病原微生物标本采集运送

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微生物标本正确采集及运送

微生物标本正确采集及运送
鳞状上皮细胞SBC>25 白细胞WBC>25 /每低倍视野 鳞状上皮细胞SBC10-25 白细胞WBC>25 /每低倍视野
微生物标本正确采集及运送
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卫生部医政司《全国临床检验操作规程》
白细胞吞噬革兰阴性杆菌 / 革兰阳性球菌 未见白细胞吞噬
微生物标本正确采集及运送
第12页
微生物标本正确采集及运送
女性
肥皂清洗尿道外围 以无菌纱布擦拭 用手分开大阴唇 先排出前段尿液,再以无 菌宽口容器搜集中段尿液
男性
肥皂清洗尿道外围 以无菌纱布擦拭 扶起茎阴翻上包皮 先排出前段尿液,再以无 宽口容器搜集中段尿液
微生物标本正确采集及运送
第28页
尿标本采集注意事项
留取尿培养标本时需以无菌操作 注明是否使用抗生素 女患者月经期不宜留取尿标本 会阴部分泌物过多,应先清洁冲洗再搜集 4-8℃保留不可超出24小时 标本如不能马上送检,应存放于冰箱
微生物标本正确采集及运送
第18页
血培养采集
双侧双瓶
微生物标本正确采集及运送
第19页
影响血培养阳性率原因
微生物标本正确采集及运送
第20页
血培养组合与检出率
微生物标本正确采集及运送
J Clin Microbiol. ; 45:3546-354第821页
致病菌和污染菌判别
真正菌血症:
➢ 分离有毒力菌株
检验前误差: 病人准备、标本采集、标本储存及运输不规范
微生物标本正确采集及运送
Clin Chem. Jul;53(7):1338-42. Epub May 24 Clin Chem Lab Med. ;44(6第)3:页750-9
细菌诊疗标本采集标准

微生物检验标本采集和运送原则

微生物检验标本采集和运送原则

微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性,同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。

下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识,欢迎阅读。

采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作,非无菌部位尽量减少正常菌群的污染,采样量足。

采样容器专用的无菌,防渗漏,有盖,无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。

送检尽快送检,一般不超过2小时。

若不能及时送检可于4-8℃保存,但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。

微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。

2.尽量在抗菌药物使用前,或停药3至5天后采集标本,如不能停用抗菌药物,应于下次抗菌药物应用前采集。

应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位,并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4.采样时应严格执行无菌操作,将污染可能降至最低。

5.收集真正感染的病灶处的标本,且避免邻近区域常居菌群的污染。

6.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理,防止渗漏,但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

7.采样后应立即送检,最好在2h内。

如不能及时送检,应将标本置于适当的储存环境待送,但不超过24小时。

对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。

8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本,应使用专用的纤维拭子。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息,在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。

微生物标本采集和运送的基本原则

微生物标本采集和运送的基本原则

微生物标本采集和运送的基本原则
微生物标本采集和运送的基本原则包括以下几点:
1. 采集时遵守无菌操作原则:采集人员应佩戴无菌手套,使用经消毒处理的工具和容器,确保采集过程不会引入外来微生物污染。

2. 标本采集要及时:一般来说,微生物标本应在病情出现或患者就诊后尽快采集,以确保标本中的微生物不会失活或过度增殖。

3. 采集要选择适当的采样部位和方法:不同类型的微生物感染,需要针对不同的组织、液体或体表进行采集。

采样时应遵循临床指南,选择适当的采样部位和方法。

4. 采集要足够数量:为了保证对病原体的准确鉴定和敏感性测试,采集的标本应足够数量。

采集过程中,避免采样物与采集容器外部环境的交叉污染。

5. 保证采样物的完整性和稳定性:采集的标本应保持完整,避免在采集、运输和处理过程中造成微生物失活或污染。

对于需保存在冷藏或冷冻条件下的标本,应采取相应的措施确保稳定性。

6. 标本运送要符合规定:标本应尽快送至实验室,运送过程中应避免温度变化、震荡和倒置等可能影响标本稳定性的因素。

运送时应采取相应的隔离措施,避免交叉感染。

7. 运送要有标志和单据:标本运送时应进行明确标识,并附上相应的单据,包括采样日期和时间、采样部位、采样者姓名、患者姓名和病历号等信息,以确保标本能够被正确识别和追踪。

