超市 。
21 2 方法 21 21 1 山药多糖质量分数的测定
1) 山药多糖的提取与精制 称取浆料 200 g , 经石油醚 (沸程 60～90 ℃) 500 mL 回流脱脂 4 h , 过滤 ,滤液回收石油醚 。滤渣用体积分数 80 %乙醇 溶液 500 mL 浸泡过夜 ,回流提取 2 次 ,每次 2 h 。 将滤渣加蒸馏水1 000 mL ,50 ℃热提 2 h ,重复提取 3 次 ,滤液减压浓缩至 300 mL ,Sevage 法脱蛋白 ,加 料液质量 1 %的 活性 炭脱色 , 离 心 ( 3 000 r/ min , 30min) ,滤液加体积分数 95 %乙醇 ,使乙醇体积分 数达 80 % , 4 ℃静置过夜 。离心 ( 3 000 r/ min , 30 min) ,沉淀物用无水乙醇 、丙酮 、无水乙醚多次洗 涤 ,真空干燥得精制山药多糖 。
(江南大学 食品科学与安全教育部重点实验室 ,江苏 无锡 214036)
摘 要 : 对鲜山药中水溶性粗多糖的提取工艺进行了研究 ,通过单因素试验和 L9 (34 ) 正交试验 ,研
究了料液比 、提取温度 、时间和乙醇体积分数对粗多糖得率的影响 ,极差分析及方差分析结果表明
提取温度和料液比是影响山药粗多糖提取的主要因素 ,较优的工艺为料液比 1 g ∶9 mL ,温度 50
多糖提取密切相关的 4 个因素 :料液比 、提取温度 、
时间和乙醇体积分数进行单因素试验 ,确定山药水
第 3 期
孙 锋等 :山药粗多糖的提取工艺
81
溶性多糖的提取工艺 。 21 21 5 山药水溶性多糖提取工艺条件的优化 在 单因素试验的基础上进行 L9 (34 ) 正交试验 ,优化提 取工艺 。L9 (34 ) 因素水平表如表 1 。
表 1 因素水平表 Tab. 1 Level of factor
因 素 料液质量 体积比/ (g ∶mL)
因素
温度/ 时间/
℃
h
乙醇 体积分数/ %
1
1 ∶7
40
11 5
75
2
1 ∶8
ห้องสมุดไป่ตู้45
21 0
80
3
1 ∶9
50
21 5
85
21 21 6 统计分析 采用 SA S 81 2 软件进行统计分 析 , P < 01 05 表示差异显著 , P < 01 01 表示差异高 度显著 。