[医学]猪抗原抗体检测方案
猪抗体检测报告
猪抗体检测报告1. 背景介绍猪抗体检测是一种用于检测猪体内是否产生了特定抗体的方法。
抗体是免疫系统产生的一种重要的免疫防御分子，能够识别并结合到外来物质（如病原体）上，从而激活免疫系统去清除这些外来物质。
因此，通过检测猪体内的抗体水平，可以了解猪对特定病原体的免疫状态，从而指导疫苗的使用和健康管理。
2. 抗体检测方法目前常见的猪抗体检测方法主要包括：2.1 酶联免疫吸附试验（ELISA）ELISA是一种常用的抗体检测方法，其原理基于抗原与抗体的特异性结合。
ELISA可以分为间接ELISA、间接竞争ELISA、直接竞争ELISA等多种形式。
在猪抗体检测中，一般采用间接ELISA，首先将猪体内的抗体与已知抗原进行结合，然后通过酶标记的二抗进行检测。
利用底物的酶反应产生的颜色变化可以判断样本中是否存在特定的抗体。
2.2 补体结合试验（CFT）补体结合试验是一种基于抗原与抗体结合能力的检测方法。
在该方法中，将待测抗体与已知抗原共同作用，然后加入补体。
如果抗体与抗原结合，补体将不会被激活，反之则会激活补体。
通过观察补体激活的程度可以判断样本中是否存在特定的抗体。
2.3 中和试验中和试验是一种评价抗体对病原体的中和活性的方法。
该方法通过将待测抗体与病原体进行反应，并加入包含宿主细胞的培养基，观察是否出现细胞病变。
如果抗体能够中和病原体，那么细胞病变会明显减轻或消失。
3. 猪抗体检测结果及分析根据采用的抗体检测方法和样本来源，我们得到了如下的猪抗体检测结果：样本编号抗体检测方法抗体阳性率001 ELISA 78%002 CFT 92%003 中和试验65%004 ELISA 85%005 ELISA 73%从以上结果可以看出，各种抗体检测方法得到的阳性率有所差异，这可能是由于方法本身的特点和检测的灵敏度有关。
综合分析多种检测结果可以更全面地了解猪体内的抗体水平。
4. 抗体检测的意义猪抗体检测的结果对于猪的健康管理具有重要意义。
非洲猪瘟抗原检测原理
非洲猪瘟抗原检测原理非洲猪瘟抗原检测简介非洲猪瘟是一种高传染性病毒病，由非洲猪瘟病毒引起，猪是其唯一的宿主。
该病毒传染力强，致死率高，严重威胁着猪的生产。
因此需要进行非洲猪瘟抗原检测，以便及时防控。
检测原理非洲猪瘟抗原检测采用的是免疫学方法。
病毒感染后，体内会产生相应的抗体和抗原。
通过检测血清中抗原的含量，可以判断猪是否受到非洲猪瘟病毒的感染。
常见的检测方法有酶联免疫吸附测定法和荧光抗体法。
酶联免疫吸附测定法酶联免疫吸附测定法又称ELISA方法，是一种常用的非洲猪瘟抗原检测方法。
该方法利用特异性抗体将血清中的非洲猪瘟病毒抗原与检测板表面的抗原结合，并通过酶底物反应来检测抗原的含量。
具体操作方法为：将样品加入检测板中，与检测板上的抗原结合；洗去未结合的样品；加入特异性抗体，结合血清中的非洲猪瘟病毒抗原；洗去未结合的抗体；加入标记酶，与特异性抗体结合；洗去未结合的标记酶；加入底物，经酶催化反应后可形成颜色，并通过检测光密度来计算抗原的含量。
荧光抗体法荧光抗体法采用荧光标记的成熟抗体与非洲猪瘟病毒抗原结合，经过检测器检测荧光光强度的变化，来判断抗原的含量。
该方法具有敏感性高、快速、简便等特点。
具体操作方法为：将荧光标记的成熟抗体加入样品中，与非洲猪瘟病毒抗原结合；通过荧光显微镜观察荧光光强度的变化或将样品放入荧光检测器中检测荧光信号的强度，从而判断抗原的存在与否。
总结非洲猪瘟抗原检测是一项非常重要的工作，在防控非洲猪瘟病毒扩散方面起到了重要的作用。
通过ELISA和荧光抗体法等方法，可以较为准确地检测出猪体内的非洲猪瘟病毒抗原，为猪的健康保驾护航。
注意事项在进行非洲猪瘟抗原检测时，需要注意以下几点：1.采集样本时需要采用无菌技术，避免外界细菌或病毒的污染。
2.检测前需要对检验仪器进行校准，确保测试结果的准确性和可靠性。
3.检测过程中需要注意安全防护措施，避免感染或交叉感染。
4.需要遵循操作规程，按照要求进行操作，防止误差和不必要的困扰。
猪瘟病毒抗体ELISA检测方法
猪瘟病毒抗体ELISA检测方法原理猪瘟病毒(CSFV)ELISA抗体检测试剂盒，酶标板包被猪瘟病毒E2抗原(gp55蛋白)，如果待检样品中含有猪瘟抗体，与其包被的抗原结合后，将阻断HRP酶标记的E2单克隆抗体与包被的抗原结合后，将阻断的HRP酶标记的E2单克隆抗体与包被抗原的结合，从而减少显色反应。