总的来说,微生物标本采集和运送的基本原则是确保标本的无菌、完整和稳定性,遵循正确的采集方法和运送规定,以保证标本的质量和可靠性。

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节,对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。

本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。

一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机:微生物标本的采集应在抗生素使用前,以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。

在感染初期或病情加重时采集标本,可提高病原体的检出率。

2.无菌操作:在微生物标本采集过程中,应严格执行无菌操作,避免正常菌群和其他杂菌的污染。

采集非无菌部位的标本时,应尽量减少污染。

3.采集量:微生物标本的采集量要充足,以便进行后续的培养和检测。

不同类型的标本有不同的采集量要求,一般要求采集足够量的标本。

4.标本保存:微生物标本在采集后应及时保存,室温下保存时间不得超过 2 小时(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存),冷藏保存时间不得超过 8 小时。

5.标本运输:微生物标本在运输过程中应保持无菌状态,避免温度过高或过低,以及剧烈震动。

运输包装应具有良好的保护性能,防止标本破损或泄漏。

二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件:微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度,避免高温、低温和干燥。

不同类型的标本有不同的运送条件要求,一般要求在 2-8℃的条件下运送。

2.运送时间:微生物标本的运送时间应尽量缩短,以减少病原体的死亡或活性降低。

一般要求在采集后 24 小时内送检。

3.运送包装:微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能,防止标本在运输过程中破损或泄漏。

包装材料应无毒、无菌、防渗漏。

三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。

正确采集和运送微生物标本,可以提高病原体的检出率,为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则有:
第一,要及时采集微生物标本,做病原学检查。

第二,严格执行无菌操作,减少和避免污染。

第三,标本采集之后,要立即送到实验室,床旁接种可以提高病原菌的检出率。

第四,尽量的在使用抗菌药物之前采集标本,这样对于结果的影响比较小一些。

第五,以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。

第六,盛标本容器须经灭菌处理,不要使用消毒剂。

第七,送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。

第八,对于混有正常菌群的污染标本,要做定量或半定量培养,然后判断是感染菌和定植菌。

第九,对分离到的病菌,要做药敏实验,提倡分级报告和现实报告。

关于微生物检验标本采集和运送

关于微生物检验标本采集和运送


6.采用专用无菌容器收集标本。容器须灭菌处理,防止渗
漏,但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂。

7.采样后应立即送检,最好在2h内。如不能及时送检,应将标
本置于适当的储存环境待送,但不超过24小时。对可疑淋病奈瑟菌
、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的
苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15~
• 3.选择正确的解剖部位,并以适当的技术、方法与 容器收集足量的标本。
• 4.采样时应严格执行无菌操作,将污染可能降至最 低。
• 5.收集真正感染的病灶处的标本,且避免邻近区域 常居菌群的污染。

• 注意事项:
• 采样时机

抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样
• 采样方法

采集无菌部位的标本应严格无菌操作,非无菌部位尽量减少正
关于微Байду номын сангаас物检验标本 采集和运送原则
内容
• 1.微生物标本及常见致病菌 • 2.微生物检验标本采集和运送原则 • 3.图片展示:现场指导和培训
微生物标本及常见致病菌
• 1.血液标本血液标本的细菌培养是诊断菌血症 或败血病的基本方法。
• 正常人的血液是无菌的、如从患者血液中检出细 菌一般应视为病原菌(排除采集标本或具他操作 过程污染),提示有菌血症或败血症,或心内膜 炎、心包炎、血源性骨髓炎。常见的病原菌主要 有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌(A、B群,肺 炎链球菌等)、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、 脑膜炎奈瑟菌、伤寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等 。
• 2.骨髓标本正常人的骨髓是无菌的。
• 若从患者骨髓中检出细菌(排除污染),提示细菌 性骨髓炎或菌血症、败血症。常见病原菌同血液

微生物检验标本采集运送程序

微生物检验标本采集运送指南
标本的采集和运送具有重要意义,其质量直接影响到微生物实验室检测结果的可靠性。标本的采集和处理方式不当将导致病原体分离失败,或无法确定真正致病的微生物,给医院感染的病原学诊断造成困难,因此必须规范微生物检验标本的采集、运送,保证实验检测前标本质量。
标本
类型
采集
时间
温度
转运
报告时间
2、液体粪便取1~3ml
无菌
容器
常温
≤2h
住院超过3d或入院诊断不是胃肠炎的病人,不做常规粪便培养
直肠拭子
1、小心插入拭子超越肛门括约肌,轻轻旋转拭子,在肛门隐窝取样
2、用于检测病原的拭子应能见到粪便
无菌
试管
褥疮溃疡
1、一般不选择拭子标本
2、无菌盐水清洗表面
3、如得不到活检标本或抽吸物,则用拭子用力采集损伤底部
由于褥疮溃疡拭子提供不了什么临床信息,一般选择组织活检或针头抽吸标本
1/d#表示一天中仅需送检1次,无需多次重复送检相同标本