试剂IX洗涤液：10X洗涤缓冲液用蒸偏水稀释10倍配成IX洗涤液、TMB 底物液。
设备耗材单道微量移液器和吸头、计时器、加样槽、蒸储水、酶标仪(450nm)Q操作步骤1.试剂盒内所有组份取出，在恒温箱(25+3。
C)中放置至少60分钟，恢复至室温，打开铝箔袋取出抗原包被板。
2.在稀释板中加入70μL样品稀释液，各孔加入70UL血清样品。
同样比例稀释阳性对照血清(PC)与阴性对照血清(NC),充分混匀。
于抗原包被板孔中分别加入100UL稀释后的样品以及100UL稀释后阴性对照血清(NC)和阳性对照血清(PC)o盖上封板膜，室温(25±3。
C)下孵育60分钟。
3.洗板，弃去孔中液体，每孔加300ULl倍洗涤液，洗涤3次。
最后一次洗涤后将酶标版在吸水纸上轻轻拍干，严禁各步骤之间孔板出现干燥情况。
每孔加入IOoULCSFVE2HRP标记抗体。
盖上封板膜，室温（25±3。
C）下孵育30分钟。
4.重复步骤1、2、3o5.每孔加入100μLTMB底物液。
6.盖上封板膜，室温（25±3°C）下孵育15分钟。
每孔加入50μL终止液，终止酶促反应。
使用45Onm波长测量吸光度值。
7.结果判定与计算。
用酶标仪测定0D450nm0结果判读1.阴性对照（Ne）OD45Omin平均值＞0.7；阳性对照（PC）Pl平均值＞50沆2.计算公式通过下面公式计算样品竞争值觥PD。
PI（阻断百分率）=（NCOD均值-样品OD值）÷NCOD均值×100%如果结果可疑，检查样品（是否被细菌污染等）并再次检测。
猪场抗原抗体检测报告分析学习
4、检测用试剂盒一般都采用进口IDEXX试剂盒，国产试剂盒目前检测
结果不够准确，但检测价位较低 5、同一份样品，不同的设备、不同的实验室、不同的人员检测，可能
结果有所差异；同一份样品，同一个实验室，同样的人员和设备，检
测出来的结果可能也有稍许的差别。但对检测结果要进行正面分析
猪场检测抗原抗体的报告分析
猪场检测抗原抗体的报告分析
例3：练习—伪狂犬
样品序号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 17 18 19 20 21 22 26 27 31 32 33 34 36 37 38 39 40 41 42 注射器原始编号 4 6 10 3 7 5 18 16 12 34 1 20 27 30 9 15 17 37 44 43 40 41 46 47 49 50 51 52 53 54 55 样品OD值 0.695 0.218 0.477 0.623 0.303 0.296 0.302 0.213 0.205 0.375 0.273 0.266 0.364 0.278 0.541 0.733 0.88 0.766 0.442 0.489 0.61 0.838 0.723 0.888 1.205 0.833 1.701 1.414 1.409 1.624 1.6 S/N值 0.432 0.135 0.296 0.387 0.188 0.184 0.188 0.132 0.127 0.233 0.170 0.165 0.226 0.173 0.336 0.455 0.546 0.476 0.274 0.304 0.379 0.520 0.449 0.551 0.748 0.517 1.056 0.878 0.875 1.008 0.993 结果判断 +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ --+++ ----------备注 怀孕30天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕30天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕30天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕60天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕60天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕60天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕90天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕90天，12月3日蓝耳疫苗 怀孕90天，12月3日蓝耳疫苗 分娩7天母猪，12月1日蓝耳疫苗 仔猪，12月1日蓝耳疫苗 仔猪，12月1日蓝耳疫苗 仔猪，12月1日蓝耳疫苗 仔猪，12月1日蓝耳疫苗 仔猪，12月1日蓝耳疫苗 断奶后10天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后10天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后10天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后30天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后30天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后30天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后30天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后30天肥猪，12月19日口蹄疫 断奶后90天肥猪，12月3日蓝耳疫苗 断奶后90天肥猪，12月3日蓝耳疫苗 断奶后90天肥猪，12月3日蓝耳疫苗 断奶后90天肥猪，12月3日蓝耳疫苗 60kg肥猪，12月1日蓝耳疫苗 60kg肥猪，12月1日蓝耳疫苗 60kg肥猪，12月1日蓝耳疫苗 60kg肥猪，12月1日蓝耳疫苗
检验猪场免疫效果的方法
效率。
以验证。哨兵猪是易感者，在免疫 相抗原受检抗体复合物，再用酶标
1 临床观察和生产成绩比较
猪群中 1 周乃至数周没有相应疾病 二抗（针对受检抗体的抗体）与固
这是最为经典和朴素的疫苗效 的临床症状，则说明疫苗免疫减少 相免疫复合物中的抗体结合，形成
果检验方法。猪场疫苗免疫后 1 月、 或消除了猪群病毒血症，猪群不再 固相抗原 - 受检抗体 - 酶标二抗复合
果检验结果的支持。猪群接种后 疫苗效果并决定是否选择应用这个
其原理是将抗原 ( 或抗体 ) 包被
必 须 及 时 了 解 免 疫 是 否 合 格， 免 疫苗。很多疫苗企业在新产品上市 于红细胞表面，成为致敏的载体，然
疫 的 时 机 是 否 准 确， 免 疫 的 次 数 后，会动员猪场做平行对比试验， 后与相应的抗体 ( 或抗原 ) 结合，从
修正做出决策。这需要从临床、生 效抗体，免疫保护率是多少，有效 价≥ 1 ∶ 128 为免疫合格。该方法也
产到实验室数据的有效监控，正确 抗体能持续多久，对比试验依然不 可以用于猪细小病毒抗体和猪流感
检验、评估疫苗免疫效果。免疫效 能明确回答这些问题。
病毒抗体的测定和检验。
果需要利用多种方法综合检验评估 3 哨兵猪试验
和 间 隔 是 否 合 适， 产 生 的 免 疫 应 免疫猪群与同等年龄和同样环境下 而使红细胞拉聚在一起，出现可见
答 抗 体 是 否 足 以 抵 抗 外 来 病 原 微 的未免疫猪群比较，以此来证明疫 的凝集反应。目前已有商用试剂盒，
生 物 的 侵 害。 如 果 这 些 问 题 都 不 苗的有效性。如果免疫猪群相对于 可以按说明书操作。猪瘟、猪口蹄疫
疫苗免疫后，猪群是否存在病 毒血症或菌血症，唾液、鼻分泌物、 尿液、粪便等分泌和排泄物是否有 病原，排毒持续多久，这也是评估 疫苗免疫效果的方法之一。 5.1 PCR（聚合酶链式反应）方法
猪病抗体检测
猪瘟抗体检测
• 1、猪瘟抗体：阻断率（Blocking）≥40%， 判为阳性结果；30%＜Blocking＜40%，判 为可疑结果；Blocking≤30%，判为阴性结 果。
• 2.离散度：Coefficient of Variation(CV) 离散度计算的是平均个体的变化，以平均滴 度背离的百分数来表示。 离散度是指所测的样品值与所有样品的平均 值的距离，距离越大，离散度越大。一般离散度 可以用标准差来衡量(STDEV)
猪 病 抗 体 检 测
付• 阴性：没有抗体
• 上图所示的阻断法检测猪瘟疫苗抗体的原 理，可以简单的概括为：第3步中加入的酶 标记物（抗猪瘟病毒的单克隆抗体），与 被检血清中的抗猪瘟病毒抗体，两者竞争 与包被抗原结合。而第2步加入的被检血清 中如果大量含有抗猪瘟病毒抗体，就会阻 断酶标物抗体与包被抗原的结合。最后加 入底物显色。被检血清中猪瘟病毒抗体越 多，阻断率越高，颜色越浅.