量多为宜
无菌容器

1h出报告
至少连续送3d,每日1次
尿(24h尿沉淀或12h全夜尿沉淀)
10ml
无菌管
留取24h尿或12h全夜尿于洁净容器中,必须静止2h后,弃上清液,收集沉渣约10ml于无菌容器送检
血培养瓶有两种规格,采血量不一样。
成人瓶:
8~10ml/瓶
小儿瓶:
1~3ml/瓶
≤2h
常温
禁止冷藏
阴性:5d
阳性:随时报告危急值,最终报告及时发出
建议从不同部位各采1瓶,共2瓶同时送检。
1、采集部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉为宜。

临床微生物标本采集和运送规范

➢ 可疑菌血症或真菌菌血症,但血培养持续阴性,应改 变血培养方法,以获得罕见的或苛养的微生物。
➢ 可疑细菌性心内膜炎,在1~2h内采集3份血标本,如 果24h后阴性,再采集3份以上的血标本。
12
脑脊液标本采集送检规范
❖ 采集时间:最好在抗菌药物使用前采集。 ❖ 采集方法:通常用腰穿的方法采集脑脊液,
➢ 采集数量:对于细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连 续2~3天。不建议24h内多次采集,除非痰液外观性状 出现改变。
➢ 标本运送:标本应尽快送检(1-2h内),如不能及时
送检,室温保存≤2h,4℃冰箱保存≤24h。
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生殖道标本采集送检规范
❖ 应由临床医师采集,用无菌棉拭子采集。淋球菌 检查时,不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入 尿道及子宫颈3cm深取样送检,要避免受阴道分 泌物污染。
离体后回迅速自溶。肺炎链球菌和流感嗜血杆菌 离体后极易死亡。)。延迟送检时一定不能放冰 箱,肺炎链球菌和流感嗜血杆菌等对温度敏感的 细菌在冰箱会很快死亡。 ❖ 各种无菌体液标本,如胸腹水、浆膜腔积液及各 种穿刺液等亦可注入血培养瓶以提高培养的阳性 率。
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尿液标本采集运送规范
❖ 采集时间:尽量在抗菌药物使用前(多数药物从尿道 排泄)。
15
痰标本采集运送规范
❖ 采集时间:尽量在使用抗菌药物之前 ❖ 采集方法: ➢ 自然咳痰:以晨痰为佳。咳痰前应清洁口腔如刷牙和
漱口,然后用力咳出呼吸道深部痰,直接吐入于无菌 容器中。痰少或无痰者可用3-5%NaCl水溶液5ml雾化吸 入5min导痰(气道高反应如哮喘病人不宜采用此法)。 对于难于自然咳痰者可用微生物室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。 ➢ 小儿取痰法 最好用微生物实验室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。

采集、运输、保存、使用高致病性病原微生物标本的规定

采集、运输、保存、使用高致病性病原微生物标本的规定采集、运输、保存、使用高致病性病原微生物标本的规定1、目的为了加强病原微生物实验室(以下称实验室)生物安全管理,保护中心实验室工作人员和公众的健康,制定本规定。

2、适用范围XXX及其从事实验活动的技术人员。

3、高致病性微生物定义第一类、第二类病原微生物统称为高致病性病原微生物。

第一类病原微生物,是指能够引起人类或者动物非常严重疾病的微生物,以及我国尚未发现或者已经宣布消灭的微生物。

第二类病原微生物,是指能够引起人类或者动物严重疾病,比较容易直接或者间接在人与人、动物与人、动物与动物间传播的微生物。

4、样本采集4.1病原微生物样本应当具备下列条件:1)具有与采集病原微生物样本所需要的生物安全防护水平相适应的设备,包括个人防护用品(隔离衣、帽、口罩、鞋套、手套、防护眼镜等)、防护材料、器材和防护设施等根据病原微生物实验活动进行危害评估,确定防护要求。