• 蓝耳：IRPC是免疫反应阳性细胞。抗体 irpc就是说抗体参与特异性免疫反应产生阳 性细胞。通常是求数量。
• S/N:样品比阴性值
• 公式如下： 离散度 CV = 标准偏差（STDEV）/平均阻断 率×100%CV≤40%,显示了群内猪只有一个均衡 的、相似反应。（表示猪群内不同个体之间抗体 水平稳定，免疫效果良好）CV≥60%,显示了群内 猪只滴度反应变化高于正常估计值。（表示猪群 内不同个体之间抗体水平差异较大；生产管理水 平，疫苗质量、免疫程序制定有提升与商榷的余 地）。作为衡量猪群抗体稳定性与均匀度的指标， CV值对评判免疫结果具有重要意义。
猪瘟的实验室抗原检测方法
长 ，成 本 高 。
１ 病 原 分 离 和 回 归 试 验
这 是 最经 典 和 可 靠 的方 法 。采 集 病 变 典 型 的 可 疑 组 织 ，包 括 血 液 或 脏 器 ，
１３ 猪 体 回归 感 染试 验 ．
测 温 ５ ７天 ，每 隔 ６小 时 一 次 。 对 照组 ～ ２３出 现 定 型 热 或 轻 型 热 ， 试 验 成 立 ， ／ 并 根 据体 温 反应 判 定结 果 （ 表 １。 见 ）
法 ，下 面 给大 家详 细 介 绍 。
用 这 种 方 法 能 检 出 待 测 病 料 中 可 能存 在
方 法 进 行 病 原 学诊 断 。用 荧 光 法 检测 的 病 料 要 新 鲜 ，用 于病 毒 分离 的病 料 还 应 过滤除菌。
１２ 病 毒 分 离 ．
这 一 现 象 ，将 病 料研 磨 后 用 生 理 盐 水作
ｌ Ｏ稀 释 ，制 成 组 织 悬 液 。对 ３只健 ：１ 康 家 兔 （ 重 ２ｋ 左 右 ）作 肌 肉注 射 ， 体 每 只注 射 被 检 病 料 组 织 悬 液 上 清 １ｍ ； Ｌ 另 设 ３只 不 注 射 病料 的对 照 。 注 射 后 每
猪瘟 的实验 室抗原 检测 方法
李 岩 （ 龙 江 省 青 冈县 畜 牧 兽 医 局 ，黑 龙 江 青 冈 １ １ ０ ） 黑 ５ ６ ０
随 着 对 猪 瘟 （ Ｓ ） 研 究 的 不 断 深 ＣＦ
入 ． 目前 已建 立 了多 种 对 抗 原 的检 测 方
通 常 用 荧 光 抗体 法 可 测 ｍ 细胞 培养 中盖 玻 片 上 细 胞 浆 内 的病 毒 抗 原 。亦 可 用新 城 疫 病 毒 强 化试 验检 测 Ｃ Ｆ 的存 在 。 ＳＶ
正向间接血凝检测猪瘟抗体水平 猪瘟抗体检测 猪病防治课件
出现“++” 以上凝集者判为阳性。
六、临床应用
1、间接血凝抗体滴度在1：32-1：64时，攻毒 可获得100%保护，1：16-1：32时有80%保护， 1：8时则完全不能保护。
2、猪瘟间接血凝实验适用范围 （1）检测仔猪母源抗体水平 （2）猪瘟疫苗免疫猪群抗体水平的监测 （3）测定猪瘟抗体消长时间
8、加间接血凝抗原 在第1排1－6孔和对照孔各 加血凝抗原25ul.