2)具有掌握相关专业常识和操作技能的事情人员;熟练掌握采样的操作规程(血样、尿样、分泌物等)。

3)具有有效的防止病原微生物扩散和感染的措施;如防刺穿的垃圾桶、紧急处置意外的药物和器具。

4)具有保证病原微生物样本质量的技术方法和手段。

5.1总体原则我百姓航部门目前提出,经由过程民航运输菌(毒)种及样本,同一按国际标准举行包装、标识。

5.2样本运输的审批程序:1)运输高致病性病原微生物菌(毒)种或样本,必需经省级以上卫生主管部门核准。

2)固订单位间屡次运输相同种类高致病性病原微生物菌(毒)种或样本的可申请屡次运输,有效期6个月。

3)本省行政区域内运输高致病性病原微生物菌(毒)种或样本,属省直、高校单位的由XXX生物安全领导小组办公室审批。

省辖市、扩权县及驻豫有关单位,由所在地卫生行政部门进行初审,报XXX审批。

4)跨省运输高致病性病原微生物菌(毒)种或样本的单位,由XXX生物安全领导小组办公室初审,并报国XXX审批。

医院病原学标本运送管理制度

医院病原学标本运送管理制度一、标本运送由经过培训的工作人员进行,不得由病人或家属运送。

二、标本应在规定时限内及时送达检验科,避免影响标本检测结果的准确性。

三、手术切除的各种人体组织或器官,应注明标识,由专人根据手术医师的要求摘取部份或全部送检。

运送前应将组织或器官放入专用容器内并注明标识,由专人运送至病理科指定存放点,经双方交接签字确认。

四、临床采集的各种病原学标本,如血液、体液、(胸腹腔液、关节液)胃液、肠液、脓液、精液、痰液、各种拭子、大小便等,采集后立即放在专用的采集器或试管内,并注明标识,再放入防渗漏、防穿剌容器并加盖,由专人运送到医院检验科、病理科指定存放点,经双方交接确认。

五、因流行病学调查需要采集的各种病原学检测标本,应由专人采集,采集后立即放入专用采集器并注明标识,再放入标本运送容器内,在安全防护的条件下由专人、专车立即送到本区疾控中心或本区卫生行政部门指定地点,经双方交接确认并记录。

六、经本院HIV实验室初筛结果为HIV病毒感染阳性的血标本,采集后应立即放在专用采集器内并注明标识。

其运送包装应严格按照《病原微生物实验室生物安全管理条例》和《全国艾滋病检测技术规范》要求,采用三级包装系统,由专人运送到本区疾控中心实验室,经双方交接确认并记录。

七、工作人员在标本运送过程中,应做好相应防护工作,避免发生职业暴露。

拿取标本应戴防护手套,接触标本、脱手套后进行手卫生。

八、运送中小心谨慎,严防容器掉落损坏标本、病原性物质污染自身及环境等意外。

一旦出现意外情况,如容器掉落,损坏采集器,病原性标本物质污染自身或周围环境(物表、地表或他人等),应立即进行清洁、消毒、隔离等处理。

必要时应上报相关部门进行处理。

九、运送病原学标本的容器应每周定时进行清洁和消毒处理。

运送感染性疾病的病原学标本容器应在每次运送后进行清洁、消毒或灭菌处理。

十、各科室和相关部门应加强标本运送工作的监督、检查和指导。

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病原微生物标本采集运送Coca-cola standardization office【ZZ5AB-ZZSYT-ZZ2C-ZZ682T-ZZT18】病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集,运送,保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要,为了准确检出病原菌,避免漏检与误诊,临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择,采集,运送,保存及处理的一般原则。

一、标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期,急性期,且必须在使用抗菌药物之前采集,确保病原菌的检出。

2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染,使病原菌与正常菌群混淆,造成临床误诊。

采集的标本应存放在无菌容器内,容器不能使用消毒剂处理,标本中也不能添加防腐剂,以免降低病原菌的检出。

3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。

4.适当的采集方法对于厌氧菌,需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的,用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物,室温保存,不能冷藏和冷冻。

5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌,防漏,应带有螺旋盖的容器内。

二、标本的运送1.标本采集后立即送检,若有延迟也应在2小时内送到实验室,否则会影响病原菌的检出,一般性的细菌培养标本若需延迟送检时,应置于4度冰箱保存,且不能超过24小时。