9、振荡 血凝板在振荡器上或用手轻拍摇动， 使诊断液中的红细胞与血清混匀。
10、盖上与血凝板相符的玻璃板，以防水分蒸 发，在室温下（10-36℃）静置2h判断结果。
五、结果断
1、先检查对照孔是否合格 阴性血清对照和 稀释液对照孔，红血球应全部沉入孔底，无凝 集现象(－)或呈阳性(+)的轻度凝集为合格；阳 性血清对照应呈(++)凝集为合格。
正向间接血凝检测猪瘟抗体水平
• 一、实验目的 掌握间接血凝测定猪瘟抗体的方法
• 二、材料用具 猪瘟间接血凝抗原（猪瘟正向血凝诊断液）、
阳性对照血清、阴性对照血清、稀释液、待检 猪血清样品、96孔110°微量血凝板 、微量移 液器10-100微升 、玻璃板。
三、反应原理
将可溶性抗原（或抗体）先吸附于适当大小的颗粒 性载体的表面，然后与相应抗体（或抗原）作用， 在适宜的电解质存在的条件下，出现特异性凝集现 象，称间接凝集反应或被动凝集反应。以红细胞为 载体的间接凝集反应叫间接血凝。
4、稀释待检血清 用微量移液器向血凝板的第1 孔-6孔各加稀释液50ul，吸待检血清50ul加入第 1孔，混匀后从中取出50ul加入第2孔，依此类 推直至第6孔混匀后弃去50ul，第1孔-6孔的血 清稀释度依次为1：2，1：4，1：8，1：16，1： 32和1：64。
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（3）猪群稳定性评估
蓝耳病的检测方法
（1）抗原：RT-PCR （2）抗体：ELISA
蓝耳病的抗体检测结果分析
（1）对于稳定的种猪群，S/P值为0-2左右， 很少大于2.5.
（2）良好免疫群的典型的S/P比值范围为：0.7 to 1.8 ；有些可能>2.0 。
（3）如果每年免疫两次，仍有多于20％的猪 抗体为阴性，需要对疫苗的管理和使用进行检 查。
（2）在阳性率很高的种猪群，保证引入阴 性后备母猪和种公猪，加强免疫。每季度 抽样监控野毒阳性比例防止感染扩大并用 PRV-gB评估免疫抗体水平，三年可见效。
（2）PRVgE（I）：野毒抗体
（3）通过PRV-gB和PRV-gI抗体检测可了解 本场伪狂犬病的流行状况，制定相应的免 疫方案及措施。
伪狂犬清除计划
（1）在阳性率低的种猪群，建议一次性淘 汰所有阳性种猪。每个季度筛选一次，加 强疫苗免疫，同时保证引入阴性后备母猪 和种公猪，一般一年见效。
（3）结果分析：猪瘟抗原ELISA阳性结果 代表野毒阳性，PCR和荧光抗体阳性结果有 可能是疫苗毒的干扰。
猪瘟抗体ELISA检测要点:
A.怎样评估母源抗体和免疫效果 1）当母源抗体的降到阻断率（Block）50% 以下时，才能不干扰疫苗的免疫。（确定首 免日龄） 2）免疫后阻断率（Block）上升到50%以上 才能代表免疫合格。 良好的种猪场要求：阳性率100%（>40）， 合格率90%（>50） cv<25%） CSFV判定标准:若%PC值大于或等于0.4则判 定阳性；若PC%值小于0.4则判定阴性
防止引入不稳定猪只 全部
经产母猪 2个月一次个月一次 了解猪群稳定性
20
商品猪 3个月一次个月一次 监控免疫效果和稳定性 20
伪狂犬的主要问题
（1）种猪群野毒抗体（gE抗体）阳性率居 高不下
（2）中大猪的呼吸道问题 （3）散发性母猪繁殖障碍 （4）净化方案的选择
伪狂犬的检测方法
（1）PRVgB：总抗体，S/N值和阻断率 （BLOCK值）
野毒感染和抗体水平
全部
3个月一次个月一 评估母猪群的健康状态和抵抗 20
次
力
商品猪
二免后4-6周4-6周 监控免疫效果
20
首免日龄 仔猪
21日龄日龄 28日龄日龄 35日龄日龄 42日龄日龄
评估母源抗体衰减水平，选择 15 最佳首免时间
15
15
15
蓝耳病的主要问题
（1）毒株的变异与交叉保护 （2）疫苗的选择：灭活疫苗、弱毒疫苗、
S/P值 0.652 0.693 1.322 0.378 0.258 0.237 4.171 2.746
结果 + + + + +
阴性对照 阴性平均值
0.072 0.078 0.075
成立
阳性对照 阳性平均值
0.735
0.734 0.7345
成立
蓝耳病抗体检测时间表
品项
种类
时间
目的
取样数量
日常评估 后备母猪 在配种前
结果 + + + + + -
成立
成立
CSFV判定标准:若%PC值大于或等于0.4则判定阳性；若PC%值小于0.4则判定阴性
B. 剔除持续感染猪或无抗体反应 猪
1）持续性感染的种猪可间断性或持续性排 出病毒，他们成为整个猪群的感染源。
2）首次使用应对母猪群进行检测，对抗 体低下猪只进行补针后6周复检。若仍然没 有抗体产生，应进行淘汰。
PRRSV判定标准:S/P值大于等于0.4判定为阳性；S/P值小于0.4判定为阴 性
编号 原种场一场52 原种场一场54 原种场一场58 原种场一场66 原种场一场61 原种场一场68 原种场一场71 原种场一场75
OD值 0.505 0.532 0.947 0.324 0.245 0.231 2.449 1.886
C. 猪瘟抗体检测结果分析
1）Cutoff值是 >1：16代表抗体阳性
2）实际生产中至少要在1：一般会在1：256到1：1024左右波动。
D. 猪瘟抗体 ELISA检测时间表
品项 日常评估
种类 后备母猪 经产母猪
时间
目的
取样数量
在配种前
表1：猪血清CSFV抗体检测结果
编号 6306 5841 5805 3711 保1 后备
阴性对照
阴性平均值
阳性对照
阳性平均值
OD值 0.347 0.277 0.218 0.172 0.159 0.699 0.818 0.817
0.8175 0.073 0.057
0.065
阻断率 0.625 0.718 0.797 0.858 0.875 0.157
（9）母猪群间隔1-2个月对群体进行监控， 了解猪群等稳定状态
（10）仔猪了解病毒的感染时间，加强药 物保健
非免猪 非免猪 免疫猪
免疫猪
稳定
不稳定 稳定
稳定性标准
S/P≤1.0者比例≥90%者比 例≥90% S/P<1.0者比例<90% S/P≤2.0者比例≥90%者比 例≥90%
不稳定 S/P<2.0者比例<90%
重点进行监测四大猪病：猪瘟、蓝耳、伪狂犬、圆环
1. 猪瘟主要问题 （1）抗体水平偏低 （2）疫苗的选择及剂量：细胞苗？脾淋
苗？，150 RID = 37 PD50 （3）持续性感染猪的存在
猪瘟抗原检测
（1）常用方法：PCR、荧光抗体和ELISA
（2）检测目的：引进种猪或后备母猪时的 检查，疑似病例的确诊，猪群带毒率的定 期评估
猪抗原抗体检测方案
检测的目的
1．疾病预警 （1）了解疾病在场内的污染状况，制定相应策 略 （2）提前了解免疫抗体的高低及整齐度，及时 纠正 2．免疫程序的评估与优化 （1）了解母源抗体的消长情况 （2）疫苗接种的效果-----免疫抗体监控 3．疾病控制和清除计划：通过系统检测和措施， 实施疾病的控制或清除计划 4．疾病诊断
（4）当S/P >2.5 – 病毒血症 （5）当S/P >3.5-高于5.0 – 急性感染
蓝耳病的抗体检测结果分析
（6）6-7周龄时，多数仔猪抗体可变为阴性 （无病毒循环）
（7）引进种猪，要剔出阳性值SP>1.2的猪 只，保证种群的稳定
（8）公猪抗体阳性值SP>2.5的最好不要使 用