2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量,少量液体(小于1ml)或组织(小于1cm3)应在15~30分钟内送到实验室,较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时,厌氧培养标本原则上是床边接种,如延迟送检,需保存在厌氧运送培养基中,室温保存,不得超过24小时。

三、不同标本的采集,运送(一)血液标本采集,运送1.血培养指针征当患者出现:发热(大于38度)或低温(小于36度),寒战,白细胞增多,皮肤黏膜出血,休克,多器官衰竭,血压降低,c反应蛋白升高及呼吸加快,血液病患者出现粒细胞减少,血小板减少等,具备上述一种或几种体征时,临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养,对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前,及时做血培养。

2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。

必须同时或间隔短时间内采集2套以上血培养标本。

成年患者:推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养标本(即双瓶双臂同时采集血培养标本),采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者:推荐同时采集2次(不同部位)血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。

(少于病人总血容量的1%).在采取血培养后的2—5天内,无需重复采取血培养。

两个例外:细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。

?3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。

检出率与采血量成比例增长,每增加1ml的血液,病原菌的检出率就会相应增加。

儿童患者血液中病原菌浓度较高,血培养量无需等同于成人。

采用一对(需氧瓶+厌氧瓶)组合,比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。

采血量不能满足推荐的量时,应首先满足需氧瓶的需要。

?推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管,因其常伴有高污染率。

如果必须从留置导管内采血,也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。

4.血标本采集的注意事项在采血之前,血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。

然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。

严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作,并等待足够的消毒时间。

严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手接触静脉,除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。

(二)痰培养标本采集,运送1.痰培养指征上呼吸道感染包括咽炎,喉炎,会咽炎等都可采集鼻,鼻咽,口咽拭子标本培养。

下呼吸道感染:凡是咳嗽,咳痰,痰呈脓性,粘稠或血性等都可采集痰标本。

2.标本的采集采集前嘱咐病人先用清水漱口,摘去牙托,因唾液中口咽部定植菌的浓度可达108-109/ml,去除表面的菌群。

教育病人深咳,收集从下呼吸道咳出的痰液。

在抗生素应用前采集痰标本;标本采集后1~2h内送往实验室进行处理,采集标本过程中要有专业的医务人员指导;无痰可用3%~5%NaCl?5ml雾吸约5min导痰;也可用物理疗法、体位引流、鼻导管抽吸等方法取痰。

3.正常的痰标本低倍视野下鳞状上皮细胞小于25个,白细胞大于10个。

如果低倍视野下鳞状上皮细胞大于25个,白细胞小于10个应不做或仅在特殊要求时做培养,如做培养,报告中注明“镜检结果表明标本口咽分泌物污染明显”。

4痰培养方法的局限性多数引起肺炎的病原菌不能培养出,如病毒,军团菌,衣原体等。

影响因素很多:如黏液包裹、定植菌污染。

建议痰培养同时做血培养和痰涂片镜检。

5.注意事项常规的痰培养需在2小时内送检,若怀疑嗜血杆菌,肺炎链球菌感染时必需随留随送;标本中不能混入唾液与鼻咽分泌物等。

(三)尿培养标本采集,运送1.尿培养指征尿路感染,肾结核,泌尿系结石,膀胱排空功能受损或前列腺增生等患者,出现尿频,尿急,尿痛等膀胱刺激症状,肉眼脓尿或血尿,尿常规检查有白细胞或亚硝酸盐阳性,,不明原因的发热,尿道口有脓性分泌物等症状,需采集尿培养标本送检。

2.标本的采集清洁中段尿液,嘱咐患者用肥皂水清洗,弃去开始流出的尿液,以冲刷尿道口的细菌,取能代表膀胱部位病原菌的中段尿;导尿管尿液,留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集,不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液,采样端口用酒精消毒;必要时,可先夹住导尿管但不能超过30分钟;将注射器针头插入采样端口,抽吸出尿液;注入无菌杯或试管中。

膀胱穿刺尿,无菌操作,用无菌注射器刺入膀胱抽取5—10ml尿液送检,主要用于厌氧菌的培养或留取标本困难的婴幼儿标本的采集,此法可避免尿液标本的污染。

3.标本的采集量一般成人采集10-15ml,婴幼儿不得少于1ml。

诊断症状明显的病人(如尿急、尿频、尿痛),一份标本就已足够,治疗48-72小时后再采集第二份标本。

对于症状不明显的病人,需采集2-3份标本。

怀疑肾结核时,应连续3天采集晨尿。

4.室温都有利于病原菌和污染菌生长繁殖,标本采集后立即送检和接种,室温下存放不能超过2小时,(夏季保存时间应适当缩短或冷藏),4-8度冷藏保存时间也不能超过24小时,冷藏的尿液不能用于淋球菌的培养。

5.注意事项必须无菌操作,采用带盖防渗漏的无菌杯收集,多次收集或24小时尿不能用作培养。

集尿袋内的尿液不能用作培养。

导尿管末端的尿液也不能用于培养,很难避免没有尿道菌群污染。

在使用抗菌药物前留取标本,尿液中不能加任何防腐剂或消毒剂,抑制细菌的生长。

(四)粪便标本采集,运送1.送检指征当患者出现腹泻,大便每天大于或等于3次,粪便的性状异常,可为稀便,水样便,粘液便,脓血便或血便,伴有恶心,呕吐,食欲不振,发热,腹痛及全身不适等,大便镜检白细胞大于等于5个每高倍视野,抗菌药物治疗后的腹泻等。

?2.标本的采集方法,时间与量尽可能在发病早期(急性期)或应用抗菌药物治疗之前,采集新鲜的粪便,怀疑沙门菌感染时,应在发病2周以后采集。

自然排便法,排便后,挑取有脓血或粘液部位的大便,液状粪便取絮状物盛于无菌的容器内;直肠拭子采集法,用于排便困难的患者或婴幼儿。

一般用拭子采集大于2g的标本送检,若标本为水样,采集大于2ml 的标本于无菌容器中送检。

3.标本的运送与保存标本采集后应尽快送检,室温条件下不能超过2小时,如不能及时送检可加入磷酸盐甘油缓冲保存液中或专门的大便运送培养基中置4度冰箱保存,但不能超过24小时。

高度怀疑霍乱弧菌感染的标本必须符合特殊标本的安全要求。

4.注意事项最好在用药前,采集新鲜的标本盛装在无菌容器内,立即送检,提高阳性检测结果。

厌氧菌的培养尽量避免与空气接触和正常的菌群污染。

(五)脓液及创伤感染分泌物标本的采集及运送1.送检指征凡是当患者有外伤感染,术后切口感染,导管感染,脐带残端感染,有脓液和分泌物时,应采集标本培养。

?2.标本的采集时间和方法在使用抗生素前或停用药1—2天以后,或使用下一次抗生素前采集,对脓肿性分泌物应先用生理盐水或75%的酒精冲洗溃疡表面渗出物,尽可能抽取脓液于无菌杯内送检。

对于封闭性脓肿时,应无菌操作抽取脓液3—10ml于无菌试管内或血培养瓶内送检,怀疑厌氧菌感染时,应做床旁接种或注入厌氧瓶内(3—10ml)送检,最佳方法是采集组织送检。

3.标本的运送标本采集后应于2小时内送微生物实验室进行处理,若不能及时送检,需氧培养的标本除对环境敏感的淋病奈瑟菌,脑膜炎奈瑟菌和流感嗜血杆菌外,可保存在4度冰箱中,但保存时间不能超过24小时;厌氧培养时,需用厌氧瓶或厌氧袋在室温下保存,但不能超过24小时。

?4.注意事项尽可能在用抗生素前采集,若患者也用药,应在检验单上注明抗菌药名,并在下次用药前采集;对于开放性的伤口,采集前应先除去表面污染菌,以防带入与感染无关的皮肤定值菌。

干燥结痂的标本一般不做培养,除非有渗出物。

采集标本时应无菌操作。

(六)穿刺液标本的采集与运送穿刺液主要包括脑脊液,胸腹水,心包液,胆汁,关节液及鞘膜液,在正常标本中,上述液体是无菌的,在排除污染的情况下,一旦检出细菌均视为病原菌。

在相关的部位有相应的临床症状时,应无菌操作采集相应的标本于无菌容器内送检,标本采集后应立即送往实验室处理。

脑脊液采集后应在15分钟内送到实验室,若不能,应室温保存,不得超过2小时,不能冷冻或冷藏注意事项:标本的采集严格执行无菌操作,最好在用抗菌药物前采集。

防止标本凝固,可事先在容器内加入抗凝剂,(脑脊液标本时不需加抗凝剂),也可直接加入血培养瓶内。

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